Name: Pseudomonas aeruginosa induzierte Lungenschädigung-Modell (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 24 s
Description: Lernen Sie ein Mäuse-Lungenverletzungsmodell durch intratracheale Injektion von Pseudomonas aeruginosa kennen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Entzündung, Zelltod und Reparaturmechanismen bei Lungenverletzungen.

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Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der National Institutes of Health HL105947-01 (YL), HL07829-16 (AM), HL090152 (AM) unterstützt.

Die Tierversuche wurden von der Tierpflege Ausschuss und Institutional Biosafety Ausschüsse der Universität von Illinois in Chicago genehmigt. HINWEIS: Maske, Augenschutz, Kleid oder Overall und Doppelhandschuhe: Alle Verfahren, die Pseudomonas sollte mit biologischen Sicherheitsstufe 2 (BSL2) Praktiken, die umfassen, sind aber nicht beschränkt durchgeführt werden. Arbeiten Sie in zertifizierten Sicherheitswerkbank. Gönnen Instrumente in Kontakt mit Bakterien mit Bleichmittel oder Chlordioxid Desinfektionsmittel. Verwenden Sie eine versiegelte Verpackung für den Transport Proben. 1. P. aeruginosa Kultur und Wachstum <ol><li> Shop P. aeruginosa PA103 als Bakterienbestand in einer Schraubkappe Kryoröhrchen bei -80 ° C. </li><li> Legen Sie das Fläschchen in einem Rack in einem Kasten mit 70% Ethanol benetzt Papierhandtücher und zu ergreifen, um die biologischen Sicherheitsstufe 2 (BSL2) Labor. </li><li> Streak die Bakterien auf Schafblut-Agar-Platten wachsen bei 37 ° C für ~ 15 Stunden in einem Inkubator. </li&gt; <li> In einer BSL2- Haube, kratzen die Bakterien von der Platte mit Bakterien Schleife und resuspendieren in 5 ml PBS. </li><li> Bewahren Sie die Lager bei 4 ° C für bis zu 3 Monate. Allerdings bestimmen die Titer alle 2 Wochen. </li><li> Seriell zu verdünnen, die Bakterien in PBS (in der Regel von 1:10 4 bis 1:10 7) und die Platte des bekannten Verdünnung auf Schafblut-Agar-Platten. </li><li> Inkubieren Sie die Platten für ~ 15 Std. Graf Kolonien und berechnen Colony Forming Unit (CFU) nach Bakterienkonzentration zu bestimmen. </li><li> Resuspendieren der entsprechenden Konzentrationen (~ 5 x 10 3 KbE / ul) in 0,5 ml PBS in 1,5 ml steriler Schraubkappe Kryoröhrchen. Dichten Sie die Kryoröhrchen und legen Sie sie in einem Kryoröhrchen Rack auf Desinfektionsmittel beladene Papierhandtücher in einem Schnappdeckel-Box. </li><li> Transportieren Sie das Kästchen, um BSL2- Tieranlage. Dort angekommen, öffnen Sie die Box in der BSL2- Schrank. </li></ol> 2. P. aeruginosa Instillation <ol><li> Führen Überleben Chirurgie aseptisch (sterile Handschuhe, sterile InstrumenteUnd aseptischer Techniken). Verwenden Sie eine sterile Abdeckung, eine Arbeitsfläche für sterile (autoklaviert) chirurgische Instrumente bereitzustellen. Sterilisieren Instrumente mit einer Heiß Perle Sterilisator zwischen jeder Instillation Verfahren. </li><li> Wiegen Mäusen vor Betäubung. Mäuse anästhesiert mit Ketamin (100 mg / kg), Xylazin (5 mg / kg) in 0.1 - 0.2 ml PBS intraperitoneal (ip). Bestimmung der Wirksamkeit der Betäubung durch Nichtreaktionsfähigkeit auf Zehenklemm. Verwenden Sie einen Tierarzt Salbe auf die Augen bis zur Trockene unter Narkose zu verhindern. </li><li> Rain Mäuse auf einer chirurgischen Bord in BSL2- Schrank. </li><li> Identifizieren Sie den Bereich für den Schnitt nach unten. Rasur dieses Gebiet und bereiten die Haut mit Wechselstrom Alkohol und Povidoniod Tupfer 3 mal. </li><li> Behandlung der Schnittbereich mit einem Lokalanästhetikum (Lidocain), da dies der Anästhesie ist ausreichend für eine kleinere chirurgische Eingriffe, wie einen Hautschnitt, um die Luftröhre gelangen. </li><li> Machen Sie einen kleinen Schnitt (ca. 5 mm) an der Mittellinie des Halses, und benutzen stumpfe forceps sanft bewegen die Muskeln für den Zugriff auf die Luftröhre. Setzen Sie die Luftröhre durch chirurgische Dissektion. </li><li> Zeichnen Bakterienlösung in eine 1 ml Einwegspritze mit 27 G-Nadel. Für jede Maus, verabreichen 20-30 ul Bakterien bei der entsprechenden Konzentration (bis zu 10 5 CFU je Maus). </li><li> Setzen Sie die Nadel in die Luftröhre. Injizieren Lösung langsam in den Luftröhren. </li><li> Stellen Sie sicher, dass die Tier keucht, die normalerweise an, dass Lösung in die Lunge erreicht. </li><li> Schließen Sie die Wunde mit sterilem Nahtmaterial (6-0 Monofilament) unter aseptischen Bedingungen. </li><li> Verwenden Sie 0,1 mg / kg Buprenorphin durch subkutane Injektion als post-op Analgesie zu postoperativen Schmerzen zu kontrollieren. </li><li> Stellen Sie sicher, dass die Zeit von der ersten Narkoseeinleitung erforderlichen Schließung Schnitt weniger als 15 min. </li><li> Nach der Injektion entsorgen Spritzen und Nadeln in einem geeigneten Biohazard Behälter für scharfe Gegenstände. </li><li> Behandeln Sie die chirurgischen Instrumente mit Chlordioxid basierend DISInfectant für 15 min, spülen und zum Labor für die Sterilisation und Wiederverwendung wie nötig. </li><li> Haus die Mäuse einzeln in saubere Käfige bei warmen Umgebung. </li><li> Überprüfen Sie auf dem Tier alle 30 Minuten, bis er das Bewusstsein wiedererlangt und beginnt sich zu bewegen; und später in 12 Stunden Intervallen für die ersten 3 Tage nach der Operation. </li><li> Halten die Mäuse in der Tier BSL2 Einrichtung während des Experiments. Stellen Sie sicher, dass nur in versiegelten Kiste enthaltene Gewebe verlässt das Tier BSL2- Möglichkeiten. Wenn die Mäuse exprimieren einem der moribund Verhaltensweisen (definiert als Atemnot, Lethargie, Versagen in Reaktion auf sanfte Stimulierung ambulate) an einem Punkt in der Studie euthanize die Mäuse durch CO 2 Inhalation aus einem Flaschenquelle gefolgt durch zervikale Dislokation. </li><li> Euthanize die Versuchspersonen durch Ausbluten unter Narkose. <ol><li> Sammeln Lungengewebe von Mäusen getötet. Führen Sie diese Verfahren in einem BSL2 Kapuze. Falls erforderlich, überweisen Sie den Proben mit verschlossenen Röhrchen in einem rac platziertk on Desinfektions beladene Papierhandtücher in einem Schnappdeckel-Box für weitere Prozess. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Ware, L. B., Matthay, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">The acute respiratory distress syndrome.</a> N Engl J Med. 342, 1334-1349 (2000).</li>
