Name: Verfahren für Dezellularisierung der Porcine Heart von Retrograde Coronary Perfusion (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-06T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 30 s
Description: Lernen Sie die Dezellularisierung von Schweineherzen durch retrograde Koronarperfusion. Diese Methode erzeugt ein ortsspezifisches kardiales extrazelluläres Matrixgerüst für Anwendungen in der Geweberegeneration und regenerativen Medizin.

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Die Autoren bedanken sich bei Brogan Gast, Michelle Weber und Kristen Lippert anzuerkennen. Die Finanzierung dieser Studie wurde durch NIH Grant R03EB009237 sowie NIH Ausbildung Grants T32EB001026-06 aus dem National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering und T32HL076124-05 zur Verfügung gestellt.

Ein. Tissue Vorbereitung und Versuchsaufbau <ol><li> Ernte Schweinen Organ unmittelbar nach Euthanasie aus einem Schlachthof oder Forschungseinrichtung und spülen Sie überschüssiges Blut. Schneiden Sie die Herzen von überschüssigem Fett und Gewebe, halten die Vorhöfe und der Aorta intakt. Trim entfernt Fett, um die Lungenarterie aus der Aorta zu trennen. Wenn es irgendwelche Schnitte im Gewebe sind, entsprechend zu verwerfen. </li><li> Wickeln Sie jedes Herz einzeln in Freezer Paper und speichern alle Gewebe in einem -80 ° C Gefrierschrank für mindestens 24 Stunden, um eine vollständige Einfrieren zu gewährleisten. </li><li> Wenn Sie bereit sind für den Einsatz (in der Regel weniger als 3 Monate), Tauwetter ein intaktes gefrorenes Schweinesperma Herz in Type 1 Wasser über Nacht in einem 4-Liter-Becher bei 4 ° C getaucht </li><li> Nachdem das Herz vollständig aufgetaut ist, klopfen die Herzen trockenen, wiegen das Herz, und das Gewicht aufgezeichnet. Das Herz eines Marktes Gewicht Schwein sollte wiegen etwa 375-450 g. </li><li> Schließen Sie Größe 18 Masterflex Schlauch mit dem ¼ &quot;Ende einer Stacheldraht Druckminderer. Legen Sie die Stacheldraht Druckminderer undSchlauch innerhalb der Aorta. Platz 2 Schlauchschellen oder sichere Kabelbinder um die Aorta, knapp unterhalb des Truncus brachiocephalicus. Der Druckminderer und Schlauch muss über der Aortenklappe bleiben, so die Koronararterien perfundiert können (Abbildung 1). </li><li> Verwenden Sie eine 30 oder 60-ml-Spritze, um den Schlauch mit Typ I Wasser zu füllen. Legen Sie den Schlauch in der Patrone eines Masterflex Schlauchpumpe in seiner ungefähren Mittelpunkt. Submerge der Zufluss Ende des Schlauches in den Boden eines 4 L-Becherglas mit 2,5 l Wasser gefüllt und sichern den Schlauch. </li><li> Legen Sie die Herzen im Becher mit Wasser gefüllt, und prime die Pumpe Luftblasen zu entfernen. Wenn Blasen beobachtet werden, die von der Aorta, wo der Schlauch eingelegt wird, kann die Aorta neu positioniert oder mit zusätzlichen Bindungen befestigt werden. Eine luftdichte Dichtung ist wichtig, um eine angemessene Druck während der Dezellularisierung Verfahrens (Abbildung 2) zu halten. </li><li> Legen Sie die 4 L Becherglas mit 3 L einer 0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% NaN3 Lösung auf Rührplatte und erwärmen auf 37 ° C bei der Vorbereitung der Dezellularisierung Prozess. </li></ol> 2. Tissue Spülen <ol><li> Die Pumpe auf einer Strömungsgeschwindigkeit von 400 ml / min, wobei auf die korrekte Größe Schlauch ausgewählt ist. Spülen Sie das Herz mit Typ I Wasser für 15-25 min. Da die Pumpe gestartet wird, sollte das Herz anschwellen und effuse Blut aus den Herzkammern. Frische Lösung sollte alle 5-10 min substituiert sein kann, oder als bezogen auf die Menge an Blut aus dem Herzen entnommen benötigt. Wenn Blut nicht vom Herzen ausgegossen, passen die Schläuche und Klemmen wie nötig. </li><li> Stoppen Sie die Pumpe und übertragen das Herz zu einem separaten Becherglas mit 2X Phosphat gepufferten Saline (PBS). Nachdem der Schlauch in der Lösung eingetaucht ist, starten Sie die Pumpe und erhöht den Durchfluss auf 700 ml / min. Das Herz sollte in-Lösung für 15 min bleiben, verändert die Lösung alle 5 min. Jede Lösung Wandel erfordert die Pumpe vorübergehend gestoppt werden, während das Gewebe und Schläuche bewegtauf den neuen Becherglas. </li><li> Übertragen Sie das Herz I Wasser für 10 min Geben und erhöhen den Durchfluss auf 750 ml / min. </li></ol> 3. Dezellularisierung und Solution Perfusion <ol><li> Übertragen