Name: Experimentelle Glaukom von Ocular Injektion von magnetischen Mikrokügelchen Induzierte (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 35 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie experimentelles Glaukom bei Ratten durch Injektion magnetischer Mikrokügelchen in die Vorderkammer induzieren. Diese Methode ermöglicht stabile, langanhaltende Erhöhungen des Augeninnendrucks für Glaukomforschung.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Wir danken Peter Munro PhD für seine Unterstützung bei der Schnittung des Sehnervs. Diese Studie wurde vom Medical Research Council (G0901303) und teilweise vom Dorothy Hodgkin Postgraduate Award/Medical Research Council, dem Helen Hamlyn Trust, Fight for Sight und der Moorfields Special Trustess unterstützt.

Ethics Statement: Alle Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit dem Institutional Animal Care und Verwenden Committee (IACUC) durchgeführt wurden, und wurden im Einvernehmen mit Großbritannien Home Office Richtlinien (genehmigt <a href="http://goo.gl/FLkirW" target="_blank">http://goo.gl/FLkirW</a> , letzter Zugriff 10 Juni , 2014) und der ARVO Erklärung für die Nutzung von Tieren in Ophthalmic und Vision Research ( <a href="http://goo.gl/4LFOjD" target="_blank">http://goo.gl/4LFOjD</a> , letzter Zugriff 10. Juni 2014). 1. Ocular Hypertension Induktions <ol><li> Induzieren experimentellen Glaukom durch Erhöhung des Augeninnendrucks (IOP) durch einseitige Injektion von paramagnetischen Mikrosphären in der vorderen Kammer des Brown-Norway-Ratten, basierend auf der Methode von Samsel et al. 3 Andere pigmentierte Ratten geeignet sein können, obwohl diese müssten validiert zuerst durch den Benutzer. </li><li> Haus von 250 bis 300 g weiblichEx-Züchter Brown Norway Ratten in einem ständigen schlechten Lichtverhältnissen (40-60 lux) auf Tagesschwankungen IOP 7 zu minimieren, mit Zugang zu Futter und Wasser ad libitum. </li><li> Sie intra IOP-Messungen an wachen Tieren 8 vor der Anästhesie und Wulst Injektion, unter Verwendung eines Rebound-Tonometer zur Verwendung im Rattenauge 9 kalibriert. IOP wird als Mittelwert von fünf Ablesungen vorgenommen. </li><li> Betäuben Ratten mit 37,5 mg / kg Ketamin und 0,25 mg / kg intraperitoneal Medetomidinhydrochlorid geliefert. Narkosetiefe Bestätigen Sie durch Testen hinteren Fuß Reflexe Tieres, vor der Jod-Anwendung (siehe Schritt 1.5), und Perlen Injektion Povidon (siehe Schritt 1.8). Verwalten 0,5% Proparacainhydrochlorid zur Analgesie. HINWEIS: die Schüler jederzeit erweitern Sie nicht. Dies wird helfen, die Perlen, sich besser in die Kammerwinkel zu regeln, und verhindern, dass die Bindung an der Linse. Bewerben Augensalbe zur Hornhaut Trocknen auf un-betriebenen andere Auge zu verhindern. </li><li> WAsche der operativen Augen mit 5% Povidon-Iod in Wasser 10 5 min vor der Injektion. </li><li> Nach 5 min Docht die Povidoniod Ausschalten mit steriler Gaze, und waschen Sie das Auge mit 0,9% steriler Kochsalzlösung. Halten Sie die Augen während der Narkose bei regelmäßiger Anwendung steriler Kochsalzlösung feucht. </li><li> Legen Sie einen Ringmagneten um das Auge. </li><li> Injizieren 25 ul einer Lösung, die 30 mg / ml des gamma-Bestrahlung sterilisiert 8 um magnetischen Mikrokügelchen in Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) in die vordere Augenkammer, mit einer 33 G Nadel abgeschrägt. <ol><li> Um Perlen herzustellen, Waschen durch Resuspendieren und dann 3mal Zentrifugieren bei 10.000 xg für 5 Minuten mit 1 ml HBSS, bevor die endgültige 30 mg / ml Lösung. Pflegen sterilen Bedingungen im gesamten. </li><li> Für die Injektion vorsichtig sein, um zu vermeiden, die Nadel an der Iris, um das Risiko von Iris Trauma zu minimieren. Dies kann durch Ausrichten der Nadel tangential zur Hornhautoberfläche verhindert werden, die parallel zudie Iris wie möglich. Dies wird auch dazu beitragen, Perlenverlust von der Injektionsstelle zu minimieren. Hinweis: Spritzen Sie Perlen mit einer schnellen Rate, um eine gleichmäßige Verteilung auf der Kammerwinkel, die entscheidend für die Anhebung IOP ist zu gewährleisten. Zusätzlich Shop Perlen, Nadeln und Magnetringe getrennt, so dass die Perlen bilden keine Cluster, so dass sie nur schwer in die Spritze zu laden und zu injizieren, und die Nadel nicht magnetisiert werden. </li></ol></li><li> Lassen Sie die Nadel an Ort und Stelle für 1 min nach der Injektion um sicherzustellen, dass es sich in Perlen der Kammerwinkel zu wässrigen Kondensat ab, das Trabekelwerk behindern. Leicht Winkel der Nadel nach der Perlen wurden zunächst einige Leckage von wässrigen zu ermöglichen, um eine vorübergehende Erhöhung des Augeninnendruck zu minimieren siedelt. Am Ende der Operation zu spülen Sie die Nadel durch mit ersten phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS), dann 