Name: Isolierung von Murine Peritonealmakrophagen zur Durchführung Genexpressionsanalyse Nach Toll-like Rezeptoren Stimulation (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 21 s
Description: Erfahren Sie die Isolierung muriner Peritonealmakrophagen zur Genexpressionsanalyse nach Toll-like-Rezeptor-Stimulation. Diese Methode ermöglicht präzise Untersuchungen immunologischer Mechanismen.

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Diese Arbeit wurde unterstützt durch einen Zuschuss aus den Natur- und Ingenieurwissenschaften Research Council of Canada unterstützt (NSERC, gewähren keine 298.515-2011). AL ist der Empfänger eines Ph.D. Stipendium von den Natur- und Ingenieurwissenschaften Research Council of Canada (NSERC) und MS wurde aus einem Zuschuss von der kanadischen Institutes of Health Research (CIHR, gewähren keine. MOP123246).

Alle Verfahren wurden in Übereinstimmung mit dem Canadian Council on Animal Care Leitlinien nach Genehmigung durch die Institutional Animal Care Committee des Centre de recherche du Centre Hospitalier de l&#39;Université de Montréal (CRCHUM) durchgeführt. 1. Isolierung, Identifizierung und Kultur von Murine Peritonealmakrophagen <ol><li> Bereiten Sie 3,8% Brau Thioglykolat-Medium. Um dies zu tun, aussetzen 38 g Thioglykolat-Medium in 1000 ml destilliertem Wasser. Bringen Lösung zum Kochen bringen, um das Medium vollständig zu lösen. Sterilisieren durch Autoklavieren bei 121 ° C für 15 min. Speichern Sie bis zu 3 Monate in der Dunkelheit, bei RT 18. HINWEIS: Verwerfen, wenn Trübung entwickelt, die eine bakterielle Kontamination zeigt. Die Lösung kann bis zu einem Jahr im Dunkeln gehalten werden, wenn steril gehalten. </li><li> Verwendung von 1 ml-Spritzen bis 23 G Nadeln befestigt injizieren 1 ml 3,8% Brewer Thioglykolat-Medium in die Peritonealhöhle jeder Vereinbarungse und warten Sie für 3 Tage. Verwenden Sie neue Spritze und Nadel für jede Maus. </li><li> Betäuben Mäusen durch intraperitoneale Injektion von Natriumpentobarbital (100 mg / kg) und euthanize Mäuse durch Genickbruch. Überprüfen Sie die ordnungsgemäße Betäubung durch Überprüfung der Atemfrequenz. In der Regel schnelle Atmung zeigen, dass die Maus nicht tief anästhesiert. </li><li> Den Unterleib jeder Maus mit 70% Ethanol waschen. Mit einer Schere, führen Sie einen seitlichen Schnitt entlang der unteren Mittellinie des Bauchfells. </li><li> Mit einer Pinzette, ziehen Sie die Bauchhaut, um die transparente Bauchhaut freizulegen. Verwendung von 5 ml Spritzen an 20 G Nadeln befestigt injizieren 5 ml kaltem DPBS in die Peritonealhöhle jeder Maus. </li><li> Führen Sie eine sanfte Massage auf der Bauchhöhle und dann sorgfältig absaugen Flüssigkeit ohne Punktieren jedes Organ. Entfernen Sie die Nadel und verzichtet der Peritonealflüssigkeit in 50 ml konischen Zentrifugenröhrchen. </li><li> Zentrifugieren für 10 min bei 400 × g in einer gekühlten Zentrifuge.Zellen müssen während des gesamten Verfahrens kalt bleiben. Überstand verwerfen und resuspendieren Zellpellet in RPMI-Medium 1640. </li><li> Verwendung eines Hämozytometers zählen Zellen und einzustellen, um die Zelldichte auf 1 x 10 6 Zellen / ml. </li><li> Charakterisierung des Phänotyps isolierten Zellen durch Durchflusszytometrie unter Verwendung von 1 x 10 6 Zellen pro Maus und antibodie gegen F4 / 80 (eine Oberfläche Antigens, das auf Makrophagen). </li></ol> 2. Zellbehandlungen <ol><li> Direkt nach der Isolierung, fügen Sie 1 x 10 6 Zellen in jede Vertiefung. Lassen die murine peritoneale Makrophagen durch