Name: Die Implantation von Fibrin Gel auf Maus Lung Lung spezifischen Angiogenese Studieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 52 s
Description: Erfahren Sie die Implantation von Fibrin-Gel auf der Mäuselunge zur Untersuchung von Angiogenese und alveolärer Regeneration. Diese Methode ermöglicht die Analyse der lungen-spezifischen Mikroumgebung in vivo.

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Diese Arbeit wurde durch Mittel aus der American Heart Association (AM), US Department of Defense (BC074986) und Boston Kinderkrankenhaus Fakultät Career Development Fellowship (TM, PM) unterstützt. Die Autoren danken Amanda Jiang und Elisabeth Jiang für die technische Unterstützung.

HINWEIS: Die in-vivo-Tierstudie wurde in strikter Übereinstimmung mit den Empfehlungen in der Bedienungsanleitung für die Pflege und Verwendung von Labortieren der National Institutes of Health durchgeführt. Das Protokoll wurde überprüft und von der Animal Care und Verwenden Committee von Boston Kinderkrankenhaus (Protokoll-Nummern: 13-10-2526R, 14-02-2568R) zugelassen. Alle Arzneistoffe in diesem Protokoll verwendet werden pharmazeutischer Qualität und diese Medikamente werden unter sterilen Bedingungen hergestellt. 1. Fibrin Gel Vorbereitung <ol><li> Bereiten Fibringel dass VEGF und bFGF enthält. <ol><li> Tau-Stammlösungen von Fibrinogen und Thrombin, die bei -80 ° C bis Raumtemperatur (25 ° C) gelagert werden. </li><li> Hinzufügen Thrombin (Endkonzentration: 2,5 U / ml), CaCl 2 (Endkonzentration: 45 mM), VEGF (Endkonzentration: 0-100 ng / ml) und bFGF (Endkonzentration: 0-100 ng / ml) zu der Fibrinogen -Lösung (Endkonzentration: 12,5 mg / ml in 0,9% sodium Chloridlösung 43-45) in einem 1,5-ml-Röhrchen. </li><li> Vorsichtig mischen. </li><li> Gently Pipette 200 ul der Mischung auf einer sterilen Kunststoffschale in einer tropfenweise Mode mit p200 Pipettenspitze. </li><li> Die Tropfen bei 37 ° C für 30-60 min, bis sie sich verfestigen. ANMERKUNG: Das erstarrte Gel kann in dem verschlossenen Kunststoffschale bei Raumtemperatur (25 ° C) für mehrere Stunden vor der Implantation (1a) gehalten werden kann. </li></ol></li><li> Schneiden Sie die Fibrin-Gel in ca. 3 x 3 x 3 mm Würfel mit kleinen chirurgische Scheren vor der Implantation. </li></ol> 2. Maus Vorbereitung <ol><li> Anesthetize adulten Maus (8-12 Wochen) durch intraperitoneale (IP) Injektion von Ketamin (100 mg / kg) und Xylazin (10 mg / kg) und bestätigen, dass die Maus ausreichend durch Einklemmen Zehe des Maus anästhesiert. <ol><li> Verwenden Tierarzt Salbe auf Augen der Maus bis zur Trockenheit während des Experiments zu verhindern. </li></ol></li><li> Shave fur auf der linken Seite des Brustkorbs der Maus. </li><li> Führen Intubation der Maus. </li><li> Platzieren Sie die Maus auf der Intubation stehen bei 70 ° abgewinkelt und halten Maus anstelle durch Einhaken seine oberen Schneidezähne in einem kleinen Gummiband an der Spitze des Stativs befindet. </li><li> Die Zunge vorsichtig zurückziehen, um eine Seite mit stumpfen Pinzette. </li><li> Visualisieren des Kehlkopfes mit Hilfe eines faseroptischen Gooseneck Mikroskopleuchte. </li><li> Legen endotrachealen elastischen Katheters (21 G) in die Luftröhre. </li><li> Überprüfen Sie, ob die Maus spontan atmenden eine reibungslose Umstellung (regular 100-150 Atemzüge / min, keine paradoxen oder flache Atmung). </li><li> Platzieren Sie die Maus in Bauchlage unter der Dissektionsmikroskop. </li><li> Die Maus mit einem Nagetier Ventilator mechanisch lüften (150 Atemzüge / min und 7 ml / kg Atemvolumen). </li><li> Graf Rippen Zwischenrippenraum zwischen 4 und 5. Rippe zu finden. </li><li> Erstellen Sie einen sterilen Bereich über den Bereich by gründlich Abwischen mit Alkohol und PVP-Jod. Decken Sie das Operationsfeld ausreichend mit einem sterilen Operationstuch. </li></ol> 3. Maus-Chirurgie <ol><li> Nachdem lokale Injektion von 0,25% Bupivacain (200 ul) in der Haut, machen Sie einen Querhautschnitt (ca. 1 cm Länge) über den Zwischenrippenraum mit Präparierscheren. </li><li> Nach Injektion von 0,25% Bupivacain (200 ul) in die Zwischenrippenmuskel, einen Muskel