Name: Das In Ovo Chick Chorioallantoismembran (CAM) Assay als effiziente Xenograftmodell des hepatozellulären Karzinoms (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 17 s
Description: Lernen Sie die CAM-Xenotransplantationsmethode für hepatozelluläres Karzinom mit bebrüteten Hühnereiern. Dieses effiziente In-Ovo-Modell ermöglicht die Untersuchung von Tumorwachstum und Angiogenese mit Überlebensraten von bis zu 93 Prozent.

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A.S. wurde teilweise durch Zuschüsse der National Institutes of Health (NIH), des National Institute of Dental and Craniofacial Research (5R03DE021741-02) und des National Cancer Institute (1K08CA154963-01A1) unterstützt. 
Das Howard Hughes Medical Institute hat M.L. über das HHMI Medical Research Fellows Program finanziert.

1. Egg Incubation <ol><li> Erhalten Sie 8 Tage alt spezifischen pathogenfreien befruchteten Eiern. </li><li> Zeigen Eier in rotierenden Eierablage, gestempelt Enden nach oben zeigen, und setzen Sie den Drehkorb in einem Ei-Inkubator. Eier Inkubieren für 48 Stunden bei 36 ° C und 50% Luftfeuchtigkeit. </li></ol> 2. Löschen Sie die CAM und Öffnen der Eier <ol><li> Sammeln Eier aus Inkubator. Platz Eier im Eierregal, gestempelt Seite nach oben und bringen Sie zu Sterilbank. </li><li> Schalten Sie die Zimmer und Kapuze Lichter. </li><li> Halten Sie die gestempelt Ende Ei leicht, um das Ei Candler, um die Gefäßsystem des CAM sowie die Luftsack freizulegen. HINWEIS: Das Ei candler ist ein verwendet, um den sich entwickelnden Embryo und zugehörigen Luftsack und Gefäßsystem zu visualisieren Lichtquelle. </li><li> Legen Sie einen Bleistiftstrich zwischen zwei großen Blutgefäße. </li><li> Schalten Sie das Licht und mit einem sterilen Push-Pin, um ein Loch an der Spitze des Eis über dem Luftsack (gestempelt Ende) und ein Loch an der pe machenNciI Marke. Schieben Sie die Push-Pin den ganzen Weg durch; ein Loch ca. 3 mm tief üblicherweise ausreichend. </li><li> Schalte das Licht aus. Squeeze Sicherheitskugel Drücken der offenen Ende fest gegen das Loch über dem Luftsack. Absaugen, um Luft in das Loch an der Bleistiftstrich zu ziehen, wodurch der CAM an der Bleistiftstrich weg von der Schale fallen. </li><li> Prüfen, ob der Luftsack aus dem Stanz Ende des Eis auf den Bleistift markierte Loch mit der candler bewegt. Wenn nicht, verwenden Sie die Push-Pin beide Löcher etwas tiefer zu machen und dann erneut bewerben Saug mit der Sicherheitskugel. </li><li> Schalten Sie das Licht. Mit dem Ei in einer Hand, schalten Sie den Dremel Rotationswerkzeug mit einer 15/16-Zoll-Trennscheibe angebracht und stellen zwei Querschnitte nur tief genug, um durch die Schale geschnitten, aber nicht tief genug, um den ganzen Weg hinunter zu der gedrückten geschnitten CAM. Stellen die Schnitte etwa 2 cm Länge und 1 cm voneinander entfernt sind. Nehmen Sie die Schnitte breit genug ist, so dass ein Silikonring 1 cm Durchmesser passieren kannaber dünner als die Breite der Standard-Klebeband. </li><li> Als nächstes stellen Sie 1 Längsschnitt zwischen und an den Enden der beiden Querschnitte durch leichtes Berühren der Trennscheibe auf die Schale. </li><li> Schieben einer sterilen Pinzette unter dem Mantelteil und parallel zur Schale. Besorgen Sie sich die Shell-Stück mit der Zange und das ganze Stück sauber zu entfernen. </li><li> Legen Sie Klebeband über dem neu geöffneten Fenster, so dass Sie sicher, dass an einem Ende zum leichteren Entfernen fach über sich selbst. </li><li> Die Eier zurück in Inkubator in der Eierschale (in den sich drehenden Eies Racks) bis zum Zeitpunkt der Impfung. </li></ol> 3. Impfung <ol><li> Halten Basalmembranprotein Gemisch, wie Matrigel, auf Eis in der Haube (um die Polymerisation zu