Name: Differenzierung von Newborn Mäusehaut Derived Stem Cells in Germ-like Cells In-vitro- (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: Erfahren Sie die Differenzierung von Stammzellen aus neugeborener Mäusehaut in oozytenähnliche Zellen in vitro. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung der Keimzellbildung und reproduktiven Biologie.

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PWD wird von einem kanadischen Institutes of Health Research Fellowship (CIHR) und einen Zuschuss für CIHR Gerald M. Kidder bei Western University unterstützt. Der Autor möchte auch Julang Li an der University of Guelph bestätigen für die Hilfe bei der Entwicklung des hier vorgestellten Protokoll.

1. Nährmedienzubereitung <ol><li> Bereiten Medien 2-3 Stunden im Voraus über die Verwendung und Ort mit einem gelockerten Kappe in der Zellkulturbrutschrank wo das Experiment stattfindet. Medien in der vorliegenden Protokoll verwendet: <ol><li> Bereiten Stammzellen, das aus DMEM/F12 mit 1 x B27, 40 ng / ml bFGF und 20 ng / ml EGF ergänzt. </li><li> Bereiten Keim Zelldifferenzierungsmedium bestehend aus M199 mit 0,05 IU FSH, LH 0,03 IU, 3 mg / ml BSA, 5 ul / ml ITS, 0,23 mM Natriumpyruvat, 1 mg / ml Fetuin und 1 ng / ml EGF ergänzt. Eine Basis, das aus allen Zusatzstoffen, jedoch unter Weglassen FSH, LH und EGF kann hergestellt und gelagert bei 4 ° C für bis zu einer Woche. </li></ol></li></ol> 2. Stem Cell Culture Vorbereitung <ol><li> Isolieren Stammzellen aus neugeborenen Maus Welpen wie zuvor beschrieben 12. Nutzen Stammzellen bei Passage 2-4 für die in vitro Differenzierung Keimzelle. Der WirkungsgradOLC Bildung direkt mit der Qualität der Ausgangsstoffe Stammzellen verbunden. Am besten ist es, die Differenzierung, sobald die Bevölkerung sauber und gesund erscheint, das ist in der Regel bei rund Durchgang 2 zu starten. Weitere Kultivierung der Stammzellen letzten Durchgang 2 wirkt sich negativ auf die Effizienz OLC Bildung (unveröffentlichte Ergebnisse). </li><li> 48 Stunden vor Beginn der Differenzierung Subkultur die Stammzellen. Entfernen Sie alle suspendiert kugelförmige Zellaggregate und verbrachte Medien aus der Kulturschale mit einer serologischen Pipette und in eine 15 ml Tube. Es ist wichtig zu erfassen nur die suspendierten sphärische Aggregate von Zellen und die Zellen nicht an der Unterseite der Schale, die spontan differenzierenden. </li><li> Pellet die Zellen bei 500 xg für 5 min., Den Überstand verwerfen und Resuspension in 500 ml frisches Stammzell-Medien erwärmt auf 37 ° C. Gently Pipette die Aggregate teilweise distanzieren die Zellen. Nicht aggressiv Pipette in die Zelles, da dies die Lebensfähigkeit der Zellen zu reduzieren. Waschen Sie die teilweise dissoziierten Zellen in 9,5 ml frischem vorgewärmten Stammzell-Medium auf einem niedrigen Aufsatz 10 cm Zellkulturschale. </li><li> Liefert die Zellen auf eine 37 ° C, 5% CO 2 Inkubator für Zellkulturen 48 Stunden vor Beginn der Differenzierung. </li></ol> 3. OLC Differenzierung <ol><li> Mit einer serologischen Pipette entfernen Sie die Stammzellen aus der Kulturschale und in einen 15-ml-Tube, hinter alle angeschlossenen Zellen zu verlassen. Pellet die Zellen bei 500 xg und Resuspendieren in 500 ul sterilem PBS. Kräftige Pipette die Zellen mit einer breiten Bohrung 1.000 ul Spitze in Klumpen nicht größer als 10-20 Zellen. Entfernen Sie regelmäßig eine kleine Menge von Zellen, während Dissoziation, und überprüfen unter einem weißen Lichtmikroskop zu bestätigen aggregierten Zellen sind in Klumpen von 10-20 einzelnen Zellen. Über Dissoziation führt zu verminderter Lebensfähigkeit der Zellen führen. </li><li> In 9,5 ml PBS zu den dissoziierten Zellen und fügen Sie 15 ul dieser Zellsuspension auf eine Zählkammer zur Zellzählung. Pellet die Zellen bei 500 xg für 5 min. </li><li> Resuspendieren der Zellen in einer Konzentration von 1.32X10 6 Zellen / ml in Differenzierungsmedium. </li><li> Platte die Zellen durch Zugabe von 500 ul pro Well in eine 24-Well-Flachboden Suspension Gericht. </li><li> Legen Sie die 24 Well-Platte in einer Zellkultur-Inkubator bei 37 ° C in 5% CO 2 für 48 Stunden. Entfernen 250 ul Medium aus jedem Well entnommen und in einen entsprechend gekennzeichneten 1,5 ml Tube. In 250 ul frisch Differenzierung Medium in jede Vertiefung. Zentrifuge das verbrauchte Medium bei 500 xg für 5 min. und den Überstand verwerfen. Resuspendieren keine pelletierten Zellen in 50 ul frisch Differenzierung Medium und auf die entsprechende Kultur auch auf die Differenzierung Platte. </li><li> Jede 48 Stunden verändern Hälfte des Mediums bis zum Tag 12 der Differenzierung. </li></ol>

