Stereotaktische Injektion von viralen Vektoren für die Reprogrammierung von Gliazellen in einem Mausmodell

0 Ansichten3:58 Min. • June 17th, 2025

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Befestigen Sie eine anästhesierte transgene Maus in einem stereotaktischen Rahmen mit freiliegendem Schädel.

Diese Maus exprimiert Cre-Rekombinase in Gliazellen.

Positionieren Sie den stereotaktischen Arm, der das Kapillarrohr hält, über dem Schädel und richten Sie ihn über dem Bregma aus.

Passen Sie die stereotaktischen Achsen für präzises Zielen an.

Bohren Sie ein Loch an der Zielstelle, um sicherzustellen, dass die Dura Mater intakt bleibt. Entfernen Sie Knochenfragmente.

Spülen Sie das Kapillarrohr mit Puffer. Ziehen Sie eine Luftblase auf und laden Sie dann das Adeno-assoziierte Virus, das inaktive neuronale Reprogrammierung und fluoreszierende Proteingene trägt.

Senken Sie das Kapillarrohr auf die Zieltiefe ab und injizieren Sie die Viruslösung in die gliazellreiche Region.

Ziehen Sie den Schlauch vorsichtig zurück, um einen Rückfluss zu verhindern.

Schließen Sie den Schnitt und lassen Sie die Genesung zu.

Die internalisierten Viren liefern loxP-flankierte inaktivierte Gene an den Gliakern. Die Cre-Rekombinase dreht sie um, aktiviert neuronale Reprogrammierungsgene und treibt die neuronale Umwandlung voran. Reprogrammierte Interneurone exprimieren das fluoreszierende Protein unter dem neuronenspezifischen Promotor.

Um Reprogrammierungsfaktoren zu injizieren, platzieren Sie eine anästhesierte Maus in den stereotaktischen Rahmen, verabreichen Sie zu Beginn der Operation eine geeignete Analgesie und bringen Sie dann die Spitze der Glaskapillare der Injektionsnadel knapp über das Bregma. Stellen Sie sicher, dass die Kapillarspitze sowohl in der A-P- als auch in der M-L-Ebene perfekt gerade ist. Setzen Sie sowohl die M-L- als auch die A-P-Werte auf dem digitalen Koordinatenzähler auf 0,0 zurück.

Um sicherzustellen, dass sich der Kopf des Tieres in einer perfekt flachen Position befindet, verwenden Sie den digitalen Koordinatenzähler, um den D-V-Koordinatenwert zu messen, wenn der A-P-Arm bei plus 2,0 und minus 2,0 liegt, sowie wenn der M-L-Arm bei plus 2,0 und minus 2,0 liegt. Passen Sie die Höhe des Zahnbügels und der Ohrbügel entsprechend an. Heben Sie anschließend die Spritze leicht an und bohren Sie mit einem Zahnbohrer ein Loch an den Injektionskoordinaten.

Beginnen Sie mit dem Bohren an der Stelle und arbeiten Sie dabei kreisförmig und sanft. Legen Sie dann ein Stück Baumwollgaze über den offenen Schnitt und spülen Sie die Spritze mit Kochsalzlösung aus. Nach dem Spülen eine Luftblase und dann 1 Mikroliter Lösung mit dem viralen Vektor aufziehen. Stellen Sie sicher, dass die Viruslösung unter der Luftblase leicht sichtbar ist.

Senken Sie dann die Spritze ab, indem Sie sich langsam bis zur gewünschten Tiefe bewegen, und stellen Sie sicher, dass die Flugbahn frei von Knochenfragmenten ist. Injizieren Sie anschließend 1 Mikroliter der Viruslösung mit einer Geschwindigkeit von 0,4 Mikrolitern pro Minute. Wenn die Injektion abgeschlossen ist, warten Sie zwei Minuten für die Diffusion, bevor Sie die Spritze zurückziehen.

Ziehen Sie die Spritze nach der Diffusion langsam zurück, bis die Spitze der Kapillare vollständig aus dem Gehirn herausgezogen ist. Nähen Sie dann vorsichtig den Schnitt und entfernen Sie das Tier aus dem stereotaktischen Rahmen. Überwachen Sie das Tier in einer postoperativen Station, bis das Bewusstsein wiedererlangt ist.

Die Tiere werden bis zu 12 Wochen nach der Virusinjektion aufbewahrt, damit sich die ansässigen Gliazellen in reife Neuronen umprogrammieren können.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026