Name: Cardiac Stress Test durch Dobutamin induziert und Überwacht durch Herzkatheter in Mäuse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 45 s
Description: Erfahren Sie, wie man einen dobutamininduzierten Herzstress-Test bei Mäusen durchführt und mittels Herzkatheter überwacht. Diese Methode deckt subklinische Herzerkrankungen bei fettleibigen Mäusen auf.

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Wir danken Dr. Helio Salgado, Renata Lataro und Mauro de Oliveira, School of Medicine der Ribeirão Preto, Universität von Sao Paulo und Dr. Ben Janssen, Cardiovascular Research Institute Maastricht, Maastricht University, für die großzügige Unterstützung während der Setup-Prozess. Diese Arbeit wurde von Fondecyt Gewährung N ° 11090114 DEZA unterstützt

Protokoll wurde von der Ethikkommission der Facultad de Medicina Clinica Alemana-Universidad del Desarrollo zugelassen. I. Vorbereitung Dobutamin Infusion <ol><li> Man löst 10 mg Dobutamin in 20 ml steriles destilliertes Wasser, um eine Stammlösung von 500 ug / ml Dobutamin erhalten. Aliquotieren und bei -20 ° C. Diese Lösung kann für mindestens 3 Monate verwendet werden. </li><li> Auftauen eines Aliquots Dobutamin Stammlösung bei Raumtemperatur. </li><li> Verdünnen Dobutamin Stammlösung in steriler 0,9% NaCl, um Dobutamin funktionierende Lösung, die Konzentration wird anhand der Formel: Dobutamin (pg / ml) = Körpergewicht x 0,2. </li><li> Füllen Sie eine 1 ml Spritze 29Gx1 / 2 &quot;mit Dobutamin funktionierende Lösung. </li><li> Legen Sie die Nadel der Spritze in einen 20 cm PE-10 Röhre. </li><li> Passen Sie die Spritze in die Infusionspumpe nach den Anweisungen des Herstellers. </li><li> Richten Sie die Rampe Infusion in einem Schritt-Für-Schritt-Format mit einer Steigerung von 10 ul / min für jeden Schritt, für 6 Schritten. </li></ol> II. Vorbereiten Pressure Sensor <ol><li> Um Signaldrift, tauchen Drucksensor in sterilem Wasser bei 37 ° C zu minimieren für mindestens 15 min. Nicht einweichen den Katheter mehr als 0,5 cm tief, um zu verhindern, dass hydrostatische Druck wirkt sich auf die Drucksensor. </li><li> Elektronisch den Drucksensor kalibrieren, bei 25 und 100 mmHg. Elektrischen Eingang (V) mit Drucksignal (mmHg) umgewandelt. </li><li> Stellen Sie die Abtastrate von 2 k / s und nutzen Sie den Filter Tiefpass mit einer Grenzfrequenz von 100 Hz. Stellen Sie den Druck auf Null mmHg. </li><li> Markieren Sie den Katheter 15 mm von der Spitze. Entfernt, um das Herz von der Einleitungsstelle erreicht wurde geschätzt durch Echokardiographie, Erfassen der Anwesenheit des Katheters in den linken Ventrikel. </li></ol> III. Vorbereiten Maus für Katheterisierung <ol><li> Gewicht C57BL / 6 männlichen Mäusen, 30-32 Wochen alt. </li><li> Inject intraperitoneal 60 ug / kg Ketamin und 4 ug / kg Xylazin 1. Hinweis: Andere Anästhetika könnte verwendet werden, zum Beispiel: 350 - 450 ug / kg avertin, 50 ug / kg Pentobarbital oder 1,5 - 2% Isofluran 2-3. </li><li> Rasur am Hals mit einem elektrischen Rasierer. </li><li> Setzen Sie den narkotisierten Maus in Rückenlage auf einer vorgewärmten isothermen Heizplatte. Sichern Sie ihre Gliedmaßen mit Lochstreifen. </li><li> Führen Sie einen Zeh Prise vollständige Sedierung bestätigen. </li><li> Führen Sie eine rektale Sonde, um die Körpertemperatur zu überwachen. Mit vaselinized Sonde wird empfohlen. </li><li> Wenn Körpertemperatur von 37 unterscheidet ° C ± 0,5 ° C beträgt, wird es über die Heizplatte. </li><li> Setz Maus nahe der Schnauze Sauerstoffversorgung. </li><li> Platzieren Sie die Maus Halsbereich unter dem Stereomikroskop. </li></ol> IV. Data Acquisition <ol><li> In der LabChartPro 7-Software, wählen Sie einen Kanal für Druck Registrierung und einen Kanal für die Herzfrequenz (HR)Anmeldung. Für letztere, wählen Sie die Option &quot;Zyklische Messungen&quot; und Setup-Messung als Rate. </li><li> Für den Druckkanal den Maßstab: 0 bis 150 mmHg. </li><li> Für HR-Kanal eingestellt Skalenbereich: 200 bis 600 bpm. </li><li> Drücken Sie die Starttaste, um die Registrierung zu beginnen. </li><li> Kommentare einfügen angibt Verfahren durchgeführt werden, zum Beispiel: Anästhesie Verabreichung von Dobutamin Infusion, Dobutamin Konzentration starten, atmende ändert. </li></ol> V. Herzkatheter 4,5 <ol><li> Durchführen einer kleinen Einschnitt auf der rechten Seite in der Nähe des Kiefers. Mit Schere trennen die Haut-Muskel-Bindegewebe. </li><li> Führe eine longitudinale Dissektion (1,5 - 2 cm) auf der rechten Seite der Luftröhre. Trennen die Bindegewebe, Fett und Muskeln mit gekrümmten Zange, um die rechte Arteria carotis in der