70% Ethanol, gefolgt von destilliertem Wasser, um die weitere Verwendung der Nadel in getrennten Verfahren zu gewährleisten. Alternativ könnte man verwendenEinweg-Nadeln, wenn die richtige Spurweite und Spritze Kombination zur Verfügung. Optional: Nadeln mit Hilfe eines Schweißkantenformer, deren Nutzung zu verlängern geschärft werden. </li><li> Zu diesem Zeitpunkt ggf. entfernen Sie den Magneten, und verwenden Sie es, um die Kügelchen in Bereiche unvollständige Abdeckung ziehen. </li><li> Lassen Sie den Magneten an Ort und Stelle um das Auge für weitere 10 min nach der Injektion, um sicherzustellen, Perlen absetzen gut in die Kammerwinkel. </li><li> Reverse Anästhesie unter Verwendung von 0,25 mg / kg atipemezole Hydrochlorid. </li><li> Verabreichen Chloramphenicol oder anderen Antibiotika-Salbe, beispielsweise Gentamycin oder Terramycin topisch auf eine Infektion zu verhindern, und 0,5% Proparacain-Hydrochlorid zur Analgesie. Lassen Sie Tiere auf eine Wärmematte erholen, bis sie die Bewegung wieder zu erlangen, dann in einen warmen Box und Versorgung mit zusätzlicher Nahrung, zu übertragen, wie als Nahrungsergänzungsmittel oder angefeuchtet normalen Ernährung, bis die Wiederherstellung abgeschlossen ist. Systemische oder lokale Analgesie sollte Tiere mit Anzeichen von Schmerzen 24 Stunden nach der Operation gegeben werden. Wenn thestrotz Behandlung e anhaltenden Beschwerden sollten die Tiere auf humane Weise getötet werden. </li><li> Verwenden Sie das andere Auge als nicht operierten Kontrolle. </li><li> Nehmen IOP-Messungen alle 2-3 Tage nach der Wulst Verabreichung und alle 2-3 Tage danach mit einem Rebound-Tonometer zur Verwendung im Rattenauge 9 kalibriert. </li><li> Die Kriterien für die Aufnahme in die Augen Studien können sein: wenn 1) die IOP über der kontralateralen Kontrolldruck von 5 mm Hg erhöht, und 2) nicht über 60 mm Hg nicht übersteigt. </li><li> Augen, wo der Druck wieder zum Ausgangswert (in der Regel von 1 Woche nach der Injektion) sollte nicht in die Studien aufgenommen werden, ist es jedoch möglich, wieder zu injizieren Perlen in die Augen, die zu hohen Augeninnendruck entwickeln, wenn gewünscht ausfallen. </li><li> Euthanize Tiere durch CO 2 Erstickung am Ende des Experiments. </li><li> Präparieren Sie die Augen und Sehnerven, und befestigen Sie in 4% Paraformaldehyd (PFA) über Nacht für weitere histologische Analyse. </li></ol> 2. Beurteilung der Netzhaut Neuron Schaden Mit TUNEL Shaltigen <ol><li> Um apoptotischen Zellen zu quantifizieren in ganze Berg retinasuse der Desoxyribonukleotidyltransferase vermittelte dUTP nick-Kennzeichnung (TUNEL) Assay, nach den Anweisungen des Herstellers. </li><li> Präparieren der Netzhaut von der Augenmuschel, Waschen für 3 x 5 min in 0,3% Triton X-100 in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (T-PBS). </li><li> Permeabilisieren Gewebe in 3% T-PBS für 2 Stunden. </li><li> Pre-äquilibrieren Retinae in Äquilibrierungspuffer 10 min, vor der Inkubation TUNEL Reaktionslösung 1 h bei 37 ° C. </li><li> 3 x 5 min in 0,3% T-PBS waschen das Gewebe gründlich in 0,3% T-PBS mit 5 uM DAPI und Flachhalterung bei der Montage Medien. </li><li> Zur Quantifizierung TUNEL positiven Kerne mit einem konfokalen Mikroskop bis 10 um z-Stacks durch die Ganglienzellschicht bei 20-facher Vergrößerung zu nehmen. Nehmen Sie 3 Bilder auf jedem der 4 Blütenblätter, an Orten in der Nähe des Sehnervs, in der Mitte der Peripherie, und am äußersten Peripherie der Netzhaut, was eine Gesamtzahl von 12 Bildern pro ganze mount, Probenahme ca. 7.000 Zellen. Morphologischer Kriterien unterschieden nicht neuronale (endotheliale und Glia-Zellen) aus neuronalen Zellen. </li><li> Wählen Sie die Bereiche für die Bildgebung nur mit der DAPI-Kanal und Maske Ermittler zu den Behandlungsgruppen. </li></ol> 3. Bewertung Optic Nerve Damage Mit Toluidinblaufärbung <ol><li> Fix Sehnerven Nacht in Karnovsky-Lösung bei 4 ° C. </li><li> Saures Proben für 2 Stunden in 1% (w / v) Osmiumtetroxid und anschließend in 100% Ethanol dehydriert. </li><li> Sehnerven in Propylenoxid inkubieren für 30 Minuten, und legen Sie in einer 50:50 Mischung von Propylenoxid: Araldit Nacht. </li><li> Wechseln diese Lösung zu 100% Araldit, gefolgt von einer Inkubation über Nacht bei 60 ° C. </li><li> Cut Semidünnschnitten (0,75 mm dick) und Fleck mit 1% Toluidinblau / Borax (TB) in 50% Ethanol vor der Sachprüfung mittels Lichtmikroskopie. </li></ol> 4. Statistische Analyse <ol><li> Die statistische analysiert mit einem entsprechenden Statistik-Software-Paket. Ein Zwei-Wege-ANOVA mit der Newman-Keul Post-hoc-Test kann verwendet werden, um die statistische Signifikanz berechnen IOP über die Zeit verändert werden. </li><li> Ein p-Wert von weniger als 0,05 kann als signifikant angesehen werden. </li></ol>