verhindern) und Ort. </li><li> Verwenden 2 mM EDTA, um Zellen zu trennen (4-5 ml pro T75-Flasche) und bringe Kolben für 5 Minuten in Gewebekultur-Inkubator. </li><li> Resuspendieren der abgelösten Zellen in Medien und rechnen mit einer Zählkammer und Trypanblau. Verwenden Sie zwischen 500.000 to 2.000.000 Zellen zum Pfropfen auf dem CAM, je nach Zelllinie. Optimieren Sie die richtige Zahl in Vorversuchen. </li><li> Maßnahme Volumen für geeignete Zellzahl und Zentrifuge bei 500 xg für 5 min benötigt. </li><li> Überstand verwerfen und dann resuspendieren Zellpellet in 40 μ l PBS ++ und 20 μ l der Basalmembran Mischung. HINWEIS: An diesem Punkt können die Zellen mit Arzneimitteln oder anderen Testmitteln für Experimente benötigt wird durch Resuspendieren in die Zelle / Basalmembran Gemisch Suspension behandelt. Alternativ können Mittel auf die Zelle / Basalmembran Mischung Suspension nach der Transplantation pipettiert werden. </li><li> Abrufen Eierregal mit Eier aus dem Inkubator und Platz in der Sterilbank. </li><li> Peel off Band des Fensters, rufen Sie eine 1 mm Silikonring von der Kappe eines kryogenen Fläschchen mit sterilisierten Pinzette und legen Sie den Ring durch das Fenster. </li><li> Pipettieren Sie die 60 μ l Zell Lösung von PBS ++ und Basalmembran Mixture direkt in das Zentrum des Silikonring auf der CAM ruht. </li><li> Re-Band das Fenster und verschieben Eierablage zurück zum Inkubator. An dieser Stelle seien Sie vorsichtig beim Bewegen der Eier als dem Ring und der Zellsuspension kann leicht verschoben werden. </li><li> Ermöglichen Tumoren, für 5-7 Tage wachsen gelassen. </li></ol> 4. Ernten Tumoren <ol><li> Zeigen under-Pad in der Haube. Vorbereitung 35 x 10 mm Platten und Paraformaldehyd als Container für die Histologie notwendig. Setzen Sie 1 ml PBS ++ je 35 x 10 mm Platte. </li><li> Zeigen BIOHAZARD Beutel in der Haube. Nehmen sterile Dissektion Schere und legen Sie das spitze Ende in das Ei in das Loch in der Nähe des Ende gestempelt. </li><li> Um den gesamten Ei längs geschnitten. Hinweis: Die CAM und der Tumor mit dem Ring sollte auf die obere Hälfte der Schale mit dem Fenster zu halten. </li><li> Verwendung Dissektion Schere und Pinzette, sezieren den Tumor von der CAM und legen Tumor in der 35 x 10 mm Platte. Messen und wiegen Tumoren. Festen Tumoren in paraformaldehyde und sie für die Verwendung in der Histologie und Immunhistochemie Experimenten in Paraffin eingebettet werden. </li></ol> 5. (Optional): Tumor Zelldissoziation <ol><li> Verwenden Sie Dissektion Schere, um den Tumor in der 35 x 10 mm Platten Blatt vor den Mund. Pour Hackfleisch Tumor in ein 15 ml Zentrifugenrohr entfernen und so viel PBS ++ wie möglich durch Pipettieren. </li><li> 2 ml Collagenase (1 mg / ml in PBS ++) biegen Rohr über mehrere Male, und inkubieren Rohr bei 37 ° C für mindestens 30 min (bis zu mehrere Stunden). </li><li> 5 ml Medium in jedes Röhrchen und gründlich resuspendieren durch Auf- und Abpipettieren 20 - 40x. Gründliche Pipettieren ist entscheidend für die komplette Zelle Dissoziation. </li><li> Erlauben Sediment zu begleichen, und den Überstand in ein frisches Röhrchen. Zentrifuge bei 500 × g für 5 min. Überstand entfernen und hinterlässt dissoziierten Zellpellet. HINWEIS: An diesem Punkt kann die Zellpellets für verschiedene Experimente verwendet werden (Durchflusszytometrie Lyse für die Verwendung in Western Blots, die RNA-Isolierung, usw.). Gesamttumorzellzahl kann auch mit einer Zählkammer und Trypanblaufärbung erhalten werden. Beachten, dass kleinere, oval geformte Zellen Hühnerzellen aus dem CAM und sollten nicht als Tumorzellen gezählt. Es sollte eine minimale Anzahl von verunreinigenden Nicht-Tumor (CAM-Zellen), wenn der Tumor vom CAM sorgfältig seziert. </li></ol>