<li>Matthay, M. A., Ware, L. B., Zimmerman, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+acute+respiratory+distress+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">The acute respiratory distress syndrome.</a> J Clin Invest. 122, 2731-2740 (2012).</li>
<li>Shimabukuro, D. W., Sawa, T., Gropper, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injury+and+repair+in+lung+and+airways%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Injury and repair in lung and airways.</a> Crit Care Med. 31 (8), 524-531 (2003).</li>
<li>Wansleeben, C., Barkauskas, C. E., Rock, J. R., Hogan, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cells+of+the+adult+lung%3A+Their+development+and+role+in+homeostasis%2C+regeneration%2C+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip+Rev+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Stem cells of the adult lung: Their development and role in homeostasis, regeneration, and disease.</a> Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2, 131-148 (2013).</li>
<li>Singleton, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamin+2+and+c-abl+are+novel+regulators+of+hyperoxia-mediated+nadph+oxidase+activation+and+reactive+oxygen+species+production+in+caveolin-enriched+microdomains+of+the+endothelium%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Dynamin 2 and c-abl are novel regulators of hyperoxia-mediated nadph oxidase activation and reactive oxygen species production in caveolin-enriched microdomains of the endothelium.</a> J Biol Chem. 284, 34964-34975 (2009).</li>
<li>Sadikot, R. T., Blackwell, T. S., Christman, J. W., Prince, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogen-host+interactions+in+pseudomonas+aeruginosa+pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Pathogen-host interactions in pseudomonas aeruginosa pneumonia.</a> Am J Respir Crit Care Med. 171, 1209-1223 (2005).</li>
<li>Liu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Foxm1+mediates+the+progenitor+function+of+type+ii+epithelial+cells+in+repairing+alveolar+injury+induced+by+pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Foxm1 mediates the progenitor function of type ii epithelial cells in repairing alveolar injury induced by pseudomonas aeruginosa.</a> J Exp Med. 208, 1473-1484 (2011).</li>
<li>Kurahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogenesis+of+septic+shock+in+pseudomonas+aeruginosa+pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Pathogenesis of septic shock in pseudomonas aeruginosa pneumonia.</a> J Clin Invest. 104, 743-750 (1999).</li>
<li>Kumar, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distal+airway+stem+cells+yield+alveoli+in+vitro+and+during+lung+regeneration+following+h1n1+influenza+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Distal airway stem cells yield alveoli in vitro and during lung regeneration following h1n1 influenza infection.</a> Cell. 147, 525-538 (2011).</li>
<li>Delano, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sepsis+induces+early+alterations+in+innate+immunity+that+impact+mortality+to+secondary+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunology%22%5BJournal%5D)">Sepsis induces early alterations in innate immunity that impact mortality to secondary infection.</a> J Immunology. 186, 195-202 (2011).</li>
<li>Lange, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+murine+model+of+sepsis+following+smoke+inhalation+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">A murine model of sepsis following smoke inhalation injury.</a> Biochem Biophys Res Commun. 391 (3), 1555-1560 (2010).</li>
<li>Kobayashi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+chemokines+in+neutrophil+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Biosci%22%5BJournal%5D)">The role of chemokines in neutrophil biology.</a> Front Biosci. 13, 2400-2407 (2008).</li>
<li>Matute-Bello, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+acute+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Animal models of acute lung injury.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 295, L379-L399 (2008).</li>
<li>Sadikot, R. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+immunomodulation+of+the+nf-kappab+pathway+in+airway+epithelium+impacts+host+defense+against+pseudomonas+aeruginosa%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Targeted immunomodulation of the nf-kappab pathway in airway epithelium impacts host defense against pseudomonas aeruginosa.</a> J Immunol. 176, 4923-4930 (2006).</li>
<li>Pinto, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+an+experimental+model+of+neutrophilic+pulmonary+response+induction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pneumologia%22%5BJournal%5D)">Development of an experimental model of neutrophilic pulmonary response induction in mice.</a> J Pneumologia. 29, 213-214 (2003).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Die Pseudomonas-Maus Lungenverletzung Modell, das wir beschreiben imitiert den gesamten Prozess der Entzündung, Lungenverletzung, Reparatur und Auflösung, die nach einer akuten Lungenschädigung oder Lungenentzündung auftreten. Es hat einzigartige Vorteile im Vergleich mit einigen anderen Verletzungen Modelle, dass es klinisch relevanten und relativ sicher und einfach zu handhaben. Der kritische Schritt in dem Verfahren ist, dass die Injektion von Bakterienlösung muss sehr langsam. Wenn Einsp...