Nähe der Luftröhre freizulegen. </li><li> Platzieren eines Expanders im Tier rechts um die Halsschlagader freizulegen. PulsierendeDruck durch das Herz erzeugt erleichtert die Identifizierung der Arterie. Die Halsschlagader, die dunkel rot ist, ist auf der rechten Seite. </li><li> Trennen Sie die Arterie von benachbarten Geweben mit gebogenen Pinzette. Der Vagusnerv, der eine weiße Faden ähnelt, liegt entlang der Arterie. </li><li> Schneiden Sie ein 20 cm Stück 6/0 Seidenfaden und &quot;double&quot; ist. </li><li> Führen Sie das &quot;doppelte&quot; Faden unter der Arterie von links nach rechts. Den Faden abschneiden, um getrennte Enden zu erhalten. </li><li> Pass ein Drittel Gewinde (10 cm) unterhalb der Arterie. </li><li> Tie einen festen Knoten in dem Faden in der Nähe des Kopfes positioniert ist, und eine lose ein in der mehr distale Gewinde. </li><li> Tie eine lose Knoten in der Mitte Gewinde, und fixieren das rechte Ende des mittleren Faden nach Heizkissen mit einem Papierband. </li><li> Halten Halsschlagader durch Fallenlassen feuchter steriler 0,9% NaCl. Trocknen Sie überschüssige Flüssigkeit mit Wattestäbchen. </li><li> Dehnen Sie den Unterfaden mit einer Gefäßklemme Klemme. </li><li> Fixieren Sie die Position des hemostat Schere durch pTippen Sie die Haut des Bauches, Stretching den Oberfaden, um den Blutfluss zu verschließen. Überprüfen Sie, ob das Bindegewebe um die Arterie entfernt wurde. Die Arterie sollte voller Blut und beraubt Puls. Verhindern Fäden aus ein Drehmoment Kraft auf die Arterie. </li><li> Machen Sie einen Querschnitt nick in der Nähe der Unterseite der Arterie mit einem Vannas Mikro-Schere. Blutstropfen wird verschüttet werden. </li><li> Legen Sie den Katheter in die Halsschlagader. Achten Sie darauf, die gesamte Drucksensor einzuführen. Stellen Sie sicher, dass es keinen Blutverlust. </li><li> Schieben Sie vorsichtig den mittleren Faden Knoten, um den Katheter in Position zu halten. Nicht zu viel zu komprimieren, ist der Drucksensor sehr instabil. </li><li> Lassen Sie die hemostat Schere aus dem Tier Bauch. </li><li> Halten Sie den Katheter mit der Hand und drücken Sie den mittleren Faden, um den Blutverlust zu vermeiden. Hinweis: Arterie sollte voller Blut. </li><li> Starten Sie die Aufnahme Drucksignalen. </li><li> Wenn der Katheter im Inneren ist, derarteriellen Druck Signal schwankt von 60 bis 70 auf 100-120 mmHg. Die Form des Drucksignals ist in Abbildung 1.A. Hinweis gezeigt: wenn Sie interessiert sind, zu diesem Zeitpunkt können Sie arteriellen Druck aufnehmen, wenn das Signal für mindestens 5 min stabil. HR-Werte wurden aus der Druckwellenformen Prüfung eines Intervalls von 30 Sekunden des Aufzeichnungssignals erhalten. Es ist möglich, auch eine EKG Verfahren zur direkten Messung von HR, entsprechend den Untersuchungen Ziele. </li><li> Schieben Sie den Katheter bis zu einer Änderung in der Form des Drucksignals (Abbildung 1.B) zu beobachten. Sobald der Katheter im Inneren des linken Ventrikels, schwankt das Drucksignal von 0 bis 100 bis 120 mmHg. Wenn es schwierig ist, den Katheter gleiten kann, einzuklemmen tierischen Brust mit zwei Fingern. </li><li> Kontinuierlich zu steuern Atemfrequenz, Körpertemperatur, Anästhesie und Druck Signal. Alle von ihnen sollte stabil bleiben. </li></ol> VI. Die Infusion von Dobutamin <ol><li&gt; Für Jugularvene Kanülisier unbedingt abziehen des Fettgewebes um die Vene, um dessen Perforation zu verhindern. Das chirurgische Verfahren zum Venenverschluss ist ähnlich dem Verfahren für Halsschlagader gezeigt. </li><li> Einführung eines PE-10 Rohr in die Vene. Bestätigen Sie, dass der Blutfluss nicht blockiert rückwärts bewegt den Kolben der Spritze. </li><li> Dobutamin Infusion beginnt mit 10 ul / min und enden mit 60 ul / min. In jedem Schritt wird die Infusionsrate für 2 min 6 gehalten. </li><li> Nach dem letzten Dobutamin Dosis, einschläfern das Tier mit einer Überdosis der Anästhesie. </li></ol> VII. Data Analysis <ol><li> Für die Datenanalyse, wählen Sie den Abschnitt der aufgezeichneten Daten, die Sie interessieren. Achten Sie darauf, um ein Zeitintervall überlegen, wo Drucksignal ist stabil. </li><li> Wählen Sie das Setup-Symbol in der Blood Pressure Modul. Geben Sie die gewählte Art der Drucksignal. </li><li> Automatisch die LabChartPro 7 Software zeigt Mittelwert, Maximumund Minimalwerte für HR, systolischer Druck (P max), der diastolische Druck (P min), enddiastolische Druck (EDP), maximal Überdruck Entwicklung (dP / dtmax) und maximaler Unterdruck Entwicklung (dP / dt min). Darüber hinaus können auf der Herzparametern Druckspur darstellen. </li></ol>

