14. Mai 2013
Wir beschreiben Protokolle für unseren Maus Transplantat arteriosclerois (GA)-Modelle, die unter Zwischenschaltung einer Maus Gefäßsegmentes beinhalten in einen Empfänger des gleichen Inzuchtstammes. Durch Rückkreuzen zusätzliche genetische Veränderungen in den Behälter Spender kann das Modell beurteilen die Wirkung bestimmter Gene auf GA.
Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments ist es, ein Spendergefäß in die Bauchschlagader eines Empfängers zu transplantieren. Der erste Schritt besteht darin, die thorakale Aorta von der Spendermaus zu präparieren. Als nächstes werden Anastomosenstellen in der Bauchschlagader der Empfängermaus angelegt.
Anschließend wird das Spendergefäß in die Bauchschlagader des Empfängers implantiert. Letztendlich kann eine erfolgreiche Transplantation durch die intakte Motorik der Hintergliedmaßen der Empfängermaus erreicht werden. Dieses Modell wird uns also helfen, die Pathogenese der arteriellen Sklerose von Transplantattransplantaten zu verstehen.
Und es ist eine technische Herausforderung, die viel Übung und den Patienten erfordert, um perfekt zu sein. Das Verfahren wird von Dr. Chen und der Assistentin von Louanne vorgeführt. Bestätigen Sie zunächst die richtige Anästhesietiefe in der Spendermaus.
Nach der Betäubung legen Sie die Maus in Rückenlage auf ein Tablett unter einem Operationsmikroskop. Reinigen Sie den Brustkorb mit wiederholtem Schrubben von Jod und Alkohol, nachdem Sie das Herz freigelegt und mit Kochsalzlösung durchgespült haben, entfernen Sie das Herz und die Lunge, um die gesamte Länge der thorakalen Aorta freizulegen. Beginnen Sie nach der Visualisierung damit, die thorakale Aorta vorsichtig vom umgebenden Gewebe weg zu präparieren.
Wenn die Lendenläste erreicht sind, ligieren Sie sie in der Nähe der Aorta mit Seidennaht, bevor Sie sie wegschneiden. Wenn es vom umgebenden Gewebe befreit ist, wird die gesamte thorakale Aorta herausgeschnitten. Nach der Isolierung spülen Sie die Spenderaorta mit heparinisierter Kochsalzlösung und lagern Sie sie bis zur Transplantation in dieser Lösung auf Eis.
Nachdem Sie eineausreichende Anästhesie bei der Empfängermaus sichergestellt haben, rasieren Sie das Fell aus der vorderen Bauchregion. Decken Sie die Augen mit einer Augensalbe ab und reinigen Sie den Bereich wie zuvor. Wenn Sie fertig sind, legen Sie die Maus in Rückenlage auf ein Tablett unter einem Operationsmikroskop.
Schnitten Sie die Bauchdecke an der Mittellinie vom Xiphoid bis zum Schambein ein und verwenden Sie dann einen Retraktor, um die Wand auseinander zu spreizen und die Bauchhöhle freizulegen. Sobald Sie freiliegen, wickeln Sie den Darm in mit Kochsalzlösung angefeuchtete Gaze und schieben Sie ihn nach oben und weg von der Bauchhöhle. Verwenden Sie mehr salzhaltige, angefeuchtete Gaze, um die verbleibenden Bauchbereiche zu umhüllen, und ziehen Sie damit den Enddarm auf die rechte Seite des Bauches zurück. Bewegen Sie als nächstes die Fortpflanzungsorgane nach unten.
Denken Sie daran, das freiliegende Gewebe durch Auftragen von Kochsalzlösung feucht zu halten. Identifizieren Sie regelmäßig die infrarenale Aorta, die proximal des Nierengefäßes und distal des Aortenbifurkationsstumpfes liegt. Präparieren Sie sie vorsichtig, um sie von der unteren Vena cva zu trennen.
Identifizieren, ligatisieren und schneiden Sie alle kleinen Äste frei, die aus diesem Segment der Aorta stammen. Sobald das Aortensegment isoliert ist, platzieren Sie an jedem Ende eine Gefäßklemme im Abstand von etwa fünf Millimetern. Erstellen Sie als Nächstes die Anastomosenstellen, indem Sie die Bauchaorta zwischen den Klemmen durchschneiden.