Einschnitt zwischen dem 4. und 5. Rippe mit feinen kleinen Schere. </li><li> Legen Sie eine Sezieren Aufroller zwischen den Rippen, um die linke Lunge vollständig zu visualisieren. <ol><li> Kratzen Sie einen kleinen Bereich (1 x 1 mm im Quadrat) der Pleura von der Mitte der linken Lunge mit feinen Pinzette. </li><li> Drücken Sie vorsichtig auf den Bereich mit einem sterilen Wattestäbchen bis Blutungen und Luftleckagen vollständig gesteuert. </li><li> Legen Sie kleine Menge frischer Mischung aus Fibrinogen / Thrombin (Fibrinkleber) (Schritt 20 1.1.2. &amp; #181; l) über den Bereich mit p200 Pipettenspitze. </li></ol></li><li> Legen Sie vorsichtig eine Fibrin-Gel (Schritt 1.2) mit kleinen Zange über den Bereich (Abbildung 1b). <ol><li> Bestätigen Sie, dass das Gel auch auf den Bereich während der Atembewegungen der Lunge fest. </li></ol></li><li> Stellen Sie sicher, dass es weder massive Luft undicht oder Blutungen aus der Lunge. </li><li> Schließen Einschnitte (Muskel- und Hautschichten) mit einer absorbierbaren Naht, welches nicht entfernt werden. </li><li> Saugen Sie das Brusthöhle mit 27 G Nadel und 1-ml-Spritze zu Pneumothorax zu verhindern. </li><li> Beenden der mechanischen Beatmung. </li></ol> 4. Mauswiederherstellung <ol><li> Achten Sie darauf, die Maus spontan atmenden eine reibungslose Umstellung (regular 100-150 Atemzüge / min, keine paradoxen oder flache Atmung). </li><li> IP Injektion 1 ml vorgewärmtes, 0,9% NaCl, um Austrocknung zu verhindern. </li><li> Lassen Sie mit der Maus auf dem zirkulierenden Warmwasserpolster erholen. </li><li> Entfernen Sie die endotracheal Rohr nach der Bestätigung, dass die Maus über stabile Atmung. </li><li> Injizieren Meloxicam (5 mg / kg, subkutane Injektion (SC), für 3 Tage als postoperative analgetische. </li><li> Überwachen Sie die Bewegungen der Maus vorsichtig auf ein Minimum von 15 Minuten-Intervallen, bis es sternale (in der Lage, auf den Bauch rollen und bleiben aufrecht) und bei Bewusstsein. </li><li> Nach der Wiederherstellung zurück die Maus, um einen neuen Käfig aus Mäusen isoliert ohne Operation. </li><li> Überwachen Sie die Operationsstelle auf Anzeichen einer Infektion (Rötung, Schwellung, Ausfluss), grundlegende biologische Funktionen Tieres (Futter- und Wasseraufnahme, Wasserlassen, Stuhlgang, Gewichtszunahme) sowie klinische Anzeichen von Leiden (Piloerektion, reduziert Bewegungs) täglich im Anschluss an die chirurgischen Eingriffs. </li></ol> 5. Ernten der Lunge <ol><li> 7 bis 30 Tage nach der Implantation, euthanize der Maus unter Verwendung von CO 2 über Druckgasquelle. </li><li> Einen Einschnitt zwischen der Spitze des Schwertfortsatz und der BrustbeinKerbe (mediane Sternotomie) und Ernte ganze Lunge mit dem implantierten Gel zur histologischen und biochemischen Analyse, indem die Luftröhre und seziert alle Verbindungen zum Herz, Lunge und Luftröhre. </li><li> Fix implantierte Gel mit Lungenkrebs mit 4% Paraformaldehydlösung über Nacht bei 4 ° C, in OCT-Verbindung eingebettet werden, und nehmen Sie die Serienstufenabschnitte von 30 um Dicke. </li><li> Führen histologische (Hämatoxylin und Eosin-Färbung) und immunhistochemische Analysen (endotheliale Marker: CD31, epithelialen Marker: Aquaporin (AQP) 5 und Surfactant Protein (SP) -B) mit konfokalen Mikroskop 22,37,40. </li><li> Kompilieren Stapeln optischer Schnitte (30 um dick), um dreidimensionale Bilder der Lungen Endothel- und Epithelzellen mit 3D-Bildanalyse-Software 37 zu bilden. </li><li> Quantifizieren projizierten Flächen der neugebildeten Blutgefäßen mit Bildanalyse-Software 46. </li></ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Dieser Artikel stellt eine neue Methode zur Biomaterialien auf der Lungenoberfläche lebender erwachsener Mäuse zu implantieren. Mit diesem System wird die Host-Lungen-abgeleitete Angiogenese erfolgreich im Material rekapituliert. Dieses System ermöglicht es den Forschern, um Übersprechen zwischen den Endothelzellen zu erforschen, andere Zellen (beispielsweise Epithelzellen, mesenchymale Zellen, Immunzellen) und verschiedene ECM-Komponenten, die für die lokale Angiogenese 50-53 und alveolären Regenera...