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</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Um funktionelle OLCs bisher nicht entwickelt worden, mit einer komplett in-vitro-Assay. Vor kurzem wurde eine Studie von Hayashi et al. Konnte Nachkommen von PGC-ähnlichen Zellen in vitro gebildet und übertragen in vivo für die weitere Entwicklung 14 produzieren. Beginnend mit ES-Zellen oder induzierten pluripotenten Zellen konnten sie PGC wie Zellen, die, wenn nach in vivo Transplantation erholt bilden konnten gereift, befruchtet werden, und verwendet werden, um N...

Während der frühen Embryogenese kommt Gametogenese durch eine Reihe von Stufen einschließlich Urkeimzelle (PGC) Bildung, Migration und schließlich Kolonisierung der Gonaden Grate. Während dieser Zeit PGCs unterziehen Proliferation und Differenzierung in immer mehr reifen Gameten 1. Die Tatsache, dass PGCs von der Basis der Allantois in den Embryo Enddarm und schließlich entlang der dorsalen Wand schließlich Kolonisierung der Gonaden Grate migrieren macht sie außerordentlich schwierig, 2 studieren. Trotz der Fortschritte in diesem Bereich, haben Studien versuchen, PGC Bildung und Differenzierung zu verstehen durch ihre begrenzte Anzahl, Lage und wandernde 3,4 behindert worden. In den letzten Jahren embryonalen Stammzellen haben gezeigt, dass das Potential, Keimzellen in vitro 5,6 bilden. In ähnlicher Weise wurden verschiedene somatische Stammzellen auch gezeigt, dass das Potential zur Bildung von Keimzellen foll habenwegen in vitro Kultivierung 7-11. Kürzlich Stammzellen aus der Haut von Mäusen isoliert Neugeborenen wurden in vitro in Keim-ähnlichen Zellen und frühen Oozyten 12 differenziert. Während der Differenzierung die Teilmenge der Stammzellen exprimiert Oct4 erhöht und ähnlichen Strukturen Cumulus-Oozyten-Komplexe gebildet wurden. Die Oozyten-ähnliche Zellen (OLC) aus den Kulturen aufgenommen und im Vergleich zu natürlichen Oozyten. Mit dieser Kultur Verfahren OLCs Messung 40-45 um erhalten, dass express ähnliche Markierungen, um Eizellen wie Gdf9b, VASA und DAZL. Bis heute bleiben die resultierenden OLCs nicht fällig oder befruchtete 12. Obwohl die OLCs bleiben nicht in der Lage zu funktionieren, das Protokoll verwendet, um diese OLCs bilden können noch Nutzen als Test, um die Entstehung und Entwicklung des früheren Stadium Keimzellen innerhalb studieren ein in vitro System geschlossen. Die ursprüngliche Veröffentlichung diskutieren die Bildung von so OLCsmatic Stammzellen genutzt fetalen Schweinehaut als Stammzell-Quelle 8. Aufbauend auf dieser Studie die PGC-ähnlichen Zellen früh während induzierte Differenzierung gebildet wurde gezeigt, dass die Vorstufen der OLCs und Eil wie PGC Marker als OCT4, VASA, STELLA, C-KIT und DAZL 13. Diese Daten unterstützen das Potenzial der Verwendung dieses Systems zu Keimzellbildung und Differenzierung in vitro zu untersuchen. Das Protokoll verwendet werden, um OLCs aus neugeborenen Maus Haut bilden wird in diesem Video-Artikel gezeigt werden. Dieses Protokoll bietet ein in vitro Modell zur Keimzelle Entwicklung, die ein Mittel zur Aufklärung wichtige Faktoren für die Proliferation und Differenzierung bieten kann studieren.