<ol><li>Quigley, H. A., Broman, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+number+of+people+with+glaucoma+worldwide+in+2010+and+2020%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">The number of people with glaucoma worldwide in 2010 and 2020.</a> Br J Ophthalmol. 90 (3), 262-267 (2006).</li>
<li>Weinreb, R. N., Aung, T., Medeiros, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathophysiology+and+treatment+of+glaucoma%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">The pathophysiology and treatment of glaucoma: a review.</a> JAMA. 311 (18), 1901-1911 (2014).</li>
<li>Samsel, P. A., Kisiswa, L., Erichsen, J. T., Cross, S. D., Morgan, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+the+induction+of+experimental+glaucoma+using+magnetic+microspheres%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">A novel method for the induction of experimental glaucoma using magnetic microspheres.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (3), 1671-1675 (2011).</li>
<li>Libby, R. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inherited+glaucoma+in+DBA%2F2J+mice%3A+pertinent+disease+features+for+studying+the+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Vis+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Inherited glaucoma in DBA/2J mice: pertinent disease features for studying the neurodegeneration.</a> Vis Neurosci. 22 (5), 637-648 (1017).</li>
<li>Morrison, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elevated+intraocular+pressure+and+optic+nerve+injury+models+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Glaucoma%22%5BJournal%5D)">Elevated intraocular pressure and optic nerve injury models in the rat.</a> J Glaucoma. 14 (4), 315-317 (2005).</li>
<li>Levkovitch-Verbin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translimbal+laser+photocoagulation+to+the+trabecular+meshwork+as+a+model+of+glaucoma+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Translimbal laser photocoagulation to the trabecular meshwork as a model of glaucoma in rats.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 43 (2), 402-410 (2002).</li>
<li>Moore, C. G., Johnson, E. C., Morrison, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circadian+rhythm+of+intraocular+pressure+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Circadian rhythm of intraocular pressure in the rat.</a> Curr Eye Res. 15 (2), 185-191 (1996).</li>
<li>Morrison, J. C., Jia, L., Cepurna, W., Guo, Y., Johnson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reliability+and+sensitivity+of+the+TonoLab+rebound+tonometer+in+awake+Brown+Norway+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Reliability and sensitivity of the TonoLab rebound tonometer in awake Brown Norway rats.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 50 (6), 2802-2808 (2009).</li>
<li>Wang, W. H., Millar, J. C., Pang, I. H., Wax, M. B., Clark, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+measurement+of+rodent+intraocular+pressure+with+a+rebound+tonometer%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Noninvasive measurement of rodent intraocular pressure with a rebound tonometer.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (12), 4617-4621 (2005).</li>
<li>Isenberg, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ocular+application+of+povidone-iodine%5BTitle%5D)+AND+%22Community+Eye+Health%22%5BJournal%5D)">The ocular application of povidone-iodine.</a> Community Eye Health. 16 (46), 30-31 (2003).</li>
<li>Morrison, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+of+chronic+pressure-induced+optic+nerve+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">A rat model of chronic pressure-induced optic nerve damage.</a> Exp Eye Res. 64 (1), 85-96 (1997).</li>
<li>Foxton, R. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-A+is+necessary+and+sufficient+for+retinal+neuroprotection+in+models+of+experimental+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">VEGF-A is necessary and sufficient for retinal neuroprotection in models of experimental glaucoma.</a> Am J Pathol. 182 (4), 1379-1390 (2013).</li>
</ol>

