Name: Optogenetische Stimulation von Escape Verhalten in Drosophila melanogaster (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Lernen Sie die optogenetische Stimulation spezifischer Neuronen in Drosophila melanogaster zur Untersuchung von Fluchtverhalten. Diese Methode ermöglicht präzise Kontrolle neuronaler Aktivität mit Channelrhodopsin2.

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Diese Arbeit wurde von einem Stanford Deans Fellowship (SEJdV), einem National Institutes of Health Director der Pioneer Award (TRC DP0035350), ein McKnight Foundation Scholar Award (TRC) und R01 EY022638 (TRC) finanziert.

Ein. Generieren Channelrhodopsin Flies <ol><li> Kreuz UAS-ChR2 Fliegen mit dem Gal4-Treiber Ihrer Wahl, verwenden wir G105-Gal4, die in Foma-1 Neuronen in der optischen Loben exprimiert wird. </li><li> Um die Möglichkeit einer visuellen Antwort auf das blaue Licht Stimulation zu eliminieren, sind beide Leitungen in Fliege aw + norpA Hintergrund. </li><li> End Ergebnis: w + norpA; G105-Gal4/UAS-ChR2 + </li><li> Nach erwachsenen Fliegen schlüpfen, legen ausgewählten Weibchen auf frische Lebensmittel, mit 10 uM all-trans-Retinal (ein Co-Faktor für ChR2 erforderlich) und vor Licht geschützt ergänzt, für 3 Tage vor der Durchführung des Verhaltens Assay. </li></ol> 2. Machen Sie 10 uM All-trans-Retinal Verbesserte Lebensmittel <ol><li> Man löst 100 mg des all-trans-Retinal in 17,6 ml 95% Ethanol, um 20 mM Retinal. All-trans-Retinal aus Licht halten zu allen Zeiten geschützt. </li><li> Melt-Standard Maismehl essen fliegen in der Mikrowelle und abkühlen lassen, bis warm an. </li><li> Mix 50 ul 20 mMall-trans-Retinal in Fläschchen von 10 ml essen fliegen. </li><li> Lassen Fläschchen abkühlen und halten vor Licht geschützt. </li></ol> 3. Ausrüstung <ol><li> Pipettenspitzen: Standard 1.000 ul Pipettenspitzen sind in der Nähe der Spitze geschnitten, wodurch ein Porendurchmesser von ~ 2,25 mm. </li><li> Platform (siehe Abbildung 1). <ol><li> Ein Delrin Base wurde 17 cm X 25 cm, mit Gewindebohrungen an jeder Ecke zu ¼ &quot;NPT Kühlmittelschlauch Stecker passen gebaut. </li><li> Eine vertikale Halterung aus Delrin hergestellt, ist mit dem Zentrum der Basis befestigt. Die Abmessungen sind 25 mm X 40 mm X 65 mm (Breite x Tiefe x Höhe). Eine 10 mm breite Rille läuft über die Länge des Halters, mit einer Flügelschraube an der Unterseite. Eine Plattform ist an der Oberseite des Halters befestigt ist, 25 mm x 40 mm x 10 mm, mit einer 3,5 mm Bohrung mit der Nut in dem Halter ausgerichtet ist. </li></ol></li><li> LED-Arrays (siehe Abbildung 1). <ol><li> Vier Arme Kühlmittelschlauch, ~ 18 cm lang, sind mit der Plattform angebracht base mit dem Wasserschlauch anschließen. Kühlflüssigkeitsleitung wird nur als Strukturträger verwendet und nicht für Kühlzwecke. </li><li> Richtig beabstandeten Rillen sind in das letzte Stück des Kühlmittels Abspritzen von jedem Arm für die Anbringung eines Wärmeschilds mit dem Ende jedes Armes abgeschnitten. </li><li> Eine blaue LED Rebel Tri-Stars wird jeder Kühlkörper mit pre-cut thermische Klebeband befestigt. A Carclo 18 ° Tri-Objektiv ist auf jeden Tri-Star angebracht. </li><li> LED Tri-Sterne sind an den DC BuckPuck Treiber und einer Energieversorgung wie angegeben verdrahtet. Wir haben unser Set-up mit jedem BuckPuck Speisung von zwei Tri-Stars in Reihe angeordnet. </li><li> Beleuchtung aller vier LED Tri-Stars bei 700 mA ergab eine Bestrahlungsstärke von 713 W / m 2 auf unserer Plattform. </li></ol></li><li> Kamera: Die Kamera wird auf einem kleinen Stativ montiert und konzentrierte sich auf die Oberseite der Plattform. </li></ol> 4. Behavioral Assay <ol><li> Kurz betäuben Fliegen auf Eis. </li><li> Zeigen einzelnen Fliegen in Pipettenspitzen, mit Klebeband zu schließenbeide Enden der Spitze. </li><li> Nachdem die Fliegen geweckt haben und aktiv erkunden die Pipettenspitze, entfernen Sie das Klebeband und legen Sie eine Pipette in die Nut in der vertikalen Halterung. Die Flügelschraube wird die Pipettenspitze zu befestigen und um die Unterseite der Spitze zu schließen. </li><li> Wie die Fliege erforscht die Pipettenspitze (typischerweise 30 bis 60 sec), starten Sie die Kamera die Aufnahme kurz vor der Fliege von der Spitze auf die Plattform entsteht. </li><li> Nachdem die Fliege auf der Plattform entstanden ist, warten 1-2 seco, und schalten Sie auf den blauen LEDs. Verwenden Sie einen Timer manuell messen die Zeit, bis die Fliege initiiert Flug. </li></ol>

