Name: Manuelle Drainage der Zebrafisch Embryonale Hirnkammern (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-16T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 17 s
Description: Lernen Sie die manuelle Drainage embryonaler Liquorräume bei Zebrafisch zur Analyse der Liquorzusammensetzung und ihrer Rolle bei der Gehirnentwicklung. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung neurodevelopmentaler Prozesse.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wurde von der National Institute for Mental Health und der National Science Foundation unterstützt. Besonderer Dank geht an Dr. Jen Gutzman, Dr. Amanda Dickinson und anderen Sive lab Mitglieder für viele hilfreiche Diskussionen und konstruktive Kritik, und Olivier Paugois für Experten Fische Tierhaltung.

Ein. Vorbereiten Mikroinjektion Needles and Cell Tram <ol><li> Füllen Eppendorf CellTram Öl Mikroinjektor Apparat mit Mineralöl nach den Anweisungen des Herstellers. </li><li> Bereiten Mikroinjektion Nadeln durch Ziehen Kapillarrohre mit Sutter Instrumente Nadel abziehen. </li><li> Montieren Nadel auf Mikromanipulator an Eppendorf CellTram. </li><li> Vorsichtig brechen die Spitze der Nadel. Für eine gleichmäßige Größe der Spitze, mit einem Mikrometer messen oder vergleichen, um eine Referenz Nadel. </li><li> Füllen Sie die Länge der Nadel mit Öl, mit dem CellTram Öl über die gesamte Länge zu schieben, dabei darauf achten, keine Blasen zu vermeiden. </li></ol> 2. Vorbereitung der Embryonen <ol><li> Stoßen Löcher in einem 1% Agarose-beschichteten Schale mit einem 1-200 ul Pipettenspitze und entfernen Agarose Steckern. Füllen Schale mit Embryo Medien (hergestellt nach Westerfield 25). </li><li> Mit Pinzette dechorionate Embryonen unter Stereomikroskop. </li><li> Übertragen dechorionated Embryonenin Agarose-beschichteten Gericht. </li><li> Embryonen zu betäuben, fügen Tricaine (0,1 mg / ml) an Agarose Antenne, bis Embryonen bewegten Anschlag (hergestellt nach Westerfield 25). </li></ol> 3. Entleeren des ECSF <ol><li> Orient die Embryonen mit ihren Endstücken in den Löchern der Agarose und ihre hinteren Seiten am nächsten zu dem Mikromanipulator, so dass für die Visualisierung der dorsalen Seite des Gehirns. </li><li> Positionieren Sie die Nadel am Rhombomer 0/1 Scharnier-Punkt oder der breitesten Stelle Hinterhirn Ventrikel (Abbildung 1A). </li><li> Sorgfältig durchbohren Dachblech Rautenhirn Ventrikel sicher zu sein, um nicht durch die Tiefe des Gehirns in dem Eigelb zu gehen. </li><li> Lassen Sie das ECSF mit dem CellTram sammeln und Flüssigkeit in Mikroinjektionsnadel. Seien Sie vorsichtig, um alle Zellen zu vermeiden. </li></ol> 4. Das Sammeln der ECSF für Composition Analysis <ol><li> Sobald die ECSF in der Nadel gesammelt wird, zu stoppen sorgfältig Absaugung aus dem CellTram. </li><li> Move die Schale aus unter der Nadel und die Nadel genau positionieren zu einem Schlauch mit dem gewünschten Puffer. </li><li> Mit dem CellTram, lassen Sie das ECSF aus der Nadel in den Puffer zu vermeiden versucht Verunreinigung der Lösung mit Öl. </li><li> Um Zellen, die Sie haben zusammen mit dem ECSF, Spin ECSF bei 10.000 x g abgesaugt entfernen. Unberührten ECSF (Überstand) und bei -80 ° C bis zur weiteren Analyse zu sammeln. </li></ol> 5. Wiedereinführung der ausgewählten Faktoren <ol><li> Lassen Sie das ECSF alle 2 Stunden während der gewünschte Zeitintervall, da die Flüssigkeit in diesem Zeitraum wieder aufgefüllt wird. Zwischen Entwässerungszeit-Punkte, entfernen Sie die Nadel und bewahren die Embryonen bei 28,5 ° C oder Temperatur gewünscht wird. </li><li> Legen zweiten Mikropipette Nadel mit Test-Faktor. </li><li> Ort Nadel in den Mikromanipulator Mikroinjektorkopfs befestigt. </li><li> Passen Injektionsvolumen bis 1 nl durch Messung der Tropfengröße in Öl und Einstellen Einspritzzeit und pressure. </li><li> Inject 1-2 nl in Hirnkammern wie zuvor beschrieben 26. </li></ol>