David T. Shima ist Mitarbeiter bei Hofmann-La Roche, Schweiz. Die übrigen Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Hier zeigen wir ein Verfahren zum Induzieren erhöhten IOP bei der Ratte durch Injektion von magnetischen Mikrokügelchen in die Vorderkammer des Auges. Diese Methode ist einfach durchzuführen und erfordert nur wenig chirurgischem Know-how oder Stunden des Übens und Raffinesse. Weiterhin ist das Verfahren wirksam sind; selten, die mehr als eine einzige Injektion von Perlen, eine starke, robuste Druckanstieg (ca. 10% Reinjektion Rate) zu induzieren. Dies kann einen Vorteil gegenüber bestehenden induzierbaren Methoden, wie dem technisch anspruchs episceral Vene bereitzustellen Sklerose 11 Modell oder Laserphotokoagulation Protokoll 6, die mehrere Verfahren zu erhöhten IOP maintain erfordern kann. Damit die Methode, um erfolgreich sein, jedoch gibt es einige kleine kritische Schritte, die ergriffen werden müssen. Erstens ist es sinnvoll, eine Ringförmigen Magneten benutzen, um Korne in den Kammerwinkel zu zeichnen. Dieser Schritt ist eine Modifizierung des ursprünglichen Protokolls where wurden die Kügelchen in die vordere Kammer injiziert, und dann freihändig bewegt um das Auge 3. Mit einem Ringmagneten bedeutet, dass Mikrokügelchen sollten gleichmäßig um den Winkel zu regeln, minimale manuelle Umverteilung erfordern. Zu langsam, und die Perlen werden in erster Linie sammeln sich auf der einen Seite der Winkel, was zu unvollständigen Erfassung und möglicherweise ohne Druckanstieg - Zweitens sollte die Injektionsgeschwindigkeit schnell. Im Allgemeinen jedoch ist das Verfahren einfach genug, daß der Benutzer leicht Modifikationen des Protokolls, wie beispielsweise Variation der Größe oder das Volumen der Mikrokügelchen-Partikel, vielleicht, um zu versuchen, den Grad der IOP Elevation verändert werden. Allerdings ist ein möglicher Nachteil der Methode, dass ein wenig Kontrolle über das Ausmaß der Bluthochdruck, die in etwa 5-10% der Fälle haben wir beobachtet stieg über 60 mmHg hat. Übermäßiger Anstieg der IOP kann sehr schädlich für Netzhautgewebe sein und machen die Erforschung der Mechanismen und biologie des Zelltods Herausforderung. Das Verfahren erzeugt jedoch eine konsistente neuronale Pathologie, sowohl in der Netzhaut und des Sehnerven, die pharmakologisch 12 manipuliert werden kann. Dies kann das Modell attraktiv für die Entwicklung neuartiger Therapeutika zur Behandlung von Glaukom zu machen. Darüber hinaus, da die Perlen in den Kammerwinkel ausgerichtet, lässt dies die Sichtachse frei für Echtzeit-Bildgebung der Netzhaut oder der Papille. Wir gehen davon aus, dass dieses Modell angepasst und für zukünftige Anwendungen in anderen Spezies, einschließlich der Maus verwendet werden.

Primäres Glaukom ist eine verheerende Augenkrankheit schätzungsweise 60,5 Millionen Menschen in aller Welt 1 zu beeinflussen, was zu lebensverändernden Sehverlust und Erblindung 2 führen kann. Die Erforschung der Krankheitsmechanismen und Entwicklung neuartiger Therapeutika für Glaukom, sind abhängig von guten Modellen der Krankheit, die einige der Markenzeichen der Pathologie zu rekapitulieren. Wir stellen hier eine Ratte Glaukommodell basierend auf der Methode von Samsel et al. 3 Das Ziel dieses Verfahrens ist es, den Augeninnendruck (IOP) in das Auge durch die Injektion von magnetischen Mikrokügelchen in die vordere Kammer, und mit einem Magnetring direkt erhöhen sie in den Kammerwinkel. Dies behindert Kammerwasserabfluss, der IOP erhöht, was zu Nervenschäden und Zellverlust. Das Protokoll wurde entwickelt, um zu versuchen, ein einfacheres, induzierbar Modell von Glaukom ist. Dieses Protokoll kann einige Vorteile haben,gegenüber bestehenden Techniken. Genetische Maus-Modellen wie dem DBA / 2J zur Verfügung, die nicht verlangen, Verfahren einzuleiten; aber diese können eine unvorhersehbare Auftreten von Krankheitsprogression 4. Demgegenüber induzierbare Modelle, von denen die meisten auf chirurgisch Hebe IOP bei Nagetieren zu verlassen, haben den Vorteil, dass die Einleitung durch den Benutzer gesteuert werden. Einige dieser Methoden können Nachteile der eigenen jedoch haben, auch als technisch anspruchs 5, und kann mehrere Verfahren erfordern erhöhten IOP 6 zu halten. Im Gegensatz dazu ist die induzierbare Verfahren in diesem Manuskript detailliert eine einfache, wirksame und reproduzierbare Technik, die stabile, robuste Druckerhöhungen mit einem minimalen Bedarf an Reinjektion produziert. Zusätzlich, es werden aber keine teure Ausrüstung und erfordert nur grundlegende chirurgische Fähigkeiten durchzuführen. Dieses Protokoll kann für die Leser, die sich um eine technisch weniger anspruchsvolle induzierbaren einzurichten geeignetGlaukom-Modell in ihrem Labor.