Lungen Umweltkrankheitserreger ausgesetzt und sind anfällig für Entzündungen und Verletzungen 1-3. Während pathologischen Zuständen, wie Lungenentzündung oder Adult Respiratory Distress Syndrome (ARDS), Krankheitserreger sowie Entzündungsfaktoren von Leukozyten freigesetzt induzieren Verletzungen und Tod von Alveolarzellen 1-3. Es ist wichtig zu Tiermodellen von akutem Lungenversagen entwickeln, um die Untersuchung der Pathologie von Verletzungen sowie Mechanismus der Reparatur zu erleichtern. Gegenwärtig sind die meisten Leute benutzen Hyperoxie und Bleomycin induzierten Mauslungenverletzung Modelle 4. Jedoch sind die Mechanismen der Hyperoxie Schädigung verursacht sind nicht die gleichen wie die häufigste Lungenverletzungen, die bei Lungenentzündung oder ARDS 5 auftreten. Bleomycin induzierte akute Verletzung ist selten im klinischen Kontext 4. Eine Maus Lungenverletzung Modell mit intratracheale Injektion von P. Hier berichten wir aeruginosa 6,7. Dieses Modell ist klinisch relevant, und ahmt die prozesse, die folgende Lungenentzündung 8 geschehen. Als opportunistische, nosokomiale Erreger der immungeschwächten Personen, P. aeruginosa infiziert in der Regel die Lungenwege, der Harnwege, Verbrennungen, Wunden, und verursacht auch andere Blutinfektionen 6. Die Bakterien setzen Virulenzfaktor Exotoxin A, multiplizieren und lösen Immunreaktionen 6. Intra-trachael Verabreichung von P. aeruginosa spiegelt die Situation in der menschlichen Exposition gegenüber den Bakterien, die Lungenentzündung verursachen und die Pathologie ist wahrscheinlich anders als die vor kurzem berichtet, Influenza-Virus H1N1 induzierten Lungenschädigung Modell 9 zu sein. Da P. aeruginosa ist ein opportunistisches Pathogen, das relativ sicher im Vergleich zu einigen der virulenten Pathogenen handhaben ist. Hier verwendeten wir intratracheale Injektion, um die Bakterien zu verabreichen, weil wir festgestellt, dass dieses Verfahren eingeführt mehr Bakterien in den distalen Bereich der Alveolen der Lunge im Vergleich mitEinige andere Verfahren wie die Verwendung eines Katheters über den Mund. Verglichen mit anderen akuten Lungenverletzung Modelle, die P. hier beschriebenen aeruginosa Modell eignet sich für das Studium Lungenschädigung durch Bakterien und durch übermäßige Entzündung induziert. Im Gegensatz zu anderen Tiermodellen, die P. verwenden aeruginosa Sepsis 10,11 induzieren, hier verwenden wir intratracheale Injektion dieser Bakterien, um lokalisierte akute Lungenschädigung zu induzieren.