Kultivieren für 1 bis 2 Stunden bei 37 ° C in der 6-Well-Platten zu halten. Entfernen Sie nicht anhaftende Zellen durch vorsichtiges Waschen 3 mal mit warmem PBS. </li><li> Anschließend Kulturzellen in 900 &amp; mgr; l serumfreiem DMEM für 24 h in Gegenwart der folgenden TLR-Liganden: (Pam3CSK4-TLR1 / 2 (0,5 mg / ml), Poly (I: C) -TLR3 (10 mg / ml) ; LPS-TLR4 (100 ng / ml); Flagellin-TLR5 (100 ng / ml); FSL1- TLR6 / 2 (100 ng / ml); ssRNA40-TLR7 (1 ug / ml); ODN1826-TLR9 (1 uM). HINWEIS: Bereiten Sie für jeden Liganden ein 10-faches Konzentrat. 100 l des letzteren in jede Vertiefung, wodurch die Durchführung einer 10-fachen Verdünnung. </li></ol> 3. RNA-Isolierung <ol><li> Entfernen Sie alle mittleren und lysieren Zellen direkt in den sechs-Well-Platten durch Zugabe von 1 ml TRIzol in jede Vertiefung und das Bestehen der Zelllysat mehrmals in eine Pipette. Die homogenisierte Proben inkubieren 5 bis 10 Minuten bei Raumtemperatur, um die vollständige Dissoziation Nukleoproteinkomplexen ermöglichen. </li><li> Übertragen Lysat in 1,5 ml RNase- und DNase-freie Mikrozentrifugenröhrchen. 0,2 ml Chloroform pro 1 ml TRIzol. Durch kräftiges Schütteln Rohre von Hand für 15 Sekunden und inkubieren bei Raumtemperatur für 5 bis 10 min. Zentrifuge bei 12.000 xg für 15 min bei 4 ° C. Beachten Sie die Mischung getrennt wird in eine untere rote Phase (Phenol-Chloroform), eine Interphase und eine farblose obere wässrige Phase. RNA liegt ausschließlich in der wässrigen Phase. </li><li> Transfer sorgfältig die obere wässrige Phase in ein frisches Röhrchen, ohne die Interphase zu stören. Ausfällung der RNA aus es durch Mischen mit 0,5 ml Isopropylalkohol. Proben Inkubation bei RT für 10 Minuten und Zentrifugation bei 12.000 × g für 10 min bei 4 ° C. Die RNA-Ausscheidungen bildet ein weißes Pellet an der Seite und am Boden des Röhrchens. </li><li> Überstand entfernen. Mit 1 ml 75% Ethanol waschen das RNA-Pellet einmal. Mischen Sie die Proben durch Vortexen und Zentrifugieren bei 7.500 xg für 5 Minuten bei 4 ° C. Kurz trocknen die RNA (Luft trocknen für 10 min). Lösen sich RNA in 0,1 ml DEPC (RNAse freies Wasser) und Inkubation für 10 min bei 55 ° C. </li><li> Quantifizieren RNA mit einem Spektralphotometer. Um dies zu tun, verdünnte Proben 100 Mal in DEPC Wasser und bei Wellenlängen von 260 nm gelesen. Die RNA-Konzentration ist dann: OD 260 x 40 ng / ul x Verdünnungsfaktor. </li><li> RNA-Konzentrationen auszugleichen und zu synthetisieren cDNA gemäß den Anweisungen des Herstellers unter Verwendung von RT-PCR-System für First-Strand cDNA Synthesis Kit. Wieden Anweisungen des Herstellers, messen Gen-mRNA-Spiegel durch Echtzeit-PCR (45 Zyklen) in einer Echtzeit-DNA-Detektionssystem. Normalisierung der Genexpression Ebenen mit zwei Housekeeping-Gen beispielsweise β-Actin und GAPDH. HINWEIS: Normalisieren RNA-Konzentration auf 500 ug / ml und mit 0,5 &amp; mgr; g für die cDNA-Synthese. </li></ol>

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Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Makrophagen sind von entscheidender Bedeutung für das Überleben und ein verlockendes Ziel, um den Host für immunologische Ziele zu manipulieren. Die Entdeckung von TLR und andere Erkennungsmoleküle das Makrophagen zur Mitte der immunologischen Debatte geführt. Makrophagen sind auf eine Vielzahl von Stimuli, einschließlich Cytokinen, Schadens-associated molecular pattern Moleküle (dämpft) 20 und Moleküle mit Gruppen von Pathogenen (PAMPS) 21 verbunden. Diese Reaktionen unterschiedliche Stimuli stell...