<ol><li>Chodobski, A., Szmydynger-Chodobska, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Choroid+plexus%3A+target+for+polypeptides+and+site+of+their+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">Choroid plexus: target for polypeptides and site of their synthesis.</a> Microsc. Res. Tech. 52, 65-82 (2001).</li>
<li>Redzic, Z. B., Preston, J. E., Duncan, J. A., Chodobski, A., Szmydynger-Chodobska, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+choroid+plexus-cerebrospinal+fluid+system%3A+from+development+to+aging%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Top.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">The choroid plexus-cerebrospinal fluid system: from development to aging.</a> Curr. Top. Dev. Biol. 71, 1-52 (2005).</li>
<li>Brown, P. D., Davies, S. L., Speake, T., Millar, I. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+cerebrospinal+fluid+production%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of cerebrospinal fluid production.</a> Neuroscience. 129, 957-970 (2004).</li>
<li>Praetorius, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water+and+solute+secretion+by+the+choroid+plexus%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">Water and solute secretion by the choroid plexus.</a> Pflugers Arch. 454, 1-18 (2007).</li>
<li>Speake, T., Whitwell, C., Kajita, H., Majid, A., Brown, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+CSF+secretion+by+the+choroid+plexus%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of CSF secretion by the choroid plexus.</a> Microsc. Res. Tech. 52, 49-59 (2001).</li>
<li>Garcia-Lecea, M., Kondrychyn, I., Fong, S. H., Ye, Z. R., Korzh, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+choroid+plexus+morphogenesis+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of choroid plexus morphogenesis in zebrafish.</a> PLoS One. 3, e3090(2008).</li>
<li>Welss, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secretory+activity+of+the+inner+layer+of+the+embryonic+mid-brain+of+the+chick%2C+as+revealed+by+tissue+culture%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%22%5BJournal%5D)">Secretory activity of the inner layer of the embryonic mid-brain of the chick, as revealed by tissue culture.</a> The Anatomical Record. 58, 299-302 (1934).</li>
<li>Saunders, N. R., Habgood, M. D., Dziegielewska, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Barrier+mechanisms+in+the+brain%2C+II.+Immature+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Pharmacol.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Barrier mechanisms in the brain, II. Immature brain.</a> Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 26, 85-91 (1999).</li>
<li>Zheng, W., Chodobski, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aZheng%2C+W+%22The+blood-cerebrospinal+fluid+barrier%22">The blood-cerebrospinal fluid barrier</a>. , Taylor and Francis. Boca Raton, Fl. (2005).</li>
<li>Salehi, Z., Mashayekhi, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+cerebrospinal+fluid+on+neural+cell+survival+in+the+developing+chick+cerebral+cortex%3A+an+in+vivo+study%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Neurol%22%5BJournal%5D)">The role of cerebrospinal fluid on neural cell survival in the developing chick cerebral cortex: an in vivo study.</a> Eur. J. Neurol. 13, 760-764 (2006).</li>
<li>Parada, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+cerebrospinal+fluid+collaborates+with+the+isthmic+organizer+to+regulate+mesencephalic+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Embryonic cerebrospinal fluid collaborates with the isthmic organizer to regulate mesencephalic gene expression.</a> J. Neurosci. Res. 82, 333-345 (2005).</li>
<li>Mashayekhi, F., Salehi, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+importance+of+cerebrospinal+fluid+on+neural+cell+proliferation+in+developing+chick+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Neurol%22%5BJournal%5D)">The importance of cerebrospinal fluid on neural cell proliferation in developing chick cerebral cortex.</a> Eur. J. Neurol. 13, 266-272 (2006).</li>
