4. November 2012
Dieser Artikel beschreibt die Verwaltung von Lux-getaggten Bakterien an Mäusen und anschließende In vivo Analyse mit IVIS Biolumineszenz-Bildgebung.
Dieses Video beschreibt den Einsatz der Ganzkörper-Biolumineszenzbildgebung zur Untersuchung des bakteriellen Transports in lebenden Mäusen, wobei der Schwerpunkt auf dem Nachweis des bakteriellen Wachstums in tumorösen Xenotransplantaten liegt. Bakterien stellen eine attraktive Vektorklasse für die Krebstherapie dar, da sie nach intravenöser Applikation die natürliche Fähigkeit besitzen, sich bevorzugt innerhalb von Tumoren zu vermehren, wobei sie entweder außerhalb oder innerhalb von Tumorzellen wachsen. Genetisch veränderte Bakterienstämme, die das lux-Genkassetten-System exprimieren, ermöglichen die Detektion der Bakterien und gleichzeitig der Tumoren. Der Wert einer nichtinvasiven, longitudinalen Überwachung bakterieller Stämme in vivo ist allgemein anerkannt, da sie den Tierversuchsaufwand verringert und statistisch aussagekräftigere Daten liefert als Endpunktanalysen.
Dieses Verfahren beinhaltet die Induktion subkutaner Tumore bei Mäusen. Die Tumore dürfen sich entwickeln und werden über einen bestimmten Zeitraum hinweg überwacht. Bakterien werden verabreicht, und die Mäuse werden zu definierten Zeitpunkten einer Biolumineszenz-Bildgebung unterzogen, wie sie für die hier beschriebenen Experimente erforderlich ist.
Subkutane Tumore werden in Mäusen mit entweder immunkompetentem oder thymusdefizientem Hintergrund induziert. Abhängig von der Wahl des Xenotransplantats werden Lux-markierte Bakterien der gewünschten Spezies, wie beispielsweise e coli, als Übernachtkulturen angezüchtet. Bakterielle Zellen werden gewaschen und in der gewünschten Konzentration für die intravenöse Applikation resuspendiert.
10 hoch sechs. Bakterienzellen in einem Injektionsvolumen von 100 µL werden routinemäßig verwendet. Mäuse mit subkutanen Tumoren, die routinemäßig ein Volumen von 100 mm³ aufweisen, werden für die Behandlung vorbereitet.
Mithilfe einer 29-Gauge-Spritzennadel wird die Bakteriensuspension in die seitliche Schwanzvene injiziert. Die Bakterien vermehrten sich im Laufe der Zeit bevorzugt innerhalb des Tumorgewebes. Intratumorale Bakterien setzen ihre Vermehrung über mehrere Wochen fort und sind mittels IVUS-Bildgebung zwischen drei und sechs Tagen nachweisbar.
Nach der Verabreichung werden lebende und anästhetisierte Mäuse in die 37-Grad-Kammer des IVIS platziert. Gegebenenfalls können mehrere Mäuse gleichzeitig abgebildet werden. Fotografische und lumineszierende Lichtbilder werden mithilfe einer gekühlten CCD-Kamera bei den gewünschten Softwareeinstellungen aufgenommen.
Abhängig vom Bildgebungsgerät können zwei- oder dreidimensionale Analysen durchgeführt werden. Es wird eine robuste und lineare Beziehung zwischen der Anzahl intratumoraler Bakterien und der Menge des erzeugten Lichts erreicht, was eine zuverlässige Schätzung der Bakterienzahlen in vivo ermöglicht. LX-exprimierende Bakterien können zudem aus tieferen Körperregionen nachgewiesen werden.
Lux-exprimierende, den Darm besiedelnde Kommensalen werden über mehrere Wochen hinweg sichtbar gemacht. Die Gabe nach der Schlundsondierung zeigt weiterhin die Nützlichkeit der biolumineszenten Bildgebung für die Analyse von Lux-exprimierenden Bakterien in Versuchstieren auf.
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In diesem Artikel wird die Verwendung der biolumineszenten Ganzkörperbildgebung zur Untersuchung des bakteriellen Transports in lebenden Mäusen beschrieben. Der Schwerpunkt liegt auf dem Nachweis des bakteriellen Wachstums in tumorösen Xenotransplantaten und unterstreicht das Potenzial von Bakterien als Vektoren für die Krebstherapie.
Die biolumineszente bakterielle Bildgebung ermöglicht die Echtzeit-Verfolgung des bakteriellen Transports in vivo ohne Invasion und unterstützt die präklinische Bewertung bakterieller Vektoren für die Krebstherapie. Dieser Ansatz reduziert den Tierversuchseinsatz und liefert gleichzeitig longitudinale, quantitative Daten zur Tumoransprache und bakteriellen Persistenz. Die Methode erhöht die Vorhersagesicherheit in der frühen Entwicklungsphase therapeutischer Vektoren, indem sie räumliche und zeitliche Dynamiken der bakteriellen Lokalisation innerhalb von Tumoren sichtbar macht.
Die Methode integriert sich in den Entdeckungsprozess von der frühen Vektorscreening bis zur präklinischen Validierung und ermöglicht iterative Design-Bau-Test-Zyklen für bakterielle Therapeutika.