<table><tbody><tr><td>Anästhetikum: Ketamin, Xylazin, Lidocain, Buprenorphin</td><td></td><td></td><td>pharmazeutische Qualität</td></tr><tr><td>27 G Nadel</td><td>Fisher</td><td>1482648</td><td></td></tr><tr><td>Spritze</td><td>Fisher</td><td>14823434</td><td>1 ml</td></tr><tr><td>Schere</td><td>Fine Science Werkzeuge</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zange</td><td>Fine Science Werkzeuge</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Naht&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>19-037-526</td><td></td></tr><tr><td>Augenmessgerät, Handschuh, Kittel</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biosicherheitswerkbank</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Desinfektionsmittel</td><td></td><td></td> auf Chlordioxidbasis <td>Clidox</td></tr><tr><td>Schafblut-Agarplatten</td><td>Medex Versorgung</td><td>HL-1160</td><td></td></tr></tbody></table>

pseudomonas aeruginosa induzierte lungenschädigung-modell

Pseudomonas aeruginosa Induced Lung Injury Model

Um die menschliche akute Lungenschädigung oder Lungenentzündung zu untersuchen, ist es wichtig, Tiermodelle zu entwickeln, um verschiedene pathologische Merkmale dieser Krankheit zu imitieren. Hier haben wir eine Maus Lungenverletzung Modell durch intratracheale Injektion von Bakterien Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa oder PA) entwickelt. Mit diesem Modell konnten wir Lungenentzündung in der frühen Phase der Verletzung zeigen. Zusätzlich wurde Alveolarepithel- Sperr Undichtigkeit durch Analysieren bronchoalveoläre Lavage (BAL) beobachtet; und alveoläre Zelltod wurde durch TUNEL-Assay mit Gewebe aus verletzten Lunge vorbereitet beobachtet. Zu einem späteren Phase nach der Verletzung, beobachteten wir die Zellproliferation für den Reparaturvorgang erforderlich. Die Verletzung wurde von 7 Tagen ab der Einleitung des P. gelöst aeruginosa Injektion. Dieses Modell imitiert die sequentielle Verlauf Lungenentzündung, Verletzungen und Reparatur während einer Lungenentzündung. Diese klinisch relevanten Tiermodell eignet sich für das Studium der Pathologie, Mechanismus der Reparatur, fach akuter Lungenverletzung, und kann auch verwendet werden, um potentielle therapeutische Mittel für diese Krankheit zu testen.

Ab 24 bis 72 Stunden nach P. aeruginosa Injektion erhöhte Zellularität wurde in Lungenschnitten beobachtet (1A-D). Die Lunge begonnen, von 96 Stunden nach der Verletzung (1E) erholen. 7 Tage nach P. aeruginosa, normalen Alveolen Morphologie wurde weitgehend wiederhergestellt (1F). Tunnel Färbung mit Lungenabschnitte bei 24 h nach P. vorbereitet aeruginosa zeigte Zelltod in Alveolen Zellen (1G-I). Um den Reparaturproze...

Wir haben ein Modell für Lungenverletzungen von Mäusen durch intratracheale Injektion des Bakteriums Pseudomonas aeruginosa entwickelt. Dieses Modell ahmt Lungenschäden bei Lungenentzündungen nach und ist klinisch relevant.