<ol><li>Venken, K., Simpson, J., Bellen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+manipulations+of+genes+and+cells+in+the+nervous+system+of+the+fruit+fly%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic manipulations of genes and cells in the nervous system of the fruit fly.</a> Neuron. 72, 202-230 (2011).</li>
<li>Gordon, M., Scott, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+control+in+a+Drosophila+taste+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Motor control in a Drosophila taste circuit.</a> Neuron. 61, 373-384 (2009).</li>
<li>Suh, G. S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+activation+of+an+innate+olfactory+avoidance+response+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Light activation of an innate olfactory avoidance response in Drosophila.</a> Current Biology. 17, 905-908 (2007).</li>
<li>Zhang, W., Ge, W., Wang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+toolbox+for+light+control+of+Drosophila+behaviors+through+Channelrhodopsin+2-mediated+photoactivation+of+targeted+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">A toolbox for light control of Drosophila behaviors through Channelrhodopsin 2-mediated photoactivation of targeted neurons.</a> European Journal of Neuroscience. 26, 2405-2416 (2007).</li>
<li>Nagel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Channelrhodopsin-2%2C+a+directly+light-gated+cation-selective+membrane+channel%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Science%22%5BJournal%5D)">Channelrhodopsin-2, a directly light-gated cation-selective membrane channel.</a> Proceedings of the National Academy of Science. 100, 13940-13945 (2003).</li>
<li>de Vries, S., Clandinin, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loom-sensitive+neurons+link+computation+to+action+in+the+Drosophila+visual+system%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Loom-sensitive neurons link computation to action in the Drosophila visual system.</a> Current Biology. 22, 353-362 (2012).</li>
<li>Card, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Escape+behaviors+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Escape behaviors in insects.</a> Current Opinion in Neurobiology. 22, 1-7 (2012).</li>
<li>Card, G., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visually+mediated+motor+planning+in+the+escape+response+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Visually mediated motor planning in the escape response of Drosophila.</a> Current Biology. 18, 1300-1307 (2008).</li>
<li>Fotowat, H., Fayyazuddin, A., Bellen, H. J., Gabbiani, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+neuronal+pathway+for+visually+guided+escape+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">A novel neuronal pathway for visually guided escape in Drosophila melanogaster.</a> Journal of Neurophysiology. 102, 875-885 (2009).</li>
<li>Card, G., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+trade-offs+in+the+flight+initiation+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Performance trade-offs in the flight initiation of Drosophila melanogaster.</a> The Journal of Experimental Biology. 211, 341-353 (2008).</li>
<li>Hammond, S., O'Shea, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Escape+flight+initiation+in+the+fly%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Phsyiology+A%22%5BJournal%5D)">Escape flight initiation in the fly.</a> Journal of Comparative Phsyiology A. 193, 471-476 (2007).</li>
<li>Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+mutants+of+Drosophila+isolated+by+countercurrent+distribution%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Behavioral mutants of Drosophila isolated by countercurrent distribution.</a> PNAS. 58, 1112-1119 (1967).</li>
<li>Bloomquist, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+a+putative+phospholipase+C+gene+of+Drosophila%2C+norpA%2C+and+its+role+in+phototransduction%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Isolation of a putative phospholipase C gene of Drosophila, norpA, and its role in phototransduction.</a> Cell. 54, 723-733 (1988).</li>
<li>Gohl, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+in+vivo+system+for+directed+dissection+of+gene+expression+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">A versatile in vivo system for directed dissection of gene expression patterns.</a> Nature Methods. 8, 231-237 (2011).</li>
<li>Zhang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Red-shifted+optogenetic+excitation%3A+a+tool+for+fast+neural+control+derived+from+Volvox+cateri%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Red-shifted optogenetic excitation: a tool for fast neural control derived from Volvox cateri.</a> Nature Neuroscience. 11, 631-633 (2008).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