Sie die Herzen in das Becherglas mit 0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% NaN 3 bei 37 ° C. Erhöhen Sie die Drehzahl der Pumpe bis 1.200 ml / min und starten Sie die Pumpe. Verwenden Sie einen Rührstab am Boden des Bechers zur Lösung im Becherglas zirkulieren platziert. Das Herz sollte im Bereich von 0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% NaN 3-Lösung bei 37 ° C für insgesamt drei Stunden bleiben. Nach 1 Stunde erhöht die Drehzahl auf 1500 ml / min. Nach einer weiteren Stunde, erhöhen die Pumpendrehzahl bis 1.800 ml / min. Das Gewebe wird langsam auf erhöhte Geschwindigkeiten Perfusion zur Konditionierung des Gewebes ausgesetzt und verhindern Ruptur der Gefäße. Das Herz wird anschwellen und fast doppelt so groß bei diesem Schritt des Protokolls. Das Gewebe verliert seine natürliche Farbe, fortschreitend von den Vorhöfen zu den Scheitelpunkt gesamten the-Protokoll (Abbildung 3). </li><li> Nach jeder Lösung Perfusion wird ein zweistufiger Spülen durchgeführt wird, um Zelltrümmer, chemischer Rest ist, und Hilfsmittel Zelllyse zu entfernen. Jedes Spülen besteht aus einem 10 min Spülen in Typ I Wasser durch eine 10 min abspülen mit 2X PBS-Lösung bei Raumtemperatur. Jede Wäsche besteht in der Entfernung von Lösung aus dem ursprünglichen Becherglas Zugabe Spüllösungen, und Zirkulieren des Perfusats in den Becher mit dem untergetauchten Herzens. Nach 0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% NaN 3-Lösung, Wasser bei perfuse 1900 ml / min und dann perfundieren 2X PBS auf 1950 ml / min. </li><li> Übertragen das Herz zu einer Lösung von 3% Triton X-100/0.05% EDTA/0.05% NaN3 bei Raumtemperatur. Erhöhen Sie die Drehzahl der Pumpe bis 2.000 ml / min und perfuse Lösung für eine Stunde. Entfernen Sie die Lösung aus dem Becherglas und ersetzen mit frischer Lösung, erhöhen Sie die Drehzahl der Pumpe bis 2100 ml / min, und versorgen die frische Lösung für eine weitere Stunde und eine Hälfte, womit sich die gesamte Zeit in3% Triton X-100/0.05% EDTA/0.05% NaN 3 bis 2,5 Stunden. </li><li> Spülen Sie das Gewebe in Typ I Wasser bei 2150 ml / min und 2X PBS bei 2180 ml / min für jeweils 10 Minuten. </li><li> Übertragen das Herz auf eine 4% Natriumdesoxycholat Lösung bei Raumtemperatur. Erhöhen der Pumpgeschwindigkeit, um 2200 ml / min und perfuse Lösung für 3 hr. </li><li> Spülen des Gewebes in Wasser bei Typ I und 2X PBS bei 2200 ml / min für 15 Minuten jeweils, Ändern der Lösungen nach 5-10 min für jede Lösung. Die beschriebenen Schritte Perfusion kann über mehrere Tage durch Durchführen der Spülschritt zweimal und Speichern des Herzens mit aufgesetzter Schlauch über Nacht bei 4 ° C gespalten werden, und eingetaucht in Typ I Wasser. </li><li> Am folgenden Tag, führen Sie eine 5 min mit Typ I Wasser spülen bei 750 ml / min, gefolgt von einer 5 min Spülen in 1X PBS bei 1.500 ml / min. Das Protokoll kann dann bei der beschriebenen Strömungsrate in der richtigen Lösung fortgesetzt. </li></ol> 4. Desinfektion und Endfertigung <ol><li> Übertragen Sie das Herz einer 0,1% peracessigsäure / 4% Ethanol-Lösung und perfuse Lösung für 1,5 h bei 2200 ml / min. </li><li> Die Endspülungen für das Gewebe alle auf 2200 ml / min durchgeführt. Perfundieren des Gewebes mit 1X PBS für 15 min, gefolgt von zwei Waschungen in 5 min Typ I Wasser. Diese Reihe von Spülungen wird noch einmal wiederholt, um die Lösung Perfusion abzuschließen. </li><li> Schalten Sie die Pumpe aus und entfernen Sie das Herz aus der Lösung, um das Herz zu entleeren. Schneiden Sie die Bindungen aus der Aorta, entfernen Sie alle Schläuche, und legen Sie das Herz in ein leeres Becherglas für 1 Stunde abtropfen lassen. Überschüssige Flüssigkeit wird müssen regelmäßig entleert werden. Legen Sie das Herz auf eine saugfähige Unterlage vollständig entleeren das Herz (Abbildung 4). </li><li> Nachdem der größte Teil des Wassers entfernt wird, das Gewicht aufgezeichnet des kardialen extrazellulären Matrix (ECM-C). Das Herz kann erwartet werden ca. 20-25% des ursprünglichen Gewichts während der Dezellularisierung Prozess verliert. </li><li> Sezieren die rechte und linke Herzkammer, sowie die ventrikuläre Septum zur DNA quantificatiauf und histologischen Bearbeitung, um zu bestätigen komplette Dezellularisierung des Gewebes (Abbildung 5). </li><li> Einfrieren der C-ECM bei -80 ° C für mindestens 2 h vor der Lyophilisation. </li></ol>