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<li>Hagedorn, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF+coordinates+interaction+of+pericytes+and+endothelial+cells+during+vasculogenesis+and+experimental+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">VEGF coordinates interaction of pericytes and endothelial cells during vasculogenesis and experimental angiogenesis.</a> Dev Dyn. 230 (1), 23-33 (2004).</li>
</ol>

A.S. erhält eine Finanzierung von der Firma Advaxis Pharmaceutical zur Unterstützung einer von Prüfärzten initiierten klinischen Studie.

Mehrere wichtige Schritte in diesem Protokoll wahrscheinlichste Konto für die verbesserte Lebensrate der Embryonen sowie erhöhte Zuverlässigkeit des Tumorwachstums. Fallenlassen der CAM weg von der Schale durch eine Saugwirkung auf den Luftsack ist weniger invasiv als andere bestehende Methoden (mit einer Nadel an Albumin aus dem Ei, stumpf, usw. zu entfernen). Mit einem sterilen Push-Pin, um die beiden kleinen Löcher für dieses Verfahren erforderlich zu schaffen, ist der schwierigste Teil des Protokolls. Mit zu viel Kr...

Das Leberzellkarzinom (HCC) ist die 3. häufigste Ursache der Krebssterblichkeit in der Welt 1. Derzeit werden nur 30% der HCC-Patienten sind für potenziell kurative chirurgische Behandlungen 2 und systemische Chemotherapie nicht wirksam ist 3. Daher besteht ein dringender ungedeckten klinischen Bedarf nach neuen HCC-Therapien, und die Entwicklung von Modellsystemen für eine effiziente Prüfung von neuen Wirkstoffen. Hühnchen-Chorioallantois-Membran (CAM) Assay liefert eine reproduzierbare und kosteneffiziente und schnelle mittleren Durchsatz Verfahren zum Testen potentiellen Antitumormedikamenten in vivo. Das CAM-Assay wurde ausgiebig verwendet, um die Angiogenese 4 studieren. Es wurde auch erfolgreich in einem Tumor-Xenotransplantat-Modell von Krebs entwickelt, einschließlich Glioblastom 5, Bauchspeicheldrüsenkrebs 6, Melanom 7-9 und Osteosarkom 10-11. Sowohl in ovo 12 und ex ovo13 Techniken sind in der Literatur verwendet worden, mit Details variierend von Protokoll zu Protokoll. Eine große Herausforderung für die CAM-Xenograft-Modell ist die relativ hohe Inzidenz von embryonalen Tod nach Manipulation des Ei, mit veröffentlichten Hühnerembryosterblichkeit reicht von 25 bis 50 Prozent 11-14. In diesem Artikel beschreiben wir die Entwicklung eines in-ovo-Xenograft-Modell des HCC, die zuverlässig das Wachstum von dreidimensionalen, vaskularisierten Tumoren, die histologisch ähnlich undifferenziert HCC produziert. Wir haben ein Protokoll zuerst von Ossowski et al. 14 beschrieben angepasst und chick embryonale Überlebensraten von bis zu 93% mit extrem hoher Tumor engraftment erreicht.

<table><tbody><tr><td>Premium Bruteier</td><td>Charles River</td><td>N/A</td><td>http://www.criver.com/files/pdfs/avian/av_c_spf_egg_price_list.aspx</td></tr><tr><td>Brutschränke</td><td>GQF</td><td>Hova-Bator 2362N</td><td></td></tr><tr><td>Drehbare Eierschalen</td><td>GQF</td><td>1611 Automatischer Eierwender</td><td></td></tr><tr><td>Eierkerzen</td><td>Lyon</td><td>Hi-Power 950-070</td><td></td></tr><tr><td>Dremel 100 Rotationswerkzeug mit 15/16 Trennscheibe</td><td>Dremel</td><td>100-N/7</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Pinzette, Stecknadel, Sezierschere, Tesaband</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD Biosciences</td><td>356234</td><td></td></tr><tr><td>Kryofläschchen, Außengewinde mit Silikonscheibe</td><td>Corning</td><td>430659</td><td></td></tr><tr><td>Kollagenase aus Clostridium histolyticum</td><td>Sigma</td><td>C9891</td><td></td></tr></tbody></table>

das<em&gt; in ovo</em&gt; chick chorioallantoismembran (cam) assay als effiziente xenograftmodell des hepatozellulären karzinoms