<html> Wir haben optogenetische Stimulation der Flucht Verhaltensweisen durch Baden frei zu Fuß Fliegen in helles blaues Licht gezeigt. Dies kann leicht angepasst werden, um andere Verhaltensweisen in frei zu Fuß Fliegen zu untersuchen, und können zu größeren Plattformen, indem Sie einfach Tiling die LED-Arrays wir über eine größere Fläche verwendet skaliert werden. Verwenden Sie entweder die kostengünstige Kamera, die wir beschreiben, oder andere verfügbare Kamera-Systeme, kann der Anwender individuell die Bildrate und ...

Eine wachsende Arsenal von genetisch kodierte Werkzeuge wurden entwickelt, um neuronale Aktivität in bestimmten Zellen in Drosophila melanogaster 1 manipulieren. Diese Werkzeuge ermöglichen die nichtinvasive Aktivierung oder Inaktivierung von bestimmten Nervenzellen im intakten und sich frei bewegenden Tier. Unter diesen greifen Channelrhodopsin2 (ChR2), ein Licht-aktivierter Kationen-Kanal, entscheidende Vorteile, da sie zeitlich gesteuert werden können und schnell induziert. Wenn Neuronen, die ausdrückliche ChR2 zu hellen Blau (470 nm) Licht, das sie schnell depolarisiert und weisen erhöhte Feuerrate 3-5 ausgesetzt sind. Solche gezielten Aktivierung von spezifischen Neuronen in sich frei bewegenden Tieren hat die Angemessenheit bestimmter Neuronen für Verhaltensweisen wie CO 2-Vermeidung 3, Rüssel-Erweiterung 2,4 und Riesen-Faser vermittelten erschrecken Antworten 4 enthüllt. Da jedoch die intensive Lichtquellen notwendig ChR2 stimulieren stimulieren auch Photorezeptoren, die Anwendung optogenetic Techniken, um das visuelle System begrenzt wurde. Durch die Kombination eines optogenetische Ansatz mit einer Mutation, die Phototransduktion beeinträchtigt haben wir gezeigt, dass die Aktivierung einer bestimmten Gruppe von Neuronen in der Fliege optischen Loben können die Escape-Verhalten verwendet, um eine Kollision zu vermeiden 6 fahren. Die meisten, wenn nicht alle, weisen eine visuelle Tieren Fluchtverhalten um Kollisionen mit entgegenkommenden Objekten zu vermeiden. Wandern oder stationär fliegt, wenn sie mit einer drohenden Kollision vorgestellt, Take-off in die Flucht, weg von der entgegenkommenden Kollision 7-9. Diese take-offs sind durch erhöhte Flügeln vor Take-off und einer instabilen Flugbahn 10,11 gekennzeichnet. Diese Antwort unterscheidet sich von dem Riesen-Faser-vermittelten Schreckreaktion, Sprünge, die nicht durch erhöhte Flügel voraus, und in der Regel in einem frei fallenden Wäschetrockner 4,9 führen. Nachdem eine bestimmte Cluster von Webstuhl sensiblen Neuronen in der optischen Loben, Foma-1 Neuronen, die uniqu sindely abgestimmt auf sich nähernde Objekte kodieren, haben wir versucht, ihre Beteiligung an der Fliege loom Fluchtverhalten sondieren. Hier zeigen wir die Verwendung von Optogenetik selektiv zu aktivieren diese Neuronen und entlocken der Fliege Flucht Verhalten. Wir verwenden die Gal4-UAS-Transkriptionsaktivator System, um die Expression in den ChR2 Foma-1 Neuronen anzutreiben. ChR2 erfordert die Cofaktor all-trans-Retinal und da dies in geringen Mengen in der Drosophila zentralen Nervensystems gefunden wird, muss in der Fliegen &quot;Ernährung ergänzt werden. 