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</ol>

Dr. Gilbert war auf dem Scientific Advisory Board bei ACELL, Inc. während der Studie getan wurde, und vor kurzem wurde die VP für Forschung und Entwicklung. ACELL, Inc. vertreibt Harnblase Matrix und hat keine kommerziellen Interessen in der vorliegenden Studie.

Die aktuelle Studie beschriebene Methodik für eine konsistente und effiziente Dezellularisierung eines Schweine Herzen. Das Protokoll war eine Änderung an einem zuvor veröffentlichten Bericht 1 und enthalten längerer Exposition zu fließen und erhöhtem Druck, die mehr wiederholbare Ergebnisse geliefert. Die resultierende dezellularisierten Gewebe erfüllt alle veröffentlichten Kriterien für eine erfolgreiche Dezellularisierung von Gewebe 2. Häufige Änderungen Lösung wurden durchgeführt, um die Wieder...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenz / Material </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> Trypsin </td><td> Gibco </td><td> 15090 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA </td><td> Fischer </td><td> BP120-500 </td><td></td></tr><tr><td> NaN 3 </td><td> Sigma </td><td> S2002-500G </td><td></td></tr><tr><td> Triton X-100 </td><td> Sigma </td><td> X100-1L </td><td></td></tr><tr><td> 10X PBS </td><td> Fischer </td><td> BP399-20 </td><td></td></tr><tr><td> Natriumdesoxycholat </td><td> Sigma </td><td> D6750-500G </td><td></td></tr><tr><td> Peressigsäure </td><td> Pfaltz und Bauer </td><td> P05020 </td><td> 35% CAS # 79-21-0 </td></tr><tr><td> Ethanol </td><td> Pharmco </td><td> 111000200 </td><td></td&gt; </tr><tr><td> Masterflex Pump Drive </td><td> Cole Parmer </td><td> SI-07.524-50 </td><td></td></tr><tr><td> Masterflex Tubing </td><td> Cole Parmer </td><td> 96400-18 </td><td> Größe 18 </td></tr><tr><td> Barbed Reducer </td><td> Cole Parmer </td><td> EW-30.612-20 </td><td></td></tr><tr><td> 4L Beaker </td><td> Fisher Scientific </td><td> 02-540T </td><td></td></tr></tbody></table>