Mit einer scharfen Mikroschere wird ein kleines Segment der Aorta von einem abgeschnittenen Ende entfernt, um das Spender-Aortentransplantat aufzunehmen. Spülen Sie die Aortensegmente zwischen den Klemmen mit heparinisierter Kochsalzlösung, um das Restblut zu entfernen. Denken Sie daran, beide Aortenproben während des gesamten Eingriffs regelmäßig mit heparinisierter Kochsalzlösung zu spülen.
Als nächstes durchschneiden Sie beide Seiten der Spenderaorta, um ein Segmenttransplantat von 2,5 Millimetern Länge für die Transplantation zu erstellen. Platzieren Sie das Spender-Aortentransplantat in Position und richten Sie die proximalen und distalen Enden für kontinuierliche Nähte aus. Platzieren Sie die Haltenähte zuerst an der Drei- und Neun-Uhr-Position beider Enden.
Verbinden Sie anschließend die Schnittkanten mit drei bis vier Laufnähten und binden Sie die Laufnähte bei unterbrochenen Nähten mit einem Doppelknoten an die Bleinähte. Konstruieren Sie vier Anastomosenstellen an der Drei- und Neun-Uhr-Position beider Seiten des Transplantats. Erste. Verbinden Sie dann die Schnittkanten mit drei bis vier Stichen, die zwischen jeder dieser Stellen platziert werden.
Sobald die Nähte an Ort und Stelle sind, lösen Sie die distale Klemme, um einen retrograden Fluss in das Transplantat zu ermöglichen. Identifizieren Sie alle Blutungsstellen und ziehen Sie innerhalb von drei Minuten zusätzliche Nähte. Wenn eine zufriedenstellende Blutstillung erreicht ist, lösen Sie den proximalen Klemmverstärker.
Die Durchgängigkeit des Transplantats kann durch das Vorhandensein einer starken Pulsation bestätigt werden. Wenn die Pulsation nachlässt, injizieren Sie Heparin in das Gefäß, um eine Thrombose zu verhindern. Wenn Sie fertig sind, führen Sie den Darm wieder in die Bauchhöhle ein und nähen Sie die Muskel- und Hautschichten zu.
Legen Sie die Empfängermaus in einen warmen, sauberen Käfig und überwachen Sie sie ein bis zwei Stunden lang, bis das Bewusstsein zurückkehrt. Beurteilen Sie die motorische Funktion der Maus nach der Genesung und auch am zweiten Tag ist eine Transplantation erfolgreich, wenn keine Funktionsstörung der Hintergliedmaßen beobachtet wird. Die histologische Analyse der Arterientransplantate, die vier Wochen nach der Operation entnommen wurden, ergab eine erhöhte Dicke der Gefäßwand bei weiblichen Empfängern eines männlichen Spenders.
In der Gruppe von Mann zu Mann wurde jedoch keine Arteriosklerose des Transplantats beobachtet. In diesem Beispiel wurde die Thoraxarterie eines männlichen Spenders in eine Interferon-Gamma-Knockout-Maus transplantiert. Die Interferon-Gamma-Expression wurde dann in der Empfängermaus induziert. Bevor Proben entnommen wurden.
Einige Wochen später zeigte die histologische Analyse von Arterientransplantaten, dass in der behandelten Gruppe keine Arteriosklerose des Transplantats beobachtet wurde. Jetzt wissen Sie, wie Sie diese Operation durchführen müssen. Versuchen Sie es weiter.
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In diesem Artikel werden Protokolle für ein Maus-Modell der Transplantatarteriosklerose beschrieben, wobei der Schwerpunkt auf der Transplantation eines Spendergefäßes in eine Empfängermouse liegt. Das Modell dient dazu, den Einfluss spezifischer genetischer Veränderungen auf die arterielle Transplantatverkalkung zu bewerten.
Die Transplantatarteriosklerose bleibt eine wesentliche Ursache für langfristige Transplantatversagen, verursacht durch die Proliferation glatter Muskelzellen in der Intima des Transplantats. Bestehende präklinische Modelle versagen häufig aufgrund eines schnellen, immunvermittelten Transplantatverlusts, was mechanistische Untersuchungen einschränkt. Die beschriebenen Mausmodelle umgehen dieses Problem, indem sie ein anhaltendes Überleben von Spenderzellen und eine IFN-γ-abhängige Pathologie ermöglichen und somit die Validierung von Zielstrukturen sowie die mechanistische Risikominderung in der Gefäßtransplantatforschung unterstützen.
Das Modell fügt sich in den Entdeckungsprozess von der Target-Validierung bis zur präklinischen Bewertung ein und ermöglicht mechanistische Untersuchungen des Versagens vaskulärer Transplantate vor der Optimierung der Leitsubstanz.