3,4 Als helles Licht verwendet wird, um ChR2 aktivieren und Fliegen zeigen eine starke phototaktischen Verhaltensweisen 12, versuchten wir, die Möglichkeit einer visuellen Antwort auf den Reiz zu eliminieren. Dazu verwendeten wir Tiere, die homozygot mutierte für eine Null-Allel des norpA Gen, das eine kritische Komponente des Phototransduktionsprozess, Phospholipase C-β kodiert waren. Photorezeptoren in solchen mutierten Fliegen sind keine Verantwortungd ans Licht 13. Um die optogenetische Stimulation der Flucht Reaktion zu testen, müssen wir eine Fliege zu isolieren und baden sie in helles blaues Licht. Um dies zu tun, legen wir individuelle Fliegen in Pipettenspitzen. Eine Pipettenspitze in einer benutzerdefinierten Halters, so dass die Fliege wird geotactically Fuß bis die Spitze und hinaus auf einer rechteckigen Plattform gesetzt. Die Fliege ist in der Lage, sich frei herumlaufen auf der Oberseite dieser Plattform. Die Plattform wird von vier blaue LED-Arrays mit jeweils 3 LEDs, auf der Oberseite der Plattform ausgerichtet umgeben. Nachdem die Fliege ist auf der Plattform sind die LEDs beleuchtet, und die Fliege Reaktion wird mittels eines High-Speed-Kamera 6.

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> Reagens </td></tr><tr><td> All-trans Retinal </td><td> Voraus Scientific &amp; Chemical Inc </td><td> R3041 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Ausrüstung </td></tr><tr><td> Kühlkörper 9,2 K / W </td><td> Luxeonstar </td><td> LPD30-30B </td><td> 30 mm Vierkant X 30 mm hoch </td></tr><tr><td> Carclo 18 ° Tri-Lens </td><td> Luxeonstar </td><td> 10507 </td><td></td></tr><tr><td> Blau Rebel am Tri-Star Base LED </td><td> Luxeonstar </td><td> MR-B0030-20T </td><td> 470 nm, 174 lm @ 700 mA. </td></tr><tr><td> 700 mA BuckPuck DC Treiber </td><td> Luxeonstar </td><td> 3021-DE-700 </td><td></td></tr><tr><td> Kabelbaum für BuckPuck Treiber </td><td> Luxeonstar </td><td> 3021-HE </td><td></td></tr><tr><td> Pre-cut thermische Klebeband </td><td> Luxeonstar </td><td> LXT-S-12 </td><td> 20 mm Hex Basis </td></tr><tr><td> Snap-Loc Coolant Hose, ¼ &quot;ID </td><td> McMaster-Carr </td><td> 5307K49 </td><td></td></tr><tr><td> Snap-Loc Coolant Schlauchverbinder </td><td> McMaster-Carr </td><td> 5307K39 </td><td> ¼ &quot;NPT </td></tr><tr><td> Laboratory Grade Switching Mode Programmierbare DC Power Supply </td><td> BK Precision </td><td> 1698 </td><td></td></tr><tr><td> Exilim Kamera </td><td> Casio </td><td> EX-FH20 </td><td></td></tr></tbody></table>

optogenetische stimulation von escape verhalten in<em&gt; drosophila melanogaster</em