<li>Martin, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF2+plays+a+key+role+in+embryonic+cerebrospinal+fluid+trophic+properties+over+chick+embryo+neuroepithelial+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">FGF2 plays a key role in embryonic cerebrospinal fluid trophic properties over chick embryo neuroepithelial stem cells.</a> Dev. Biol. 297, 402-416 (2006).</li>
<li>Martin, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+embryonic+brain+development+in+rats+requires+the+trophic+influence+of+cerebrospinal+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Early embryonic brain development in rats requires the trophic influence of cerebrospinal fluid.</a> Int. J. Dev. Neurosci. 27, 733-740 (2009).</li>
<li>Gato, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+cerebrospinal+fluid+regulates+neuroepithelial+survival%2C+proliferation%2C+and+neurogenesis+in+chick+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec.+A+Discov.+Mol.+Cell+Evol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Embryonic cerebrospinal fluid regulates neuroepithelial survival, proliferation, and neurogenesis in chick embryos.</a> Anat. Rec. A Discov. Mol. Cell Evol. Biol. 284, 475-484 (2005).</li>
<li>Desmond, M. E., Levitan, M. L., Haas, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Internal+luminal+pressure+during+early+chick+embryonic+brain+growth%3A+descriptive+and+empirical+observations%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec.+A+Discov.+Mol.+Cell+Evol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Internal luminal pressure during early chick embryonic brain growth: descriptive and empirical observations.</a> Anat. Rec. A Discov. Mol. Cell Evol. Biol. 285, 737-747 (2005).</li>
<li>Alonso, M. I., Martin, C., Carnicero, E., Bueno, D., Gato, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebrospinal+fluid+control+of+neurogenesis+induced+by+retinoic+acid+during+early+brain+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">Cerebrospinal fluid control of neurogenesis induced by retinoic acid during early brain development.</a> Dev. Dyn. 240, 1650-1659 (2011).</li>
<li>Miyan, J. A., Zendah, M., Mashayekhi, F., Owen-Lynch, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebrospinal+fluid+supports+viability+and+proliferation+of+cortical+cells+in+vitro%2C+mirroring+in+vivo+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cerebrospinal+Fluid+Res%22%5BJournal%5D)">Cerebrospinal fluid supports viability and proliferation of cortical cells in vitro, mirroring in vivo development.</a> Cerebrospinal Fluid Res. 3, 2(2006).</li>
<li>Mashayekhi, F., Bannister, C. M., Miyan, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Failure+in+cell+proliferation+in+the+germinal+epithelium+of+the+HTx+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Pediatr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Failure in cell proliferation in the germinal epithelium of the HTx rats.</a> Eur. J. Pediatr. Surg. 11, Suppl 1. S57-S59 (2001).</li>
<li>Lehtinen, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cerebrospinal+fluid+provides+a+proliferative+niche+for+neural+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">The cerebrospinal fluid provides a proliferative niche for neural progenitor cells.</a> Neuron. 69, 893-905 (2011).</li>
<li>Zappaterra, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+proteomic+analysis+of+human+and+rat+embryonic+cerebrospinal+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteome.+Res%22%5BJournal%5D)">A comparative proteomic analysis of human and rat embryonic cerebrospinal fluid.</a> J. Proteome. Res. 6, 3537-3548 (2007).</li>
<li>Parvas, M., Parada, C., Bueno, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+blood-CSF+barrier+function+controls+embryonic+CSF+protein+composition+and+homeostasis+during+early+CNS+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">A blood-CSF barrier function controls embryonic CSF protein composition and homeostasis during early CNS development.</a> Dev. Biol. 321, 51-63 (2008).</li>
<li>Parada, C., Gato, A., Bueno, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+embryonic+cerebrospinal+fluid+proteome+has+greater+apolipoprotein+and+enzyme+pattern+complexity+than+the+avian+proteome%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteome+Res%22%5BJournal%5D)">Mammalian embryonic cerebrospinal fluid proteome has greater apolipoprotein and enzyme pattern complexity than the avian proteome.</a> J. Proteome Res. 4, 2420-2428 (2005).</li>