Das übergeordnete Ziel dieses Protokolls ist es, ein Verfahren einzuführen, um Fibrin-Gel auf der Lungenoberfläche der erwachsenen Maus, die Forscher die molekularen Mechanismen der Lungenkreislauf und alveoläre Entwicklung charakterisieren können implantieren, und dieses Wissen, um biomimetische Materialien zu entwickeln in der Lage zu nutzen von rekapituliert physiologische Lungengefäß und alveoläre Bildung auf verschiedene Lungenkrankheiten zu behandeln. Mehr als 35 Millionen Amerikaner leiden an chronischen Lungenerkrankungen wie chronisch obstruktive Lungenerkrankung und Lungenfibrose. Diese Patienten haben lang anhaltende chronische respiratorische Symptome wie Kurzatmigkeit, Brustenge, quälende Husten und Müdigkeit, die ihr tägliches Leben 1-3 erheblich beeinträchtigen. Trotz einer großen Aufwand zu wirksamen Therapien für diese Lungenerkrankungen zu entwickeln, derzeit gibt es keine Heilung; deshalb ist die Lebensqualität für diese Patienten schlecht und wirtschaftlichen und menschlichen Kosten sind hallogh 4-7. Derzeit ist eine Lungentransplantation die einzige Möglichkeit, Patienten im Endstadium einer chronischen Lungenerkrankungen zu speichern. Aufgrund der Knappheit von Transplantatspender, hohe Kosten, schweren Komplikationen und geringe Überlebensrate 8-11 Jedoch ist die Transplantation keine optimale Ansatz. Neue schnelle Fortschritte im Tissue Engineering Techniken konnten die Forscher implantierbaren Lungen von Bestandsauffüllung dezellularisierte ganze Lunge mit verschiedenen Arten von Vorläuferzellen oder induzierten pluripotenten Stammzellen (iPS-Zellen) 12,13 bioengineer. Allerdings sind diese biotechnologisch Lunge nur für einige Stunden nach der Implantation 12,14,15 Funktions in Wirtstiere. Verwendung von Biomaterialien, die komplexen Strukturen und Funktionen der Lunge zu regenerieren ist ebenfalls recht erfolgreich. Dies kann, weil die wichtigsten biologischen Prozesse, die erwachsenen Lungenregeneration regeln wurden nicht gut erforscht. In der Lunge ist die Bildung des vaskulären Systems eines der frühesten und bedeutendsten Ereignisse during Entwicklung und Regeneration 16-21. Neu in der Lunge liefern nicht nur Sauerstoff, Nährstoffen und verschiedenen Zellkomponenten für Organbildung erforderlich ist, sondern auch lehrreich Regulationssignale zur umgebenden Zellen 22-25 gebildeten Gefäßsystemen. So spielt die Angiogenese eine Schlüsselrolle bei der regenerativen Alveolarisierung bei erwachsenen Lungen 24,26,27. Zusätzlich trägt deregulierten Angiogenese zu chronischen Lungenerkrankungen, wie chronische obstruktive Lungenerkrankung (COPD) 28, bronchopulmonale Dysplasie (BPD), 21-23, und Lungenfibrose 29. Um somit effizienter Strategien für das Engineering Lungen oder der Behandlung von chronischen Lungenerkrankungen zu entwickeln, ist es notwendig, die grundlegenden Mechanismen der lungenspezifischen Angiogenese zu verstehen. Jedes Organ zeigt außergewöhnliche mechanische und chemische Eigenschaften, die zwischen physiologischen und pathologischen Bedingungen 30-33 unterscheiden. Diese organspezifische microenvirongen regeln Endothelzellen Verhaltensweisen und orchestrieren Gefäßnetzwerkbildung in einer organspezifisch 24,34-36. Um somit effizienter Strategien für Lungenregeneration zu entwickeln, wobei der Mechanismus lungenspezifischen Angiogenese Basiswert muss verstanden werden. Während herkömmliche In-vivo-Angiogenese-Assays, wie subkutane Implantation Hydrogel wurden ausgiebig für Angiogeneseforschung 37-39 verwendet wurde, müssen diese Methoden nicht rekapitulieren organspezifischen Angiogenese. Kürzlich wurde ein neues Verfahren auf Matrigel in einer elastischen Form auf der Mauslunge implantieren ist entwickelt worden und dargestellt, die Blutgefäße und Lungenepithelzellen erfolgreich rekrutieren in die Gele 22. Dieser einzigartige Ansatz wird es den Forschern ermöglichen, den Mechanismus der lungenspezifischen Angiogenese sowie Wechselwirkungen zwischen Blutgefäßen und nicht-vaskulären Lungenzellen in physiologischen und pathologischen Bedingungen zu erforschen. Seit 1) Matrigel ist nicht geeignet für die klinische Anwendung; 2) die Elastic Form, um das Gel kann Wechselwirkungen zwischen Hydrogelen und Wirtslungengewebe und 3) die elastische Form an der Lunge möglicherweise verursacht eine Beeinträchtigung der Lungenfunktion und Schmerzen während der Atmung beeinflussen geworfen, als mehr klinisch relevanten Ansatz verwendet, ein 3D-Fibrin-Matrix, die angiogenen Faktoren (vaskulärer endothelialer Wachstumsfaktor (VEGF) / basischen Fibroblasten-Wachstumsfaktor (bFGF)) wurde auf der Mauslunge ohne Casting in der elastischen Form implantiert worden und hat Gast Lunge abgeleitete Angiogenese erfolgreich rekapituliert. Fibrin-Gel, Polymerfibrillen aus Thrombin gespaltenen Fibrinogen erzeugt wird, wird zum Einfangen einer Vielzahl von angiogenen Faktoren wie bFGF und VEGF die Angiogenese in vivo 40,41 beschleunigen bekannt. Wegen ihrer Regenerationsfähigkeit und biologisch abbaubare Natur 42 wird Fibringel verbreitet auf dem Gebiet des Tissue Engineering eingesetzt. Dieser Artikel stellt einen neuen und einzigartigen Ansatz zur Fibringel auf der Lungenoberfläche lebender adul implantierent-Maus und zeigt, dass die Host-Lungen-abgeleitete Angiogenese in den Gelen in vivo rekapituliert. Diese Methode, die Forscher ermöglicht, lungenspezifischen Angiogenese zu untersuchen, wird wahrscheinlich zur Entwicklung neuer Therapieansätze für verschiedene Arten von Lungenerkrankungen führen und die Bemühungen um adulten Lunge erfolgreich regenerieren erheblich voranbringen.