The In Ovo Chick Chorioallantoic Membrane (CAM) Assay as an Efficient Xenograft Model of Hepatocellular Carcinoma

Die Hühner-Chorioallantoismembran (CAM) beginnt am Tag 7 nach der Befruchtung zu entwickeln und reift bis zum Tag 12. Die CAM ist natürlich immungeschwächten und gefäßreiche, so dass es ein ideales System für die Tumorimplantation. Weiterhin enthält der CAM extrazelluläre Matrixproteine ​​wie Fibronektin, Laminin, Kollagen, Integrin alpha (v) beta3 und MMP-2, so dass es ein attraktives Modell zur Tumorinvasion und Metastasenbildung zu untersuchen. Wissenschaftler haben lange Vorteil der Physiologie des CAM durch Verwendung als ein Modell der Angiogenese gemacht. Vor kurzem hat der CAM-Assay wurde geändert, um als ein in vivo-Xenotransplantat-Modellsystem für verschiedene Krebsarten, die die Lücke zwischen Grundlagenarbeit in vitro und komplexere Tierkrebsmodellen überbrückt zu arbeiten. Der CAM-Test ermöglicht die Untersuchung von Tumorwachstum, Anti-Tumor-Therapien und pro-Tumor molekularen Wege in einem biologisch relevanten System, das sowohl kosten- und zeiteffektiv ist. Hier die Entwicklung von CAM xen beschreiben wirograft Modell des hepatozellulären Karzinoms (HCC) mit embryonalen Lebensraten von bis zu 93% und zuverlässigen Tumor nehmen, um das Wachstum von dreidimensionalen, vaskularisierten Tumoren führt.

Repräsentative Abbildungen der wichtigsten Schritte in dem Protokoll werden hier gezeigt. 1A zeigt die Verwendung des candler um den sich entwickelnden Embryo, den Luftsack und das Gefäßsystem des CAM zu visualisieren. 1B-1C zeigen den Vorgang des Fallenlassens der CAM indem die beiden Löcher und dann Anlegen eines Unterdrucks unter Verwendung der Sicherheitskugel und 1D zeigt eine erfolgreich fiel CAM mit einer großen Luftblase unter dem Bleistift markierte Loch. <stro...

Die chorioallantoische Membran (CAM) des Kükens ist immundefizient und stark vaskularisiert, was sie zu einem natürlichen in vivo Modell des Tumorwachstums und der Angiogenese macht. In diesem Protokoll beschreiben wir eine zuverlässige Methode zur Züchtung dreidimensionaler, vaskularisierter hepatozellulärer Karzinome (HCC) mit Hilfe des CAM-Assays.

Das<em&gt; In Ovo</em&gt; Chick Chorioallantoismembran (CAM) Assay als effiziente Xenograftmodell des hepatozellulären Karzinoms

The chick chorioallantoic membrane (CAM) begins to develop by day 7 after fertilization and matures by day 12. The CAM is naturally immunodeficient and ...