<ol><li>Hart, C. Y., Burnett, J. C., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+avertin+versus+xylazine-ketamine+anesthesia+on+cardiac+function+in+normal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of avertin versus xylazine-ketamine anesthesia on cardiac function in normal mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 281, H1938-H1945 (2001).</li>
<li>Janssen, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+anesthetics+on+systemic+hemodynamics+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effects of anesthetics on systemic hemodynamics in mice.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H1618-H1624 (2004).</li>
<li>Lorenz, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+practical+guide+to+evaluating+cardiovascular%2C+renal%2C+and+pulmonary+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A practical guide to evaluating cardiovascular, renal, and pulmonary function in mice.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 282, R1565-R1582 (2002).</li>
<li>Lorenz, J. N., Robbins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+intraventricular+pressure+and+cardiac+performance+in+the+intact+closed-chest+anesthetized+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Measurement of intraventricular pressure and cardiac performance in the intact closed-chest anesthetized mouse.</a> Am. J. Physiol. 272, H1137-H1146 (1997).</li>
<li>Nemoto, S., DeFreitas, G., Carabello, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+catheterization+technique+in+a+closed-chest+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top.+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac catheterization technique in a closed-chest murine model.</a> Contemp. Top. Lab Anim. Sci. 42, 34-38 (2003).</li>
<li>Daniels, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impaired+cardiac+functional+reserve+in+type+2+diabetic+db%2Fdb+mice+is+associated+with+metabolic%2C+but+not+structural%2C+remodelling%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+%28Oxf%29%22%5BJournal%5D)">Impaired cardiac functional reserve in type 2 diabetic db/db mice is associated with metabolic, but not structural, remodelling.</a> Acta Physiol. (Oxf). 200, 11-22 (2010).</li>
<li>De Celle, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+structural+and+functional+consequences+of+cardiac+ischaemia-reperfusion+injury+in+vivo+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Long-term structural and functional consequences of cardiac ischaemia-reperfusion injury in vivo in mice.</a> Exp. Physiol. 89, 605-615 (2004).</li>
<li>Huntgeburth, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transforming+growth+factor+beta+oppositely+regulates+the+hypertrophic+and+contractile+response+to+beta-adrenergic+stimulation+in+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Transforming growth factor beta oppositely regulates the hypertrophic and contractile response to beta-adrenergic stimulation in the heart.</a> PLoS One. 6, e26628(2011).</li>
<li>Reddy, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+function+in+young+and+old+Little+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gerontol.+A.+Biol.+Sci.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">Cardiac function in young and old Little mice.</a> J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 62, 1319-1325 (2007).</li>
<li>Christoffersen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+lipid+accumulation+associated+with+diastolic+dysfunction+in+obese+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Cardiac lipid accumulation associated with diastolic dysfunction in obese mice.</a> Endocrinology. 144, 3483-3490 (2003).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Cardiac Stresstest Dobutamin induziert und überwacht durch Herzkatheter ist aufwändig. Dennoch, nachdem das Protokoll hier zu beschreiben und mit einer kurzen Zeit der Ausbildung ist es möglich, bis sechs hämodynamischen Parameter in einem einzigen Experiment, dass dauert ca. 1 Stunde zu beurteilen. Die kritischen Schritte des Protokolls hier präsentiert sind die Kanülierungen der Blutgefäße. Bezüglich der Kanülierung Halsschlagader, sollte der Einschnitt durchgeführt tief genug sein, um die...

