Immunfluoreszenzfärbung von geleingebettetem, von Patienten stammendem erkranktem fibrovaskulärem Gewebe

0 Ansichten4:31 Min. • April 28th, 2025

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Nehmen Sie rehydriertes, in Fibrin eingebettetes, fixiertes und permeabilisiertes, vom Patienten stammendes erkranktes fibrovaskuläres Gewebe. Dieses Gewebe enthält unregelmäßige neovaskuläre Strukturen mit Endothelzellen und Perizyten.

Behandeln Sie das Gewebe mit einer Blockierungslösung, um eine unspezifische Antikörperbindung zu verhindern.

Inkubieren Sie mit primären Antikörpern, die auf Oberflächenproteine auf Endothelzellen und Perizyten abzielen.

Mit Puffer spülen, um ungebundene Antikörper zu entfernen, dann in Puffer inkubieren.

Nach der Pufferwäsche mit fluoreszierenden Farbstoff-konjugierten Sekundärantikörpern inkubieren, um an die Primärantikörper zu binden.

Mit Puffer waschen, um überschüssige Antikörper zu entfernen, und in Puffer inkubieren.

Nach der Pufferwäsche fügen Sie einen Kernfarbstoff hinzu, um die Zellkerne zu färben. Mit Puffer und entionisiertem Wasser abspülen, um ungebundenen Farbstoff zu entfernen.

Übertragen Sie das Gewebe auf einen Objektträger.

Eindeckmittel aufbringen und mit einem Deckglas verschließen, das schnell aushärtende Eindeckmittel enthält.

Lagern Sie den Objektträger nach dem Trocknen an der Luft bei niedriger Temperatur. Anschließend wird das Gewebe unter einem Epifluoreszenzmikroskop abgebildet, um die räumliche Anordnung von Endothelzellen und Perizyten innerhalb der neovaskulären Strukturen sichtbar zu machen.

Kippen Sie die Platte auf eine Stütze und inkubieren Sie die Tröpfchen zwei Stunden lang bei Raumtemperatur in 500 Mikrolitern Blocklösung. Bereiten Sie die primäre Antikörpermischung gemäß dem Textprotokoll vor.

Verwenden Sie dann einen Spatel mit abgerundeten Kanten, um die Tröpfchen auf eine runde untere 96-Well-Platte zu übertragen. Inkubieren Sie die Tröpfchen in 30 Mikrolitern Primärantikörpermischung pro Tröpfchen über Nacht bei 4 Grad Celsius. Übertragen Sie die Tröpfchen am nächsten Tag auf eine 12-Well-Platte mit 2 Millilitern Waschlösung pro Well. Spülen Sie die Tröpfchen mit drei 5-Minuten-Wäschen aus. Waschen Sie dann die Tröpfchen mit neun 30-minütigen Wäschen.

Am nächsten Tag spülen Sie die Tröpfchen dreimal mit PBS aus. Bereiten Sie die entsprechende Fluorophor-konjugierte Sekundärantikörpermischung gemäß dem Textprotokoll vor. Übertragen Sie die Tröpfchen auf eine 96-Well-Platte mit rundem Boden, wie zuvor gezeigt. Und inkubieren Sie die Platte mit 30 Mikrolitern Sekundärantikörpermischung vier Stunden lang bei Raumtemperatur und vor Licht geschützt.

Nach 4 Stunden die Tröpfchen auf eine 12-Well-Platte mit 2 Millilitern Waschlösung pro Vertiefung übertragen. Spülen Sie zuerst die Tröpfchen mit drei 5-Minuten-Wäschen aus. Waschen Sie dann die Tröpfchen mit vier 30-minütigen Wäschen.

Am nächsten Tag spülen Sie die Tröpfchen fünfmal mit Waschlösung für 30 Minuten und dreimal mit PBS für 30 Minuten. Übertragen Sie die Tröpfchen am nächsten Tag auf eine 96-Well-Platte mit rundem Boden, wie zuvor gezeigt. Die Tröpfchen werden 30 Minuten lang bei Raumtemperatur mit Hoechst Kernbeize gegengefärbt. Übertragen Sie die Tröpfchen auf eine 12-Well-Platte, die 2 Milliliter PBS pro Well enthält. Und spülen Sie dreimal mit PBS aus.

Tragen Sie als Nächstes eine schmale Schicht schnell aushärtendes Montagemedium entlang der Ränder eines quadratischen Deckglases auf. Und eine Minute trocknen lassen. Spülen Sie dann einen Tropfen aus, indem Sie ihn in eine Vertiefung einer 12-Well-Platte mit deionisiertem Wasser tauchen. Und übertragen Sie das Tröpfchen auf einen Objektträger.

Als nächstes gibst du 15 Mikroliter nicht aushärtendes Anti-Fade-Eindeckmedium auf das Tröpfchen. Positionieren Sie das Deckglas vorsichtig über dem Tropfen, wobei das Eindeckmedium zum Objektträger zeigt. Und lassen Sie es sich setzen.

Lassen Sie die Dias zwei Stunden bei Raumtemperatur trocknen und lagern Sie sie über Nacht bei 4 Grad Celsius. Zum Schluss nehmen Sie die Objektträger mit einem aufrechten Epifluoreszenzmikroskop ab, das mit einer optischen Schnittfunktion bei einem 20-fachen oder 40-fachen Objektiv ausgestattet ist.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026