Retikuloendothelialen phagozytische System von Zellen in verschiedenen Geweben und Organen, wie Knochenmark, Blut, Leber und Milz besteht. Makrophagen werden in großem Umfang um den Körper, wo sie vor allem in angeborenen teilzunehmen und adaptiven Immunantwort zu steuern und zu Infektionen klar verteilt. Zusätzlich zu ihrer Rolle bei der Immunabwehr, Makrophagen spielen eine wichtige Rolle bei der Wundheilung und bei der Aufrechterhaltung Gewebshomöostase 1,2. Darüber hinaus sind Makrophagen nicht nur die Immunfunktion wichtig, sondern auch aktiv in Eisenhomöostase 3 teilzunehmen. Im Körper ist etwa 80% der Eisen im Hämoglobin in Erythrozyten vorhanden ist, die bei seneszenten werden von Makrophagen phagozytiert 4. Täglich, diese Makrophagen recyceln 25 mg von Erythrozyten-abgeleitete Eisen und bringt ihren Transport in das Plasma 5. Darüber hinaus während der Infektion und Entzündung, proinflammatorischen Makrophagen maskieren Serum-Eisen auf Eisen VERFÜGBARK reduzierenty, um Krankheitserreger, die an beiden systemischen und lokalen Ebenen 6-8. Wie gut, Studien haben gezeigt, dass vor allem Makrophagen und Hepatozyten erzeugen ein antimikrobielles Peptid namens Hepcidin, das als das Master-Regulator des Eisenstoffwechsels 9, 10 ist. Hepcidin wird hauptsächlich durch inflammatorische Stimuli erhöht und ist teilweise für die Eisenspeicherung in Makrophagen bei chronischen Entzündungen 11-13 verantwortlich. Wie Hepcidin-Expression in Makrophagen ist nicht sehr gut verstanden, haben wir untersucht die mögliche Rolle von Toll-like Rezeptoren (TLRs) in dieser Regelung. Die TLRs sind in erster Linie auf Makrophagen und spielen eine zentrale Rolle in der Aktivierung. Zusätzlich ist LPS induzierte Hepcidin Expression in der Leber hängt von TLR4 13. Daher unserer Untersuchung auszuführen, verwendeten wir ein Verfahren, das auf die Isolierung von murinen peritonealen Makrophagen. Makrophagen-Zelllinien werden im Großen und Ganzen in Makrophagen Zucht eingesetzter Jahren; dennoch ausgedehnte Kultur Genverluste provozieren und verringerte Immunfunktionen in diesen Zelllinien. Somit ist die Isolierung von Makrophagen aus der Peritonealhöhle entscheidend. Die Maus Bauchhöhle stellt eine ideale Ort, um Makrophagen 13-15 ernten. Isolated murinen peritonealen Makrophagen sind bequem für mehrere Studien in Bezug auf ihre immunologische Funktion. Jedoch ist die Anzahl von Makrophagen in das Peritoneum nicht ausreichend ist für umfangreiche Untersuchungen und wird geschätzt etwa 1 x 10 6 Makrophagen pro Maus. Somit Makrophagen Ausgang zu erhöhen, wurde eine sterile Hervorrufen Mittel wie Thioglykolat in die Bauchhöhle vor der Zellernte injiziert. Nach Thioglycolat Injektion wurde die Ausbeute an Makrophagen pro Maus durch das 10-fache erhöht. Trotz der Zunahme der Makrophagen Ertrag, Thioglycolat-Medium wirkt Brewer als Reizmittel, die eine Entzündungsreaktion induziert, was zur Rekrutierung von Makrophagen, die may, aber nicht notwendig Auswirkungen auf die Genexpression. Daher muss eine Kontrollgruppe, bestehend aus nicht-behandelten Makrophagen in jedem Experiment eingeschlossen sein. In unseren Händen, wurde Hepcidin-Expression, die stark durch eine Entzündung stimuliert wird nicht in nicht-behandelten Thioglycolat erkannt ausgelöst Peritonealmakrophagen. Darüber hinaus haben Studien gezeigt, dass Brewer Thioglycolat rekrutiert zahlreiche Makrophagen, aber nicht 16 aktivieren. Andererseits löste Brewer Thioglycolat Makrophagen zeigten einen Anstieg der lysosomalen Enzyms, aber eine Verringerung in der Tötung von Mikroorganismen 17 eingenommen. Allerdings wurde die Phagozytose nicht, wenn sie mit nicht-ausgelöst Makrophagen 16 im Vergleich betroffen. Einmal in Schalen kultiviert, die Peritonealmakrophagen verwachsen und ermöglicht damit ihre Trennung von einer anderen Art von Zellen, die aus der Peritonealhöhle isoliert wird. Anschließend wurden die isolierten Makrophagen mit verschiedenen TLR Agonisten herausgefordert.Schließlich mRNA wurde aus den kultivierten Zellen extrahiert, und die Genexpression wurde durch quantitative reverse Transkriptase-Polymerasekettenreaktion (qRT-PCR) analysiert.

