JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurowissenschaften
0 Ansichten • 3:22 Min. • July 8th, 2025
Nehmen Sie in Harz eingebettete, chemisch fixierte ultradünne Hirnschnitte von gesunden und hirngeschädigten Zebrafischlarven, die auf einem Ein-Loch-Gitter montiert sind.
Die Schnitte sind mit Schwermetallen gefärbt, um den Bildkontrast bei der mikroskopischen Bildgebung zu verbessern.
Legen Sie das Gitter in einen Probenhalter und bringen Sie den Halter in die Mikroskopiekammer.
Richten Sie das Gitter unter der Elektronenkanone aus, wodurch ein Elektronenstrahl erzeugt wird.
Ein Array von elektromagnetischen Linsen und Spulen fokussiert den Elektronenstrahl auf die Abschnitte.
Verschieben Sie den Probenhalter, um die Schnitte in einem Rastermuster zu scannen.
Wenn der Elektronenstrahl die Gewebeschnitte durchläuft, streuen die gefärbten elektronendichten Bereiche mehr Elektronen, während die ungefärbten Bereiche die Elektronen übertragen.
Der Detektor sammelt diese Elektronensignale und erstellt so hochauflösende Bilder des Gehirns.
Im Vergleich zur Kontrolle weist das verletzte Gehirn phagozytäre Mikroglia auf, die zahlreiche intrazelluläre Einschlüsse enthalten, ein charakteristisches Merkmal der verletzungsinduzierten Neurodegeneration.
Um die Probe in das Rasterelektronenmikroskop oder REM zu montieren, legen Sie das Gitter aus der Transferbox mit dem Schnitt in den Mehrgitter-Probenhalter und übertragen Sie es in die Kammer des REM. Nachdem Sie den Detektor gemäß dem Textprotokoll ausgerichtet haben, bestrahlen Sie die Probe vor, indem Sie herauszoomen, sodass der gesamte zu scannende Bereich in das Bildfenster passt. Nachdem Sie die Blende auf 120 Mikrometer geändert und das Bild unscharf gemacht haben, verwenden Sie die Option für einen Scan mit reduziertem Bereich, um den gescannten Bereich so eng wie möglich zu gestalten.
Stellen Sie als Nächstes die Framerate so ein, dass ein Frame in ca. 1 bis 2 Sekunden gescannt wird. Vergrößern Sie dann mindestens das 100-fache und scannen Sie einen kleinen Bereich zehn Sekunden lang. Wenn sich die Helligkeit in dem Bereich immer noch ändert, fahren Sie mit der Vorbestrahlung fort. Wenn sich die Helligkeit dieses Bereichs im Vergleich zu seiner Umgebung nicht ändert, ist eine Vorbestrahlung ausreichend.
Wählen Sie im Fokus den hellsten Bereich oder das hellste Merkmal aus und stellen Sie die Scangeschwindigkeit so ein, dass die Details sichtbar sind. Passen Sie in der Mikroskopsoftware die Helligkeit und den Kontrast an, indem Sie das Histogramm sorgfältig beobachten, um alle Pixel im Dynamikbereich zu halten. Machen Sie dasselbe für die dunkelsten Bereiche und Merkmale. Gehen Sie zurück in den hellen Bereich, und überprüfen Sie erneut, ob auf beiden Seiten des Histogramms etwas Platz ist.
Für die Schritte 4-6 bis 4-8 müssen Helligkeit und Kontrast sehr sorgfältig eingestellt werden, damit der gesamte Bereich innerhalb des Dynamikbereichs liegt.
Verkleinern Sie die Ansicht, dass der gesamte zu scannende Bereich in das Bildfenster passt, und starten Sie das Programm zur Erfassung großer Bereiche. Verwenden Sie dann die Option Assistent, um ein Mosaik einzurichten, indem Sie einen Bereich auf dem Bildschirm auswählen.
Verwenden Sie eine Pixelgröße von 2 bis 5 Nanometern, je nachdem, welche Details notwendig sind, und stellen Sie eine Verweilzeit von drei Mikrosekunden für die Rastertransmissionselektronenmikroskopie oder STEM ein. Drücken Sie Optimieren, um die Mikroskopeinstellungen zu überprüfen, und die benötigte Zeit wird angezeigt. Schalten Sie dann den externen Scan-Generator wieder ein und drücken Sie auf Weiter.
In diesem Artikel wird eine Methodik zur Abbildung von Gehirnschnitten aus Zebrafisch-Larven mittels Elektronenmikroskopie beschrieben. Der Schwerpunkt liegt auf dem Vergleich von gesundem und verletztem Gehirngewebe, um neurodegenerative Veränderungen zu identifizieren.
Mithilfe der hochauflösenden Bildgebung von Verletzungen im Gehirn von Zebrafischembryonen lässt sich ein mechanistisches De-Risiko-Management bei der frühen Zielvalidierung erreichen, indem neurodegenerative Phänotypen auf ultrastruktureller Ebene sichtbar gemacht werden. Dieser Ansatz stärkt das Vorhersagevertrauen in präklinische Modelle, indem er zelluläre Pathologien mit funktionellen Ergebnissen verknüpft und somit Entscheidungen über Fortführung oder Abbruch in Programmen zur Neurodegeneration unterstützt. Die Methode verbessert die translationale Kohärenz von der Entdeckung bis zur präklinischen Validierung durch reproduzierbare, quantitative morphologische Endpunkte.
Die Methode integriert sich in den Entdeckungsprozess von der Target-Validierung bis zur präklinischen Bildgebung und liefert ultrasruckturelle Bestätigungen von Treffern aus phänotypischen Screenings sowie Unterstützung für Go/No-Go-Kriterien basierend auf histopathologischer Genauigkeit.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026