Name: Ein Ferkel Modell Neonatal hypoxischischämischer Enzephalopathie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 30 s
Description: Erfahren Sie ein Ferkelmodell der neonatalen hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie zur Untersuchung von Hirnverletzungen im Neugeborenenalter. Diese Methode nutzt Amplitude-integrated-EEG zur kontrollierten Hypoxieinduktion.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren danken John Kristensen und Søren Braad Andersen von der Abteilung für Kommunikation des Universitätskrankenhauses Aarhus, Dänemark, für ihre außergewöhnliche Hilfe beim Filmen und Schneiden. Die Tiertechnikerin Diana Gyldenløve und die Tierärztin Birgitte Kousgaard, Institut für klinische Medizin des Universitätskrankenhauses Aarhus, Dänemark, für die Unterstützung bei der Tierpflege. Diese Studie wurde unterstützt von der Lundbeck-Stiftung, der Laerdal-Stiftung für Akutmedizin, der Forschungsstiftung der Region Mitteldänemark, der Augustinus-Stiftung, der Aase und der Ejnar-Danielsens-Stiftung, dem Institut für klinische Medizin des Universitätskrankenhauses Aarhus, der Brødrene Hartmanns-Stiftung, der Karen-Elise-Jensens-Stiftung, dem Fonden til Lægevidenskabens Fremme und Marie Dorthea og Holger From. Haderslevs Fond.