<table><tbody><tr><td>C57BL/6 Mäuse</td><td>Charles River Laboratories, Inc. (Wilmington, MA, USA)</td><td>475</td><td></td></tr><tr><td>Thioglykollat</td><td>Sigma-Aldrich, (St. Louis, MO)</td><td>19032-500G</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10% Natrium-Pentobarbital (Wird für die Anästhesie von Mäusen verwendet (80 mg/kg, i.p.))</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s phosphatgepufferte Kochsalzlösung (DPBS), die auf Eis gelegt wird und zur Gewinnung von Makrophagen</td><td>WISENT INC Canada (QC)</td><td>311-425-CL</td><td></td></tr><tr><td>RPMI Medium 1640 dient (Ergänzung mit Penicillin, Streptomycin, L-Glutamin und 10 % fötalem Kälberserum).</td><td>WISENT INC Canada (QC)</td><td>350-000-CL</td><td></td></tr><tr><td>1 und 5 ml Spritzen</td><td>BD USA (NJ)</td><td></td><td></td></tr>309659 <tr><td>6-Well-Platten</td><td>Corning Incorporated (NY, USA)</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr><tr><td>Bakterielles Lipoprotein Pam3CSK4 (0,5 mg/ml)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>TLRL-pm25</td><td></td></tr><tr><td>Polyionosin&ndash; Polycytidylsäure (Poly(I:C)) (10 mg/ml)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>TLRL-PIC</td><td></td></tr><tr><td>LPS aus Escherichia coli 055:B5 (100 ng/ml)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>L2880</td><td></td></tr><tr><td>Gereinigtes Flagellin aus Salmonella typhimurium (100 ng/ml)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>TLR-FLIC-10</td><td></td></tr><tr><td>Lipoprotein synthetisches FSL1 (100 ng/ml)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>TLR-FSL</td><td></td></tr><tr><td>ssRNA, die von der HIV-1-Long-Terminal-Repeat-ssRNA40 (1 &mu; g/ml)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>TLR-LRNA-40</td><td></td></tr><tr><td>Typ B CpG-Oligonukleotid ODN1826 (1 &mu; M)</td><td>InvivoGen (San Diego, USA)</td><td>11B16-MM</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol</td><td>Invitrogen, (Burlington, ON, Kanada)</td><td>15596-026</td><td></td></tr><tr><td>20 G und 23 G Nadeln</td><td>BD USA (NJ)</td><td></td><td></td></tr>305175 <tr><td>Scherenzange</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 ml konische Röhrchen auf Eis</td><td>gelegt Sarstedt (Newton, MA, USA)</td><td>62.547.205</td><td></td></tr><tr><td>Erythrozyten-Lysepuffer</td><td>Sigma-Aldrich, (St. Louis, MO)</td><td>R7757-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Kühlzentrifuge</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hämozytometer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>F4/80 Antikörper</td><td>BIO-RAD (CA, USA)</td><td></td><td></td></tr>MCA497APC <tr><td>CD16/CD32 Antikörper</td><td>Pharmingen, {Mississauga, ON, CA)</td><td>553141</td><td></td></tr><tr><td>Durchflusszytometer</td><td>Coulter Epics Elite Zähler, Coulter, (Hialeah, FL, USA)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,5 ml Eppendorf</td><td>Tuben Axygen Scietific (CA, USA)</td><td>3516</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Fisher Scientific (ON, Kanada)</td><td>UN1888</td><td></td></tr><tr><td>Isopropylalkohol</td><td>JT Baker (PA, USA)</td><td>70566</td><td></td></tr><tr><td>75% Ethanol (in DEPC-behandeltem Wasser)</td><td>Kommerzielle Alkohol (QC, Kanada)</td><td>17394</td><td></td></tr><tr><td>0,01 % mit Diethylpyrocarbonat (DEPC) behandeltes Wasser (über Nacht stehen lassen und autoklavieren)</td><td>Sigma-Aldrich, (St. Louis, MO)</td><td>216.542.8</td><td></td></tr><tr><td>Omniscript RT-PCR-System</td><td>Qiagen, (Mississauga, ON, Kanada)</td><td>205113</td><td></td></tr><tr><td>Rotor Gene 3000</td><td>Montreal Biotech, (Kirkland, QC, Kanada)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>QuantiTect SYBR Green I PCR-Kits</td><td>Qiagen, (Mississauga, ON, Kanada)</td><td>204141</td><td></td></tr></tbody></table>

isolierung von murine peritonealmakrophagen zur durchführung genexpressionsanalyse nach toll-like rezeptoren stimulation