Das übergeordnete Ziel dieses Experiments besteht darin, ein verlässliches CAM-Xenotransplantatmodell des hepatozellulären Karzinoms zu entwickeln. Dies wird erreicht, indem man zunächst die Eier inkubiert, um sie für die Inokulation vorzubereiten. Als zweiter Schritt wird die Chorioallantoismembran oder CAM des Eis abgesenkt und ein Fenster in die Eierschale geschnitten. Anschließend wird das Ei durch das Fenster in der Eierschale mit humanen hepatzellulären Karzinomzellen beimpft, um das Tumorwachstum zu etablieren. Die Ergebnisse zeigen, dass dreidimensionale, vaskularisierte Tumore erfolgreich mit humanen Zelllinien des hepatzellulären Karzinoms gezüchtet wurden. Mit diesem Protokoll wurden Embryonalüberlebensraten von bis zu 93 % erreicht.Die Hauptvorteile des CAM-Assays gegenüber anderen In-vivo-Techniken wie Maus-Tumormodellen sind die kurze Versicherdauer, die geringen Gesamtkosten des Experiments und die einfache Verfügbarkeit. Mit CAM-Assays kann man Angiogenese, Tumore, Zellinvasion und Metastasierung untersuchen. Außerdem lassen sie sich zur Bestimmung der Wirkung von kleinen Molekülen und Arzneistoffen auf das Wachstum und die Entwicklung von Tumoren verwenden.Die visuelle Demonstration dieses Verfahrens ist wichtig, da die verschiedenen Schritte zur Vorbereitung des Eis – einschließlich Kandlieren, Identifizierung der Gefäße, Anbringen kleiner Einstiche in der Nähe des Luftkammers und oben auf dem Ei, ohne es zu entleeren – sowie das Öffnen der Fenster, ohne die Eierschale zu beschädigen, und das Sicherstellen, dass die Kamera während sämtlicher Prozesse intakt bleibt, für neue Anwender herausfordernd sein können. Um zu beginnen, platzieren Sie.8 Tage alte spezifisch pathogenfreie Embryonenhühnereier in eine rotierende Eierschale mit gestempelten Seiten nach oben. Stellen Sie die rotierende Schale in einen Brutkasten bei 36 Grad Celsius mit 50 % Luftfeuchtigkeit und inkubieren Sie die Eier 48 Stunden lang. Nach der Inkubation stellen Sie die Eier in ein Eiergestell mit nach oben zeigenden gestempelten Enden und platzieren Sie sie in einer laminarer Luftstromhaube.Schalten Sie das Raum- und Abzugshaubenlicht aus und halten Sie das gestempelte Ende des Eis vorsichtig an den Eikandeler, um die Gefäßversorgung der Chorioallantoismembran des Kükens, bekannt als CAM, sowie den Luftbeutel sichtbar zu machen. Markieren Sie mit einem Bleistift einen Punkt zwischen den beiden großen Blutgefäßen. Anschließend bohren Sie ein Loch an der Spitze des Eies über dem Luftbeutel am gestempelten Ende und ein zweites Loch an der mit dem Bleistift markierten Stelle.Mit einem sterilen Nadelpin sollte das Loch etwa drei Millimeter tief sein. Drücken Sie die Luft aus einem Sicherheitskolben und setzen Sie das offene Ende fest auf das Loch über dem Luftsack. Lassen Sie den Kolben langsam los, um Saugwirkung zu erzeugen, wodurch Luft in das Loch an der Bleistiftmarkierung gezogen wird und die Nuss vom Kalkgehäuse abfällt.Überprüfen Sie mithilfe des Ei-Transluminators, ob sich der Luftbeutel vom gestempelten Ende des Eis zur mit dem Bleistift markierten Öffnung bewegt hat. Falls nicht, vertiefen Sie beide Löcher leicht und setzen Sie erneut Saugkraft mit dem Sicherheitsgummi auf. Halten Sie danach das Ei mit einer Hand und verwenden Sie ein Rotationstool mit einer 1516-Zoll-Schneidscheibe.Führen Sie zwei Querschnitte durch die Schale durch, ohne die Nocke zu berühren. Die Schnitte sollten zwei Zentimeter lang und einen Zentimeter voneinander entfernt sein. Anschließend führen Sie Längsschnitte an den Enden der beiden Querschnitte durch, indem Sie das Trennrad leicht an die Schale ansetzen.Um die Schale zu entfernen, sterile Pinzette unter das Schalenstück schieben und parallel zur Schale führen. Das Stück mit der Pinzette greifen und sauber entfernen. Ein Ende eines Klebestreifens über sich selbst halten und dann den Klebestreifen über die Öffnung im Ei legen.Stellen Sie das Ei in eine Eierschale und setzen Sie die Schale für nicht