Dieses Protokoll wurde von der dänischen Tierversuche Inspektion genehmigt. Alle Versuchstiere wurden während der Verfahren anästhesiert. Reproduktion dieses Protokoll muss in Übereinstimmung mit den nationalen Ethik und Tierschutz-Richtlinien durchgeführt werden, und von den lokalen Ethikkommissionen genehmigt. 1. Tiere <ol><li> Dänische Landrasse Ferkel &lt;24 Stunden alt mit einem Gewicht von ca. 1.500 - 2.000 g. </li></ol> 2. Anästhesie und Wartungsflüssigkeiten <ol><li> Bereiten Sie die Geräte für die Anästhesie benötigt (Abbildung 1): Eine Maske für Sevofluran Verwaltung, Alkoholtupfer, periphere intravenöse Katheter, Gummiband, Spritzen mit Kochsalzlösung, Propofol (5 mg / kg), Fentanyl (10 ug / kg) und Procain Benzylpenicillin (15.000 IU / kg). </li><li> Induzieren Anästhesie durch die Bereitstellung von 1-2% Sevofluran über eine Atemmaske. <ol><li> Beurteilen Sie die Narkosetiefe durch die Bewertung für palpebral und Entzugs reflexes. Wenn Sie sicher, dass das Ferkel ist tief anästhesiert, perkutan einen peripheren intravenösen Katheter legen Sie in die Ohrvene. </li><li> , Um die Durchgängigkeit des peripheren intravenösen Katheter bestätigen, spülen Sie den Katheter mit 1-2 ml steriler 0,9% Salzlösung. Verabreichen Bolusinjektionen von Propofol (5 mg / kg) und Fentanyl (10 ug / kg). Nach Bolusinjektion Verwaltung spülen Sie den intravenösen Katheter ein zweites Mal mit 1-2 ml steriler 0,9% Salzlösung. </li><li> Platz Spritzen mit Propofol (10 mg / ml) und Fentanyl (10 ug / ml) in zwei separate Spritzeninfusionspumpen. Verbinden iv Rohre von den zwei Spritzenpumpen zu einem Dreiwegehahn Füge Infusionen in eine Zeile, die zur intravenösen Katheter angeschlossen ist. Starten kontinuierlicher iv-Infusion von Propofol (4-12 mg / kg / h) und Fentanyl (10 ug / kg / h). Sobald Dauerinfusionen ausgeführt werden, geben Sie nicht weiter Bolusinjektionen von Propofol und Fentanyl. </li><li> Unterbrechen der Verabreichung des Sevofluran Gas anesthesia. </li><li> Injizieren Procain Benzylpenicillin (15.000 IU / kg) subkutan oder intramuskulär gemäß den örtlichen Richtlinien für Antibiotika-Prophylaxe. Wiederholen Sie täglich. Das Video zeigt subkutaner Verabreichung, die bei Ferkeln wurde gezeigt, dass im höheren Plasmakonzentration und eine längere Halbwertszeit zur Folge, verglichen mit intramuskulärer Verabreichung. </li><li> Bewerben Auge Schmiermittel Salbe, um das Trocknen der Augen zu vermeiden. Ziehen Sie das Unterlid vorsichtig nach unten, um eine taschenförmige Öffnung bilden. Geben Sie eine kleine Menge der Salbe in der Tasche. Auge um Salbe zu verteilen. Überprüfen Sie für Trockenheit Stunden und erneut nach Bedarf. </li><li> Starten Sie eine kontinuierliche Rate Infusion von 5% Dextrose / 0,45% NaCl iv bei 10 ml / kg / h. Reduzieren Rate auf 5 ml / kg / h während und nach der Hypoxie. Einzustellen Infusionsrate auf den Blutzuckerspiegel bei 2-10 mmol / l zu halten. </li></ol></li></ol><img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig1.jpg" /> Figure 1. Ausrüstung für Anästhesie und Intubation. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 3. Intubation und Beatmung <ol><li> Bereiten Sie die Geräte zur Intubation erforderlich (Abbildung 1): Rocuroniumbromid (1 mg / kg) für die Muskelentspannung, eine Seilschlinge (binden die beiden Enden des gleichen 4 mm Nylon-Seil zusammen, um einen Kreis zu bilden, wie in Abbildung 1 dargestellt) zum Öffnen der Mund, kippte ein Wattestäbchen und Veterinär Laryngoskop mit gerader Klinge, Xylocain-Spray (100 mg / ml), verschieden große Endotrachealtuben mit Manschette (Größe 3,0 mm, 2,5 mm, 2,0 mm), 500 ml selbstfüllende Beutel (Beutel-Ventil Maske) für Lüftung, 2 ml Spritze für Aufpumpen der Manschette und Stethoskop. </li><li> Intubieren, indem Sie die folgenden Schritte aus: <ol><li> Ort Ferkel in der Rückenlage die Unterstützung der Hals von jeder Seite, ein gerader Kehlkopf pas sichernSalbei zur Intubation. </li><li> Schätzen Sie die Länge des Tubus durch Messung von der Spitze des Mauls bis zum Brustbeinkerbe (in der Regel ca. 13 cm). </li><li> Platz Seilschlinge um den Oberkiefer (nach unten) und halten Sie Unterkiefer und Zunge nach oben, um den Mund offen zu halten. </li><li> Verwalten Rocuroniumbromid (1 mg / kg) iv zu Muskelentspannung zu induzieren. </li><li> Verwenden Laryngoskop, die Zunge nach oben zu heben. </li><li> Verwenden Sie die Baumwolltupfer, um die Ferkel lange Kehldeckel, die entweder in die Speiseröhre retroverted oder hinter dem Gaumensegel gefangen werden kann befreien. </li><li> Voran Laryngoskop nach den Kehldeckel gegen den Zungengrund ermöglicht den Augen der Aryknorpel und Stimmbänder angehoben halten. </li><li> Bewerben Xylocain-Spray (100 mg / ml) topisch in den Kehlkopf zu Kehlkopfkrämpfe zu verhindern. </li><li> Voran Endotrachealtubus durch die Stimmbänder. Verwenden Sie eine Drehbewegung um die Weitergabe der schmalen Trachealknorpel unterstützen. Vorausrohr according auf die vorgemessenen Entfernung und eine Verbindung zu einem selbstfüllende Tasche (Beatmungsbeutel) für die manuelle Lüftung. Zu helfen, die Reibung während der Intubation zu reduzieren sprühen die distalen 1/3 des Endotrachealtubus mit Xylocain-Spray. </li><li> Um zu bestätigen, richtigen Endotrachealtubus Platzierung: beobachten, für jeden Hinweis auf Schwierigkeiten beim Atmen, ausculate die Brust hört für bilaterale Lufteintritt in beiden Lungen, visuell zu bestätigen das Vorhandensein von Kondensation in dem proximalen Teil des Endotrachealtubus, und überprüfen Sie das Vorhandensein von endtidale Kohlen Kohlendioxid mit einer farbmetrischen Kohlendioxid-Detektor oder exspiratorische CO 2 Messwert auf dem Beatmungsgerät, falls verfügbar. Normale endtidale Kohlendioxid um rund 5%. Ein Wert von über 2% zusammen mit einem normal erscheinende Wellenform bestätigt, daß der Tubus in der Luftröhre. </li><li> Pumpen Sie den Endotrachealtubus Manschette, um Aspiration zu verhindern. Manschetteninflationsdruck sollte weniger als 25 cm H 2 O, um ischämischen Schäden zu vermeiden<html> an das umgebende Gewebe. Halten des Endotrachealtubus in Ort, wickeln Sie ein Stück Klebeband um das Rohr, schließen Sie den Kiefer und weiterhin Taping um die Schnauze, um das Rohr zu befestigen. Ziehen Sie vorsichtig an dem Rohr, um sicherzustellen, dass es an Ort und Stelle bleibt. </li><li> Schließen Endotrachealtubus zu mechanischen Ventilator. </li></ol></li><li> Passen Sie Einstellungen des Beatmungsgerätes: volumenkontrollierten Beatmung, Atemvolumen (TV): 10 ml / kg [oder Inspirationsspitzendruck (PIP) 15 cm mit der druckkontrollierten Beatmung]. Positive endexspiratorischen Druck (PEEP): 5 cm. I: E-Verhältnis 1: 2. Atemfrequenz: 35 (justieren Rate zu endexspiratorischen CO 2 zwischen 4,5-5,5 kPa zu halten). </li></ol> 4. Monitoring und Körperflüssigkeiten Sampling <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig2.jpg" /> Abbildung 2. Ausrüstung für die Überwachung.ank &quot;&gt; Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen. <ol><li> Bereiten Sie die für die Überwachung (Abbildung 2) benötigte Ausrüstung: Klebeband, steriles Gleitmittel, Messsonde zur kontinuierlichen rektale Temperaturmessung, Elektrokardiogramm (EKG) Elektroden, Pulsoximeter, Rasierer, und EEG-Elektroden. <ol><li> Platz Sättigung Sonde an einem Hinterbein, schmieren rektale Temperatursonde und legen Sie 6 cm in das Rektum, legen Kopfstrahlungsheizung und / oder beheizte aufblasbare Luftmatratze, die rektale Temperatur an der physiologischen Ebene von 38,5 bis 39 ° C zu halten und Platz ECG Elektroden. </li><li> Platzieren Ferkel in der Bauchlage, um Bereiche von 1 cm x 1 cm für die Platzierung der Subcutannadel EEG-Elektroden Rasur; eine vor jedem Ohr, und die Referenzelektrode in der Mittellinie direkt hinter den Augen. Die Elektrode Website mit einem Alkoholtupfer reinigen, legen Sie dann die Nadelelektrode subkutan. Sichere Elektroden mit Klebeband und Rück Ferkel in die Rückenlage position. </li><li> Schalten Sie aEEG Monitor. HINWEIS: Die integrierte EEG Amplitude besteht aus einer dichten Trace mit oberen und unteren Rand. Unteren und oberen Ränder in diesem Modell sind in der Regel 15 bis 50 &amp; mgr; V, oft höher als bei Kindern gesehen. Während Hypoxie ist es wichtig zu beachten, dass aus dem EKG-Artefakt fälschlicherweise erhöhen die aEEG Spur. Bolus Medikamente (Propofol oder Fentanyl) können auch vorübergehend unterdrücken die aEEG Spur und sollte vermieden werden, wenn möglich, während des Experiments. Verabreichung von Medikamenten und klinischen Ereignissen sollte markiert werden, um Auslegung des aEEG Spur zu erleichtern. </li></ol></li><li> Bereiten Sie die für die Platzierung Nabelkatheter zur zentralen arteriellen Blutdruckmessung und Blutabnahme (Abbildung 3) benötigte Ausrüstung: sterile Handschuhe, sterilen Abdeckung, Skalpell, Alkoholtupfer, sterile Tücher, Nabelvenenkatheter (5 Fr), Nabelarterienkatheter (3,5 Fr ), Nahtmaterial mit einer Pinzette, gebogen Mikro Zangen, Scheren, Nadelhalter und Nahtmaterial (SetzB Größe 3-0), transparente Klebepflaster, 5 ml Spritzen zur Blutentnahme. </li></ol><img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig3.jpg" /> Abbildung 3. Ausrüstung für Nabellinien und Blutentnahme. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <ol start="3"><li> Sterilisieren und drapieren Sie den Bereich um den Nabel. Verwenden Sie ein Skalpell, um die Nabelschnur so nah an der Haut wie möglich zu schneiden. Wenn dies der Nabelgefäße in der narkotisierten Ferkel aussetzen, schneiden Sie die Nabelhaut 2 mm unterhalb der Nabelschnur, die Gefäße aus. Identifizieren Sie die beiden kleinen Nabelarterien und die eine größere Nabelvene (Abbildung 4). </li><li> Verwenden gekrümmte Mikropinzette, um die Arterie (Abbildung 4) erweitern sich und legen Sie die Nabelarterienkatheter(3,5 Fr). Estimate Einbaulänge in cm bis 3 x Gewicht (kg) + 10 (Summenformel basierend auf korrekte Platzierung in absteigender Aorta oberhalb Nierenarterien auf Autopsie). </li><li> Legen Sie eine zweite 5 Fr-Katheter 5 cm in die Nabelvene (Abbildung 4). Stellen Sie sicher, intravaskulären Katheter Platzierung von Blutrück. Sichere Katheter durch Platzieren einer Tabaksbeutelnaht um den Nabel, übergeben Sie die Fadenenden um jede der Nabelkatheter und verknoten. Decken Katheter mit transparenten Klebeverband. </li><li> Sammeln von Blutproben zu vorgegebenen Zeitpunkten: 1) unmittelbar vor der Hypoxie, 2) 30 Minuten in hypoxischen Insult 3) am Ende der 45 min hypoxischen Insult 4) 2 h nach hypoxischen Insult. Je nach dem Zweck des Experiments anderen Zeitpunkten Blutproben gewählt werden. </li><li> Verwenden arterielle Blutgasanalyse von Blutproben bei Hypoxie getroffen werden, um die Blutgasveränderungen durch Hypoxie-Ischämie (Tabelle 1) verursacht zu überprüfen. Beachten Sie, dass Ferkel haben niedrige Hämoglobin eint Geburt (ca. 8 g / dL) und können anämisch durch häufige Blutentnahme. Zurückzuziehen weniger als 2 ml Blut / kg Körpergewicht pro Ziehung, weniger als 5 ml Blut / kg Körpergewicht innerhalb von 24 h und sich an die örtlichen Richtlinien zur Blutabnahme. Anzeichen von Anämie sind abnehm Hämatokrit und Tachykardie. </li><li> Schließen arteriellen Leitung an einen Monitor für weiterhin intraarterieller Blutdrucküberwachung (MABP). Verwenden venöse Leitung für Fluid and Drug Administration. </li></ol><img alt="Figur 4" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig4.jpg" /> Abbildung 4. Nabelgefässe. Nabelvene (rechts) und einem der beiden Nabelarterien (links). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 5. Hypoxie <ol><li> Warten Sie 60 Minuten nach Abschluss der Überwachung. Induzieren Hypoxie durch den Wechsel zu einer 4% O 2 </sub&gt; / 96% N 2 Gasgemisch. Überwachung von Vitalparametern und aEEG eng und weiter Hypoxie für 45 min. </li><li> Sobald die aEEG Spur ist flach (Oberrand &lt;7 &amp; mgr; V), Sauerstoffzufuhr einzustellen, indem die eingeatmete Sauerstofffraktion (FiO 2) und mittleren Atemwegsdruck auf den höchsten FiO 2 level Aufrechterhaltung einer flachen Spur aEEG nach dem in 5 gezeigten Flussdiagramm. Ziel für MABP unter 70% des Ausgangswertes für mindestens 10 min und bei Bedarf niedriger FiO 2 zu Hypotonie und Ischämie zu gewährleisten. Die beschriebene Niveau der Hypotonie wurde bereits früher von anderen 19,13,30 gezeigt, dass sie relevant hypoxisch-ischämischen Hirnverletzung zu erzeugen. </li><li> Im Falle von schweren Hypotonie (MABP &lt;25 mm Hg) zu behandeln schrittweise wie folgt: kurz erhöhen FiO2 um 1-5%, Salz Bolus (10 ml / kg), Infusion von Dopamin (5-20 &amp; mgr; g / kg / min) und Infusion von Noradrenalin (20 ng-1 ug / kg / min). </li><li> Bei Pfändungen dauerhaft&gt; 10 min (klonische, tonische or myoklonischen Anfällen, in der Regel als fokale oder durch plötzliche Veränderungen in aEEG Amplitude) angegeben zu behandeln schrittweise mit (was 30 Minuten, bevor Sie mit der nächsten Injektion): langsame Bolus von Phenobarbital iv 20 mg / kg, wiederholen Sie Phenobarbital iv 20 mg / kg und Midazolam iv 0,5 mg / kg. <ol><li> Wenn Anfälle entwickeln und sind unempfindlich gegen Arzneimitteltherapie Euthanasie angezeigt. </li></ol></li></ol><img alt="Figur 5" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig5.jpg" /> Abbildung 5. Hypoxie-Ischämie Flussdiagramm. Flussdiagramm, Anpassungen in Sauerstoffversorgung (F i O 2 und P aw) nach aEEG Antwort. Mittleren Atemwegsdruck (P aw) wurde durch Änderung PIP / TV (untere PIP gibt niedrigeren P aw) und Atemfrequenz eingestellt (Unter RR gibt niedrigeren P aw). Ziel aEEG = oberen Rand der Spur &lt;5 &amp; mgr; V und unteren Rand der Spur&gt; 3 &amp; mgr; V (Durchschnitt 4 &amp; mgr; V). ZielHerzfrequenz (HR) =&gt; 80 Ziel mittleren arteriellen Blutdruck (MAD) = MABP&gt; 25. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 6. 72 Stunden Überlebens <ol><li> Überwachen Sie die Ferkel eng nach der hypoxischen Beleidigung, und nach und nach reduzieren die Preise der Infusion von Propofol und Fentanyl. Extubieren an dem Punkt, an dem das Tier freiwillig atmen. </li><li> Während der Überlebenszeit, halten Ferkel bei einem Tier-Anlage mit 24-Stunden-Uhr von Personal auf der Intensivstation und Überwachung geschult. Verwalten iv Glukoseinfusionen 20 ml / kg 2-3 stündlich. Bei 26 bis 48 Stunden nach der Hypoxie-Ischämie Teilflaschennahrung kann eingeleitet werden. Aspiration in die Luftröhre und Lungen können durch Füttern mit der Flasche auf, wenn der Würgereflex nicht vorhanden ist. </li><li> Wenn die für die Versuchs bewerten neurologischen Status mit Punktesystem, das von Thoresen et al., Beschrieben inDetail in der Originalpublikation 17. </li></ol> 7. Ergebnisevaluation <ol><li> Nach 72 Stunden, zu betäuben und wieder zu lüften, wie in Kapitel 2 beschrieben und 3. Führen MRT-Untersuchung mit den entsprechenden bildgebenden Verfahren, wie durch Munkeby et al 31 und andere 2 beschrieben. </li><li> Am Ende des Experiments euthanize Ferkel mit einer letalen Dosis von Pentobarbital (5 g / kg iv). </li><li> Vorbereiten des Gehirns zur Prüfung nach dem Ziel des Experiments. <ol><li> Für Hirn-Histologie auf Formalin-fixierten Gewebe:.. Verwenden Herz- Perfusion mit 4% Paraformaldehyd in PBS, gefolgt von Präparation und post-Fixierung in Para wie von Robertson et al 2, Chakkarapani et al 1 oder Liu et al 18 oder entfernen Sie das Gehirn und tauchen in 4% Paraformaldehyd durch Andresen et al. 32 </li><li> Für die Analyse erfordern Schnapp gefrorenen Gewebe (zB RNAAnalyse oder Enzymaktivitätsassays 33). Den Gehirn sezieren Gehirnregionen von Interesse und Schnappgefriergewebeblöcke von maximal 1 cm x 1 cm in flüssigem Stickstoff, wie durch Munkeby et al 33 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Chakkarapani, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenon+enhances+hypothermic+neuroprotection+in+asphyxiated+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of%22%5BJournal%5D)">Xenon enhances hypothermic neuroprotection in asphyxiated newborn pigs.</a> Annals of. 68, 330-341 (2010).</li>