<li>Gato, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+cerebro-spinal+fluid+protein+composition+in+early+developmental+stages+in+chick+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool.+A+Comp.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of cerebro-spinal fluid protein composition in early developmental stages in chick embryos.</a> J. Exp. Zool. A Comp. Exp. Biol. 301, 280-289 (2004).</li>
<li>Westerfield, M., Sprague, J., Doerry, E., Douglas, S., Grp, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Zebrafish+Information+Network+%28ZFIN%29%3A+a+resource+for+genetic%2C+genomic+and+developmental+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">The Zebrafish Information Network (ZFIN): a resource for genetic, genomic and developmental research.</a> Nucleic Acids Res. 29, 87-90 (2001).</li>
<li>Gutzman, J. H., Sive, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+Brain+Ventricle+Injection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Zebrafish Brain Ventricle Injection.</a> J. Vis. Exp. (26), e1218(2009).</li>
<li>Parada, C., Gato, A., Bueno, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((All-trans+retinol+and+retinol-binding+protein+from+embryonic+cerebrospinal+fluid+exhibit+dynamic+behaviour+during+early+central+nervous+system+development%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">All-trans retinol and retinol-binding protein from embryonic cerebrospinal fluid exhibit dynamic behaviour during early central nervous system development.</a> Neuroreport. 19, 945-950 (2008).</li>
<li>Parada, C., Escola-Gil, J. C., Bueno, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low-density+lipoproteins+from+embryonic+cerebrospinal+fluid+are+required+for+neural+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Low-density lipoproteins from embryonic cerebrospinal fluid are required for neural differentiation.</a> J. Neurosci. Res. 86, 2674-2684 (2008).</li>
<li>Kramer-Zucker, A. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cilia-driven+fluid+flow+in+the+zebrafish+pronephros%2C+brain+and+Kupffer%27s+vesicle+is+required+for+normal+organogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cilia-driven fluid flow in the zebrafish pronephros, brain and Kupffer's vesicle is required for normal organogenesis.</a> Development. 132, 1907-1921 (2005).</li>
<li>Lowery, L. A., Sive, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initial+formation+of+zebrafish+brain+ventricles+occurs+independently+of+circulation+and+requires+the+nagie+oko+and+snakehead%2Fatp1a1a.1+gene+products%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Initial formation of zebrafish brain ventricles occurs independently of circulation and requires the nagie oko and snakehead/atp1a1a.1 gene products.</a> Development. 132, 2057-2067 (2005).</li>
<li>Lowery, L. A., De Rienzo, G., Gutzman, J. H., Sive, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+classification+of+zebrafish+brain+morphology+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Anat.+Rec.+%28Hoboken%29%22%5BJournal%5D)">Characterization and classification of zebrafish brain morphology mutants.</a> Anat. Rec. (Hoboken). 292, 94-106 (2009).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Die Verwendung dieser Technik, um manuell ablaufen ECSF vom Zebrafisch Hirnkammern nützlich sein wird für die Bestimmung der Voraussetzung für ECSF während der Entwicklung. Darüber hinaus wird diese Technik Beschreibung des ECSF Proteinprofil Laufe der Embryonalentwicklung ermöglichen. Identifizierung verschiedener Proteine ​​während dieser Zeit ermöglicht genauere Ermittlung der Funktion des CSF und seine potenzielle Rolle während der Entwicklung des Gehirns. In Amnioten haben einige Faktoren ECSF (IGF2, FGF2, Retinsäu...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenz </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td></tr><tr><td> Eppendorf CellTram Oil </td><td> Eppendorf </td><td> 516 000.025 </td></tr><tr><td> Mineralöl </td><td> Sigma </td><td> M8410 </td></tr><tr><td> Tricaine Pulver </td><td> Sigma </td><td> A5040 </td></tr><tr><td> Kapillarrohre </td><td> FHC Inc. </td><td> 30-30-1 </td></tr></tbody></table>