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Reagenzien </td></tr><tr><td> PE-50/10 </td><td> Warner Instruments </td><td> 64-0752 </td><td></td></tr><tr><td> Seidenfaden 6/0 HR17 </td><td> Tagum </td><td> SN0713K </td><td></td></tr><tr><td> Xylacin 20 mg / ml </td><td> Laboratorio Centrovet </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Ketamin 100 mg / ml </td><td> Drag Pharma </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Natriumchlorid 0,9% </td><td> Lab Sanderson SA </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dobutamin Hydrochlorid </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D0676 </td><td></td></tr><tr><td> Spritze U-100 Insulin 29G x ½ &quot; </td><td> Terumo Medical Co. </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Dissektionszangen Micro 11,5 cm Style 7 </td><td> LawtonMedizintechnik </td><td> 09-0959 </td><td></td></tr><tr><td> Graefe Pinzette Cvd 0.7mm 7cm </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 62-0263 </td><td></td></tr><tr><td> Clamps Dieffenbach Bulldog Cl Str. 38 mm </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 60-010 </td><td></td></tr><tr><td> Vannas Schere 8 cm Str Fh </td><td> Lawton Medizintechnik </td><td> 63-1400 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Ausrüstung </td></tr><tr><td> SPR-671 Mikro-Tip-Katheter Druck </td><td> Millar Instrumenten </td><td> 840-6719 </td><td></td></tr><tr><td> PCU-2000 Pressure Control Unit </td><td> Millar Instrumenten </td><td> 880-0129 </td><td></td></tr><tr><td> PowerLab 4/30 </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> ML866 </td><td></td></tr><tr><td> LabChartPro 7 </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> MLU260 / 7 </td><td></td></tr><tr><td> Legato200 Infusionspumpe </td><td> KdScientific </td><td> KD-KDS210P </td><td></td></tr><tr><td> TCAT-2LV Temperaturregler und isotherme Heizplatte </td><td> PhysiTemp Instruments Inc. </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Medical Sauerstoffversorgung </td><td> Indura </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Rektalsonde </td><td> ADInstruments Pty Ltd </td><td> MLT1404 </td><td></td></tr><tr><td> Trinokular Mikroskop, axiale Beleuchtung </td><td> LW Scientific </td><td> Z2B-TRI-ETNE, ILP-1502-LTS1, ILP-1502-DGGF </td><td></td></tr></tbody></table>

cardiac stress test durch dobutamin induziert und Überwacht durch herzkatheter in mäuse

Cardiac Stress Test Induced by Dobutamine and Monitored by Cardiac Catheterization in Mice