<table><tbody><tr><td>DMEM/F12</td><td>Invitrogen</td><td>12500</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Invitrogen</td><td>17504044</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>Invitrogen</td><td>PHG0311</td><td></td></tr><tr><td>bFGF</td><td>Invitrogen</td><td>PHG0266</td><td></td></tr><tr><td>ITS</td><td>Invitrogen</td><td>41400-045</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A-6003</td><td></td></tr><tr><td>Natriumpyruvat</td><td>Invitrogen</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>Fetuin</td><td>Sigma</td><td>F3385</td><td></td></tr><tr><td>FSH</td><td>Sioux Biochemicals</td><td>915</td><td></td></tr><tr><td>LH</td><td>Sioux Biochemicals</td><td>925</td><td></td></tr><tr><td>M199</td><td>Invitrogen</td><td>31100-035</td><td></td></tr><tr><td>24 Well Platten</td><td>Nunc</td><td>144530</td><td></td></tr><tr><td>10 cm Schalen</td><td>VWR</td><td>25384-088</td><td></td></tr><tr><td>15 ml Röhren</td><td>BD</td><td>352095</td><td></td></tr></tbody></table>

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Differentiation of Newborn Mouse Skin Derived Stem Cells into Germ-like Cells In vitro

Studieren Keimzellbildung und Differenzierung ist traditionell sehr schwierig aufgrund der geringen Zellzahlen und ihre Lage tief in sich entwickelnden Embryonen. Die Verfügbarkeit eines &quot;geschlossenen&quot; in vitro System könnte von unschätzbarem Wert für unser Verständnis der Gametogenese. Die Bildung der Eizelle-ähnlichen Zellen (OLC) von somatischen Stammzellen, aus neugeborenen Maus Haut isoliert, hat sich gezeigt und visualisiert werden in diesem Video-Protokoll. Die resultierenden OLCs auszudrücken verschiedenen Markern im Einklang mit Eizellen wie Oct4, Vasa, BMP15 und SCP3. Allerdings bleiben sie nicht in der Lage, um die Reifung oder Befruchtung aufgrund eines Fehlers zu vervollständigen Meiose durchlaufen. Dieses Protokoll wird ein System, das nützlich für die Untersuchung der frühen Bildung und Differenzierung von Keimzellen in reifer Keimzellen ist. Während der frühen Differenzierung die Anzahl der Zellen, die Oct4 (potentiellen Keim-ähnlichen Zellen) erreicht ~ 5%, jedoch derzeit die formation von OLCs bleibt relativ ineffizient. Das Protokoll ist relativ geradlinig, aber auch besondere Vorsicht geboten, um sicherzustellen, dass die ab-Zell-Population ist gesund und in einer frühen Passage werden.