manuelle drainage der zebrafisch embryonale hirnkammern

Manual Drainage of the Zebrafish Embryonic Brain Ventricles

Liquor (CSF) ist ein Protein reiche Flüssigkeit innerhalb der Ventrikel im Gehirn enthalten. Es ist während der frühen Wirbeltiere Embryonalentwicklung vorhanden und bleibt während des gesamten Lebens. Adult CSF wird angenommen, dass das Gehirn dämpfen, entfernen Abfallprodukte und tragen sezernierte Moleküle 1,2. Beim Erwachsenen und älteren Embryo, wird die Mehrheit der CSF durch den Plexus choroideus, eine Reihe von stark vaskularisierten sekretorischen Bereiche benachbart angeordnet, um den Hirnkammern 3-5 hergestellt. Im Zebrafisch wird der Plexus komplett bei 144 Stunden nach der Befruchtung (hpf) 6 gebildet. Zuvor sowohl Zebrafisch und andere Wirbeltierembryonen einschließlich Maus, eine signifikante Menge an embryonalen CSF (ECSF) vorhanden ist. Diese Daten und Studien chick vermuten, dass die Neuroepithel sekretorischen früh in der Entwicklung ist, und kann die Hauptquelle der ECSF vor Plexus Entwicklung 7 sein. ECSF enthält etwa dreimal mehr Protein than Erwachsenen CSF, was darauf hindeutet, dass es eine wichtige Rolle bei der Entwicklung 8,9 haben. Studien bei Huhn und Maus demonstrieren, dass sekretierten Faktoren im ECSF, Fluiddruck oder eine Kombination von diesen, die wichtig sind für die Neurogenese, Genexpression, Zellproliferation und Zellüberleben im Neuroepithel 10-20. Proteomik Analysen von Mensch, Ratte, Maus und chick ECSF haben viele Proteine, die notwendig sein CSF-Funktion identifiziert. Dazu gehören Komponenten der extrazellulären Matrix, Apolipoproteine, den osmotischen Druck regulierende Proteine ​​und Proteine ​​in Zelltod und Proliferation 21-24 beteiligt. Jedoch sind die komplexen Funktionen des ECSF weitgehend unbekannt. Wir haben ein Verfahren zum Entfernen von Zebrafisch ECSF Hirnkammern entwickelt, so dass für die Identifizierung des ECSF Komponenten und zur Analyse der ECSF Anforderung während der Entwicklung. Obwohl mehr ECSF aus anderen Wirbeltieren Systeme w gesammelt werdenith größeren Embryonen können ECSF von den frühesten Stadien der Zebrabärblingentwicklung gesammelt werden, und unter genetischen oder Umgebungsbedingungen, die zu abnormen Hirnventrikel Volumen oder Morphologie führen. Entfernen und Sammeln von ECSF ermöglicht für die massenspektrometrische Analyse, Ermittlung von ECSF Funktion, und die Wiedereinführung der ausgewählten Faktoren in die Ventrikel zu Assay ihre Funktion. So ist die Erreichbarkeit des frühen Zebrafischembryo ermöglicht eine detaillierte Analyse der ECSF Funktion während der Entwicklung.

Ein Beispiel eines durchlässigen Hirnventrikel ist in 1B-C gezeigt. Hirnkammern sind zusammengebrochen, als sie ECSF (Abbildung 1B vs C) fehlt. Wie in dorsalen Bilder (1B-C und 2A-D) die Hinterhirn Neuroepithel macht behalten ihre charakteristische Morphologie und scheint trotz fehlender ECSF wahrscheinlich durch robuste Scharnier-Punkte offen gesehen. Allerdings zeigen Seitenansichten (Abbildung 2A&#39;-D &#39;), dass die Hinterhirn Ve...