Dobutamin ist ein β-adrenergen Agonisten mit einem höheren Affinität für den Rezeptor im Herzen (β 1) als für Rezeptoren in den Arterien (β 2) ausgedrückt. Wenn systemisch verabreicht, erhöht es Herzbedarf. So entlarvt Dobutamin anormalen Rhythmus oder ischämische Bereiche potentielles Risiko Herzinfarkt. Überwachung der Herzfunktion während einer Belastungs-Test kann entweder durch ecocardiography oder Herzkatheter durchgeführt werden. Letzteres ist eine invasive, aber genauer und informative Technik, die der ehemalige. Cardiac Stress-Test induziert durch Dobutamin und überwacht durch Herzkatheter wie hier beschrieben durchgeführt ermöglicht, in einem einzigen Experiment die Messung der folgenden hämodynamischen Parameter: Herzfrequenz (HR), systolischer Druck, diastolischer Druck, end-diastolische Druck, maximal Überdruck Entwicklung (dP / dtmax) und die maximale negative Presseure Entwicklung (dp / dt MIN), an der Basislinie und unter Bedingungen steigender Dosen von Dobutamin. Wie zu erwarten, bei normalen Mäusen beobachteten wir eine Dobutamin dosisabhängigen Anstieg der HR, dP / dt max und dP / dt min. Darüber hinaus bei der höchsten getesteten Dosis (12 ng / g / min) der kardiale Dekompensation der fettreichen Diät-induzierten adipösen Mäusen war entlarvt.

Der arterielle Druck wird durch Signal systolischen und diastolischen Druck definiert. Wenn der Drucksensor innerhalb des linken Ventrikels ist, dessen Druck (LVP) Wellenform wird durch einen Abfall auf Null des diastolischen Drucks und dem Auftreten des linken Ventrikels vor Vorhofkontraktion Kontraktion (Abbildung 1). An Ausgangszustand hatte Ketamin-Xylazin anästhesiert normalen Mäusen HR von 280 ± 24, P max von 107 ± 8, P min von 5 ± 1, EDP nach 14 ± 2, dP / dt max v...

Wir beschreiben das Protokoll eine kardiale Stresstest Dobutamin induziert und überwacht durch Herzkatheter bei normalen Mäusen durchzuführen. Auch zeigen wir ihre Anwendung auf subklinische Herzerkrankungen in fettreichen Diät-induzierten adipösen Mäusen zu entlarven.

Cardiac Stress Test durch Dobutamin induziert und Überwacht durch Herzkatheter in Mäuse

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the ...

Kardialer Belastungstest, der durch Dobutamin induziert und durch Herzkatheteruntersuchung bei Mäusen überwacht wird. In diesem Video präsentieren wir eine Schritt-für-Schritt-Beschreibung eines durch Dobutamin induzierten und durch Herzkatheteruntersuchung überwachten Herzbelastungstests, der an normalen Mäusen durchgeführt wurde. Wir werden auch zeigen, wie es angewendet werden kann, um subklinische Herzerkrankungen bei fettreichen diätinduzierten adipösen Mäusen zu demaskieren.Die anästhesierte Maus wird auf eine thermisch regulierte Platte gelegt. Die Sauerstoffzufuhr erfolgt über einen Kunststoffschlauch und die Körpertemperatur wird mit einer Rektumsonde für die Herzkatheteruntersuchung überwacht. Bei einem Eingriff bei geschlossenem Brustkorb wird die Halsschlagader verwendet, da der Zugang über den Drucksensor in der Katheterspitze fein genug ist, um in die Arterie einzudringen und den arteriellen Druck zu messen.Der Katheter wird etwa 10 Millimeter eingeführt. Die arterielle Druckwellenform sieht folgendermaßen aus. Um den ventrikulären Druck zu messen, sollte der Katheter dem geradlinigen ER-Weg folgen und durch die Aortenklappe bis zur Ventrikelkammer führen.Die Form der

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Dieser Artikel beschreibt die Messung der linksventrikulären Funktion von Mäusen mittels Druck-/Volumenanalyse bei verschiedenen Herzfrequenzen.

Herzkatheter in Mäuse, um den Druck Volumen Relationship Maßnahme: Untersuchung der Bowditch Effect

Das Ziel dieses Protokolls ist es, nicht-invasiven Herz strukturelle und funktionelle Veränderungen in einem Mausmodell der Herzkrankheit durch Quer Aortakonstriktion geschaffen beurteilen zu können, unter Verwendung von B- und M-Mode-Echokardiographie und Farbe / Puls-Doppler-Bildgebung.