Pseudomonas aeruginosa induzierte Lungenschädigung-Modell

In order to study human acute lung injury and pneumonia, it is important to develop animal models to mimic various pathological features of this disease. ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, Lungenentzündungen und Lungenverletzungen bei der Maus durch Verabreichung von Pseudomonas aerogen nachzuahmen. Dies wird erreicht, indem zunächst Pseudomonas in der entsprechenden Konzentration für die Injektion vorbereitet wird. Im zweiten Schritt wird die Luftröhre der Maus vorsichtig freigelegt und dann werden die Bakterien durch intratracheale Injektion in die Lunge verabreicht.Im letzten Schritt wird der Krankheitsverlauf bei der Maus genau überwacht. Letztendlich können Lungenentzündungen, Zelltodveränderungen in der Alveolarbarriere und Lungenreparatur in der Pseudomonas aerogen-injizierten Mauslunge untersucht werden. Die Auswirkungen dieser Technik erstrecken sich auf die Therapie von akuten Lungenverletzungen, die durch Lungenentzündung verursacht werden.Da dieses Modell die Prozesse nach einer Lungenentzündung nachahmt, um Quats von p Aerogen, PA 1 0 3 für die Installation zu erstellen, beginnen Sie mit dem Transport eines Kryo-Fläschchens der Bakterien von minus 80 Grad Celsius, Lagerung auf die Biosicherheitsstufe zwei oder BSL zwei Labor in einem Gestell in einer Schachtel, die mit 70% Ethanol benetzten Papiertüchern ausgekleidet ist. Anschließend werden unter einem BSL-Zwei-Hauben-Streifen die P aerogen PA 1 0 3 Bakterienkolonien auf Schafblut-Agarplatten aufgefüllt und die Kolonien in einem 37 Grad Celsius heißen Inkubator herausgezüchtet. Nach etwa 15 Stunden überführen Sie die Kolonien mit einer Bakterienschlaufe in fünf Milliliter PBS.Verdünnen Sie dann die Bakterien seriell in mehr PBS auf eins bis 10, auf vier, auf eins bis 10 auf die sieben Konzentrationen und verteilen Sie die Verdünnung auf frischen Schafblut-Agarplatten. Berechnen Sie dann nach etwa weiteren 15 Stunden Inkubation die koloniebildenden Einheiten für jede Platte, um die Bakterienkonzentration zu bestimmen. Als nächstes eloqua die entsprechende Menge an Bakterien in 0,5 Millilitern PBS in 1,5 Millilitern, sterile Kryo-Fläschchen mit Schraubverschluss und dann die in einem Kryo-Fläschchengestell versiegelten Fläschchen auf mit Desinfektionsmitteln beladene Papiertücher in einer Schnappdeckelschachtel in einem BSL-Zwei-Schrank platzieren, die Augen des Tieres vorsichtig mit Veto-Salbe bedecken.Rasieren Sie schnell den Schnitt und reinigen Sie die Haut, indem Sie dreimal abwechselnd Alkohol- und Povidon-Jodtupfer verwenden und die Sedierung mit den Zehen bestätigen. Kneifen Sie, halten Sie die Maus auf einem Operationsbrett fest, nachdem Sie die Haut mit einem Lokalanästhetikum behandelt haben. Machen Sie als Nächstes einen kleinen fünf Millimeter großen Schnitt an der Mittellinie des Halses des Tieres und verwenden Sie eine stumpfe Zange, um den Muskel sanft zu bewegen, um Zugang zur Luftröhre zu erhalten.Wenn die Luftröhre freigelegt wurde, ziehen Sie bis zu eins mal 10 bis zu den fünf koloniebildenden Einheiten der Bakterien in 20 bis 30 Mikrolitern PBS in eine Ein-Milliliter-Einwegspritze, die mit einer 27-Gauge-Nadel ausgestattet ist. Führen Sie dann die Nadel in die Luftröhre ein und injizieren Sie langsam die Lösung. Stellen Sie sicher, dass das Tier nach Luft schnappt, was normalerweise darauf hindeutet, dass die Lösung die Lunge erreicht hat.Nun verschließen Sie die Wunde aseptisch mit sechs null monofilen sterilen Nähten