verfahren für dezellularisierung der porcine heart von retrograde coronary perfusion

Procedure for Decellularization of Porcine Heart by Retrograde Coronary Perfusion

Perfusion-basierte ganzen Organs Dezellularisierung hat kürzlich Interesse im Bereich des Tissue Engineering als Mittel zur ortsspezifischen extrazellulären Matrix Gerüsten erstellen, gewann unter weitgehender Erhaltung der einheimischen Architektur des Gerüsts. Bisher hat dieser Ansatz in einer Vielzahl von Organsysteme verwendet worden, einschließlich Herz, Lunge, Leber und 1-5. Vorherige Verfahren zur Dezellularisierung Gewebe ohne eine leicht zugängliche Gefäßnetz haben bei längerer Exposition von Gewebe, Lösungen von Detergentien, Säuren oder enzymatische Behandlungen als Mittel, um die zellulären und atomare Bestandteile aus dem umgebenden extrazellulären Umgebung 6-8 entfernen gestützt. Allerdings ist die Wirksamkeit dieser Verfahren gelenkig auf der Fähigkeit der Lösungen das Gewebe durch Diffusion eindringen. Im Gegensatz dazu Perfusion von Organen durch die natürliche Gefäßsystem wirksam reduziert den Diffusionsweg und erleichtert den Transport von decellularizatiMittel zum in das Gewebe und zellulären Komponenten aus der Gewebe. Hier beschreiben wir eine Methode, um vollständig decellularize eine intakte Schweine Herzen durch koronare retrograde Perfusion. Das Protokoll ergab ein voll dezellularisierte kardialen extrazellulären Matrix (ECM-c) Gerüst mit der dreidimensionalen Struktur des Herzens intakt. Unser Verfahren verwendet eine Reihe von Enzymen, Detergentien und Säuren mit hypertonischen und hypotonischen Spülungen gekoppelt in der Lyse und Entfernung von Zellen unterstützen. Das verwendete Protokoll eine Trypsin-Lösung, um Zellen von der Matrix durch Triton X-100 und Natriumdesoxycholat Lösungen gefolgt, um die Entfernung von Zellmaterial unterstützen lösen. Die beschriebene Protokoll verwendet auch Perfusion Geschwindigkeiten von mehr als 2 l / min für verlängerte Zeiträume. Die hohe Strömungsgeschwindigkeit, mit der Lösung Änderungen erlaubt den Transport von Agenten des Gewebes ohne Kontamination von Zelltrümmern und gekoppelt gewährleistet effektive Spülung des Gewebes. Das beschriebene Verfahren entfernt alle Kernmaterial von native porcinen Herzgewebe, die Schaffung eines ortsspezifischen kardialen ECM Gerüst, das für eine Vielzahl von Anwendungen verwendet werden kann.

Die Wirkung der Dezellularisierung auf ganze Schweineherzen variiert natürlich aufgrund der Unterschiede in der Größe, Drücke und Behälteranordnung. Daher wird die genaue Zusammensetzung der extrazellulären Matrix abgeleiteten Gerüsten nicht dasselbe vom Herzen zum Herzen. Der Abschluss der beschriebenen Protokoll erbringt ein Herz, das weiße oder durchscheinende zeigt an, den Verlust an Zellmaterial. Es ist jedoch allgemein anerkannt, dass ein Gewebe angesehen werden &quot;dezellularisierte&quot; auf die Kombination vo...