<table><tbody><tr><td>250 - 300g weiblich Braun Norwegen Ex-Züchter Ratten</td><td>Harlan UK</td><td>203</td><td></td></tr><tr><td>Tonolab Rebound Tonometer</td><td>Tiolat</td><td>TV02</td><td></td></tr><tr><td>Ketaset (Ketamin)</td><td>Fort Dodge Tiergesundheit</td><td>BN1000118</td><td>37,5 mg/kg</td></tr><tr><td>Domitor (Medetomidinhydrochlorid)</td><td>Orion Pharma</td><td>140-999</td><td>0,25 mg/kg</td></tr><tr><td>Povidon-Jod</td><td>Ecolab</td><td>BN4369LE10</td><td>5% in H2O</td></tr><tr><td>Minim's Kochsalzlösung</td><td>Bausch und Lomb</td><td>PL00033/5017</td><td></td></tr><tr><td>Ringkernmagnet</td><td>Supermagnet</td><td>R-10-07-03-N</td><td></td></tr><tr><td>Magnetische Mikrosphären</td><td>Bangs Laboratories</td><td>UMC4N/9692</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Invitrogen</td><td>14025</td><td></td></tr><tr><td>33 G abgeschrägte Nadel</td><td>Hamilton</td><td>7747-01</td><td>Benutzerdefinierte Nadel</td></tr><tr><td>Luer-Spitzenspritze</td><td>Hamilton</td><td>80601</td><td></td></tr><tr><td>Antisedan (Atipemezolhydrochlorid )</td><td>Orion Pharma</td><td>141-003</td><td>0,25 mg/kg</td></tr><tr><td>Chloramphenicol-Salbe</td><td>Medicom</td><td>18956-0005</td><td></td></tr><tr><td>TUNEL-Färbeset</td><td>Promega</td><td>G3250</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield Eindeckmedien</td><td>Vector Labs</td><td>H-1000</td><td></td></tr></tbody></table>

experimentelle glaukom von ocular injektion von magnetischen mikrokügelchen induzierte

Experimental Glaucoma Induced by Ocular Injection of Magnetic Microspheres

Fortschritte beim Verständnis der Pathophysiologie und der Bereitstellung neuartiger Behandlungen für Glaukom hängen von guten Tiermodellen der Krankheit ab. Wir stellen hier ein Protokoll zur Erhöhung des Augeninnendrucks (IOD) bei der Ratte vor, indem magnetische Mikrosphären in die vordere Augenkammer injiziert werden. Die Verwendung von magnetischen Partikeln ermöglicht es dem Benutzer, die Kügelchen in den Iridokornealwinkel zu manipulieren, wodurch der Flüssigkeitsabfluss aus dem Trabekelwerk sehr effektiv blockiert wird. Dies führt zu einem lang anhaltenden Anstieg des Augeninnendrucks und schließlich zum neuronalen Tod in der Ganglienzellschicht (GCL) sowie zu einer Pathologie des Sehnervs, wie sie bei Patienten mit der Krankheit zu beobachten ist. Diese Methode ist einfach durchzuführen, da sie keine Maschinen, spezielle chirurgische Fähigkeiten oder viele Stunden Übung erfordert, um sie zu perfektionieren. Darüber hinaus sind die Druckerhöhungen sehr robust, und eine erneute Injektion der magnetischen Mikrosphären ist in der Regel nicht erforderlich, im Gegensatz zu einigen anderen Modellen mit Kunststoffkügelchen. Darüber hinaus glauben wir, dass diese Methode für die Adaption an das Mausauge geeignet ist.