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

Eine wachsende Zahl von genetisch kodierte Werkzeuge sind immer zur Verfügung, dass auch nicht-invasive Manipulation der neuronalen Aktivität bestimmter Neuronen in Drosophila melanogaster 1. Chef unter diesen sind optogenetische Werkzeuge, die die Aktivierung oder Inaktivierung von bestimmten Nervenzellen im intakten und sich frei bewegenden Tieren mit hellem Licht zu ermöglichen. Channelrhodopsin (ChR2) ist ein Licht-aktivierten Kationen-Kanal, die, wenn sie von blauem Licht aktiviert, verursacht Depolarisation von Neuronen, sie auszudrücken. ChR2 wurde zur Identifizierung Neuronen entscheidend für bestimmte Verhaltensweisen, wie z. B. CO 2-Vermeidung, Rüssel Erweiterung und Riesen-Faser-vermittelten Schreckreaktion 2-4 wirksam. Da jedoch die intensive Lichtquellen verwendet werden, um ChR2 auch stimulieren stimulieren Photorezeptoren haben diese optogenetische Techniken bisher nicht in das visuelle System verwendet worden. Hier bündeln wir eine optogenetische Ansatz mit einer Mutation, die Phototransduktion beeinträchtigt die Demonstrate dass die Aktivierung von einem Cluster von Webstuhl-Neurone im Fliegenhirn Optik Lappens Foma-1 Neuronen, fahren kann ein Entweichen Verhalten verwendet, um eine Kollision zu vermeiden. Wir verwendeten ein Null-Allel von einer kritischen Komponente des Phototransduktionskaskade, an Phospholipase C-β, durch das Gen kodierte norpA, machen die Fliegen blinde und auch mit dem Gal4-UAS-Transkriptionsaktivator System zur Expression von ChR2 im Foma-1 fahren Neuronen. Individuelle Fliegen werden auf einer kleinen Plattform durch blaue LEDs umgeben ist. Wenn die LEDs beleuchtet werden, die schnell fliegt Abheben in Flug, in einer ähnlichen Weise, um visuell angetriebenen Webmaschine Fluchtverhalten. Wir glauben, dass diese Technik kann leicht angepasst werden, um andere Verhaltensweisen in sich frei bewegenden entfernt untersuchen.

Blind fliegt, die entweder ChR2 oder das G105 Fahrer allein zeigen eine niedrige Rate von take-off nach ihrer Beleuchtung mit strahlend blauem Licht. Blind fliegt zeigte die gleiche Rate von take-off unabhängig von Beleuchtung (Abb. 2), was darauf hindeutet, dass diese take-offs spontane waren eher als durch die Beleuchtung mit blauem Licht. Wenn die ChR2 in den Foma1 Neuronen exprimiert wird, jedoch löst Beleuchtung mit blauem Licht die Flucht Antwort. Über 50% der Fliegen getestet zog innerhalb von 1 ...

Genetisch kodierte optogenetische Tools ermöglichen invasiven Manipulation von spezifischen Neuronen in der<em&gt; Drosophila</em&gt; Brain. Solche Tools identifizieren können Neuronen, deren Aktivierung ist ausreichend, um zu entlocken oder unterdrücken bestimmte Verhaltensweisen. Hier präsentieren wir ein Verfahren zur Aktivierung Channelrhodopsin2, die in gezielten Neuronen in frei zu Fuß Fliegen ausgedrückt wird.