Ein Verfahren, um schnell und vollständig zu entfernen zellulären Komponenten aus einer intakten Schweineherz durch retrograde Perfusion wird beschrieben. Dieses Verfahren ergibt eine ortsspezifische kardialen extrazellulären Matrix Gerüst, das das Potential für die Verwendung in einer Vielzahl von klinischen Anwendungen hat.

Verfahren für Dezellularisierung der Porcine Heart von Retrograde Coronary Perfusion

Perfusion-based  whole organ decellularization has recently gained interest in the field of  tissue engineering as a means to create site-specific ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, zelluläre Komponenten aus einem intakten Schweineherzen durch retrograde Profusion schnell und vollständig zu entfernen, um ein ortsspezifisches extrazelluläres Matrixgerüst für das Herz zu erhalten. Dies geschieht durch eine erste Kanülierung, die Aorta eines intakten Schweineherzens. Als nächstes wird ein Schlauch an eine Schlauchpumpe angeschlossen, und das Gewebe wird mit Wasser und Salzlösungen bei niedrigen Durchflussraten gewaschen.Das Herz wird dann mit einer Reihe von Detergenzien und enzymatischen Lösungen mit einer allmählich ansteigenden Flussrate durchblutet, um zelluläre Bestandteile zu entfernen. Der letzte Schritt besteht darin, eine Desinfektionslösung zu perfundieren. Entfernen Sie den Schlauch und schneiden Sie die ventrikulären Wände für die Verarbeitung ab.Letztendlich wird das Herz analysiert, um die vollständige Entfernung von zellulärem und nukleärem Material aus dem Gewebe zu bestätigen. Die visuelle Demonstration dieser Methode ist von entscheidender Bedeutung, da die Kanülierung und die ersten Reichhaltigkeitsschritte schwer zu erlernen sind, da die genaue Position des Schlauchs der Schlüssel zum Erfolg des Experiments ist. Das Schweineorgan wird unmittelbar nach der Euthanasie aus einem Schlachthof oder einer Forschungseinrichtung gewonnen.Beginnen Sie damit, überschüssiges Blut abzuspülen. Schneiden Sie anschließend das Herz von überschüssigem Fett und Gewebe ab und halten Sie die Vorhöfe und die Aorta intakt. Trennen Sie die Lungenarterie von der Aorta, indem Sie zusätzliches Fett abschneiden.Nach dem Zuschneiden jedes Herz einzeln in Gefrierpapier einwickeln und mindestens 24 Stunden bei minus 80 Grad Celsius lagern, um ein vollständiges Einfrieren zu gewährleisten. Wenn Sie es gebrauchsfertig haben, tauen Sie das Herz auf, indem Sie es in ein mit Wasser vom ersten Typ gefülltes Vier-Liter-Becherglas tauchen und es über Nacht bei vier Grad Celsius stehen lassen. Nachdem das Herz vollständig aufgetaut ist, polstern Sie es trocken und notieren Sie sein Gewicht.Das Herz eines Schweines mit Marktgewicht sollte etwa 375 bis 450 Gramm wiegen. Sobald das Herz fertig ist, verbinden Sie den Master-Flexschlauch der Größe 18 mit dem einen Viertelzoll-Ende eines Stachelreduzierers. Führen Sie als Nächstes den Widerhakenreduzierer und den Schlauch in die Aorta ein.Platzieren Sie zwei Schlauchschellen oder befestigen Sie Kabelbinder um die Aorta direkt unterhalb des brachiozephalen Rumpfes. Der Reducer