Isolation of Murine Peritoneal Macrophages to Carry Out Gene Expression Analysis Upon Toll-like Receptors Stimulation

Während der Infektion und Entzündung, lassen zirkulierenden Monozyten in die Blutbahn und wandern ins Gewebe, wo sie in Makrophagen zu differenzieren. Makrophagen exprimieren Oberflächen Toll-like Rezeptoren (TLRs), die molekulare Muster in einer Vielzahl von Mikroorganismen durch Evolution konserviert zu erkennen. TLRs spielen eine zentrale Rolle in Makrophagenaktivierung, die in der Regel mit Genexpressionsänderung verbunden ist. Makrophagen sind kritisch bei vielen Krankheiten und werden als attraktive Ziele für eine Therapie entwickelt. In dem folgenden Protokoll beschreiben wir ein Verfahren, um murine peritoneale Makrophagen mit Brauerei Thioglykolat-Medium zu isolieren. Letzteres wird Monozytenmigration in das Peritoneum zu steigern, entsprechend wird dies Makrophagen-Ausbeute um das 10-fache zu erhöhen. Mehrere Studien wurden unter Verwendung von Knochenmark, Milz und peritoneale Makrophagen durchgeführt. Allerdings wurden peritoneale Makrophagen gezeigt reiferen auf Isolation zu sein und sind in ihrer funktionalen stabilerkeit und Phänotyp. So Makrophagen aus murinen Bauchhöhle isoliert präsentieren eine wichtige Zellpopulation, die in verschiedenen immunologischen und metabolischen Untersuchungen dienen kann. Nach der Isolierung wurden Makrophagen mit verschiedenen TLR-Liganden stimuliert und damit die Genexpression wurde ausgewertet.

Zunächst gekennzeichnet die isolierten murinen peritonealen Makrophagen mittels Durchflusszytometrie. Um dies zu tun, haben wir (F4 / 80) Antikörper, die spezifisch Marker nur durch Makrophagen zu erkennen. Diese Charakterisierung wird benötigt, um die Prozentzahl der isolierten Makrophagen zu bestimmen und sie unter den Zellen während des Isolierungsprozesses erhaltenen unterscheiden. Wie in (1) gezeigt, ist der Prozentsatz von Zellen, die das Antigen F4 / 80 wurde übereinstimmend festgestellt, über 95...

Wir beschreiben hier ein einfaches Protokoll zur Isolierung von Maus-Peritonealmakrophagen. Diesem Verfahren folgt eine RNA-Extraktion, um eine Genexpressionsanalyse bei der Stimulation von Toll-like-Rezeptoren durchzuführen.

Isolierung von Murine Peritonealmakrophagen zur Durchführung Genexpressionsanalyse Nach Toll-like Rezeptoren Stimulation