Optogenetische Stimulation von Escape Verhalten in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

A  growing number of genetically encoded tools are becoming available that allow non-invasive  manipulation of the neural activity of specific neurons in ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, durch optogenetische Stimulation bestimmte Neuronen in frei laufenden Fliegen zu aktivieren und so ihre Beteiligung an der Fluchtreaktion der Fliegen zu testen. Dies wird erreicht, indem zunächst mit Fliegen des entsprechenden Genotyps begonnen wird, die mit Futter aufgezogen wurden, das mit allen transretinalen Stoffen angereichert ist. Der zweite Schritt besteht darin, eine einzelne Fliege in eine Pipettenspitze zu stecken.Als nächstes wird die Pipettenspitze in eine speziell angefertigte Halterung gesteckt, die von LEDs umgeben ist. Wenn die Fliege schließlich auf der Plattform auftaucht, leuchten die blauen LEDs auf, die schließlich aufnehmen. Der Zeitpunkt des Starts zeigt, dass die websensitiven Neuronen im Optikerlappen der Fliege für das Fluchtverhalten der Fliege ausreichend sind.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden optogenetischen Methoden besteht darin, dass sie die Verwendung der Optogenetik im visuellen System der Fliege ermöglicht, indem die visuellen Reaktionen auf blaues Licht eliminiert werden. Obwohl diese Methode Einblicke in das Fluchtverhalten und die Flugeinleitung geben kann, kann sie auch auf andere Verhaltensweisen der frei gehenden Fliege angewendet werden. Beginnen Sie damit, Standard-Maismehl zu schmelzen, das Essen in die Mikrowelle zu geben und abkühlen zu lassen, bis es sich warm anfühlt.Nach dem Aufrufen werden 50 Mikroliter der zuvor zubereiteten 20 Millimolar in jedes Fläschchen gemischt. Lassen Sie die Fläschchen dann abkühlen und bewahren Sie sie bis zur Verwendung lichtgeschützt auf. Der erste Cross-UAS-Kanal fällt in Fliegen mit dem entsprechenden GAL vier ab.Treiber G 1 0 5. GAL vier wurde hier für die Expression in fomo one Neuronen im Optuslappen verwendet. Beide Linien sollten von einem weißen Plus- und Gehaltshintergrund sein, um die Möglichkeit einer visuellen Reaktion auf die Stimulation durch blaues Licht auszuschließen.12 bis 13 Tage nach dem Kreuz weiß plus noch zahlen G 1 0 5, GAL vier uas. CR werden zwei positive Fliegen erhalten. Übertragen Sie erwachsene Weibchen drei Tage lang auf frisches Futter, ergänzt mit 10 mikromolaren transretinalen Proteinen, bevor Sie den Verhaltenstest durchführen.Die Basis des Apparates besteht aus einem 17 Zentimeter mal 25 Zentimeter großen Stück Polyoxyethylen mit Gewindelöchern an jeder Ecke, in die ein Viertelzoll NPT-Kühlmittel passt. An der Basis sind ein vertikales Stück Polyoxyethylen befestigt. Über die gesamte Länge des Halters verläuft eine 10 Millimeter breite Rille mit einer Rändelschraube an der Unterseite. Die Plattform wird mit einem Loch von 3,5 Millimetern Durchmesser an der Oberseite des Halters befestigt, das mit der Nut im Halter ausgerichtet ist.Unterarme eines etwa 18 Zentimeter langen Kühlmittelschlauchs werden mit dem Kühlmittelschlauchanschluss als strukturelle Stütze für die LEDs am Plattformsockel befestigt. In das letzte Stück des Kühlmittelschlauchs jedes Arms werden richtig verteilte Rillen geschnitten, um die Kühlkörper am Ende jedes Arms zu befestigen. Eine blaue Rebellen-Tristar-LED wird mit vorgestanztem Wärmeklebeband an jedem Kühlkörper befestigt.Dieses