und der Schlauch müssen oberhalb der Aortenklappe verbleiben, damit die Herzkranzgefäße durchblutet werden können. Füllen Sie den Schlauch anschließend mit einer Spritze mit Wasser vom Typ 1 und führen Sie ihn in der ungefähren Mitte in die Kartusche einer Master Flex-Rollenpumpe ein.Tauchen Sie dann das Zuflussende des Schlauchs zusammen mit dem Herz in den Boden eines mit 2,5 Litern Wasser gefüllten Bechers und sichern Sie es. Die schwierigsten Aspekte dieses Verfahrens sind die richtige Kanülierung des Herzens und die Aufrechterhaltung einer angemessenen Pumpdrehzahl während des gesamten Eingriffs. Wir stellen den Erfolg unseres Experiments sicher, indem wir das Gewebe während des gesamten Eingriffs visuell auf Luftblasen untersuchen und während des gesamten Eingriffs einen ordnungsgemäßen Erguss aus den Ventrikeln aufrechterhalten.Grundieren Sie die Pumpe, um Luftblasen aus dem Schlauch zu entfernen, neu zu positionieren oder zusätzliche Bänder um die Aorta und den Schlauch zu befestigen, wenn Luftblasen beobachtet werden. Ein luftdichter Verschluss ist wichtig, um während des Dezellularisierungsprozesses einen ausreichenden Druck aufrechtzuerhalten. Erwärmen Sie zu diesem Zeitpunkt ein Vier-Liter-Becherglas mit drei Litern salzbalancierter Trypsinlösung zur Vorbereitung des Dezellularisierungsprozesses.Stellen Sie die Pumpe zunächst auf eine Durchflussmenge von 400 Millilitern pro Minute ein und stellen Sie sicher, dass die richtige Schlauchgröße ausgewählt ist. Starten Sie die Pumpe und spülen Sie das Herz 15 bis 25 Minuten lang mit Wasser vom ersten Typ, das Herz sollte anschwellen und das Blut aus den Ventrikeln diffundieren, frische Lösung sollte alle fünf bis 10 Minuten oder nach Bedarf ausgetauscht werden. Nachdem das Blut entnommen wurde, stoppen Sie die Pumpe und übertragen Sie das Herz in ein separates Becherglas, das mit zwei XPBS gefüllt ist.Tauchen Sie den Schlauch ein. Erhöhen Sie die Fördermenge auf 700 Milliliter pro Minute und starten Sie die Pumpe. Lassen Sie das Herz 15 Minuten lang in Lösung und wechseln Sie die Lösung alle fünf Minuten.Wenn Sie fertig sind, übertragen Sie das Herz für 10 Minuten in Wasser vom Typ eins und erhöhen Sie die Durchflussrate auf 750 Milliliter pro Minute. Um den Dezellularisierungsprozess zu starten, geben Sie das Herz in das Becherglas mit warmer Tryinlösung mit Salzbalance. Erhöhen Sie die Drehzahl auf 1200 Milliliter pro Minute und starten Sie die Pumpe.Legen Sie einen Rührstab für die Zirkulation auf den Boden des Bechers und lassen Sie das Herz drei Stunden lang in dieser Lösung. Die Perfusionsgeschwindigkeit wird langsam erhöht, um das Gewebe zu konditionieren und einen Bruch der Gefäße zu verhindern. Erhöhen Sie nach einer Stunde die Pumpendrehzahl auf 1500 Milliliter pro Minute.Nach einer weiteren Stunde wird die Pumpendrehzahl auf 1800 Milliliter pro Minute erhöht. Das Herz sollte anschwellen und sich fast verdoppeln. Das Gewebe sollte seine natürliche Farbe verlieren und von den Vorhöfen zur Spitze fortschreiten.Nach jeder Lösungsperfusion wird eine zweistufige