und verabreichen die postoperative Analgesie. Entsorgen Sie dann die Spritzen und Nadeln nach der Injektion jedes Tieres in dem entsprechenden Behälter für biologisch gefährliche scharfe Gegenstände. Wie verhält sich der Myers einzeln in sauberen Käfigen in einer warmen Umgebung?Alle 30 Minuten nach den Tieren sehen, bis sie wieder zu Bewusstsein kommen und sich zu bewegen beginnen. Behandeln Sie die chirurgischen Instrumente 15 Minuten lang mit Chlordioxid-Desinfektionsmittel. Spülen Sie die Werkzeuge dann ab und bringen Sie sie zur weiteren Sterilisation ins Labor zurück.Halten Sie die Mäuse während des gesamten Experiments in der BSL-Zwei-Tier-Anlage und sammeln Sie dann nach der Entblutung unter Narkose das Lungengewebe von jedem Tier unter einer BSL-Zwei-Haube. Wenn eine weitere Verarbeitung gewünscht wird, übergeben Sie die Proben schließlich in verschlossenen Röhrchen, die auf einem Gestell auf desinfektionsmittelbeladenen Papiertüchern in einer Schnappdeckelbox platziert sind, in die entsprechende Verarbeitungsanlage. In diesem repräsentativen Experiment kann 24 bis 72 Stunden nach der P-Aerogeninjektion eine erhöhte Zellularität in den Lungenschnitten beobachtet werden.Nach 96 Stunden hat die Lunge begonnen, sich zu erholen, und nach sieben Tagen ist die normale Morphologie der Alveolen weitgehend wiederhergestellt. Tunnelfärbungen von Lungenschnitten, die 24 Stunden nach der Installation des P-Aerogens angefertigt wurden, zeigen den Zelltod in den Alveolenzellen, um den Reparaturprozess zu untersuchen. Bei dieser Verletzung kann das Modell BRDU drei Tage nach der Verabreichung von p Aerogen in die Mäuse injiziert werden.Wie dargestellt, weisen mit p aerogen behandelte Tiere im Vergleich zu kontrolliert behandelten Tieren eine Hyperproliferation im Lungengewebe auf. Um die Veränderungen der Barriere, der Permeabilität und der Entzündung nach einer Verletzung zu untersuchen, kann bronchoalveoläre Lavage oder Darmflüssigkeit zu verschiedenen Zeitpunkten entnommen werden. Nach der Injektion von Aerogenen ist beispielsweise die Proteinkonzentration im Darm 48 Stunden nach der bakteriellen Installation signifikant erhöht, was auf eine Leckage der Epithelbarriere und die Anzahl der Zellen hinweist.Der Darm ist zu diesem Zeitpunkt ebenfalls signifikant erhöht, was auf eine Entzündungsreaktion vier bis fünf Tage nach der P-Aerogen-Injektion hindeutet, sowohl der Darmproteinspiegel als auch die Zellzahl beginnen zu sinken, was auf eine Genesung hindeutet. Darüber hinaus steigt der Spiegel des Makrophagen-Entzündungsproteins zwei, eines Zytokins, das an der Anziehung von Neutrophilen beteiligt ist, nach 48 Stunden signifikant an und kehrt dann nach 96 Stunden auf das Basalniveau zurück. In Lungenlysaten ohne p Aerogen wird nur eine geringe Anzahl von Monozyten in der Darmflüssigkeit beobachtet.Im Gegensatz dazu ist eine große Anzahl von Neutrophilen im Darm vorhanden, die 48 Stunden nach der Injektion isoliert werden. Nach 96 Stunden kehrt die Zellzusammensetzung des Darms auf das Kontrollniveau zurück Nach diesem Verfahren. Andere Methoden wie histologisches, Sektions- oder bronchoalveoläres Lavage-Sammeln können durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, z. B. welche Zellen oder Faktoren an der Entzündung und Reparatur nach akutem Lungenversagen beteiligt sind.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Wir beschreiben die Agar-Perlen Methode, um anhaltende langfristige chronische Pseudomonas aeruginosa-Infektion der Atemwege im Mausmodell zu etablieren.