Zunächst werden die Zellen auf der Kulturschale Boden anlagern und ausbreiten. Bei 42-72 h in Differenzierung kleine suspendiert OCT4 positive Zellen zu bilden und vermehren (Abbildung 1A). Kurz nach der Visualisierung dieser Zellen die Mehrheit wird verschwinden und die anhaftenden Zellen entsteht dichter Kolonie Aggregate auf die Kultur Boden zu bilden. Nach ein paar Tagen wird diese Aggregate aus der Kultur Oberfläche lösen. In einigen dieser Aggregate eine große Zelle zu beobachten (Abb. 1b<...

In den letzten Jahren ist die Bildung von Keimzellen mit in-vitro-Kultur Methoden nachgewiesen wurde mit mehreren verschiedenen Arten von somatischen Stammzellen. Dieser Artikel wird visuell präsentieren die Differenzierung der neugeborenen Maus-Stammzellen zu frühen Oozyten-ähnlichen Zellen.

Differenzierung von Newborn Mäusehaut Derived Stem Cells in Germ-like Cells<em&gt; In-vitro-</em

Studying  germ cell formation and differentiation has traditionally been very difficult  due to low cell numbers and their location deep within developing ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, oocytenähnliche Zellen aus somatischen, aus der Haut stammenden Stammzellen zu erzeugen. Dies wird erreicht, indem saubere und undifferenzierte Stammzellen verwendet werden, die aus der Haut neugeborener Mäuse gewonnen wurden. Im zweiten Schritt werden die Stammzellen dissoziiert, wodurch sie für die Differenzierung vorbereitet werden.Anschließend werden die Stammzellen in ein definiertes Differenzierungsmedium ausplattiert. Um die Bildung von Keimzellen zu induzieren, werden Ergebnisse erzielt, die mittels semiquantitativer Echtzeit-PCR die Expression oozytenspezifischer Marker zeigen. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der Reproduktionsbiologie zu beantworten.Da eine geschlossene Umgebung zur Untersuchung der Keimzellen, der eSight-Bildung und -Entwicklung bereitgestellt wird, sollten alle für das Protokoll benötigten Medien zwei bis drei Stunden vor der Verwendung vorbereitet und mit gelöstem Verschluss in den Zellkulturtrockenschrank gestellt werden, in dem das Experiment durchgeführt wird. Die beiden hier verwendeten Medien sind das Stammzellmedium, bestehend aus D-M-A-M-F 12, ergänzt mit B 27,

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Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Die Fähigkeit von embryonalen Keimzellen in primordialen Keimzellen während der frühen Entwicklungsstadien zu unterscheiden, ist eine perfekte Modell, um unsere Hypothese über Krebs und Unfruchtbarkeit Adresse. Dieses Protokoll zeigt, wie Ur-Keimzellen aus Entwicklungsländern Gonaden in 10,5-11,5 Tage nach coitum Maus-Embryonen zu isolieren.

Isolation und Ableitung von embryonalen Maus-Keimzellen

Dieses Video demonstriert eine Methode zur in vitro Erzeugung von neuralen Vorläuferzellen (NPCs) aus embryonalen Stammzellen (mESCs) der Maus. Die mES-Zellen werden in Suspension kultiviert, um Embryoidkörper (EBs) zu bilden, die dann durch Retinsäurebehandlung in einer adhärenten Kultur zur Differenzierung in NPCs geführt werden.

Eine Technik zur Erzeugung neuraler Vorläuferzellen aus embryonalen Stammzellen der Maus

Wir beschreiben die Dissektion und Ex-vivo-Kultur von embryonalen Maus-Haut. Das Kultursystem unterhält eine Luft-Flüssigkeit-Grenzfläche über die Gewebeoberfläche und ermöglicht die Abbildung auf einem inversen Mikroskop. Melanoblasten eine Komponente der Entwicklungs Haut, fluoreszierend markiert damit ihr Verhalten unter Verwendung der konfokalen Mikroskopie beobachtet werden.