<table><tbody><tr><td>Fibrinogen aus menschlicher Plazenta</td><td>Sigma</td><td>F4883</td><td>Zur Herstellung von Fibringel</td></tr><tr><td>Thrombin aus Rinderplasma</td><td>Sigma</td><td>T9549</td><td>Zur Herstellung von Fibringel</td></tr><tr><td>Rekombinante Maus VEGF 164</td><td>R& D</td><td>493-MV</td><td>Zur Ergänzung von Fibringel</td></tr><tr><td>Rekombinante Maus bFGF</td><td>R& D</td><td>3139-FB</td><td>Zur Ergänzung von Fibringergel Nagetier-Intubationsständer</td></tr><tr><td></td><td>Braintree Scientific INC</td><td>RIS 100</td><td>Zur Intubation</td></tr><tr><td>Faseroptische Lichtquelle</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-565-35</td><td>Zur Intubation</td></tr><tr><td>21 G Elastischer Katheter</td><td>B.Braun</td><td>4251652-02</td><td>Zur Intubation</td></tr><tr><td>MiniVent Ventilator</td><td>Harvard Apparat</td><td>CGS-8009</td><td>Für Beatmung</td></tr><tr><td>Stemi DV4 Steromikroskop</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-070-515</td><td>Für chirurgische</td></tr><tr><td>Absobable Naht</td><td>Ethicon</td><td>PDP304</td><td>Chirurgisches Nahtmaterial</td></tr><tr><td>Antikörper gegen CD31</td><td>BD Biosciences</td><td>553370</td><td>Immunhistochemie</td></tr><tr><td>Antikörper gegen AQP5</td><td>Abcam</td><td>AB78486</td><td>Immunhistochemie</td></tr><tr><td>Antikörper gegen SP-B</td><td>Abcam</td><td>AB40876</td><td>Immunhistochemie</td></tr></tbody></table>

die implantation von fibrin gel auf maus lung lung spezifischen angiogenese studieren

