Name: Eine neue Anwendung der Electrical Penetration Graph (EPG) zur Erfassung und Messung elektrischer Signale in Phloem Siebelemente (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-02T09:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 16 s
Description: Erfahren Sie die EPG-Technik zur Erfassung elektrischer Signale in Phloem-Siebelementen von Pflanzen während Insektenfraß. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Pflanzen-Insekten-Interaktionen und Fernsignalübertragung.

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VSR wurde durch ein Marie-Curie-Finanzhilfe IIF unterstützt (Wunde in EARTH, Akronym für: Wound induzierte elektrische Signale in Arabidopsis thaliana).

1. Blattlaus Aufzucht Hinweis: Die Auswahl der Anlagen und Blattlaus-Arten für EPG Aufnahmen hängt von der Forschungsziel. Für Untersuchungen an Arabidopsis thaliana ist die Blattlaus Brevicoryne brassicae angemessen. <ol><li> Rück B. brassicae Blattläuse in einem Gewächshaus auf Brassica oleracea. Halten Sie die für die Blattlaus Aufzucht in Käfigen verwendeten Pflanzen, um zu vermeiden, verunreinigen anderen Pflanzen. Halten Sie Blattlaus Erziehung Pflanzen und Versuchsanlagen (in unserem Fall B. oleracea und A. thaliana) in getrennten Räumen, um eine Verunreinigung der experimentellen Anlagen mit Blattläusen zu vermeiden. </li><li> Blattläuse übertragen an die frische Pflanzen etwa alle 2 Wochen, bevor verursacht erhebliche Schäden an der Anlage oder das Erreichen der Überbevölkerung. Übertragen 10-20 erwachsene Blattläuse auf eine frische Aufzuchtanlage, um eine neue Kolonie zu initiieren. </li><li> Überwachen Sie die Aufzucht Pflanzen regelmäßig auf Kontamination durch unerwünschte Blattlaus-Arten, andere Insektenfresser, Blattlaus Parasitoide und Fungich, dass die Gesundheit der Blattlauskolonie auswirken können. </li><li> Sammeln Erwachsenen, flügellose Blattläuse bis zu einer Woche nach ihrer endgültigen molt für EPG Aufnahme. </li><li> Nach Abschluß der Versuche, geben die Versuchspflanzen, die nicht an der Wachstumskammer verwendet wurden, da sie oftmals eine Nachkommenschaft, die während der Aufzeichnung, die versehentlich kontaminieren könnten andere Pflanzen hergestellt wurde. </li></ol> 2. Insect Verdrahtung für EPG-Aufnahme <ol><li> Insekten Elektroden zu machen, erhalten Messing Steckerstifte (Nägel, Ø 1,2 mm), dünne Kupferdraht (Ø 0,2 mm), sehr dünnen Golddraht (Ø ca. 20 &amp; mgr; m), Wasser-basierte Silber Leim, eine einfache kleine Lötkolben mit Lötwasser und Harzkern-Schweißdraht, Stereomikroskop mit 10-facher Vergrößerung, kleine Schere oder Skalpell, zwei feinen Pinzette und einem Styropor-Platte oder Box. Hinweis: Ein Wirbelmischer könnte nützlich sein. Anmerkung: Die Schritt-für-Schritt-Protokoll mit den Elektroden bilden, ist in Fig. 2 angedeutet </li><li> Für BlattlausHandhabung und Klebstoffauftrag, zu erhalten: eine kleine und weiche Aquarellkamelhaarbürste (Größe 2 oder kleiner) und Insekten Stifte, wie sie für die Insektensammlungen verwendet, obwohl eine feine Nähnadel oder Zahnstocher kann auch funktionieren. Schritt 4 zeigt, wie EPG Aufnahme zu starten. </li><li> Schritt 1. Hinweis: Die Schritte 1 und 2 zeigen, wie Insekten Elektroden minus die Blattlaus vorzubereiten. Schritt 3 zeigt, wie eine Blattlaus an die Elektrode anzuschließen. Vakuum Fixierung der Blattläuse wird bei der Verdrahtung zu empfehlen, aber nicht immer für langsam fahrende Spezies (z, B. brassicae) erforderlich. <ol><li> Schalten Sie den