<li>Robertson, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melatonin+augments+hypothermic+neuroprotection+in+a+perinatal+asphyxia+model%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+%3A+a+journal+of+neurology%22%5BJournal%5D)">Melatonin augments hypothermic neuroprotection in a perinatal asphyxia model.</a> Brain : a journal of neurology. 136, 90-105 (2013).</li>
<li>Lawn, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Every+Newborn%3A+progress%2C+priorities%2C+and+potential+beyond+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Every Newborn: progress, priorities, and potential beyond survival.</a> Lancet. 384, 189-205 (2014).</li>
<li>Lee, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrapartum-related+neonatal+encephalopathy+incidence+and+impairment+at+regional+and+global+levels+for+2010+with+trends+from+1990%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Intrapartum-related neonatal encephalopathy incidence and impairment at regional and global levels for 2010 with trends from 1990.</a> Pediatric research. 74, Suppl 1. 50-72 (2013).</li>
<li>Kurinczuk, J. J., White-Koning, M., Badawi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+of+neonatal+encephalopathy+and+hypoxic-ischaemic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Early+human+development%22%5BJournal%5D)">Epidemiology of neonatal encephalopathy and hypoxic-ischaemic encephalopathy.</a> Early human development. 86, 329-338 (2010).</li>
<li>Shankaran, S., Woldt, E., Koepke, T., Bedard, M. P., Nandyal, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+neonatal+morbidity+and+long-term+central+nervous+system+sequelae+of+perinatal+asphyxia+in+term+infants%5BTitle%5D)+AND+%22Early+human+development%22%5BJournal%5D)">Acute neonatal morbidity and long-term central nervous system sequelae of perinatal asphyxia in term infants.</a> Early human development. 25, 135-148 (1991).</li>
<li>Robertson, C. M., Finer, N. N., Grace, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((School+performance+of+survivors+of+neonatal+encephalopathy+associated+with+birth+asphyxia+at+term%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+pediatrics%22%5BJournal%5D)">School performance of survivors of neonatal encephalopathy associated with birth asphyxia at term.</a> The Journal of pediatrics. 114, 753-760 (1989).</li>
<li>Bennet, L., Booth, L., Gunn, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential+biomarkers+for+hypoxic-ischemic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+feta.%2C+%26+neonatal+medicine%22%5BJournal%5D)">Potential biomarkers for hypoxic-ischemic encephalopathy.</a> Seminars in feta., & neonatal medicine. 15, 253-260 (2010).</li>
<li>Yager, J. Y., Ashwal, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+perinatal+hypoxic-ischemic+brain+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+neurology%22%5BJournal%5D)">Animal models of perinatal hypoxic-ischemic brain damage.</a> Pediatric neurology. 40, 156-167 (2009).</li>
<li>Buckley, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maturation+of+circulatory+system+in+three+mammalian+models+of+human+development%5BTitle%5D)+AND+%22Comparative+biochemistry+and+physiology.+A%2C+Comparative%22%5BJournal%5D)">Maturation of circulatory system in three mammalian models of human development.</a> Comparative biochemistry and physiology. A, Comparative. 83, 1-7 (1986).</li>
<li>Dobbing, J., Sands, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+aspects+of+the+brain+growth+spurt%5BTitle%5D)+AND+%22Early+human+development%22%5BJournal%5D)">Comparative aspects of the brain growth spurt.</a> Early human development. 3, 79-83 (1979).</li>
<li>Dobbing, J., Sands, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+growth+and+development+of+human+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+disease+in+childhood%22%5BJournal%5D)">Quantitative growth and development of human brain.</a> Archives of disease in childhood. 48, 757-767 (1973).</li>
<li>Foster, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+survival+model+of+hypoxia%2Fischaemia+in+the+piglet+suitable+for+neuroprotection+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research%22%5BJournal%5D)">An improved survival model of hypoxia/ischaemia in the piglet suitable for neuroprotection studies.</a> Brain research. 919, 122-131 (2001).</li>
<li>LeBlanc, M. H., Li, X. Q., Huang, M., Patel, D. M., Smith, E. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AMPA+antagonist+LY293558+does+not+affect+the+severity+of+hypoxic-ischemic+injury+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%3B+a+journal+of+cerebral+circulation%22%5BJournal%5D)">AMPA antagonist LY293558 does not affect the severity of hypoxic-ischemic injury in newborn pigs.</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1908-1914 (1995).</li>
<li>Andresen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nicotine+affects+the+expression+of+brain-derived+neurotrophic+factor+mRNA+and+protein+in+the+hippocampus+of+hypoxic+newborn+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22J+Perinat+Med%22%5BJournal%5D)">Nicotine affects the expression of brain-derived neurotrophic factor mRNA and protein in the hippocampus of hypoxic newborn piglets.</a> J Perinat Med. 37, 553-560 (2009).</li>
<li>Cheung, P. Y., Gill, R. S., Bigam, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+swine+model+of+neonatal+asphyxia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A swine model of neonatal asphyxia.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).</li>
<li>Thoresen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+piglet+survival+model+of+posthypoxic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">A piglet survival model of posthypoxic encephalopathy.</a> Pediatric research. 40, 738-748 (1996).</li>
<li>Liu, X., Tooley, J., Loberg, E. M., Suleiman, M. S., Thoresen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immediate+hypothermia+reduces+cardiac+troponin+I+after+hypoxic-ischemic+encephalopathy+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Immediate hypothermia reduces cardiac troponin I after hypoxic-ischemic encephalopathy in newborn pigs.</a> Pediatric research. 70, 352-356 (2011).</li>
<li>Bjorkman, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypoxic%2FIschemic+models+in+newborn+piglet%3A+comparison+of+constant+FiO2+versus+variable+FiO2+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research%22%5BJournal%5D)">Hypoxic/Ischemic models in newborn piglet: comparison of constant FiO2 versus variable FiO2 delivery.</a> Brain research. 1100, 110-117 (2006).</li>
<li>Robertson, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Which+neuroprotective+agents+are+ready+for+bench+to+bedside+translation+in+the+newborn+infant%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+pediatrics%22%5BJournal%5D)">Which neuroprotective agents are ready for bench to bedside translation in the newborn infant.</a> The Journal of pediatrics. 160, 544-552 (2012).</li>
<li>Jacobs, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cooling+for+newborns+with+hypoxic+ischaemic+encephalopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Cochrane+Database+Syst+Rev%22%5BJournal%5D)">Cooling for newborns with hypoxic ischaemic encephalopathy.</a> Cochrane Database Syst Rev. 1, CD003311(2013).</li>
<li>Andresen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resuscitation+with+21+or+100%25+oxygen+in+hypoxic+nicotine-pretreated+newborn+piglets%3A+possible+neuroprotective+effects+of+nicotine%5BTitle%5D)+AND+%22Neonatology%22%5BJournal%5D)">Resuscitation with 21 or 100% oxygen in hypoxic nicotine-pretreated newborn piglets: possible neuroprotective effects of nicotine.</a> Neonatology. 93, 36-44 (2008).</li>
<li>Karlsson, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+hypothermia+as+selective+head+cooling+or+whole+body+cooling+does+not+protect+brain+or+body+in+newborn+pig+subjected+to+hypoxia-ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Delayed hypothermia as selective head cooling or whole body cooling does not protect brain or body in newborn pig subjected to hypoxia-ischemia.</a> Pediatric research. 64, 74-78 (2008).</li>
<li>Kovacs, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asphyxia-induced+release+of+alpha-melanocyte-stimulating+hormone+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Asphyxia-induced release of alpha-melanocyte-stimulating hormone in newborn pigs.</a> Peptides. 22, 1049-1053 (2001).</li>
<li>Varvarousi, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asphyxial+cardiac+arrest%2C+resuscitation+and+neurological+outcome+in+a+Landrace%2FLarge-White+swine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+animals%22%5BJournal%5D)">Asphyxial cardiac arrest, resuscitation and neurological outcome in a Landrace/Large-White swine model.</a> Laboratory animals. 45, 184-190 (2011).</li>
<li>Tammela, O., Pastuszko, A., Lajevardi, N. S., Delivoria-Papadopoulos, M., Wilson, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity+of+tyrosine+hydroxylase+in+the+striatum+of+newborn+piglets+in+response+to+hypocapnic+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+neurochemistry%22%5BJournal%5D)">Activity of tyrosine hydroxylase in the striatum of newborn piglets in response to hypocapnic hypoxia.</a> Journal of neurochemistry. 60, 1399-1406 (1993).</li>
<li>Cote, A., Barter, J., Meehan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-dependent+metabolic+effects+of+repeated+hypoxemia+in+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+journal+of+physiology+and+pharmacology%22%5BJournal%5D)">Age-dependent metabolic effects of repeated hypoxemia in piglets.</a> Canadian journal of physiology and pharmacology. 78, 321-328 (2000).</li>
<li>Tichauer, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+severity+of+perinatal+hypoxia-ischemia+in+piglets+using+near-infrared+spectroscopy+to+measure+the+cerebral+metabolic+rate+of+oxygen%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Assessing the severity of perinatal hypoxia-ischemia in piglets using near-infrared spectroscopy to measure the cerebral metabolic rate of oxygen.</a> Pediatric research. 65, 301-306 (2009).</li>
<li>Jasani, M. S., Salzman, S. K., Tice, L. L., Ginn, A., Nadkarni, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthetic+regimen+effects+on+a+pediatric+porcine+model+of+asphyxial+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Anesthetic regimen effects on a pediatric porcine model of asphyxial arrest.</a> Resuscitation. 35, 69-75 (1997).</li>
<li>Chakkarapani, E., Thoresen, M., Liu, X., Walloe, L., Dingley, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Xenon+offers+stable+haemodynamics+independent+of+induced+hypothermia+after+hypoxia-ischaemia+in+newborn+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+care+medicine%22%5BJournal%5D)">Xenon offers stable haemodynamics independent of induced hypothermia after hypoxia-ischaemia in newborn pigs.</a> Intensive care medicine. 38, 316-323 (2012).</li>
<li>Munkeby, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+piglet+model+for+detection+of+hypoxic-ischemic+brain+injury+with+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+radiologica%22%5BJournal%5D)">A piglet model for detection of hypoxic-ischemic brain injury with magnetic resonance imaging.</a> Acta radiologica. 49, 1049-1057 (2008).</li>
<li>Andresen, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Newborn+piglets+exposed+to+hypoxia+after+nicotine+or+saline+pretreatment%3A+long-term+effects+on+brain+and+heart%5BTitle%5D)+AND+%22J+Matern+Fetal+Neonatal+Med%22%5BJournal%5D)">Newborn piglets exposed to hypoxia after nicotine or saline pretreatment: long-term effects on brain and heart.</a> J Matern Fetal Neonatal Med. 22, 161-168 (2009).</li>
<li>Munkeby, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resuscitation+with+100%25+O2+increases+cerebral+injury+in+hypoxemic+piglets%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+research%22%5BJournal%5D)">Resuscitation with 100% O2 increases cerebral injury in hypoxemic piglets.</a> Pediatric research. 56, 783-790 (2004).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Aufgrund seiner Komplexität kann das beschriebene Modell nur in Einrichtungen akkreditiert implementiert und in Tierversuchen erlebt werden. Genehmigung durch lokalen Ethikausschüsse müssen vor Beginn der Experimente erhalten werden kann, und eine optimale Tierschutz muss jederzeit gewährleistet sein. Da das Modell auf das Überleben der Testtiere basiert, ist es wichtig, dass eine sterile Umgebung während invasiven Verfahren um Infektionen zu verhindern, gehalten. Die Wahl der Anästhesie ist...