Implantation of Fibrin Gel on Mouse Lung to Study Lung-specific Angiogenesis

Neue bedeutende Fortschritte in der Stammzellforschung und der Biotechnologie Techniken haben große Fortschritte bei der Nutzung von Biomaterialien zur Regeneration und Reparatur von Schäden in einfachen Gewebe in den orthopädischen und Zahn Feldern. Versuche, die Strukturen und Funktionen von komplexeren dreidimensionalen (3D) Organen wie Lunge regenerieren waren nicht sehr erfolgreich, da die biologischen Prozesse der Organregeneration wurden nicht gut erforscht. Es wird deutlich, dass die Angiogenese, die Bildung neuer Blutgefäße, spielt eine Schlüsselrolle bei Organregeneration. Die neu gebildeten Gefäßsystemen liefern nicht nur Sauerstoff, Nährstoffen und verschiedenen Zellbestandteile, die für die Organregeneration erforderlich sind, aber auch lehr Signale an die Regeneration von lokalen Geweben. Deshalb, um erfolgreich zu regenerieren Lungen bei einem Erwachsenen, ist es notwendig, die lungenspezifische Mikroumgebungen, bei denen Angiogenese Antriebe Regeneration lokalen Lungengewebe zu rekapitulieren. Obwohl Conventional in vivo Angiogenese-Assays, wie subkutane Implantation von extrazellulärer Matrix (ECM) -reiche Hydrogele (zB Fibrin oder Kollagengelen oder Matrigel - ECM Proteingemisch durch Engelbreth-Holm-Swarm-Maus-Sarkom-Zellen sezerniert), werden in großem Umfang genutzt, um das zu erforschen allgemeine Mechanismen der Angiogenese, lungenspezifischen Angiogenese ist nicht gut charakterisiert, weil Verfahren zur orthotope Implantation von Biomaterialien in der Lunge wurden nicht gut etabliert. Das Ziel des Protokolls ist es, eine einzigartige Methode einzuführen, um Fibrin-Gel auf der Lungenoberfläche von lebenden erwachsenen Maus implantiert werden, der eine erfolgreiche Wiederholung der Host Lunge abgeleitete Angiogenese innerhalb des Gels. Dieser Ansatz ermöglicht es Forschern, die Mechanismen, mit denen die lungenspezifischen Mikroumgebung steuert Angiogenese und alveoläre Regeneration in normalen und pathologischen Bedingungen zu erforschen. Seit implantierte Biomaterialien Release und liefern physikalischen und chemischen Signale zu benachbarten lung Gewebe kann Implantation dieser Biomaterialien auf kranken Lunge möglicherweise normalisieren die angrenzenden krankem Gewebe, so dass die Forscher neue Therapieansätze für verschiedene Arten von Lungenerkrankungen zu entwickeln.

Um zu untersuchen, ob Host Lungen abgeleiteten Gefäßbildung im Inneren der Biomaterialien auf die Lunge implantiert rekapituliert Fibringele mit großen angiogenetischen Faktoren VEGF und bFGF supplementiert (0, 10 und 100 ng / ml) wurden auf die Oberfläche von lebenden Maus-Lungen implantiert berichtet mit Matrigel 22. Fibringele 47, die diese angiogene Wachstumsfaktoren enthalten, wurden hergestellt, wie in 1a gezeigt. Nach Thorakotomie wurde ein kleiner Bereich der linken Lungeno...

Die Rekapitulation der organspezifischen Mikroumgebung, die die lokale Angiogenese stimuliert, ist für eine erfolgreiche Regeneration von geschädigtem Gewebe unerlässlich. Dieser Bericht demonstriert eine neuartige Methode zur Implantation von Fibringelen auf die Lungenoberfläche lebender Mäuse, um zu untersuchen, wie die lungenspezifische Mikroumgebung die Angiogenese und Alveolärregeneration bei erwachsenen Mäusen moduliert.

Die Implantation von Fibrin Gel auf Maus Lung Lung spezifischen Angiogenese Studieren