Ex-vivo-Kultur von embryonalen Maus-Haut-und-Live-Darstellung von Migration Melanoblasten

Dieses Protokoll beschreibt detailliert die Methode zur Erzeugung von neuralen Vorläuferzellen aus embryonalen Stammzellen unter Verwendung einer serumfreien Monolayer-Methode. Diese Vorläuferzellen können verwendet werden, um reife neuronale Zelltypen abzuleiten oder den Prozess der neuronalen Spezifikation zu untersuchen, und sind für die Skalierung im Multiwell-Format für das Screening von Verbindungen zugänglich.

Neuronale Differenzierung von embryonalen Stammzellen der Maus in Serum-freiem Monolayer-Kultur

Epidermale Keratinozyten bilden eine funktionelle Hautbarriere und sind an der Frontlinie der Wirtsverteidigung gegen äußere Umweltbeleidigungen positioniert. Hier beschreiben wir Methoden zur Isolierung und Primärkultur von epidermalen Keratinozyten aus neonataler und erwachsener Maushaut und Induktion der terminalen Differenzierung und UVB-ausgelösten Entzündungsreaktionen von Keratinozyten.

Isolierung und Kultur der primären Maus Keratinozyten aus neonatalen und erwachsenen Maus Haut

Dieser Artikel beschreibt ein Protokoll, um effizient leiten und Kultur pluripotenten Stammzelllinien aus Maus-Embryonen im Blastozystenstadium.

Ableitung von Stammzelllinien aus Präimplantations Mausembryonen

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode zur Erzeugung von kortikalen Interneuron Stammväter und Post-mitotische Interneuron Vorstufen aus embryonalen Stammzellen der Maus mit einer veränderten Embryoid Körper-Monolayer-Methode. Diese Vorfahren/Vorstufen können werden verwendet in-vitro- Eindringmittel sortiert und in Neugeborenen Neokortex für das Studium Schicksal Bestimmung verpflanzt oder in therapeutischen Anwendungen eingesetzt.

Differenzierung der embryonalen Stammzellen der Maus in kortikalen Interneuron Vorstufen

Ziel dieses Protokolls ist es, epidermale Keratinozyten aus der dorsalen Haut erwachsener Mäuse für eine Vielzahl nachgelagerter Anwendungen wie Molekularbiologie, Biochemie, Fluoreszenzaktivierte Zellsortierung und primäre In-vitro-Anwendungen (z. B. clonogene Keratinozyten).

Isolierung von Maus epidermalen Keratinozyten und ihrer In-Vitro-Clonogenen Kultur

Hier haben wir eine kostengünstige und einfach zu bedienende Methode etabliert, die eine schnelle und effiziente Differenzierung von embryonalen Stammzellen in Neuronen leitet. Diese Methode eignet sich für die Popularisierung unter Laboratorien und kann ein nützliches Werkzeug für die neurologische Forschung sein.

Neuronale Differenzierung von Maus embryonalen Stammzellen In vitro

Wir beschreiben das Verfahren zur In-vitro-Differenzierung von embryonalen Stammzellen der Maus in neuronale Zellen mit der Hanging-Drop-Methode. Darüber hinaus führen wir eine umfassende phänotypische Analyse durch RT-qPCR, Immunfluoreszenz, RNA-seq und Durchflusszytometrie durch.

Differenzierung und Charakterisierung neuronaler Vorläufer und Neuronen aus embryonalen Stammzellen der Maus

Dieser Bericht beschreibt ein Protokoll zur gleichzeitigen Isolierung von primären braunen und weißen Präadipozyten von neugeborenen Mäusen. Isolierte Zellen können in Kultur gezüchtet und dazu gebracht werden, sich in voll ausgereifte weiße und braune Adipozyten zu differenzieren. Die Methode ermöglicht die genetische, molekulare und funktionelle Charakterisierung primärer Fettzellen in Kultur.

Isolierung und Differenzierung primärer weißer und brauner Präadipozyten von neugeborenen Mäusen

Erfahren Sie die Differenzierung von Stammzellen aus neugeborener Mäusehaut in oozytenähnliche Zellen in vitro. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung der Keimzellbildung und reproduktiven Biologie.

Differenzierung von Newborn Mäusehaut Derived Stem Cells in Germ-like Cells

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