Beurteilung der Herz Morphologische und funktionelle Veränderungen in Maus-Modell der Quer Aortakonstriktion durch Echokardiographie

Dieses Protokoll bietet eine detaillierte Beschreibung des echokardiographischen Ansatzes für eine umfassende Phänotypisierung der Herz- und Herzklappenfunktion bei Mäusen.

Echokardiographische Ansätze und Protokolle für die umfassende phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen

Während der murinen myokardialen Ischämie/Reperfusionsoperation wird die korrekte Platzierung der okkludierenden Ligatur typischerweise durch sichtbare Beobachtung der Myokardblässe bestätigt. Hierin wird ein Verfahren zur elektrokardiographischen Bestätigung von Ischämie und Reperfusion zur Ergänzung der beobachteten Myokardblässe an männlichen C57Bl/6-Mäusen demonstriert.

Die Bestätigung der myokardialen Ischämie und Reperfusion Injury in Mäusen Oberflächen Pad Elektrokardiographie

Akutem Myokardinfarkt bei Mäusen induziert akute aber unvollständig zeichnet sich Veränderungen in der linken Herzkammer (LV) Funktion. LV-Katheterisierung bei Mäusen in der koronaren Okklusion dient als eine neuartige Methode für eine Echtzeit-Auswertung der LV-Funktion.

Echtzeit-Druck-Volumen-Analyse eines akuten Myokardinfarkts bei Mäusen

Hier beschreiben wir eine einfache und reproduzierbare Methode, die bei Mäusen durch Präzisionsligation der linken vorderen absteigenden Koronararterie durch Mikromanipulation einen Myokardinfarkt oder eine myokardiale Ischämie-Reperfusionsverletzung induzieren kann.

Induktion von Myokardinfarkt und myokardialer Ischämie-Reperfusionsschädigung bei Mäusen

Das Elektrokardiogramm (EKG) ist die Schlüsselvariable zum Verständnis der kardialen Elektrophysiologie. Körperliche Bewegung hat positive Auswirkungen, kann aber auch im Zusammenhang mit Herz-Kreislauf-Erkrankungen schädlich sein. Dieses Manuskript stellt eine Methode zur Aufzeichnung von Echtzeit-EKGs während des Trainings vor, die dazu dienen kann, ihre Auswirkungen auf die kardiale Elektrophysiologie bei Mäusen zu untersuchen.

Echtzeit-Elektrokardiogramm-Überwachung während des Laufbandtrainings bei Mäusen

Das vorliegende Protokoll beschreibt Methoden zur Transgenexpression in Ratten- und Mausherzen durch direkte intramyokardiale Injektion des Virus unter echokardiographischer Leitung. Methoden zur Beurteilung der Anfälligkeit des Herzens für ventrikuläre Arrhythmien durch die programmierte elektrische Stimulation isolierter, Langendorff-durchbluteter Herzen werden hier ebenfalls erläutert.

Virale Transgenexpression in Nagetierherzen und die Bewertung des Risikos für Herzrhythmusstörungen

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine modifizierte parasternale Längsachsenansicht zur schnellen und präzisen Lokalisierung der linken anterioren absteigenden Arterie. Dieser Ansatz soll einfacher und benutzerfreundlicher sein und gleichzeitig die Untersuchung dynamischer Veränderungen der koronaren Flussreserve nach myokardialer Ischämie-Reperfusion bei Mäusen erleichtern.

Dynamische Bewertungen der koronaren Flussreserve nach myokardialer Ischämie-Reperfusion bei Mäusen

Effektive Pulmonalvenenisolation Verwendung eines Kryoballon hängt komplette Pulmonalvene Okklusion. Der Punkt der Okklusion kann effektiv durch die direkte Analyse von Pulmonalvene Druckkurve Analyse während Aufblasen des Ballons mit einem einfachen und reproduzierbare Technik vorhergesagt werden.

Direkte Pressure Monitoring genau vorhersagt Pulmonary Vein Occlusion Während Kryoballon Ablation

Erfahren Sie, wie man einen dobutamininduzierten Herzstress-Test bei Mäusen durchführt und mittels Herzkatheter überwacht. Diese Methode deckt subklinische Herzerkrankungen bei fettleibigen Mäusen auf.

Cardiac Stress Test durch Dobutamin induziert und Überwacht durch Herzkatheter in Mäuse

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