Recent significant advances in stem cell research and bioengineering techniques have made great progress in utilizing biomaterials to regenerate and ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Verfahrens ist es, die Fibringel-Gel-Implantation zu verwenden, um die vaskuläre und alveoläre Regeneration in der Lunge der Maus zu untersuchen. Dies wird erreicht, indem zuerst Tropfen Fibringel hergestellt werden, die mit angiogenen Faktoren ergänzt werden. Im zweiten Schritt wird das Versuchstier mechanisch beatmet und der Brustkorb geöffnet.Als nächstes wird ein Fibringel vorsichtig mit Fibrinkleber auf die Lunge der Maus aufgebracht. Und dann, im letzten Schritt, werden die Lunge und das implantierte Gel sieben bis 30 Tage später für die histologische Analyse entnommen. Letztendlich kann die Blutgefäß- und Alveolarbildung innerhalb des Gelimplantats durch immunhistochemische Analyse beurteilt werden.Diese Methode kann dazu beitragen, Schlüsselfragen im Bereich der Gefäßbiologie zu beantworten, z. B. wie die Organe die Mikroumgebung gefährden, die Angiogenese und die Organmorphogenese kontrollieren Um Fibringele herzustellen, die sowohl VEGF als auch BFGF enthalten, beginnen Sie mit der Erwärmung von minus 80 Grad Celsius, den Vorräten an Fibrinogen und Thrombin auf Raumtemperatur. Wenn die Brühen vollständig aufgetaut sind, geben Sie Thrombincalciumchlorid VEGF und BFGF in einem 1,5-Milliliter-Röhrchen in die Fibrinogenlösung. Und dann die Lösung durch Pipettieren mischen.Pipettieren Sie anschließend vorsichtig 200 Mikroliter der Mischung tropfenweise auf eine sterile Kunststoffschale. Inkubieren Sie die Tropfen bei 37 Grad Celsius für 30 bis 60 Minuten, bis sie sich verfestigen. Schneiden Sie dann mit einer kleinen chirurgischen Schere die Gele in etwa drei mal drei mal drei Millimeter große Würfel.Nachdem Sie die vollständige Sedierung bei einer acht bis 12 Wochen alten Maus durch Zehenkneifen bestätigt haben, bedecken Sie die Augen des Tieres mit Tierarztsalbe, um Trockenheit zu verhindern, und rasieren Sie dann das Fell über der linken Seite des Brustkorbs. Für die endotracheale Intubation setzen Sie die Maus auf einen um 70 Grad abgewinkelten Intubationsständer und haken Sie die oberen Schneidezähne über ein kleines Gummiband oben am Ständer ein, um das Tier an Ort und Stelle zu halten. Ziehen Sie die Zunge mit einer stumpfen Pinzette vorsichtig zur Seite zurück und visualisieren Sie dann den Kehlkopf mit Hilfe eines faseroptischen Schwanenhalsmikroskops.Führen Sie anschließend einen endotrachealen elastischen 21-Gauge-Katheter in die Luftröhre ein. Vergewissern Sie sich, dass die Maus spontan reibungslos atmet, und legen Sie das Tier dann in Bauchlage unter das Präpariermikroskop. Verwenden Sie ein Nagetierbeatmungsgerät, um das Tier mechanisch mit 150 Atemzügen pro Minute und sieben Millilitern pro Kilogramm Atemzugvolumen zu beatmen.Und dann zählen Sie die Rippen, um den Interkostalraum zwischen der vierten und fünften Rippe zu lokalisieren. Wischen Sie dann den Bereich gründlich mit Alkohol und Povidon-Jod ab, um ein steriles Feld zu schaffen, und bedecken Sie den Operationsbereich mit einem sterilen Tuch, um das Gel auf die Lunge aufzutragen. Als nächstes machen Sie einen einen Zentimeter langen quer verlaufenden Hautschnitt über dem Interkostalraum.Und dann machen Sie einen Muskelschnitt zwischen der vierten und fünften Rippe. Führen Sie einen Präparierretraktor zwischen die Rippen ein, um die linke Lunge vollständig sichtbar zu machen, und kratzen Sie dann mit einer feinen Pinzette mit einem sterilen Wattestäbchen ein Quadrat des viszeralen Pleura von der Mitte der linken Lunge ab. Üben Sie anschließend sanften Druck auf den Bereich aus, bis die Blutungen und Luftlecks vollständig unter Kontrolle sind, und geben Sie dann eine kleine Menge unverfestigten Fibrinogen-Thrombin-Kleber auf den Bereich.Geben Sie anschließend vorsichtig ein Fibringel auf den Kleber und beobachten Sie die Atembewegungen der Lunge, um festzustellen, ob das Gel gut fixiert ist. Dann verschließen Sie die Schnitte mit einer resorbierbaren Naht. Aspirieren Sie die Brusthöhle mit einer Ein-Milliliter-Spritze, die mit einer 27-Gauge-Nadel ausgestattet ist, um einen Pneumothorax zu verhindern, und beenden Sie dann die mechanische Beatmung.Nachdem Sie bestätigt haben, dass die Maus reibungslos atmet, injizieren Sie einen Milliliter intraperitoneales Natriumchlorid aus der Vorkriegszeit, um eine Dehydrierung zu verhindern, und lassen Sie die Maus sich auf einem zirkulierenden warmen Wasserkissen erholen. Sobald das Tier eine stabile Atmung zeigt, entfernen Sie den Endotrachealtubus und injizieren Sie ein postoperatives Analgetikum. Wenn sich das Tier vollständig erholt hat, bringen Sie es ohne Operation in einen neuen Käfig zurück, der von Mäusen isoliert wurde, und überwachen Sie das Tier täglich auf Anzeichen einer Infektion oder Komplikationen.Sieben bis 30 Tage nach der Implantation euthanasieren Sie die Maus gemäß Protokoll und machen Sie einen Schnitt zwischen der Spitze des Xiphoid-Prozesses und der sternalen Kerbe. Und dann schneiden Sie die Luftröhre, indem Sie alle Verbindungen von der Lunge zum Herzen und zur Luftröhre präparieren, entnehmen Sie die gesamte Lunge und das implantierte Gel, und fixieren Sie dann das Gel und das Lungengewebe in einer 4%igen Paraform-Aldehydlösung über Nacht bei vier Grad Celsius am nächsten Tag, betten Sie das Lungengewebe in eine OCT-Verbindung ein und sammeln Sie dann serielle Stufenabschnitte der Lunge und des Gels mit einer Dicke von 30 Mikrometern. Färben Sie die Schnitte mit Hämatin und Eoin und Antikörpern gegen die entsprechenden Marker von Interesse.Nachdem Sie Zack-Bilder der Schnitte aufgenommen haben, stellen Sie Stapel der optischen Schnitte zusammen, um dreidimensionale Bilder der Lungenendothel- und Epithelzellen zu erstellen. Verwendung von 3D-Bildanalysesoftware. Quantifizieren Sie abschließend die projizierten Bereiche der neu gebildeten Blutgefäße mit der entsprechenden Bildanalysesoftware.Sieben Tage nach der Implantation wird das Fibringel in die Wirtslunge eingebaut Die 3D-Rekonstruktion von konfokalen Fluoreszenzbildern hat gezeigt, dass vom Wirt stammende CD 31-positive Endothelzellen sieben Tage nach der Implantation in den Gelen vaskuläre Netzwerke in den Gelen bilden, abhängig von der Dosis A-V-E-G-F-B-F-G-F, dosisabhängig, wobei Aquaporin-Typ eins fünf positive und Typ 2 Surfactant Protein B positive Lungenepithelzellen auch entlang der neu gebildeten Blutgefäße in den Gelen rekrutiert werden, die ergänzt werden mit höheren Konzentrationen von VGF und B, FGFH und d. Die Färbung histologischer Schnitte zeigt, dass sieben Tage nach der Implantation auch andere Arten von Wirtszellen in das Gel einwandern. Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass aus der Wirtslunge stammende regenerative Gefäßnetzwerke und Alveolarbildung erfolgreich in den Fibringelen aufgebaut werden, nachdem sie mit angiogenen Faktoren supplementiert und nach ihrer Entwicklung auf die Oberfläche der adulten Mauslunge implantiert wurden.Diese Technik ebnete den Weg für weniger Forscher auf dem Gebiet der Lungenbiologie und Primärmedizin, um den Mechanismus der normalen Angiogenese zu erforschen und wie sie sich auf den Krankheitszustand in der Lunge von Mäusen auswirkt.