Perinatale Asphyxie ist eine akute und oft unvorhergesehene Zustand mit hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie (HIE) zugeordnet ist. Das übergeordnete Ziel dieses Protokolls ist es, eine Ferkelüberlebensmodell der perinatalen hypoxischischämischer Enzephalopathie zu demonstrieren. Dieses Modell kann verwendet werden, um die Wirkung der verschiedenen Grade der Hypoxie-Ischämie am Gehirn und neonatalen von experimentellen Behandlungen auf Neuropathologie, Magnetresonanzbildgebung und Spektroskopie (MRI und MRS) und Biomarker in Körperflüssigkeiten wie Blut, Rückenmarksflüssigkeit und Urin zu untersuchen . Das Modell hat sich auch als nützlich für die Untersuchung der Herz-Kreislauf-System, die Atmungsorgane, Nieren- und Leber, die alle in globale Hypoxie-Ischämie betroffen. Perinatale Asphyxie ist das Ergebnis beeinträchtigt Sauerstoffversorgung intrapartum oder in der unmittelbaren postpartalen Zeitraum. Intrapartum hypoxischen Ereignissen entfallen 0,66 Millionen Todesfälle weltweit jedes Jahr rund ein Viertel der weltweit 2,9 Mio.Ionen neonatalen Todesfälle in 2012 3. Im Jahr 2010 1,15 Millionen Babys wurden schätzungsweise neonatalen Enzephalopathie entwickelt, nach der Geburt Asphyxie 4 haben. HIE definiert als Enzephalopathie bei Säuglingen in der 34. Schwangerschaftswoche geboren tritt in 1-3 / 1000 Lebendgeburten 5 in den Industrieländern und bis zu 8,5 / 1.000 Lebendgeburten in den Entwicklungsländern 4. Das Sterberisiko ist 10-60%, und das Risiko neurologischer Behinderung in Lebenden 30-100% 6,7. 50.200.000 Behinderung bereinigte Lebensjahre (DALYs) an intrapartum hypoxischen Ereignissen 4 zurückgeführt. Derzeit die einzige Behandlung, andere als unterstützend für HIE ist post-hypoxischen Unterkühlung. Daher sind Fortschritte in der Diagnostik und Behandlungsstrategien wesentlich zur Verbesserung der Verwaltung von HIE 8. Verbesserungen in der Prognose nach perinatale Asphyxie und Verwaltung der neonatalen Hirnverletzung sind auf den Ausbau Kenntnisse der zugrunde liegenden Krankheitsmechanismen auf der Grundlage einerd mögliche Behandlungen. Tiermodellen für HIE sind insbesondere als verschiedene klinische Ereignisse zu HIE führen und die Häufigkeit in jeder einzelnen Geburt Zentrum niedrig 5. Eine Versuchsanordnung, in der der Einfluss der biologischen Variation minimiert werden kann, ist von wesentlicher Bedeutung bei der Prüfung von neuen prognostischen und Diagnose- und Behandlungsstrategien. Ein Tiermodell sollte die klinische Situation so weit wie möglich anzunähern und damit einen Beitrag zum Verständnis der pathologischen Mechanismen der induzierten Schädigung und den dynamischen Prozess in der Krankheit und es ist Ergebnis 9 beteiligt zugrunde. Tiermodellen von neugeborenen HIE haben eine Reihe von Arten, einschließlich Nagetiere, Lamm und Schwein enthalten. Im Vergleich dazu hat der neugeborenen Ferkel höhere Ähnlichkeit mit einem menschlichen Neugeborenen hinsichtlich Größe, Herz-Kreislauf-System 10 und Gehirn Fälligkeit zum Zeitpunkt der Lieferung 11,12. Monitoring, Instrumentation und Ergebnisevaluation in der Ferkel Modell ähnelt that in der klinischen Versorgung von Säuglingen mit HIE verwendet. Dementsprechend gibt es ein hohes Maß an Übersetzung in Pflege des Neugeborenen von diesem Modell. Ferkel Modellen einer perinatalen Hypoxie und HIE werden von vielen Gruppen verwendet und variieren in einer Reihe von Bereichen 13. Entsprechend dem Zweck des Versuchs muss sorgfältig auf die Wahl der Medikamente bezahlt werden, Verfahren zur Induktion der Hypoxie-Ischämie, Verfahren zur Steuerung der Dauer und Schwere Beleidigung, post-Beleidigung Wiederbelebung und Pflege und Ergebnisevaluation. Zum Vorspannen eine randomisierte Studie Design sollte immer in Interventionsstudien verwendet werden vermeiden. Das angewendet wird, wenn induzierende hypoxischen ischämischen Verletzungen Verfahren wichtig ist. Globale Hypoxie führt zu HIE oft zu Multiorganversagen mit Gehirn, Herz, Lunge, Nieren und Leber. Je nach den Ergebnissen beurteilt, sollte Modelle von HIE auf globale Hypoxie und Ischämie basieren und nicht auf fokale Ischämie, zB angewiesen., Durch Ligation der Autootid Arterien 14. Eine kürzlich Papier aufgebracht eine Kombination von Hypoxie (FiO 2 12%) und Arteria carotis Kompression während den mittleren arteriellen Blutdruck&gt; 40 mm Hg 2. Eine andere Gruppe induzierte globale Hypoxie um 8% O 2 bis negativer Base Excess&gt; 20 mmol / L oder mittleren arteriellen Blutdruck (MAD) &lt;15 mm Hg, und opferte die Tiere bei 4 h 15. Hypoxie wurde auch von Herzleistung titriert wurde (30-40% des Ausgangswertes), MABP (30-35 mm Hg) und der arterielle pH-Wert (6,95-7,05) 16. Modelle der globalen Hypoxie-Ischämie durch aEEG Unterdrückung ähnlich der in diesem Bericht enthaltenen titriert haben Enzephalopathie, das in Kliniken, elektrophysiologisch nachgewiesen und neuropathologisch vergleichbar mit dem Zustand, in dem erstickt tige Säugling 17,18 gefunden. Der Grad der induzierten HIE ist wesentlich. Ein nützliches Tiermodell der HIE muss auch für die Erprobung neuer dia ermöglichengnostischen Verfahren und Behandlungsmöglichkeiten. Um dies zu ermöglichen, sollten die Modelle moderate HIE, wo es eine Behandlung Potenzial als schwere Hirnschädigung mit wenig oder keiner Behandlung Potenzial wäre weniger relevant bei der Bewertung neuer Behandlungen zu induzieren. Toleranz gegenüber Hypoxie variiert beträchtlich zwischen den Versuchstieren. Frühere Studien haben gezeigt, dass eine konsequentere Hirnschädigung erreicht werden kann und dass mehr Tiere überleben 17,19 durch Individualisierung des induzierter Hypoxie nach Hirnantwort jedes Ferkel durch Amplituden integriert Elektroenzephalographie (aEEG) bewertet und nicht mit einem Satz FiO2-Wert in der gesamten hypoxische Ereignis. Die Dauer aEEG Unterdrückung korreliert mit dem Grad der Gehirnverletzung, mit wenigen histopathologischen Veränderungen bei &lt;20 min aEEG Unterdrückung und schwere Krämpfe Erhöhung bei&gt; 45 min aEEG Unterdrückung. Eine kürzlich durchgeführte Überprüfung der neuroprotektive Behandlungen für HIE identifiziert die Notwendigkeit für das Überleben Modelle ermöglichen Verhaltens Ergebnis measnahmen im Tiermodell 20. Es gibt zahlreiche Vorteile des vorgestellten HIE Ferkelmodell. Es basiert auf einer Art, bei der Ergebnisse mit hoher Wahrscheinlichkeit auf die menschliche Physiologie zu übersetzen beruht. Globale Hypoxie-Ischämie-Modellen Multiorganversagen und Titration von Hypoxie-Ischämie durch aEEG induziert eine konsequente Grad der Hirnschädigung mit dem Überleben klinisch relevante Ergebnisse, dass Biomarker, MRI und Verhalten kann bei entsprechenden Zeitpunkten ausgewertet werden. Piglet Modelle perinatale Asphyxie und HIE haben nicht nur wesentlich zur aktuellen Einblick in HIE Pathophysiologie, sondern auch erfolgreich voran klinischen Studien, was letztlich zu neuen Therapien bei Menschen. Piglet Modellstudien spielte eine Schlüsselrolle bei der Schaffung Hypothermie als Behandlung für HIE 21 und werden in Wiederbelebung von Neugeborenen Forschungs 22 verwendet. Verschiedene Gruppen haben Ferkel-Modelle verwendet werden, wenn die Durchführung von Untersuchungen innerhalb Asphyxie und HIE eind Studien umfassen Hypothermie 23, alpha-Melanozyten-stimulierendes Hormon 24, Herzstillstand 25, Tyrosin-Hydroxylase-Aktivität 26, wiederholt hypoxischen Exposition 27, NMDA-Rezeptor-Aktivität 14 und Nahinfrarotspektroskopie 28. Die Ferkel HIE Modell in diesem Bericht ist technisch anspruchsvoll, mit zu arbeiten, als kleinere Anpassungen im Laufe des Verfahrens kann in entweder zu leicht oder zu schwere Hirnschädigung 29,2 führen. Wir haben festgestellt, dass die vorhandene Literatur fehlte ausreichend detaillierte zuvor veröffentlichten Modelle reproduzieren. So haben wir hier zeigen, jeden Schritt der technischen Verfahren für die Einrichtung eines Ferkel 72 Stunden Überlebensmodell in diesem Bericht erforderlich, die Forscher, um dieses erweiterte Modell für die Untersuchung von HIE etablieren.