mehr als zwei bis drei Stunden vor der Inokulation ohne Drehung in den Inkubator. Zum Vorbereiten der Inokulation stellen Sie eine Mischung aus Basalmembranproteinen, wie Matrigel, auf Eis, um eine Polymerisation zu verhindern. Verwenden Sie anschließend vier bis fünf Milliliter einer zweimillimolaren EDTA-Lösung pro Kolben, um die Tumorzellen abzulösen, und stellen Sie den Kolben fünf Minuten lang in den Zellkultur-Inkubator.Reinigen Sie die abgelösten Zellen im Medium und zählen Sie die Zellanzahl. Verwenden Sie je nach Zelllinie zwischen 500.000 und 2 Millionen Zellen für die Transplantation auf den Cam. Überführen Sie danach das zur Erzielung der geeigneten Zellzahl erforderliche Volumen in ein neues Röhrchen und zentrifugieren Sie fünf Minuten lang.Bei 500 × g das Überstand entfernen und das Zellpellet in 40 µL PBS mit Kalzium und Magnesium, bekannt als PBS plus plus, und 20 µL Basalmembranmischung resuspendieren. An diesem Punkt können Medikamente oder andere Testsubstanzen der Zellsuspension hinzugefügt werden.Als Nächstes stellen Sie die Eierschale in die laminare Luftströmungshaube. Entfernen Sie das Klebeband vom Ei und geben Sie einen sterilen Silikonring mit einem Durchmesser von einem Millimeter aus einer kryogenen Vial durch die Öffnung auf das Chorioallantoisgefäß. Geben Sie die 60-Mikroliter-Lösung aus Zellen, PBS plus plus und Basalmembranmischung in die Mitte des Silikonrings, verschließen Sie das Fenster erneut mit Klebeband und bringen Sie die Eierschale vorsichtig zurück in den Inkubator.Lassen Sie die Tumoren fünf bis sieben Tage wachsen. Zum Ernten der Tumoren. Legen Sie eine Unterlage und einen Bioabfallsack in die Sicherheitswerkbank.Bereiten Sie 35 Millimeter mal 10 Millimeter große Platten mit einem Milliliter PBS plus plus und Paraformaldehydbehältern nach Bedarf für die Histologie vor. Führen Sie das spitze Ende einer sterilen Dissektions-Scalpells in das Ei an der Öffnung in der Nähe des gestempelten Endes ein und schneiden Sie entlang der gesamten Länge des Eis. Die CAM und der Tumor mit dem Ring sollten an der oberen Hälfte der Schale mit der Öffnung haften bleiben.Entnehmen Sie den Tumor aus der CAM mittels Dissektion, Schere und Pinzette und legen Sie den Tumor in eine 35 mm × 10 mm große Petrischale. Messen und wiegen Sie den Tumor. Fixieren Sie den Tumor in Paraform, Aldehyd und paraffineinbetten Sie ihn für die Verwendung in histologischen und immunhistochemischen Experimenten. Nach der Entnahme des Tumors wird dieser mit einer Präzisionsschere in der Platte zerkleinert. Anschließend das zerkleinerte Tumorgewebe in ein 15-Milliliter-Zentrifugenröhrchen geben und das PBS plus plus mittels Pipette entfernen. Zwei Milliliter einer Lösung mit einer Konzentration von einem Milligramm pro Milliliter Kollagenase in PBS plus plus hinzufügen und durch mehrmaliges Umstülpen des Röhrchens vermischen.Die R&ouml;hre bei 37 Grad Celsius f&uuml;r mindestens 30 Minuten und bis zu mehreren Stunden inkubieren. Anschlie&szlig;end f&uuml;nf Milliliter Medium zur R&ouml;hre hinzuf&uuml;gen und durch 20 bis 40 Pipettierzyklen gr&uuml;ndlich mischen. Dies ist entscheidend, um die Zellen vollst&auml;ndig zu dissoziieren.Nachdem sich das Sediment abgesetzt hat, überführen Sie das Snat in ein frisches Gefäß, zentrifugieren Sie das Gefäß bei 500 × g für fünf Minuten und verwerfen Sie den Überstand, wobei das pelletierte, dissoziierte Zellpräparat zurückbleibt. Als die Probe mit HUH-sieben-Tumorzellen beimpft war, war ein vascularisierter Tumor innerhalb des Rings sichtbar. Nach fünf Tagen Wachstum zeigte die Histologie der HUH-sieben-Tumorzelle aus dem CAM-Assay, dass die Tumorzellen undifferenzierten hepatzellulären Karzinomzellen ähneln.Bei der Anwendung dieser Methode ist zu beachten, dass je nach Zelltyp oder verwendetem Wirkstoff möglicherweise bestimmte Optimierungen erforderlich sind. So benötigen beispielsweise einige Zelllinien höhere oder niedrigere Dichten, um dreidimensionale Tumore zu bilden.