During infection and inflammation, circulating monocytes leave the bloodstream and migrate into tissues, where they differentiate into macrophages. ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, murine Peritonealmakrophagen zu isolieren und nach der Stimulation von Toll-ähnlichen Rezeptoren eine Genexpressionsanalyse durchzuführen. Dies wird erreicht, indem zunächst 3,8 % Brewer-Thioglykolat-Medium in die Bauchhöhle der Maus injiziert wird, um die Migration von Monozyten in das Peritoneum zu erhöhen und somit nach drei Tagen die Ausbeute an Makrophagen zu steigern. Anschließend wird die Maus euthanasiert und kalte PBS-Pufferlösung (ECCO's Phosphat-gepufferte Salzlösung) in die Bauchhöhle injiziert, um die Zellen zu gewinnen.Nach einer sanften Massage der Bauchhöhle wird die Peritonealflüssigkeit vorsichtig abgesaugt. Anschließend werden die gewonnenen Zellen kultiviert und die hervorgerufenen Peritonealmakrophagen mittels Durchflusszytometrie charakterisiert. Im letzten Schritt werden diese Makrophagen mit verschiedenen Toll-ähnlichen Rezeptor- oder TLR-Liganden stimuliert und die RNA aus den Proben isoliert.Schließlich wird mittels quantitativer reverser Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktion die Expression des Gens von Interesse gemessen. Das Ziel des folgenden Verfahrens besteht darin, spiegelnde peritoneale Makrophagen unter Verwendung von Brewers TIO-Glykol-Medium zu isolieren. Dieses Medium erhöht die Migration von Monozyten in das Peritoneum und steigert somit die Ausbeute an Makrophagen.Nach der Isolierung werden die Makrophagen mit verschiedenen Liganden für Toll-ähnliche Rezeptoren stimuliert, um die molekulare Regulation von Hepcidin als unserem Gen von Interesse zu untersuchen. Zunächst wird ein 3,8 %iges Brewer’s Bio Glyco Eight Medium gemäß dem schriftlichen Protokoll unter Verwendung von Ein-Milliliter-Spritzen, die mit 23-Gauge-Nadeln ausgestattet sind, hergestellt. Ein Milliliter des 3,8 %igen Brewer’s Bio Glyco Eight Mediums wird in die Bauchhöhle jeder Maus injiziert, anschließend wird drei Tage gewartet.Verwenden Sie nach der Anästhesie und Tötung der Maus, wie im Textprotokoll beschrieben, für jede Maus eine neue Spritze und eine neue Nadel, und benetzen Sie den Bauch jeder Maus mit 70 % Ethanol. Führen Sie mit der Schere einen seitlichen Schnitt entlang der unteren Mittellinie des Peritoneums durch. Ziehen Sie mit einer Pinzette die Bauchhaut zurück, um die durchsichtige Peritonealhaut freizulegen.Injizieren Sie anschließend fünf Milliliter kalte, mit Phosphat gepufferte Salzlösung (ECCOs) in die Bauchhöhle jedes Mäuses mit Fünf-Milliliter-Spritzen, die an 20-Gauge-Nadeln befestigt sind. Führen Sie eine sanfte Massage der Bauchhöhle durch und aspirieren Sie die Flüssigkeit vorsichtig, ohne ein Organ zu verletzen. Entfernen Sie die Nadel und geben Sie die Bauchhöhlenflüssigkeit in 50-Milliliter-kegelförmige Zentrifugenröhrchen ab.Zentrifugieren Sie anschließend die gesammelte peritoneale Flüssigkeit 10 Minuten lang bei 400 × g oder 1500 U/min in einer gekühlten Zentrifuge; die Zellen sollten während des gesamten Verfahrens kalt gehalten werden. Entsorgen Sie den Überstand und resuspendieren Sie das Zellpellet in RPMI-1640-Medium. Zählen Sie die Zellen mithilfe eines Hämozytometers und stellen Sie die Proben auf eine Zelldichte von einer Million Zellen pro Milliliter ein.Charakterisieren Sie das Phänotyp der isolierten Zellen mittels Durchflusszytometrie, um die Anreicherung von Makrophagen zu bestätigen. Verwenden Sie 1 Million Zellen pro Maus und Antikörper gegen F four 80, ein Oberflächenantigen, das direkt auf Makrophagen exprimiert wird. Geben Sie nach der Isolierung 1 Million Zellen in jede Vertiefung einer sechs.Mikrotiterplatte. Lassen Sie die murinen peritonealen Makrophagen durch Kultivierung für ein bis zwei Stunden bei 37 Grad Celsius an den Vertiefungen anhaften. Entfernen Sie nach der Inkubation die nicht-angewachsenen Zellen, indem Sie diese vorsichtig dreimal mit warmer, phosphatgepufferter Kochsalzlösung abspülen.Dann 900 Mikroliter serumfreies DMEM zu den Zellen