Wir präsentieren eine Methode zur Liquor (CSF) zu sammeln und ein System, das CSF fehlt im embryonalen Zebrafischgehirn ventrikuläre System zu erstellen. Dies ermöglicht eine weitere Untersuchung der CSF Zusammensetzung und seine Forderung während der embryonalen Entwicklung des Gehirns.

Manuelle Drainage der Zebrafisch Embryonale Hirnkammern

Die Zerebrospinalflüssigkeit (CSF) ist eine proteinreiche Flüssigkeit, die sich in den Hirnventrikeln befindet. Sie ist bereits während der frühen embryonalen Entwicklung von Wirbeltieren vorhanden und ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, ein System zu schaffen, das im ventrikulären System des embryonalen Gehirns kein zerebrospinales Fluid oder CSF enthält. Dies wird erreicht, indem zunächst manuell embryonales CSF oder ECSF aus den Gehirnventrikeln von Zebrafischen abgesaugt wird. Anschließend wird das ECSF zur weiteren Analyse des Inhalts gesammelt.Dann werden potenzielle Faktoren in die entleerten Hirnventrikel zurückgeführt. Schließlich wird die wirksame Entfernung der zerebrospinalen Flüssigkeit (ECSF) und die erneute Einführung von Faktoren bezüglich ihrer Auswirkungen auf die Gehirnentwicklung analysiert. Letztendlich kann die Funktion der ECSF beim Zebrafisch durch die Beobachtung verschiedener Aspekte der Gehirnentwicklung, wie Zellteilung, Zelltod und Neurogenese, aufgezeigt werden.Zusätzlich kann der ECSF-Gehalt mittels Massenspektrometrie bestimmt werden. Mit dieser Methode können wir die Funktion des embryonalen zerebralen Spinalfluids während der Entwicklung untersuchen. Sie kann außerdem auf andere Systeme angewandt werden, um Krankheiten besser zu verstehen, die die Zusammensetzung und Volumina des Liquor cerebrospinalis verändern, wie beispiels

manual-drainage-of-the-zebrafish-embryonic-brain-ventricles

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

In diesem Video zeigen wir eine Methode, mit der sich entwickelnden Gehirn Wirbeltiere in Live Zebrafischembryonen bei einzelnen Zelle Auflösung durch konfokale Mikroskopie zu analysieren. Dazu gehört auch die Methode, mit der wir spritzen die Single-Cell-Zebrafischembryo und anschließend montieren und Bild das sich entwickelnde Gehirn.

Live-Imaging der Zebrafisch embryonalen Gehirn durch konfokale Mikroskopie

Nach Neuralrohr Bildung, verengt die Neuroepithel und Falten, während der Schlauch füllt sich mit embryonalen Liquor (eCSF), um die embryonale Hirnventrikel bilden. Wir haben dieses Ventrikels Injektionstechnik zur besseren Visualisierung der Flüssigkeit gefüllten Raum im Gegensatz zu den neuro-Form in einer Live-Embryo.

Zebrafisch Gehirn Ventrikel Injection

Wir beschreiben eine Live ganze Tier quantitative Messung für die Durchlässigkeit des embryonalen Zebrafischgehirn. Die Technik analysiert die Fähigkeit, Zerebrospinalflüssigkeit und Moleküle unterschiedlichen Molekulargewichts in den neuronalen Schlauchlumen behalten und quantifiziert ihre Bewegung aus der Ventrikel. Diese Methode ist nützlich zur Bestimmung von Unterschieden in epithelialen Permeabilität und Reifung in der Entwicklung und Krankheit.

Ein Assay zur Durchlässigkeit des Zebrafisch-Embryos Neuroepithel

Dieses Video beschreibt die Technik der Mikrodissektion des Gehirns eines erwachsenen Zebrafisches. Diese Methode hilft dabei, aus dem gesamten Gehirn gewonnene Neuorosphären zu erhalten, die weiter untersucht werden können.