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Das Küken Chorioallantoismembran (CAM) ist eine einzigartige, natürlich immundefizienten unterstützende Kultur Umwelt, die Angiogenese und Tumorentstehung zu untersuchen. Dieses Video Artikel zeigt die verschiedenen Schritte in...

Küken Ex ovo Kultur und Ex ovo CAM-Assay: Wie es wirklich funktioniert

In diesem Video beschreiben wir die Implantation von Krebszellen auf eine Chorioallantoismembran eines Huhns, um ein  In-Ovo-Modell zu erstellen. Das Modell transplantiert erfolgreich Eierstockkrebszellen, um das Fortschreiten von gynäkologischen Krebserkrankungen zu untersuchen.

Chorioallantoische Membran-basierte Krebsmodellierung bei Hühnern: Ein In-Ovo-Modell zur Untersuchung der Tumorgenese und Metastasierung von Krebszellen

In diesem Video beschreiben wir die Methode zur Co-Kultur von dorsalen Wurzelganglien und Krebszellen auf der chorioallantoischen Membran oder CAM von Küken, um die perineurale Invasion zu untersuchen.

Chorioallantoische Membran des Kükens oder CAM-Tumormodell: Eine In-Ovo-Methode zur Simulation der perineuralen Invasion von Tumorzellen

Dieses Video zeigt die Isolierung der tumortragenden chorioallantoischen Membran aus dem Hühnerembryo. Das geerntete CAM kann für weitere Downstream-Anwendungen verwendet werden.

Ernte der Chorioallantoismembran von Küken: Eine Methode zur Isolierung einer tumortransplantattragenden chorioallantoischen Membran aus Hühnerei

Die<em&gt; In ovo</em&gt; CAM-Assay als Xenograftmodel für Sarkom

Perineurale Invasion ist ein aggressiver Phänotyp für Kopf- und Halsplattenkarzinome und andere Tumoren. Das Küken-Chorioallanto-Membranmodell wurde zur Untersuchung von Angiogenese, Krebsinvasion und Metastasierung verwendet. Hier zeigen wir, wie dieses Modell genutzt werden kann, um die perineurale Invasion in vivo zu bewerten.

Das Chick Chorioallantoic Membrane In Vivo Modell zur Beurteilung der perineuralen Invasion bei Kopf- und Halskrebs

Metastasierendes blutestes Nierenzellkarzinom ist eine Krankheit ohne umfassendes Tiermodell für eine gründliche präklinische Untersuchung. Dieses Protokoll veranschaulicht zwei neuartige Tiermodelle für die Krankheit: das orthototisch implantierte Mausmodell und das Hähnchen-Chorioallanto-Membranmodell, die beide Lungenmetastasen zeigen, die klinischen Fällen ähneln.

Vergleich von metastasierenden klaren Zell Nierenzellkarzinom Modell in Maus Niere und auf Huhn Chorioallantoic Membran etabliert

Wir präsentieren das Hähnchenchorioallanto-Membranmodell als alternatives, transplantierbares In-vivo-Modell zur Transplantation gynäkologischer und urologischer Krebszelllinien und von Patienten abgeleiteter Tumoren.

Verwendung des Chicken Chorioallantoic Membrane In Vivo Modells zur Untersuchung gynäkologischer und urologischer Krebsarten

Dieses Protokoll beschreibt drei Methoden zur Gewinnung und Verwendung von 5 bis 8 Tage alten Hühnerembryonen und ihrer Chorioallanto-Membran (CAM) als In-vivo-Modell zur Untersuchung der kontrastverstärkten Ultraschallbildgebung und der Mikroblasen-vermittelten Wirkstoffabgabe.

Die Herstellung von Hühner-Ex-Ovo-Embryonen und chorioallantoischen Membrangefäßen als In-vivo-Modell für kontrastmittelverstärkte Ultraschallbildgebung und Mikroblasen-vermittelte Arzneimittelabgabestudien

In dieser Arbeit beschreiben wir ein Protokoll für die Entwicklung eines Xenotransplantatmodells für menschliches Ovarialgewebe und demonstrieren die Wirksamkeit der Technik, den Zeitrahmen für die Revaskularisierung des Transplantats und die Lebensfähigkeit des Gewebes über einen Zeitraum von 6 Tagen.

Das Modell der Chorioallantoismembran (CAM) von Küken als Werkzeug zur Untersuchung der Transplantation von Eierstockgewebe

Lernen Sie die CAM-Xenotransplantationsmethode für hepatozelluläres Karzinom mit bebrüteten Hühnereiern. Dieses effiziente In-Ovo-Modell ermöglicht die Untersuchung von Tumorwachstum und Angiogenese mit Überlebensraten von bis zu 93 Prozent.

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