<table><tbody><tr><td>Warm-Touch-Kinderdecke</td><td>Covidien</td><td>5030840</td><td></td></tr><tr><td>selbstklebend Apertrue Abdecktuch</td><td>Barriere</td><td>915447</td><td></td></tr><tr><td>Utility Tuch (steril) 75x80 cm</td><td>Barriere</td><td>800530</td><td></td></tr><tr><td>Neoflon</td><td>BD - Luer</td><td>391350</td><td></td></tr><tr><td>Laryngoskop</td><td>Miller</td><td>85-0045</td><td></td></tr><tr><td>Endotrachealtubus 2,5 mm&nbsp;</td><td>Covidien</td><td>111-25</td><td></td></tr><tr><td>Endotrachealtubus 3,0 mm mit Manschette</td><td>Unomedical</td><td>MM61110030</td><td></td></tr><tr><td>Endotrachealtubus 3,5 mm mit Manschette</td><td>Unomedical</td><td>MM61110035</td><td></td></tr><tr><td>Anästhesiegerät</td><td>GE Healthcare</td><td>1009-9002-000</td><td></td></tr><tr><td>EEG - Elektroden/Subdermale Nadelelektrode zum Einmalgebrauch</td><td>Cephalon</td><td>ACCE120550</td><td></td></tr><tr><td>EKG - Elektroden</td><td>medtronic</td><td>3010107-003</td><td></td></tr><tr><td>EKG-Elektroden für MR</td><td>philips</td><td>ACCE120550</td><td></td></tr><tr><td>Arterieller Blutprobenehmer - Aspirator</td><td>Radiometer medical ApS</td><td>956552</td><td></td></tr><tr><td>Polyurethan Nabelvenenkatheter (5 Fr/Ch)</td><td>Covidien</td><td>8888160341</td><td></td></tr><tr><td>Polyurethan Nabelvenenkatheter (3,5 Fr/ch)</td><td>Covidien</td><td>8888160333</td><td></td></tr><tr><td>Nahtset (Größe 3-0)</td><td>Covidien</td><td>8886 623341</td><td></td></tr><tr><td>BD Spinalnadel 0,7x38mm</td><td>BD Nadeln</td><td>405254</td><td></td></tr><tr><td>Gas mit 96% Stickstoff / 4% Sauerstoff</td><td>Air Liquide</td><td>auf Bestellung</td><td></td></tr><tr><td>NeuroMonitor (CFM) System</td><td>Natus Medical Incorporated</td><td>OBM70002</td><td></td></tr></tbody></table>