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Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Die Lunge wird sowohl durch die systemische bronchiale Arterie und Lungenarterien perfundiert. In den meisten Lunge Pathologien, ist es umso kleiner systemische Gefäßsystem, die robust Neovaskularisierung zeigt. Einstellung der pulmonalen Blutfluss fördert regen bronchiale Angiogenese. Wir bieten chirurgische Details zu induzieren linken Lungenarterie Ischämie, die bronchiale Neovaskularisation fördert.

Angiogenese im ischämischen Rat Lung

Die endotheliale Glykokalyx / endothelial Oberflächenschicht ist ideal studiert mit Intravitalmikroskopie. Intravitalmikroskopie ist technisch anspruchsvoll in einem sich bewegenden Organ wie der Lunge. Wir zeigen, wie die gleichzeitige Hellfeld und Fluoreszenzmikroskopie verwendet werden, um Endotheloberfläche Schichtdicke in einem frei beweglichen...

In vivo Messung der Maus Pulmonary Endothelial Surface Layer

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Blutgefäß Bildung in Vivo zu visualisieren und in Echtzeit in 3D Gerüste multiphoton Mikroskopie. Angiogenese in gentechnisch veränderten Gerüste wurde in einem murinen calvarial kritische Knochen-defekt-Modell untersucht. Mehr neue Blutgefäße waren in der Behandlungsgruppe als Kontrollen erkannt.