geben. Bereiten Sie 10×-Stammlösungen jedes Toll-like-Rezeptor- oder TLR-Liganden gemäß dem schriftlichen Protokoll vor. Anschließend 100 Mikroliter der Stammlösungen zu jedem Well hinzufügen, wodurch eine zehnfache Verdünnungskultur erfolgt.Die Zellen für 24 Stunden in Anwesenheit der TLR-Liganden. Um die RNA-Isolierung durchzuführen, entfernen Sie zuerst das gesamte Medium und lysieren die Zellen direkt in den Sechs-Loch-Platten, indem Sie je ein Milliliter Triol-Reagenz zu jedem Loch hinzufügen und das Zelllysat mehrmals durch eine Pipette ziehen.Anschließend die homogenisierten Proben fünf bis zehn Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um die vollständige Dissoziation der nukleären Protein-Komplexe zu ermöglichen. Nach der Inkubation das Lysat in 1,5-Milliliter-RNAs- und DNA-spree-Mikrozentrifugenröhrchen überführen und 0,2 Milliliter Chloroform pro Milliliter Triol-Reagenz zugeben. Die Röhrchen 15 Sekunden lang kräftig von Hand schütteln, bevor sie fünf bis zehn Minuten bei Raumtemperatur inkubiert werden.Anschließend bei 12.000 × g für 15 Minuten bei vier Grad Celsius zentrifugieren. Beobachten Sie, wie sich die Mischung in eine untere rote Phenol-Chloroform-Phase, eine Interphase und eine farblose obere wässrige Phase trennt. Die RNA verbleibt ausschließlich in der wässrigen Phase.Überführen Sie vorsichtig die obere wässrige Phase in ein frisches Gefäß, ohne die Zwischenphase zu stören. Fällen Sie die RNA durch Zugabe von 0,5 Milliliter Isopropanol nach einer Inkubation der Proben bei Raumtemperatur für 10 Minuten. Zentrifugieren Sie bei 12.000 × g für 10 Minuten bei vier Grad Celsius.Die RNA-Fällungen bilden ein weißes Pellet an der Seite und am Boden des Röhrchens. Entfernen Sie den Überstand und waschen Sie das RNA-Pellet einmal mit einem Milliliter 75%igem Ethanol. Mischen Sie die Proben durch Vortexen und zentrifugieren Sie anschließend bei 7.500 × g für fünf Minuten bei vier Grad Celsius.Nach dem Entfernen des Überstandes die RNA kurz 10 Minuten lufttrocknen lassen. Anschließend die RNA in 100 µL RNA-freiem Wasser lösen und 10 Minuten bei 55 °C inkubieren. Danach die RNA mit einem Spektrophotometer quantifizieren.Proben 100-fach in RNA-freiem Wasser verdünnen und bei einer Wellenlänge von 260 Nanometern messen, um die RNA-Konzentrationen anzugleichen, und cDNA gemäß Herstelleranleitung synthetisieren. Verwenden Sie das R-T-P-C-R-System für das Kit zur Synthese des ersten cDNA-Strangs. Anschließend werden die Gen-mRNA-Spiegel mittels Echtzeit-PCR in einem Echtzeit-DNA-Erkennungssystem gemessen, wobei die Genexpressionsniveaus mit zwei Housekeeping-Genen normalisiert werden.Die isolierten spiegelnden Peritonealmakrophagen wurden mittels Durchflusszytometrie charakterisiert, um den Prozentsatz der isolierten Makrophagen zu bestimmen und sie von anderen Zellen, die während des Isolationsprozesses gewonnen wurden, zu unterscheiden. Der Prozentsatz an Zellen, die das Antigen F vier 80 exprimierten, lag durchgängig über 95 %. Anschließend wurden die isolierten Zellen mit mehreren TLR-Liganden und mRNA behandelt. Die Spiegel von Hepcidin wurden mittels R-T-P-C-R gegen Toleranzrezeptor eins und zwei sowie Toleranzrezeptor vier gemessen.Ein olfaktorischer Rezeptor sechs und zwei Liganden waren in der Lage, die Hepcidin-mRNA in spiegelnden Makrophagen zu stimulieren. Zusammen zeigen diese Ergebnisse die Nützlichkeit dieses Protokolls auf, um spiegelnde peritoneale Makrophagen erfolgreich zu isolieren und die molekulare Regulation der Genexpression präzise zu untersuchen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, werden Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man spiegelnde peritoneale Makrophagen isoliert, identifiziert und kultiviert.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Die Bauchhöhle bei Säugetieren enthält verschiedene Immunzellen Bevölkerung entscheidend für angeborenen Immunantwort. Eine effiziente Isolierung Methode ist für biochemische und funktionelle Analyse dieser Zellen erforderlich ist. Hier bieten wir eine umfassende Methode zur Isolierung von Bauchhöhle Zellen in der Maus.