ein ferkel modell neonatal hypoxischischämischer enzephalopathie

A Piglet Model of Neonatal Hypoxic-Ischemic Encephalopathy

Asphyxie unter der Geburt, die hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie (HIE) verursacht, entfallen 0,66 Mio. Todesfälle weltweit jedes Jahr rund ein Viertel der weltweit 2,9 Millionen Todesfälle bei Neugeborenen. Tiermodelle von HIE haben zum Verständnis der Pathophysiologie in HIE beigetragen hat und den dynamischen Prozess, der in Hirnverletzung auftreten aufgrund perinataler Asphyxie hervorgehoben. So haben Untersuchungen an Tieren ein Zeitfenster für die Post-Beleidigung Behandlungsstrategien vorgeschlagen. Hypothermie hat sich als Behandlung für HIE in pdiglet Modellen getestet und anschließend in klinischen Studien nachgewiesen wirksam. Variationen des Modells sind in der Studie von Zusatz neuroprotektive Verfahren und Ferkel Studien von Xenon und Melatonin angewendet worden sind, um die klinische Phase I und II führten Studien 1,2. Die Ferkel HIE Modell wird weiter für neonatale resuscitation- und hämodynamische Studien sowie in Untersuchungen von zerebrale Hypoxie auf zellulärer Ebene verwendet. Es ist jedoch eine technisch anspruchsvolleModell und Variationen in dem Protokoll kann entweder zu leicht oder zu schweren Hirnschäden führen. In diesem Artikel zeigen wir die technischen Verfahren für die Schaffung eines stabilen Ferkel Modell der neonatalen HIE notwendig. Zuerst wird die neugeborenen Ferkel (&lt;24 h alt, Durchschnittsgewicht 1500 g) anästhesiert, intubiert und in ein ähnlicher Aufbau wie in einer Intensivstation gefunden überwacht. Globale Hypoxie-Ischämie durch Absenken des inspiratorischen Sauerstofffraktion, globale Hypoxie, Ischämie durch Hypotonie und eine flache Spur Amplitude integriert EEG (aEEG), der zerebrale Hypoxie erreichen induziert. Überleben durch Anpassung Sauerstoffversorgung nach dem aEEG Antwort und der Blutdruck vorangetrieben. Hirnverletzung durch Histopathologie und Magnetresonanztomographie nach 72 h quantifiziert.

Die Wirkungen von Hypoxie-Ischämie am Gehirn, die während der induzierten Insult auftreten, durch Aufzeichnen der Spur aEEG dokumentiert. Ein Vertreter aEEG Trace wird in 6 gezeigt. <img alt="Figur 6" src="/files/ftp_upload/52454/52454fig6.jpg" /> Abbildung 6. Repräsentative aEEG Spur. Low Amplitude aufgrund von Hypoxie-Ischämie. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52454/52454fig6large.jpg" target="_blank...

Hypoxisch-ischämische Enzephalopathie nach perinataler Asphyxie kann mit Tiermodellen untersucht werden. Wir demonstrieren die Verfahren, die zur Etablierung eines Ferkelmodells der neonatalen hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie erforderlich sind.