Die Injektion von magnetischen Kügelchen in den Kammerwinkel konsequent führte zu einer anhaltenden und robusten Druckanstieg (Abbildung 1), die an dem ersten Zeitpunkt, 3 Tage nach der Injektion leicht beobachtbar war. Ferner wurde der Druckanstieg während der gesamten Dauer des Experiments gehalten und obwohl unser Zeitverlauf beendet bei 18 Tage nach der Injektion wurden andere berichteten Druck bestehen bleibt langfristig 3. Die mittlere IOP gemittelt über die gesamte Länge des Experiments für die Steuerung, nicht-Wulst-injizierten Augen betrug 19,7 ± 0,3 mmHg gegenüber 40,5 ± 2,8 mmHg für Wulst-injizierten Augen (P &lt;0,001). Zusätzlich erhöhte Spitzen IOD von 22,8 ± 0,3 mmHg auf 49,9 ± 2,3 mmHg. Um zu bestimmen, ob die Erhöhung in IOP führt zum Tod von retinalen Ganglienzellen, führten wir TUNEL-Färbung an Retinae und Histologie an Quer Sehnerv Abschnitte (Abbildung 2). In der Netzhaut<html> Wir beobachteten einen Anstieg der TUNEL-Färbung (2A) in sicken injizierten Augen mit erhöhtem IOP. Die Anzahl an apoptotischen Kernen stieg etwa 15-fach, von 1,6 ± 0,5 Zellen in kontralateralen Kontrollen auf 24,5 ± 0,5 Zellen in hypertensive Retinae (2B; P &lt;0,05). Ferner ist in den Augen, in denen magnetische Kügelchen injiziert aber Druck nicht erhöht (wahrscheinlich aufgrund einer unvollständigen Blockade der Kammerwinkel), waren die Anzahlen von TUNEL-positiven Zellen nicht signifikant verschieden von denen der nicht-injizierten Kontrollen (P&gt; 0,05). Dies legt nahe, dass der Zelltod auf Druck ansteigt, nicht auf direkte Toxizität der magnetischen Mikrokugeln zusammen. Schließlich wurde untersucht, Sehnerv Pathologie in der Glaukommodell und sah Akkumulation von Toluidinblau in vielen der Axone, anzeigt Degeneration dieser zellulären Prozesse (2C). ure 1 &quot;src =&quot; / files / ftp_upload / 52.400 / 52400fig1highres.jpg &quot;/&gt; Abbildung 1. Erhöhung des intraokularen Drucks unter Verwendung von magnetischen Mikrosphären. Die Injektion von magnetischen Mikrokügelchen in die vordere Kammer induziert eine robuste, signifikanten Anstieg des intraokularen Drucks (IOP) im Vergleich zur contralateralen Kontroll, nicht injizierten Augen. Y-Achsen-Einheiten = Millimeter Quecksilbersäule (mmHg). Daten = Mittelwert ± SEM. * = P &lt;0,001;. N = 12. Dieser Wert wurde von Foxton et al, Am modifiziert. J. Pathol 182 (4):. 1379-1390. <img alt="Abbildung 2" src="/files/ftp_upload/52400/52400fig2highres.jpg" /> Abbildung 2. Erhöhung von IOP durch Injektion von magnetischen Mikrokügelchen in den Kammerwinkel, induzierten neuronalen Tod in der Ganglienzellschicht (GCL). (A) Repräsentative Bilder der Netzhaut von der Kontrolle (links) und Glaukom (rechts) die Augen für apoptotische Kerne befleckt von TUNEL (grün;weiße Pfeile) und DAPI (blau), die die Anzahl der apoptotischen Kernen erhöht IOP stieg. (B) Quantifizierung von TUNEL-positiven Zellen in der GCL und zeigt, daß die Augen mit erhöhtem IOP (Mitte), signifikant mehr apoptotische Zellen im Vergleich zu Kontrolle (links). Im Gegensatz dazu wird in sicken injizierten Augen, wo der Druck nicht steigt (rechts), keine signifikante Erhöhung der TUNEL-Färbung beobachtet wurde. Daten = Mittelwert ± SEM. * = P &lt;0,05; N = 7-8 (C) Repräsentative Bilder der Sehnerv Färbung und zeigt einen Anstieg der Toluidinblau-Ansammlung (schwarze Pfeile) in beschädigten Axone von Glaukom (rechts), aber keine Kontrolle Augen (links).. Maßstabsbalken = 50 um. Diese Zahl hat sich von Foxton et al modifiziert., Am. J. Pathol 182 (4):. 1379-1390.

Wir stellen eine Methode zur Induktion eines erhöhten Augeninnendrucks (IOD) vor, indem magnetische Mikrosphären in das Rattenauge injiziert werden, um das Glaukom zu modellieren. Dies führt zu starken Druckanstiegen und einem ausgedehnten Absterben der Neuronen. Dieses Protokoll ist einfach durchzuführen, erfordert keine wiederholten Injektionen und erzeugt einen stabilen, lang anhaltenden IOD-Anstieg.

Experimentelle Glaukom von Ocular Injektion von magnetischen Mikrokügelchen Induzierte

Progress in understanding the pathophysiology, and providing novel treatments for glaucoma is dependent on good animal models of the disease. We present ...