Visualisierung von Angiogenese durch Multiphoton Mikroskopie In Vivo in gentechnisch veränderten 3D-PLGA/nHAp Gerüst für Calvarial kritische Knochen defekt Reparatur

Wir beschreiben eine nichtinvasive multimodale Bildgebung Ansatz basierend auf Mikro-CT und Fluoreszenz Molekulare Computertomographie für längs-Beurteilung der Lunge Fibrose Mausmodell durch doppelte intratracheale Instillation von Bleomycin induziert.

Eine multimodale Bildgebung Ansatz basierend auf Mikro-CT und Fluoreszenz Molekulare Computertomographie für längs-Bewertung der Bleomycin-induzierten Lungenfibrose bei Mäusen

Wir beschreiben eine Methode zur orthotopen Engraftment der Lungenkrebszellen in murinen Lungen deutlich zu verbessern, indem Vorklimatisierung die Atemwege mit Verletzungen. Dieser Ansatz kann auch angewendet werden, um die Stromale Interaktionen innerhalb der Lunge Mikroumgebung, metastasierendem Verbreitung, Lunge Krebs Komorbiditäten zu untersuchen und um effizienter Patient erzeugen Xenotransplantate abgeleitet.

Die Atemwege von Mäusen mit Bleomycin Vorklimatisierung erhöht die Effizienz der Orthotopen Lung Cancer Cell Engraftment

Hier stellen wir eine wirksame Methode zur Untersuchung der antifibrotischen Aktivität intravenös infundierter menschlicher mesenchymaler Stromalzellen vor, die nach der Induktion einer Lungenverletzung durch eine endotracheale Injektion von Bleomycin in C57BL aus der gesamten Nabelschnur gewonnen wurden. /6 Mäuse. Dieses Protokoll kann leicht auf die präklinische Prüfung anderer Therapeutika ausgedehnt werden.

Induktion der Maus Lungenverletzung durch Endotracheal Injektion von Bleomycin

Hier stellen wir ein Protokoll zur operativen Implantation eines dauerhaft verweilbaren optischen Fensters für den murinen Thorax vor, das eine hochauflösende, intravitale Bildgebung der Lunge ermöglicht. Die Permanenz des Fensters macht es gut geeignet für die Untersuchung dynamischer zellulärer Prozesse in der Lunge, insbesondere solcher, die sich langsam entwickeln, wie z.B. das metastatische Fortschreiten von disseminierten Tumorzellen.

Ein permanentes Fenster zur Untersuchung von Krebsmetastasen in der Lunge

Das Manuskript beschreibt eine Methodik für die Etablierung sowie das longitudinale Wachstumsmonitoring von spontanen Lungenmetastasen von orthotopisch injizierten Brusttumoren, die in allen Stadien der Metastasierungskaskade interveniert werden kann.

Im lebenden Organismus Bildgebung zur Messung der spontanen Lungenmetastasierung von orthotopisch injizierten Brusttumorzellen

Hier stellen wir ein Protokoll vor, mit dem die transplantierte linke Lunge der Maus mittels Zwei-Photonen-Mikroskopie intravital abgebildet werden kann. Dies stellt ein wertvolles Werkzeug dar, um die zelluläre Dynamik und Wechselwirkungen in Echtzeit nach einer Lungentransplantation von Mäusen zu untersuchen.

Intravitale Zwei-Photonen-Mikroskopie der transplantierten Mauslunge

In diesem Artikel wird beschrieben, wie biotechnologisch hergestellte Mauslungen mit Hilfe von Dezellularisierungs- und Rezellularisierungsmethoden hergestellt werden können. Es wird auch die anschließende orthotope Lungentransplantation beschrieben.

Transplantation einer biotechnologisch hergestellten Lunge unter Verwendung von dezellularisierten Mauslungen und primären humanen Endothelzellen

Die Zelltherapie bietet eine vielversprechende Intervention bei Lungenfibrose, indem Vorläuferzellen verwendet werden, um geschädigtes Gewebe zu reparieren und die Lungenfunktion zu verbessern. Da die Bildgebung eine zentrale Rolle bei der Verfolgung der Zellintegration spielt, beschreiben wir hier die durch Magnetpartikelbildgebung gesteuerte in vivo-Verfolgung der Zelltherapie bei Lungenfibrose in einem Mausmodell.

Bildgestützte In-vivo-Verfolgung von transplantierten distalen Lungenepithel-Vorläuferzellen für Lungenfibrose mittels Magnetpulver-Bildgebung

Erfahren Sie die Implantation von Fibrin-Gel auf der Mäuselunge zur Untersuchung von Angiogenese und alveolärer Regeneration. Diese Methode ermöglicht die Analyse der lungen-spezifischen Mikroumgebung in vivo.

Die Implantation von Fibrin Gel auf Maus Lung Lung spezifischen Angiogenese Studieren

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