Ein Ferkel Modell Neonatal hypoxischischämischer Enzephalopathie

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, ein Ferkelmodell der perinatalen hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie darzustellen. Dieses Modell kann anschließend zur Untersuchung von Hirnverletzungen bei Neugeborenen verwendet werden. Zunächst werden Ferkel sediert, beatmet und in einer Versuchsanordnung überwacht, die einer neonatalen Intensivstation vergleichbar ist.Die in der vorliegenden Arbeit beschriebene Technik nutzt ein amplitudenintegriertes EEG, um die Hypoxie zu dosieren. Entsprechend der Widerstandsfähigkeit jedes einzelnen Versuchstiers wird die Hypoxie kontrolliert induziert, wobei das amplitudenintegrierte EEG unterdrückt bleibt, während das Überleben gesichert wird. In diesem Überlebensmodell über vier Tage werden die Tiere 72 Stunden nach der Hypoxie euthanasiert.Abschließend können je nach Versuchsziel zerebrale und andere Endpunkte mittels Magnetresonanztomographie, neuropathologischer Untersuchung sowie Analyse von Körperflüssigkeiten und Organen evaluiert werden. In dieser Studie veranschaulichen wir schrittweise die technischen Verfahren, die notwendig sind, um ein Ferkelmodell der neonatalen hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie zu etablieren. Das neurologische Entwicklungsergebnis ist eine zentrale Überlegung in allen Bereichen der neonatalen Intensivmedizin.Gute Tiermodelle sind unerlässlich, um das Management von neonatalen Hirnschäden zu verbessern. Das Modell, das Sie gleich sehen werden, stellt eine gute Annäherung an den klinischen Verlauf einer Hypoxie-Ischämie dar. Aus diesem Grund lassen sich Ergebnisse gut auf das klinische Umfeld übertragen. In dem hier vorgestellten Modell steuern wir die Schwere und den Zeitpunkt des hypoxischen Insults, wodurch die biologische Variabilität minimiert wird.Um die Interpretation klinischer Studien zu erschweren, verwenden wir dänische Landrassen-Ferkel im Alter von 18 bis 24 Stunden nach der Geburt. Sie wiegen durchschnittlich 1000 bis 2000 Gramm, und ihre Physiologie ist in vieler Hinsicht mit der des Neugeborenen vergleichbar. Dieses Modell kann zur Untersuchung von Behandlungseffekten mittels Magnetresonanztomographie, Neuropathologie sowie Biomarkern in Körperflüssigkeiten wie zerebrospinaler Flüssigkeit, Urin und Blut eingesetzt werden.Es handelt sich um ein technisch anspruchsvolles Modell. Im Folgenden erläutern wir jeden Schritt, der für die Durchführung des Modells erforderlich ist. Die Ausrüstung, die zur Einleitung der Anästhesie benötigt wird, umfasst eine Maske zur Verabreichung von Sevofluran, einen peripheren Venenkatheter, Spritzen mit Kochsalzlösung, Propofol, Fentanyl, Muskelrelaxans und Penicillin.Eine Maulsperrer, ein Wattestäbchen, ein tierärztliches Laryngoskop mit geradem Blatt, Sloane-Spray, cuffed Endotrachealtuben, SIIS 3 0 2 0,5 und zwei Selbstinflationsbeutel-Spritzen zur Cuff-Inflation sowie ein Stethoskop. Die Anästhesie wird mittels Maske mit VO-Fluoran verabreicht, und die Anästhesietiefe wird überwacht. Gemäß Protokoll wird ein peripherer Venenkatheter in eine Ohrvene gelegt und mit Salan gespült.An diesem Punkt ist das Tier sediert, atmet jedoch spontan. Die intravenöse Anästhesie wird durch die Gabe von Fentanyl 30&nbsp;Mikrogramm pro Kilogramm eingeleitet, gefolgt von Propofol, fünf Milligramm pro Kilogramm, und Broon, ein Milligramm pro Kilogramm, unmittelbar vor der Intubation. Für die Intubation wird das Ferkel in Rückenlage positioniert.Die Länge des endotrachealen Tubus wird von der Schnauzenspitze bis oberhalb der Sternumkerbe gemessen. Üblicherweise beträgt sie etwa 13 Zentimeter. Ein Wattestäbchen wird verwendet, um die lange Epiglottis nach vorne zu ziehen, damit sie angehoben werden kann. Dies wird beim Laryngoskop verwendet, um eine vollständige Sicht auf die Adernknorpel in den Stimmbändern zu ermöglichen.Ein Spraysinus wird lokal im Kehlkopf angewendet, um einen Spasmus zu verhindern. Der endotracheale Tubus wird langsam durch die Stimmbänder vorgeschoben; sobald er entsprechend der vorgemessenen Distanz vorgerückt ist, wird er mit einem selbstaufblasbaren Reservoirbeutel zur manuellen Beatmung verbunden. Die korrekte Platzierung des endotrachealen Tubus wird durch Beobachtung einer symmetrischen Brustbewegung, durch Auskultation mittels Stethoskop, visuelle Bestätigung von Kondensat im Tubus sowie durch die Darstellung der Tidalen-CO₂-Kurve in Weiß auf dem Monitor bestätigt.Schließlich wird der Manschette aufgepumpt, um eine sichere Atemwegssicherung zu gewährleisten. Der endotracheale Tubus wird nun an ein Beatmungsgerät für die maschinelle Beatmung angeschlossen. Abschließend Infusion von Propofol, fünf Milligramm pro Kilogramm pro Stunde, und Fentanyl.Es wird mit 10 Mikrogramm pro Kilogramm pro Stunde begonnen. Der Beatmungsgerät wird auf einen volumenkontrollierten Modus eingestellt, der Atemzugvolumina von 10 Milliliter pro Kilogramm liefert, sowie Ausrüstung zur Überwachung. Das Ferkel erhält EKG-Elektroden, einen Pulsoximeter, eine rektale Temperatursonde und Ausrüstung.Für die zentrale arterielle Drucküberwachung wird zunächst ein Pulsoximeter angebracht, gefolgt von der Einführung einer rektalen Temperatursonde. Vor der Platzierung der Elektroden wird die Brust rasiert. Auf dem Bildschirm werden EKG, Herzfrequenz, zentraler arterieller Druck und Sauerstoffsättigung angezeigt.Die für das Legen von Nabelschnurkathetern benötigte Ausrüstung umfasst sterile Tücher, ein Skalpell, mikrochirurgische Instrumente, Nabelschnurkatheter der Größe 3,5 French sowie 5-French-Spritzen zur Blutentnahme und zum Spülen, sowie ein Nahtset zur Visualisierung der Nabelgefäße. Die Nabelschnur wird auf Hautniveau durchtrennt. Die Nabelvene ist rechts im Bild zu sehen, und eine der beiden Nabelarterien befindet sich links.Zunächst wird der arterielle Katheter bis zu einer Tiefe eingeführt, die dem Gewicht des Ferkels in Kilogramm multipliziert mit drei plus 10 Zentimeter entspricht. Die korrekte Position wird durch Rückfluss von Blut überprüft. Anschließend wird der venöse Katheter bis zu einer Tiefe von fünf Zentimetern vorgeschoben.Katheter werden durch Naht befestigt. Unter Verwendung einer Dreifachart-Naht wird der Kopf für die Platzierung von Elektroden rasiert. Bei der amplitudenintegrierten EEG-Überwachung sollten die parietalen Elektroden mit einem Abstand von mindestens zwei bis vier Zentimetern zueinander platziert werden, die Referenzelektrode in der Mittellinie und die Erdungselektrode an beliebiger Stelle am Kopf.Die Impedanzmessung zeigt vier korrekt platzierte Elektroden mit gutem Signal-Rausch-Verhältnis. Der untere Bildschirmbereich zeigt das Echtzeit-EEG, während der obere Bildschirmbereich das zeitkomprimierte, amplitudenintegrierte EEG anzeigt. Dem Ferkel wird nun erlaubt, 60 Minuten lang vor der Induktion einer Hypoxie zu ruhen. Die Hypoxie wird eingeleitet, indem auf ein Beatmungsgerät umgestellt wird, das eine Mischung aus Stickstoff und 4 % Sauerstoff liefert.Es dauert durchschnittlich zwei Minuten, bis eine flache Kurve im amplitudenintegrierten EEG erreicht wird, was einer erheblichen Hypoxie entspricht. Leukämie im Gehirn für 45 Minuten. Der Sauerstoffanteil der eingeatmeten Luft wird reguliert.Um eine flache EEG-Amplitude unterhalb von sieben Mikrovolt während der Hypoxie aufrechtzuerhalten, kompensiert das Ferkel zunächst durch eine Erhöhung der Herzfrequenz. Während die Hypoxie andauert, beginnt das Ferkel zu dekompensieren, und der mittlere arterielle Druck sinkt ab. Zu diesem Zeitpunkt ist es entscheidend, den Sauerstoffanteil der eingeatmeten Luft anzupassen, um das Überleben sicherzustellen.Nach 45 Minuten wird der inspiratorische Sauerstoffanteil auf 21 % erhöht, was zu einer gesteigerten Hirnaktivität führt. Nach der Hypoxie wird das Ferkel extubiert und für die nächsten vier Tage zum Aufwachen freigegeben. Das Ferkel wird von einem erfahrenen Versuchstierpfleger betreut, der es täglich füttert und neurologisch bewertet.Nach sieben zwei Stunden wird das Schwein sediert und beatmet. Erneut sind die bildgebende genetische Resonanz und die Spektroskopie leistungsfähige Werkzeuge zur Untersuchung des Gehirns. Die Magnetresonanztomographie wird durch die neuropathologische Untersuchung ergänzt.Das Gehirn wird sorgfältig in jedem Bereich präpariert und von einem erfahrenen Neuropathologen untersucht. Nachdem Sie dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man ein Ferkelmodell der neonatalen hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie etabliert. Mit diesem Modell können relevante Fragen zur Diagnose und Therapie von neonatalen Hirnverletzungen untersucht werden.Letztendlich die Optimierung des Managements betroffener Säuglinge.