Das Ziel dieses Verfahrens besteht darin, einen erhöhten intraokularen Druck bei der Ratte durch Injektion paramagnetischer Mikrosphären in die vordere Augenkammer zu induzieren. Platziere zunächst einen magnetischen Ring um das Auge eines anästhesierten Tieres, wasche die magnetischen Mikrosphären, suspendiere sie erneut in Lösung und fülle sie anschließend in eine Spritze. Injiziere danach die magnetischen Mikrosphären in die vordere Augenkammer des Auges.Entfernen Sie den magnetischen Ring während der Wiederherstellung. Die aus histologischen Analysen wie TUNEL-Färbung oder Sehnervfärbung gewonnenen Prozessdaten können den Tod retinaler Ganglienzellen messen, der durch einen erhöhten intraokularen Druck verursacht wird. Waschen Sie die sterilisierten magnetischen Mikrosphärenperlen mit einer Größe von acht Mikrometern dreimal in einem Milliliter Hank’s Buffered Saline Solution durch Wiederholtes Aufschwemmen und Zentrifugieren bei 10.000 ×g für fünf Minuten.Anschließend erneut in 0,5 Milliliter HBSS suspendieren, um eine Lösung mit 30 Milligramm pro Milliliter zu erhalten. Nun mit einem für die Verwendung am Rattenauge kalibrierten Rebound-Tonometer fünf Basiswerte-Messungen des intraokularen Drucks (IOP) an wachen Tieren durchführen. Nach der Anästhesie des Ratten Augenölsalbe auf das nicht behandelte kontralaterale Auge auftragen, um es feucht zu halten.Während der Anästhesie 0,5 % Propanhydrochlorid, ein Lokalanästhetikum, auf das Operationsauge auftragen. Danach das Auge mit 5 % Povidon-Iod in Wasser spülen. Nach fünf Minuten das Povidon-Iod abwaschen und das Auge mit 0,9 % steriler Kochsalzlösung ausspülen.Halten Sie das Auge während der Anästhesie durch regelmäßige Applikation steriler Kochsalzlösung feucht. Platzieren Sie nun einen sterilen Magneten um das Auge, um das Risiko einer Irisverletzung zu minimieren und den Verlust der Perle zu reduzieren. Orientieren Sie die Nadel tangential zur Hornhautoberfläche und so parallel wie möglich zur Iris.Führen Sie die Injektion von 25 Mikrolitern einer 30 Milligramm pro Milliliter-Lösung aus gammastrahlenbehandelten magnetischen Mikrosphären in die vordere Augenkammer durch. Lassen Sie die Nadel nach der Injektion eine Minute lang an Ort und Stelle, um sicherzustellen, dass sich die Kügelchen im Kammerwinkel der Hornhaut absetzen und den Abfluss der Kammerflüssigkeit über das trabekuläre Netzwerk behindern. Winkeln Sie die Nadel leicht an, einige Sekunden, nachdem sich die Kügelchen ursprünglich abgesetzt haben, um einen leichten Austritt der Kammerflüssigkeit zu ermöglichen und vorübergehende Anstiege des intraokularen Drucks zu minimieren.Um die weitere Verwendung der Nadel in separaten Verfahren zu gewährleisten, spülen Sie die Nadel mit PBS. Danach 70 % Ethanol und anschließend destilliertes Wasser in diesem Stadium. Falls erforderlich, entfernen Sie den Magneten und verwenden ihn, um die Perlen in Bereiche mit unvollständiger Abdeckung zu ziehen.Belassen Sie den Magneten nach der Injektion weitere 10 Minuten am Auge, um sicherzustellen, dass sich die Kügelchen gut im Irido-Korneal-Winkel absetzen. Heben Sie die Anästhesie mit 0,25 Milligramm pro Kilogramm ESOL-Hydrochlorid auf.Verabreichen Sie 0,5 Propanhydrochlorid zur Analgesie und Chloramphenicol-Salbe lokal zur Infektionsprophylaxe. Lassen Sie die Tiere auf einer Wärmematte ruhen, bis sie die Bewegungsfähigkeit wiedererlangen. Danach in eine Warmbox verbringen.Verwenden Sie das kontralaterale Auge als unbehandelte Kontrolle. Wiederholen Sie die IOP-Messungen alle zwei bis drei Tage nach der Applikation der Perlen und anschließend alle zwei bis drei Tage. Legen Sie die Kriterien für die Einbeziehung von Augen in Studien fest, darunter, dass der IOP um fünf Millimeter Quecksilber über dem Druck des kontralateralen Kontrollauges liegen muss und der IOP 60 Millimeter Quecksilber nicht überschreitet. Augen, bei denen der Druck innerhalb einer Woche nach der Injektion auf den Ausgangswert zurückkehrt, sollten nicht in die Studien einbezogen werden. Es ist jedoch möglich, Perlen erneut in Augen zu injizieren, die keinen hohen IOP entwickeln, falls gewünscht.Fixieren Sie die dissezierten Augen und den Sehnerv in 4 % Paraldehyd und bewerten Sie die Schädigung der retinalen Neuronen mittels TUNEL-Färbung sowie die Schädigung des Sehnervs mittels Toluidinblau-Färbung. In diesem Experiment führte die Injektion magnetischer Kügelchen in den Kammerwinkel des Auges zu einem anhaltenden und starken Anstieg des Augeninnendrucks. Außerdem blieb der Druckanstieg während der gesamten Versuchsdauer aufrechterhalten.Der mittlere Augeninnendruck, gemittelt über die gesamte Versuchsdauer, betrug für die Kontrollaugen ohne Glaskugel-Injektion 19,7 ± 0,3 Millimeter Quecksilbersäule und 40,5 ± 2,8 Millimeter Quecksilbersäule für die mit Glaskugeln injizierten Augen. Zusätzlich stieg der maximale Augeninnendruck von 22,8 ± 0,3 Millimeter Quecksilbersäule auf 49,9 ± 2,3 Millimeter Quecksilbersäule an, um zu bestimmen, ob eine Erhöhung des Augeninnendrucks zum Absterben retinaler Ganglienzellen führt. Es wurde eine TUNEL-Färbung an den Netzhäuten sowie eine Histologie an Querschnitten des Sehnervs in der Netzhaut durchgeführt.Wir beobachteten eine Zunahme der Tunnel-Färbung in Augen mit erhöhtem IOP, die mit Kügelchen injiziert worden waren. Die Anzahl der apoptotischen Kerne stieg etwa 15-fach im Vergleich zu den kontralateralen Kontrollretinas mit Hypertonie an, wie erwartet. Bei Augen, in die magnetische Kügelchen ohne Druckerhöhung injiziert worden waren, unterschied sich die Anzahl der TUNEL-positiven Zellen nicht signifikant von der der nicht injizierten Kontrollen. Eine weitere Untersuchung der Optikusnervpathologie im Glaukommodell zeigte die Anreicherung von Brillantblau in vielen Axonen, was auf eine Degeneration dieser zellulären Fortsätze hinweist.

experimental-glaucoma-induced-ocular-injection-magnetic

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video zeigt die Induktion eines Glaukoms bei einer anästhesierten Ratte durch Injektion von hypertoner Kochsalzlösung in die Episkleralle. Die Kochsalzlösung gelangt über den Schlemm-Kanal in das Trabekelwerk und verursacht Gewebenarben, die den Abfluss des Kammerwassers blockieren und den Augeninnendruck erhöhen. Der erhöhte Druck schädigt die Ganglienzellen der Netzhaut, was zum Glaukom führt.