Spülung durchgeführt, um Zelltrümmer und chemische Rückstände zu entfernen und die Zelllyse zu unterstützen. Nach den salzausgeglichenen Auslösungen und der Lösung perfundieren Sie Wasser mit 1900 Millilitern pro Minute und dann zwei XPBS mit 1950 Millilitern pro Minute für jeweils 10 Minuten. Übertragen Sie anschließend das Herz in eine Salzausgleichslösung mit Triton X 100 bei Raumtemperatur. Erhöhen Sie die Pumpendrehzahl auf 2000 Milliliter pro Minute und persolidieren Sie eine Stunde lang.Erhöhen Sie nach dem Nachfüllen mit frischer Lösung die Pumpendrehzahl auf 2100 Milliliter pro Minute und persolidieren Sie weitere eineinhalb Stunden. Spülen Sie anschließend das Tuch wie zuvor gezeigt, jedoch mit erhöhter Pumpdrehzahl. Die nächste Perfusion erfolgt mit 4%iger Natriumdesoxybeschichtung bei Raumtemperatur.Erhöhen Sie die Pumpendrehzahl auf 2200 Milliliter pro Minute und persolidieren Sie drei Stunden lang. Wiederholen Sie nach drei Stunden die Spülschritte und wechseln Sie die Lösungen nach fünf bis 10 Minuten für jede Lösung. Nach der abschließenden Perfusion das Herz in eine 0,1%ige Paracetinsäure- und 4%Ethanollösung überführen und 1,5 Stunden lang bei 2200 Millilitern pro Minute bei gleicher Pumpengeschwindigkeit perfundieren, das Gewebe 15 Minuten lang mit einem XPBS perfundieren, gefolgt von zwei fünfminütigen Waschgängen in Wasser vom Typ 1.Wiederholen Sie den Vorgang erneut, um die Perfusion der Lösung abzuschließen, schalten Sie die Pumpe aus und entfernen Sie das Herz aus der Lösung. Schneide die Bänder von der Aorta ab. Entfernen Sie alle Schläuche und legen Sie das Herz in ein leeres Becherglas, um es eine Stunde lang abtropfen zu lassen.Entfernen Sie überschüssige Flüssigkeit regelmäßig nach einer Stunde. Lege das Herz auf ein saugfähiges Pad, um es weiter abtropfen zu lassen. Nachdem der größte Teil des Wassers entfernt wurde, notiere das endgültige Gewicht des Herzens.Das Herz kann während des Dezellularisierungsprozesses etwa 20 bis 25 % seines Ausgangsgewichts verlieren. Am Ende dieses Prozesses sollte das Herz weiß oder durchscheinend erscheinen, was auf den Verlust von Zellmaterial hinweist. Als nächstes werden das ventrikuläre Septum sowie der rechte und linke Ventrikel getrennt und für die DNA reserviert.Durch die Quantifizierung und histologische Verarbeitung werden die Proben vor der Gefriertrocknung mindestens zwei Stunden lang bei minus 80 Grad Celsius eingefroren. Eine erfolgreiche Dezellularisierung zeigt sich hier durch die deutliche Abnahme des DNA-Gehalts im Vergleich zu nativen Ventrikeln. Dieses Gel zeigt, dass im Vergleich zu einer Harnblasenmatrix oder UBM wenig Rest-DNA in den dezellularisierten Ventrikeln verblieben ist.In diesem Beispiel zeigt die Hämat-Toin- und Eosin-Färbung die vollständige Entfernung von Kernmaterial aus den Ventrikeln. Die Masson-Färbung bestätigt außerdem den Verlust von Herzmuskelbündeln und die Beibehaltung von Kollagennetzwerken, während dieses Verfahren versucht wird. Es ist wichtig, das Gewebe und die Herzkranzgefäße häufig visuell zu inspizieren.