Zebrafisch-Hirndissektion: Eine Technik der Fisch-Neurobiologie

Dieses Video zeigt die Erzeugung und Differenzierung von primären Neurosphären. Neuronale Stammzellen aus dem Zebrafisch vermehren sich in Gegenwart von Wachstumsfaktoren zu frei schwebenden Neurosphären mit Selbsterneuerungsfähigkeit, die sich später zu Gliazellen und Neuronen differenzieren.

Generierung und Differenzierung primärer Neurosphären aus neuralen Stammzellen von Zebrafischen

Quelle: Schramm, P. et al. In vivo Bildgebung von voll aktivem Hirngewebe bei wachen Zebrafischlarven und Jungtieren durch Schädel- und Hautentfernung. J. Vis. Exp. (2021)Dieses Video zeigt die In-vivo-Bildgebung von Kleinhirnneuronen in transgenen Zebrafischlarven, die fluoreszierende Proteine in Purkinje-Neuronen exprimieren. Der Prozess beinhaltet die Betäubung der Larven, die Immobilisierung in Agarose und die vorsichtige Entfernung der pigmentierten Haut, um die Lichtdurchdringung und die...

In vivo Bildgebung des Gehirns von Zebrafischlarven zur Visualisierung von Kleinhirnneuronen

Imaging von zerebrovaskulären Entwicklung in Zebrafisch-Larven beschrieben. Techniken zur 3D-Bildgebung zu erleichtern und zu ändern zerebrovaskuläre Entwicklung mit chemischen Behandlungen sind ebenfalls vorhanden.

Imaging und 3D-Rekonstruktion der zerebrovaskuläre Strukturen in embryonalen Zebrafisch

Entwicklungsprozesse wie Proliferation, Strukturieren, Differenzierung und Axon Führung leicht im Zebrafisch Rückenmark modelliert werden. In diesem Artikel beschreiben wir ein Verfahren zur Montage Zebrafisch-Embryonen, die Visualisierung dieser Ereignisse optimiert.

Dissection und seitlicher Anbau von Zebrafisch-Embryonen: Analyse der Rückenmarksentwicklung

Hier stellen wir ein reproduzierbares Verfahren adulte Neurogenese zu untersuchen, aus dem gesamten Gehirn stamm eine Neurosphäre Assay verwendet oder von entweder dem telencephalic, tectal oder cerebellar Regionen des adulten Gehirns Zebrabärbling. Zusätzlich beschreiben wir das Verfahren der Genexpression in Zebrabärbling Neurosphären zu manipulieren.

Isolierung und Kultur von Adult Zebrafisch brain-derived Neurosphären

Dieses Manuskript beschreibt Verfahren zur elektrophysiologischen Aufnahmen von spinalen Neuronen Zebrabärblingembryonen und Larven. Die Herstellung hält Neuronen in situ und beinhaltet oft minimale Dissektion. Diese Verfahren ermöglichen die elektro Untersuchung einer Vielzahl von spinalen Neuronen, von der ersten elektrischen Erregbarkeit Erwerb durch den frühen Larvenstadien.

Zebrafisch<em&gt; In Situ</em&gt; Spinal Cord Vorbereitung für elektrophysiologische Aufzeichnungen von Spinal Sensory and Motor Neurons

In vivo Imaging ist ein leistungsfähiges Werkzeug, das verwendet werden kann, um die zellulären Mechanismen zugrunde liegenden Entwicklung des Nervensystems zu untersuchen. Hier beschreiben wir eine Technik zur Verwendung von Zeitraffer-Konfokalmikroskopie, um eine große Anzahl von mehrfarbigen Brainbow-markierten Zellen in Echtzeit innerhalb des sich entwickelnden Zebrafischnervensystems zu visualisieren.

Visualisierung des sich entwickelnden Gehirns bei lebenden Zebrafischen mit Brainbow und Zeitraffer-Konfokalbildnis

Lernen Sie die manuelle Drainage embryonaler Liquorräume bei Zebrafisch zur Analyse der Liquorzusammensetzung und ihrer Rolle bei der Gehirnentwicklung. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung neurodevelopmentaler Prozesse.

Manuelle Drainage der Zebrafisch Embryonale Hirnkammern

Weitere Videos entdecken