Eine hypertone Kochsalzlösungs-Injektionstechnik zur Induktion eines Glaukoms bei Ratten

In diesem Video wird eine anästhesierte Ratte einem Augeneingriff unterzogen, bei dem magnetische Kügelchen unter einem Magnetfeld in die Vorderkammer injiziert werden, um den Iridokornealwinkel zu blockieren. Diese Blockade verstopft das Trabekelwerk, verhindert den Abfluss des Kammerwassers und führt zu einem erhöhten Augeninnendruck, wodurch die Ganglienzellen der Netzhaut und der Sehnerv geschädigt werden. Dabei entwickelt sich ein glaukomähnlicher Zustand.

Experimentelle Glaukom-Induktion über Iridokornealwinkelobstruktion in einem Mausmodell

Quelle: Bosco, A., et al.  In vivo Dynamik der retinalen Mikrogliaaktivierung während der Neurodegeneration: Konfokale ophthalmoskopische Bildgebung und Zellmorphometrie beim Mausglaukom. J. Vis. Exp. (2015) Dieses Video zeigt die In-vivo-Bildgebung von retinalen Mikroglia in einem Mausmodell des Glaukoms. Eine transgene Maus mit fluoreszierenden Protein-exprimierenden retinalen Mikroglia wird unter einem Ophthalmoskop positioniert. Infrarotbeleuchtung wird verwendet, um den Sehnervenkopf (ONH)...

In vivo Bildgebung von retinalen Mikroglia in einem Mausmodell des Glaukoms

Chronische Augenhypertension induziert wird mittels Laserkoagulation der Trabekelnetzwerk in Maus Augen. Der Augeninnendruck (IOP) wird für mehrere Monate nach der Laser-Behandlung erhöht. Die Abnahme der Sehschärfe und Kontrastempfindlichkeit von Versuchstieren werden anhand des optomotor Test.

Ein Laser-induzierten Maus-Modell der chronischen Ocular Hypertension zu Sehfehler Charakterisierung

Dieses Video zeigt ein Verfahren, mit einem klinischen 3 T Scanner, für kontrastverstärkte MR-Bildgebung des naiven Maus visuelle Projektion und für sich wiederholende und Längs in-vivo-Studien der Sehnerv-Degeneration mit akuter Sehnerven Quetschverletzung und chronische Degeneration des Sehnervs an assoziierten Knock-out-Mäusen (p50 KO).

In-vivo-Imaging von Optic Nerve Fiber Integrität von Contrast-Enhanced MRI in Mäuse

Hier stellen wir ein Protokoll okulärer Hypertension im murinen Auge zu induzieren, die in dem Verlust von retinalen Ganglionzellen führt, wie bei Glaukom beobachtet. Magnetische Mikrokügelchen werden in die vordere Kammer injiziert und angezogen, um den Kammerwinkel unter Verwendung eines Magneten den Abfluss von Kammerwasser zu blockieren.

Ein Magnet Microbead Occlusion Modell Ocular Hypertension Abhängige Glaucoma in Mäusen zu induzieren

Das Glaukom ist durch eine Schädigung der retinalen Ganglienzellen gekennzeichnet. Die Induktion des Glaukoms in Tiermodellen kann Aufschluss über die Erforschung dieser Krankheit geben. Hier skizzieren wir ein Verfahren, das den Verlust von RGCs in einem in vivo Rattenmodell induziert und die Vorbereitung von Whole-Mount-Netzhäuten für die Analyse demonstriert.

Glaucoma auslösende Verfahren in ein<em&gt; In Vivo</em&gt; Rat Modell und Whole-mount Retina Vorbereitung

Chronische okulärer Hypertension wird induziert durch die Anwendung einer Circumlimbal Naht bei Ratten und Mäusen, was zu funktionellen und strukturellen Verschlechterung der retinalen Ganglienzellen, die konsistent mit Glaukom.

Ein Modell des Glaukoms induziert durch Circumlimbal Naht bei Ratten und Mäusen

Hier stellen wir ein Protokoll zur Induzieren von okulärer Hypertonie und glaukomatischer Neurodegeneration in Mausaugen durch intracameralInjektion von Silikonöl und das Verfahren zur Silikonölentfernung aus der vorderen Kammer vor, um erhöhten Augeninnendruck Normalen.

Ein reversibles Siliziumöl-induziertes Okularhypertonie-Modell bei Mäusen

Das Ziel dieses Protokolls ist es, ein neuartiges Modell der glaukomatösen Neurodegeneration zu charakterisieren, das auf einer thermischen 360°-Kauterisierung des limbalen Gefäßplexus basiert und eine subakute okuläre Hypertonie induziert.

Vollkreiskauterisierung des limbalen Gefäßplexus bei chirurgisch induziertem Glaukom bei Nagetieren

Erfahren Sie, wie Sie experimentelles Glaukom bei Ratten durch Injektion magnetischer Mikrokügelchen in die Vorderkammer induzieren. Diese Methode ermöglicht stabile, langanhaltende Erhöhungen des Augeninnendrucks für Glaukomforschung.

Experimentelle Glaukom von Ocular Injektion von magnetischen Mikrokügelchen Induzierte

Weitere Videos entdecken