Bild zeigt die Tristar-LED auf dem Kühlkörper. Aus der Nähe: An jedem Tristar ist eine 18-Grad-Tri-Linse von Carlow angebracht. Dieses Bild zeigt das Objektiv in Nahaufnahme Tristar.Die LEDs sind mit den Buck Puck DC-Treibern und einem Netzteil verdrahtet, wie vom Hersteller angegeben. Dieses Setup wurde so gestaltet, dass jeder Buck-Puck zwei Tristar in Reihe antreibt. Der Schaltplan für die Buck-Puck- und LED-Schaltung ist hier dargestellt.Dieser Aufbau, bei dem alle vier Tristar-LEDs mit 700 Milliampere leuchteten, ergab eine Strahldichte von 713 Watt pro Quadratmeter auf der Plattform. Zum Schluss wird eine Kamera auf ein kleines Stativ montiert und auf die Oberseite der Plattform fokussiert. Zuerst die Fliegen auf Eis kurz betäuben.Legen Sie dann einzelne Fliegen in Pipettenspitzen P 1000, wobei die Spitze so geschnitten ist, dass sie einen schlechten Durchmesser von etwa 2,25 Millimetern bilden, und verschließen Sie jedes Ende mit Klebeband. Sobald die Fliege aufgewacht ist und die Pipettenspitze erkundet, entfernen Sie das Klebeband und platzieren Sie die Spitze schnell in der Nut in der vertikalen Halterung. Befestigen Sie die Spitze mit der Rändelschraube, die die Unterseite der Spitzenfliegen verschließt.Erkunden Sie den Tipp in der Regel zwischen 30 und 60 Sekunden lang. Wenn sich die Fliege der Spitze nähert, starte die Kameraaufnahme, kurz bevor die Fliege auf der Plattform auftaucht. Nachdem die Fliege auf der Plattform aufgetaucht ist, warten Sie ein bis zwei Sekunden und schalten Sie dann die blauen LEDs ein.Verwenden Sie einen Timer, um die Zeit bis zum Start des Fluges durch die Fliege manuell zu messen. Dieses kumulative Histogramm zeigt die Zeit des Fluchtsprungs für Experimente und Kontrolle. Fliegenlinien, alle Fliegen exprimieren weiß plus und zahlen auch nicht, um sie visuell darzustellen.Blinder Fomo. Eine Fliege hat die G 1 0 5 GAL vier. Driver MB Fliegen haben das 2 0 1 Y Gal, vier Treiber, die die Expression im Pilzkörper steuern.Wenn der Kanal in zwei exprimiert wird, löst die Beleuchtung eines Neurons mit blauem Licht die Fluchtreaktion aus. Über 50 % der getesteten Fliegen hoben innerhalb einer Sekunde nach der Beleuchtung ab und 75 % innerhalb von fünf Sekunden. Im Gegensatz dazu zeigten Kontrollfliegen, einschließlich derjenigen, die den Kanal Redin zwei im Gammalappen des Pilzkörpers exprimierten, eine geringe Startrate.Bei diesen Bildern handelt es sich um Hochgeschwindigkeits-Videobilder, die von Kanal-Redsin-induzierten Escape-Reaktionen aufgenommen wurden. Frames werden fortlaufend nummeriert, wobei der Abstand zwischen den Frames fünf Millisekunden liegt. Diese Bilder zeigen, dass diese Reaktionen dem lu evozierten Fluchtverhalten ähnlich waren.90% der gefilmten Fliegen hoben nämlich vor dem Start ihre Flügel. Darüber hinaus war die folgende Flugbahn weniger stabil als der freiwillige Start, da sich der Körper der Fliege in einer vertikaleren Ausrichtung befand, aber stabiler war als zuvor berichtet. Wenn Sie dieses Verfahren versuchen, ist es wichtig, daran zu denken, die Fliegen sanft zu behandeln, damit sie nicht durch die jüngste Manipulation übermäßig aufgeregt werden.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie Sie die Optogenetik nutzen können, um bestimmte Neuronen bei frei laufenden Fliegen zu aktivieren.

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Neurowissenschaften

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