Lötkolben und Lötzinn schmilzt etwas an seiner Spitze (Abbildung 2A). Befeuchten Sie den Kopf des Messing Steckerstift mit etwas Lötwasser (2B) und tauchen sie in die geschmolzene Lötmetall (2C). </li><li> Anwenden einer Hülle aus geschmolzenen Lötmetalls auf ein Ende eines 1-2 cm langes Stück der dünnen Kupferdraht (Abbildung2D). Dann zusammen zu bringen Sie den Stift und Kupferdraht gegen die heiße Bolzen (2E) und bewegen Sie sie zusammen weg abkühlen und sich verfestigen (2F). </li></ol></li><li> Schritt 2. <ol><li> Gründlich schütteln (oder Wirbel) das Fläschchen mit Silberkleber für mehrere Minuten, bis eine glatte Emulsion gezeigt. Cut (Schere oder Skalpell) ein paar Stücke der Golddraht (von ca. 1,5 cm lang) auf der Objektplatte des Stereomikroskops (2G). </li><li> Werfen Sie einen Messingstift mit gelöteten Kupferdraht (in Abschnitt 2.3 gemacht) und tauchen Sie das freie Ende der Kupferdraht in die kleine silberne Leimreservoir, die an der Innenseite des Deckels der Ampulle nach dem Öffnen (Abbildung 2 H) gesammelt haben wird. Hinweis: Nur ein kleiner Tropfen ist erforderlich. </li><li> Bewegen Sie den Kleber getauchten Ende der Kupferdraht, um das Stück Golddraht, beim Heben ein Ende zu vermeiden, Verschmieren der Kleber auf dem Stereomikroskop Objektplatte. Versuchen Sie, coppe lappenr und Golddraht für wenige mm (2I), die Verteilung des Leims entlang der Überlappung der beiden Drähte. </li><li> Warten Sie, bis der Kleber wurde genug, um die Drähte zusammenzuhalten getrocknet. Überprüfen Sie die Kontaktkleber nach dem Trocknen und fügen Sie einige frische Kleber mit einem kleinen Stift oder ein anderes Stück Kupferdraht, wenn einige Teile der verbundenen Drähte zeigen klebstofffreien Teilen. </li><li> Nachdem das Insekt Elektrode bereit ist, lagern Sie ihn zum Beispiel in ein Stück Styropor eingesetzt. Hinweis: Die Länge der Golddraht wird die Bewegungsfreiheit der Blattläuse festzustellen: Wenn es zu kurz (weniger als 5 mm) ist die Blattlaus kann eingeschränkt fühlen und nicht normal zu verhalten; wenn er zu lang ist (&gt; 2 cm) wird der Blattlaus frei bewegen. Blattläuse sind in der Regel auf die oberseits von Blättern zu bewegen, wenn zu dürfen. Wenn der Golddraht das Blatt berührt, wird das Signal kurzgeschlossen werden. </li></ol></li><li> Schritt 3. <ol><li> Blattlaus kann anstelle mittels Licht Ansaugen gehalten werden, unter Verwendung eines Vakuums; in diesem Fall installieren Sie ter Absaugvorrichtung unter dem Stereomikroskop. Legen Sie die Ansaugöffnung in der Mitte des Feldes. </li><li> Gründlich schütteln Sie das Fläschchen mit Silberkleber für einige Minuten (oder Wirbel), bis eine glatte Emulsion gebildet. Sammeln Sie eine Blattlaus mit der kleinen Bürste. </li><li> Einschalten der Saugeinrichtung und Mount Blattlaus auf der Ansaugöffnung (2J), mit der Rückseite des Bauches wandte sich dem Experimentator. Mit dem feinen Pinsel, entfernen Sie das Wachs-Oberfläche aus dem Bauch (reichlich in Kohl Blattläuse). </li><li> Öffnen Sie das Fläschchen und Klebstoff benetzt einen Stift mit einem sehr kleinen Tröpfchen aus Silber Leim (Abbildung 2K). Übernehmen Sie die Tropfen der Silber Kleber auf der Rückseite des Blattlaus Bauch (2L-M). Lassen Sie diese Tröpfchen während mehreren Minuten vollständig trocken, kräftig schütteln den Leim Fläschchen wieder und fügen Sie einen zweiten Tropfen der Silber Kleber auf der Oberseite der ersten. Anmerkung: Während der Silberkleber ein elektrischer Leiter ist, verursacht es keine