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Research

Forschung

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Biotechnik

In diesem Video führen wir die retrograde Langendorff-Perfusion eines isolierten Mausherzens durch. Während des Eingriffs wird die Herzaktivität des Herzens aufrechterhalten, indem es retrograd mit einer Perfusionslösung über die Herzkranzgefäße perfundiert wird, wobei eine Kanüle in die aufsteigende Aorta eingeführt wird. Das Modell wird verwendet, um die kardiale Pathophysiologie des Herzens zu untersuchen.

Retrograde Langendorff-Herzperfusion: Eine ex vivo-Technik zur Perfusion isolierter Mausherzen

In diesem Video beschreiben wir ein Schritt-für-Schritt-Protokoll zur Extraktion des Herzens aus einem Schweinemodell für eine Herztransplantation.

Exzision von Schweineherzen: Ein Protokoll zur Extraktion von Schweineherzen für eine Herztransplantation

Dieses Video beschreibt eine Ex-situ-Technik zur Konservierung eines isolierten Schweineherzens durch Perfusion mit einer sauerstoffhaltigen, nährstoffreichen Perfusatlösung. Die Technik ermöglicht eine umfassende Bewertung der Herzleistung unter physiologischen Bedingungen.

Ex-situ-Herzperfusion: Eine Technik zur Erhaltung der isolierten Herzfunktion von Schweinen

Diese Methode ermöglicht Decellularization ein komplexes solide Organ mit einem einfachen Protokoll basierend auf osmotischen Schock und Durchblutung des Ionischen Waschmittel mit minimalen Orgel Matrix Störung. Es verfügt über eine neuartige Decellularization-Technik für die Herzen der Menschen in einem unter Druck stehenden Beutel mit Echtzeit-Überwachung der Strömung Dynamik und zellulären Schutt Abfluss.

Decellularization des ganzen menschlichen Herz in einem unter Druck stehenden Beutel in eine umgekehrte Orientierung

Normothermic Ex Situ Herz Perfusion (ESHP), bewahrt das Herz in einem schlagen, semi-physiologischen Zustand. Wenn in einem Arbeitsmodus durchgeführt, bietet ESHP die Möglichkeit, anspruchsvolle Assessments des Spenders durchzuführen Herz Funktion und Orgel Lebensfähigkeit. Hier beschreiben wir unsere Methode zur myokardialen Leistungsbewertung während ESHP.

Normothermic Ex-Situ Herz Perfusion im Arbeitsmodus: Beurteilung der Herzfunktion und Stoffwechsel

Hier beschreiben wir ein präklinisches Großtiermodell (Schweine) der orthotopischen Herztransplantation, das fest etabliert und zur Untersuchung neuartiger kardioprotektive Strategien genutzt wurde.

Ein präklinisches Porcine-Modell der orthotopischen Herztransplantation

Wir entwickelten eine einfacheMethode zur Isolierung hochwertiger einzelner Mausherzzellen durch die antegrade Perfusionstechnik. Diese Methode ist Langendorff-frei und nützlich zur Isolierung von ventrikulären und vorhofialen Myozyten oder interstitiellen Zellen, wie Herzfibroblasten oder Vorläuferzellen.

Eine antegrade Perfusionsmethode zur Kardiomyozytenisolation von Mäusen

Wir präsentieren ein Protokoll für die Verwendung eines normothermen ex vivo sanguinösen Perfusionssystems für die Abgabe von Therapeutika an ein ganzes kardiales Allotransplantat in einem porcinen heterotopen Herztransplantationsmodell.

Ein porcines heterotopes Herztransplantationsprotokoll für die Abgabe von Therapeutika an ein kardiales Allotransplantat

Das Protokoll beschreibt die chirurgische Beschaffung und anschließende Dezellularisierung von vaskularisierten Schweinelappen durch die Perfusion von Natriumdodecylsulfat-Waschmittel durch das Lappengefäßsystem in einem maßgeschneiderten Perfusionsbioreaktor.

Beschaffung und Perfusions-Dezellularisierung von porcinen vaskularisierten Klappen in einem maßgeschneiderten Perfusionsbioreaktor

Das Screening auf koronare Herzkrankheit könnte die Beschaffung von Spenderherzen mit erweiterten Kriterien erhöhen. Ein Protokoll zur Durchführung einer reproduzierbaren Koronarangiographie während einer ex-situ-Herzperfusion wird hierin in einem Schweinemodell beschrieben.

Koronarangiographie während der ex-situ Herzperfusion im Schweinemodell

Das Protokoll beschreibt hier ein High-Fidelity-Schweinemodell der Herztransplantation nach Spende nach Kreislauftod unter Verwendung einer ex vivo-Perfusion des Allotransplantats.

Ein High-Fidelity-Schweinemodell der orthotopen Herztransplantation nach Spende nach Kreislauftod

Lernen Sie die Dezellularisierung von Schweineherzen durch retrograde Koronarperfusion. Diese Methode erzeugt ein ortsspezifisches kardiales extrazelluläres Matrixgerüst für Anwendungen in der Geweberegeneration und regenerativen Medizin.

Verfahren für Dezellularisierung der Porcine Heart von Retrograde Coronary Perfusion

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