Langzeitchronik<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; Airway-Infektion bei Mäusen

Wir beschreiben ein Verfahren zur Induktion von neutrophilen Lungenentzündung durch Herausforderung aerosolized Lipopolysaccharid durch Vernebelung, akuter Lungenschädigung-Modell. Darüber hinaus werden grundlegende chirurgische Techniken für Lungen Isolation, Intubation und Bronchiallavage ebenfalls beschrieben.

Verfahren zur Erzeugung von Lungen Neutrophilie Mit aerosolisiertes Lipopolysaccharide

Während in vitro Studien von Wirt-Erreger-Interaktionen die Charakterisierung spezifischer Immunantworten ermöglichen, sind in vivo Modelle erforderlich, um die Auswirkungen komplexer Reaktionen zu beobachten. Unter Verwendung der Exposition von Candida albicans, gefolgt von einer Pseudomonas aeruginosa-vermittelten Lungeninfektion, etablierten wir ein Mausmodell für mikrobielle Interaktionen, die an der Pathogenität der beatmungsassoziierten Pneumonie beteiligt sind.

Studieren Mikrobielle Gemeinschaften<em&gt; In-vivo-</em&gt;: Ein Modell von Host-vermittelte Interaktion zwischen<em&gt; Candida albicans</em&gt; Und<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; In den Atemwegen

Verschiedene Verfahren wurden für die Modellierung von bakterieller Pneumonie bei Mäusen in der Literatur beschrieben. Hier beschreiben wir eine nicht-invasive, kostengünstige, schnelle Methode zur Lungenentzündung durch Aspiration induzierenden (dh Inhalation) eines bakteriellen Inokulums in den Oropharynx pipettiert. Downstream Methoden zur Beurteilung der Lungen angeborenen Immunantwort sind auch detailliert.