a-piglet-model-of-neonatal-hypoxic-ischemic-encephalopathy

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Die postnatale Rattenmodell für hypoxisch-ischämischen Hirn-Trauma ist ein gut etabliertes Modell der menschlichen Neugeborenen hypoxisch ischämischen Enzephalopathie (HIE). In diesem Artikel beschreiben wir das Modell der HIE in postnatalen Rattenjungen.

Die hypoxische ischämischen Enzephalopathie Model of Perinatal Ischämie

Großtiermodelle haben gute translationale Werte in der Untersuchung der Physiologie und Pharmakologie von neonataler Asphyxie. Mit neugeborenen Ferkeln, entwickeln wir ein experimentelles Protokoll neonatale Asphyxie die Vorteile eines Studiums der systemischen und regionalen Hämodynamik, Sauerstoff-Transport mit biochemischen und pathologischen Wege und Zusammenhänge hat zu simulieren.

A Swine Modell von neonataler Asphyxie

Das Video zeigt das Verfahren zur Erstellung eines Mausmodells zur Untersuchung von hypoxisch-ischämischen Hirnverletzungen bei Neugeborenen. Es beschreibt die Schritte zur chirurgischen Induktion einer Ischämie und zur Unterwerfung des Tieres unter Hypoxie, um die Hirnschädigung zu verschlimmern. Schließlich wird gezeigt, wie die resultierenden Hirnläsionen beurteilt werden können, um sicherzustellen, dass das Mausmodell für weitere wissenschaftliche Untersuchungen vorbereitet wird.

Etablierung eines Mausmodells für hypoxisch-ischämische Hirnverletzungen bei Neugeborenen

Quelle: Jantzie, L. L., et. al. Modellierung der Frühgeborenen-Enzephalopathie unter Verwendung der pränatalen Hypoxie-Ischämie mit intraamniotischem Lipopolysaccharid bei Ratten. J. Vis. Exp. (2015)Dieses Video zeigt ein Protokoll zur Induktion hypoxisch-ischämischer und entzündlicher Zustände bei fötalen Ratten durch Einschränkung des uterinen Blutflusses und Injektion von LPS, Modellierung von Neuroinflammation und gestörter Gehirnentwicklung, die für Frühgeburtenstudien relevant sind.

Induktion hypoxisch-ischämischer und entzündlicher Zustände zur Modellierung der Enzephalopathie bei pränatalen Ratten

Die Frühgeborenen-Enzephalopathie umfasst die Anomalien des Zentralnervensystems, die mit Verletzungen durch Frühgeburten verbunden sind. Dieser Bericht beschreibt ein klinisch relevantes Rattenmodell der in utero transienten systemischen Hypoxie-Ischämie und der intraamniotischen Lipopolysaccharid-Verabreichung (LPS), das die Chorioamnionitis nachahmt, und den damit verbundenen Einfluss von infektiösen Reizen und Plazenta-Unterperfusion auf die ZNS-Entwicklung.

Modellierung Enzephalopathie praematurorum Mit Prenatal Hypoxie-Ischämie mit Intra-Frucht Lipopolysaccharide bei Ratten

Anästhesie-induzierte Entwicklung Neurotoxizität (AIDN) Forschung konzentriert sich auf Nagetiere, die nicht breit auf den Menschen anwendbar sind. Nicht-menschliche Primatenmodelle sind relevanter, aber kostenaufwendig und schwer zu experimentieren. Das Ferkel dagegen ist ein klinisch relevantes, praktisches Tiermodell, ideal für das Studium der anästhetischen Neurotoxizität.

Verwendung eines Ferkelmodells für die Untersuchung der anästhetisch-induzierten Entwicklungsneurotoxizität (AIDN): Ein Translational Neuroscience Approach

Dieses Manuskript beschreibt eine Methode zur kontinuierlichen Video-EEG-Aufzeichnung mit mehreren Tiefenelektroden bei neugeborenen Mäusen, die eine Hypoxie-Ischämie erleiden.

Kontinuierliches Video-Elektroenzephalogramm während Hypoxie-Ischämie bei neonatalen Mäusen

Dieses Ferkelmodell umfasst chirurgische Instrumente, Erstickung bis zum Herzstillstand, Wiederbelebung und Beobachtung nach der Reanimation. Das Modell ermöglicht eine mehrfache Probenahme pro Tier und bietet durch die kontinuierliche invasive Überwachung des arteriellen Blutdrucks, des EKGs und des nicht-invasiven Herzzeitvolumens Kenntnisse über die Hämodynamik und die Pathophysiologie des Herzens bei perinataler Asphyxie und Herz-Lungen-Wiederbelebung bei Neugeborenen.

Ein perinatales Asphyxie-Modell für Ferkel zur Untersuchung von Herzverletzungen und Hämodynamik nach Herzstillstand, Wiederbelebung und der Rückkehr der Spontanzirkulation

Dieses Protokoll beschreibt die Entwicklung eines neonatalen Ferkelmodells für akute Lungenverletzungen, das frühe pathogene Ereignisse in der Frühgeborenenlunge modelliert, einschließlich einer unzureichenden Tensidmenge, Hyperoxie, Hochdruckbeatmung und Entzündung, um das Verständnis der molekularen Auslöser der bronchopulmonalen Dysplasie zu erleichtern und die therapeutische Translation zu verbessern.

Entwicklung eines Modells für akute Lungenverletzungen bei Neonatalen Ferkeln, das die frühe Umgebung der Lunge von Frühgeborenen nachbildet

Wir messen perigenital mechanische Empfindlichkeit und Mastzellaktivierung in der Prostata von männlichen C57BL / 6-Mäuse, die eine frühe Leben Stress Paradigma erfuhr - Neugeborenen von Müttern Trennung, um einen präklinischen Modell der chronischen Prostatitis / chronischem Schmerzsyndrom des Beckens zu induzieren.

Bewertung der perigenital Sensitivität und Prostatic Mastzellaktivierung in einem Mausmodell der Neonatal Maternal Separation

Erfahren Sie ein Ferkelmodell der neonatalen hypoxisch-ischämischen Enzephalopathie zur Untersuchung von Hirnverletzungen im Neugeborenenalter. Diese Methode nutzt Amplitude-integrated-EEG zur kontrollierten Hypoxieinduktion.

Ein Ferkel Modell Neonatal hypoxischischämischer Enzephalopathie

Weitere Videos entdecken