JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurowissenschaften
0 Ansichten • 3:08 Min. • May 29th, 2025
Beginnen Sie mit einem Petrischalendeckel, der das Larvengehirn von Drosophila enthält, das einem Hell-Dunkel-Zyklus ausgesetzt ist. Die Scheibe enthält fluoreszierende Protein-exprimierende Uhrenneuronen.
Fügen Sie ein nährstoffreiches Medium mit Antibiotika zur Unterstützung des neuronalen Überlebens und eine warme Fibrinogenlösung hinzu.
Mischen Sie die Lösung vorsichtig, um das Fibrinogen gleichmäßig zu verteilen.
Geben Sie eine kleine Menge dieser Mischung auf das Deckglas einer Glasbodenschale.
Fügen Sie Thrombin hinzu, um mit Fibrinogen zu reagieren und die Bildung einer dreidimensionalen Fibrinmatrix zu induzieren.
Übertragen Sie das Gehirn auf diese Matrix und positionieren Sie es mit der vorderen Seite nach unten, um die Uhrenneuronen für die Bildgebung auszurichten.
Falten Sie die Matrix über das Gehirn, um sie zu verankern und Bewegungen zu verhindern.
Fügen Sie nährstoffreiches Medium hinzu, um die Thrombinaktivität zu inaktivieren.
Verschließen Sie die Schale mit einer gasdurchlässigen Membran, um die Hydratation und die Lebensfähigkeit der Neuronen zu erhalten.
Führen Sie in bestimmten Abständen eine Zeitraffer-Fluoreszenzbildgebung durch.
Die Fluoreszenzveränderungen in den Uhrenneuronen zeigen ihre rhythmische Aktivierung und Hemmung, synchronisiert mit dem Hell-Dunkel-Zyklus, und spiegeln den zirkadianen Rhythmus, den täglichen Aktivitätszyklus, wider.
Nachdem Sie das Gehirn in die Arbeitslösung überführt haben, geben Sie das Gehirn und das Medium auf den Deckel einer sterilen Petrischale. Fügen Sie dann weitere 3,5 Mikroliter SAM mit Antibiotika hinzu und fügen Sie 3,5 Mikroliter warmes SAM mit Fibrinogen hinzu.
Es ist wichtig, das SAM-Medium während dieses Verfahrens mit Fibrinogen auf 37 Grad zu halten.
Mischen Sie anschließend die Lösung um das Gehirn herum, indem Sie vorsichtig mit derselben Pipettenspitze pipettieren und aspirieren Sie 2 Mikroliter der Lösung, um sie auf einem Deckglas für eine Glasbodenschale abzugeben. Fügen Sie dann 0,8 Mikroliter Thrombin zum Tröpfchen hinzu und mischen Sie sehr schnell, um die Polymerisation zu initialisieren, die weiß erscheint. Verwenden Sie dann eine Pinzette, um das Gehirn vorsichtig zu berühren und es auf die polymerisierende Fibrinmatrix zu setzen.
Hinzufügen des Thrombins, nachdem das Gehirn auf das Tröpfchen übertragen wurde. Es wird nicht empfohlen, da es das Verfahren sehr kompliziert.
Richten Sie das Gehirn nach Bedarf aus und schieben Sie das Gehirn ganz sanft so nah wie möglich an das Deckglas. Nehmen Sie dann eine Schicht polymerisiertes Fibrin und falten Sie sie mit kleinen und sanften Bewegungen, die die Matrix nicht ablösen, auf das Gehirn. Falten Sie weiterhin Schichten von polymerisiertem Fibrin aus verschiedenen Teilen des Gerinnsels über das Gehirn, um das Gehirn zu stabilisieren. Lagern Sie dann 20 Mikroliter SAM mit Antibiotika über dem eingebetteten Gehirn ab, um die Thrombinaktivität zu stoppen. Legen Sie dann ein Stück PTFE-Membran über das Medium und kleben Sie die Ränder der Membran auf die gefetteten Teile der Schale.
Diese Studie beschreibt eine Methode zur Abbildung der Uhr-Neuronen im Gehirn von Drosophila-Larven unter Verwendung einer dreidimensionalen Fibrin-Matrix. Das Verfahren ermöglicht die Beobachtung rhythmischer neuronaler Aktivität als Reaktion auf Licht/Dunkel-Zyklen.
Diese Methode ermöglicht die direkte Visualisierung der zirkadianregulierten neuronalen Aktivität in einem genetisch zugänglichen Modell und unterstützt die Target-Validierung in der Neuropharmakologie. Durch die Stabilisierung des Gehirngewebes in einer permissiven 3D-Matrix erlaubt sie die Langzeit-Bildgebung der Dynamik von Uhrenneuronen unter kontrollierten Umweltreizen. Der Ansatz bietet eine reproduzierbare Plattform zur Bewertung der Wirkung von Substanzen auf zirkadiane Signalwege in einem frühen Stadium der Wirkstoffentdeckung.
Die Methode passt in frühe Entdeckungsworkflows, bei denen die mechanistische Risikominimierung zirkadianer Zielstrukturen vor der Identifizierung von Leitsubstanzen priorisiert wird.
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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026