Ein Nicht-invasive und in technischer Hinsicht nicht intensive Verfahren zur Induktion und Phänotypisierung für experimentelle bakterielle Pneumonie bei Mäusen

Eine Methode zur Feststellung von Lungeninfektionen bei immunkompetenten Nagetieren wird beschrieben. Mit Kompetenz kann diese Methode schnell und einfach durchgeführt werden, um eine stabile Infektion mit vielen Isolaten von S. pneumoniae, H. influenzae, P. aeruginosa, K. pneumoniae und A. baumannii zu induzieren.

A Robust Pneumonia Modell in intaktem Immunsystem Nagetiere zur Bewertung antibakterieller Wirksamkeit gegen<i&gt; S. pneumoniae</i&gt;,<i&gt; H. influenzae</i&gt;,<i&gt; K. pneumoniae</i&gt;,<em&gt; P. aeruginosa</em&gt; oder<em&gt; A. baumannii</em

Einfache Methoden sind für den Nachweis der Produktion von zytotoxischen amyloide nach Infektion der Lunge Endothel von Pseudomonas Aeruginosabeschrieben.

Methoden zur Erkennung von zytotoxischen amyloiden folgende Infektion der pulmonalen Endothelzellen durch Pseudomonas aeruginosa

Hier wird ein Schrittweiseverfahren vorgestellt, um akute Lungenverletzungen bei Mäusen durch direkte intratracheale Lipopolysaccharid-Instillation zu induzieren und FACS-Analysen von Blutproben, Bronchoalveolar-Spülflüssigkeit und Lungengewebe durchzuführen. Minimale Invasivität, einfache Handhabung, gute Reproduzierbarkeit und Titration der Schwere der Erkrankung sind Vorteile dieses Ansatzes.

Induzieren akute Lungenschädigung bei Mäusen durch direkte intratracheale Lipopolysaccharid-Instillation

Wir beschreiben ein verzögertes Impfprotokoll zur Erzeugung chronischer Wundinfektionen bei immunkompetenten Mäusen.

Ein verzögertes Impfmodell der chronischen Pseudomonas aeruginosa Wundinfektion

Dieses Manuskript beschreibt die Etablierung eines infektiösen Modells der Lungenentzündung bei Mäusen und die entsprechende Charakterisierung der Verletzungsauflösung sowie Methoden zur Züchtung von Bakterien und zur intratrachealen Instillation. Ein neuartiger Ansatz mit Hilfe der hochdimensionalen Durchflusszytometrie zur Bewertung der Immunlandschaft wird ebenfalls beschrieben.

Experimentelles Modell zur Evaluierung des Abklingens von Lungenentzündungen

Derzeit fehlt es an in vivo-Modellen , die sich für ein Wirkstoffscreening gegen chronische bakterielle Infektionen eignen. In dieser Arbeit beschreiben wir ein Protokoll für die Wundinfektion mit einem klinischen Isolat von Pseudomonas aeruginosa , um eine persistierende Infektion bei Zebrafischlarven zu erzeugen.

Modellierung einer persistierenden Pseudomonas aeruginosa-Infektion bei verwundeten Zebrafischlarven

In dieser Studie wurde eine nicht-invasive endotracheale Instillationstechnik demonstriert, die ALI bei Ratten unter Verwendung eines einfachen Laryngoskops entwickelt, um eine präzise LPS-Abgabe an die Lunge sicherzustellen. Das LPS wird über ein Endotrachealrohr mit einem Laryngoskop eingebaut. Das Ausmaß der Lungenverletzung wird zu mehreren Zeitpunkten bewertet.

Nicht-invasive endotracheale Verabreichung von Lipopolysaccharid zur Auslösung akuter Lungenschäden bei Nagetieren

Lernen Sie ein Mäuse-Lungenverletzungsmodell durch intratracheale Injektion von Pseudomonas aeruginosa kennen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Entzündung, Zelltod und Reparaturmechanismen bei Lungenverletzungen.

Pseudomonas aeruginosa induzierte Lungenschädigung-Modell

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