Isolierung von Maus Bauchhöhle Cells

Dieses Video zeigt die Aktivierung der Peritonealmakrophagen einer Maus mit intravenösem Immunglobulin und bakteriellem Lipopolysaccharid. Durch die Co-Stimulation werden die Peritonealmakrophagen zu entzündungshemmenden Makrophagen mit immunregulatorischer Aktivität aktiviert.

In vivo Aktivierung von Peritonealmakrophagen als Reaktion auf Antikörper in einem Mausmodell

Dieses Video demonstriert ein Verfahren zur Analyse der peritonealen Makrophagen-vermittelten Efferozytose von apoptotischen Mausthymozyten mittels Fluoreszenzmikroskopie.

Analyse der Efferozytose apoptotischer Thymozyten mittels Peritonealmakrophagen

In diesem Protokoll beschreiben wir Methoden zur effizienten Transfektion von murinen Makrophagen-Zelllinien mit siRNAs unter Verwendung des Amaxa Nucleofector 96-well Shuttle Systems, zur Stimulation der Makrophagen mit Lipopolysaccharid und zur Überwachung der Auswirkungen auf die Produktion von entzündlichen Zytokinen.

Mit RNA-Interferenz, um die angeborene Immunantwort in Makrophagen der Maus Untersuchen

Wir stellen ein einfaches und effizientes Protokoll für die Herstellung von menschlichen Makrophagen. Buffy Coats werden durch Doppel Dichtegradientenzentrifugation isoliert verarbeitet und Monozyten werden dann an Makrophagen in Teflon-beschichtete Zellkulturbeutel differenziert. Dies maximiert Makrophagen-Renditen und erleichtert die Zellernte für nachfolgende Experimente.

Isolierung humaner Monozyten durch Doppel-Zentrifugation und ihre Differenzierung zu Makrophagen in Teflon-beschichteten Zellkultur-Taschen

Makrophagen sind Plastikzellen des hämatopoetischen Systems, die eine entscheidende Rolle bei der schützenden Immunität und Homöostase haben. In diesem Bericht beschreiben wir optimierte in vitro- Techniken zur phänotypischen und funktionellen Charakterisierung von pfropf-infiltrierenden regulatorischen Makrophagen, die sich im transplantierten Organ unter toleranten Bedingungen ansammeln.

Funktionelle Charakterisierung von regulatorischen Makrophagen, die eine pfropfreaktive Immunität hemmen

Antikörper-basierte Medikamente haben die Behandlung von entzündlichen Erkrankungen revolutioniert. Zusätzlich zu den direkten Auswirkungen auf bestimmte Ziele, können Antikörper Makrophagen entzündungshemmende zu aktivieren. Dieses Protokoll beschreibt wie entzündungshemmende Makrophagen Aktivierung bewertet in vitro mit Maus Knochenmark Makrophagen, und in-vivo mit peritonealen Makrophagen werden kann.

Bewertung der Antikörper-basierte Medikamente Auswirkungen auf murinen Knochenmark und peritonealen Makrophagen Aktivierung

Hier stellen wir ein Protokoll zur Vorbereitung von apoptotischen Thymozyten und peritonealen Makrophagen vor und analysieren die Effizienz der Eskrozytose und die spezifische hemmungsvermittelte Blockierung apoptotischer Thymozyten-Verengungen. Dieses Protokoll hat eine breite Anwendung in der zellvermittelten Räumung anderer Partikel, einschließlich künstlicher Perlen und Bakterien.

Experimentelle Analyse des Apoptotic Thymozyte Engulfment durch Macrophagen

Hier präsentieren wir eine Methode mit durchlässigen Membranstützen, um die Untersuchung der berührungslosen Parakrinsignalisierung zu erleichtern, die von Tumorzellen verwendet wird, um die Immunantwort zu unterdrücken. Das System ist für die Untersuchung der Rolle von tumorsezerseten Faktoren bei der Dämpfung der Makrophagenaktivierung geeignet.

Untersuchung der Auswirkungen von tumorgeheimen Parakrinliganden auf die Makrophagenaktivierung mit Co-Culture mit permeableMembranen unterstützt

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Isolierung und Kultivierung von aus dem Knochenmark gewonnenen Makrophagen aus Mäusen.

Isolierung und Kultivierung von Makrophagen aus dem Knochenmark aus Mäusen

Wir demonstrieren ein Schritt-für-Schritt-Protokoll zur Untersuchung der Genfunktion in peritonealen Gewebe-residenten Makrophagen in vivo unter Verwendung lentiviraler Vektoren.

Lentivirale Vektorpräparation für die effiziente Gen- und microRNA-Modulation von geweberesidenten Makrophagen in der Bauchhöhle in vivo bei Mäusen

Erfahren Sie die Isolierung muriner Peritonealmakrophagen zur Genexpressionsanalyse nach Toll-like-Rezeptor-Stimulation. Diese Methode ermöglicht präzise Untersuchungen immunologischer Mechanismen.

Isolierung von Murine Peritonealmakrophagen zur Durchführung Genexpressionsanalyse Nach Toll-like Rezeptoren Stimulation

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