signifikantenBeschädigung des Insekts Nagelhaut. </li><li> Nach dem Schließen der Klebe Fläschchen, legen Sie die freien Ende der Golddraht in die nasse Tröpfchen und halten den Draht noch während es dem Kleber vollständig trocknen (Abbildung 2 N). Vermeiden verschmiert Leim auf Beinen oder Antennen und entsorgen Sie eine Blattlaus, wenn dies geschehen ist. </li><li> Schalten Sie die Absaugung Fixierungsvorrichtung und heben das Insekt (Abbildung 2 O). Verwenden Sie bei Bedarf einen feinen Pinsel, um in der Aufhebung des Blattlaus von der Absaugvorrichtung zu unterstützen. Hinweis: Verdrahtung B. brassicae erfordert kein Vakuum, da sie auf einem Stück eines Präzisionslaborgewebe, wobei die rauhe Oberfläche liefert die Blattlaus mit genügend Halt, so daß es nicht nach dem Aufbringen eines Tropfens Nassleim seinen Bauch angehoben verdrahten. Nach dem Trocknen Kleber kann man die Blattlaus aus dem Gewebe mit Hilfe einer feinen Bürste anzuheben. </li><li> Setzen Sie die Messingstift mit dem drahtgebundenen Insekt in das Styropor und, wenn nötig, weiterVerdrahtung alle anderen Insekten, um die EPG-Aufnahme-Session verwendet werden. Hinweis: Diese Protokolle für die Verdrahtung Blattläuse funktionieren gut für uns. Der Benutzer kann seine / ihre eigene Methode für die Verdrahtung Blattläuse finden. </li></ol></li><li> Schritt 4. <ol><li> Gesetzt Pflanzen im Faradayschen Käfig (Abbildung 2P) auf einem nicht-leitenden Träger: Verwenden Petrischalen oder eine Platte aus Glas oder Kunststoff. </li><li> Legen Sie eine Anlage Elektrode in den Boden jedes Topfes. Setzen Sie die Messingstift der verdrahteten Insekt in den Eingangsanschluss des EPG Vorverstärker (Abbildung 2Q). Anmerkung: der Bodenelektrode nicht mit der Masseelektrode in anderen elektrophysiologische Techniken verwendet werden, entsprechen. Es hat die Offsetspannung erforderlich Einstellen und Kompensieren von Elektrodenpolarisationsspannungen. </li><li> An der Schnittstelle der Erfassungssoftware Stilett +, mit fester Sample-Frequenz von 100 Hz, geben Sie einen Dateinamen ein, geben Sie die Aufzeichnungszeit, und schreiben Sie Text, um Details des Experiments festlegen (Behandlungsanlagen / inse<html> ct Arten, etc.) in Kommentarzeilen 2 und 3. </li><li> Senken Sie die Insekten auf einem geeigneten Landebereich der Anlage und starten Sie die Aufnahme-Session, indem Sie auf die Schaltfläche Start der Erfassungssoftware (Stylet +) Schnittstelle. Anmerkung 1: maximal 8 Kanäle können gleichzeitig in einem EPG einrichten verwendet werden. Einen EPG-Elektrode oder mehrere EPG-Elektroden pro Pflanze verwendet werden. Anmerkung 2: wenn der Schwerpunkt der Studie ist die Blattlaus Verhalten, starten Sie die Aufnahme vor Pflanzen Zugang der Blattläuse zu vermeiden, fehlt die erste Anlage Eindringen Aktivitäten. </li><li> Zum Studium der elektrophysiologischen Reaktionen der SE auf Reize, immer mindestens 10 min nach der Blattläuse wurde in Phloem Phase in Reihenfolge eingegeben, um sicherzustellen, dass die Blattlaus ist nachhaltig Phloem Einnahmephase und daß der Signalbasislinie ist stabil. Erst dann beginnen jede Pflanze Stimulation Experiment. </li></ol></li></ol>tp_upload / 52826 / 52826fig2.jpg &quot;/&gt; 2. Erstellen Sie EPG-Elektroden mit Blattläusen oder andere hemipteran Insekten für elektrische Penetration Graph (EPG) Aufnahmen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52826/52826fig2highres.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> Panels AI, Schritte erforderlich, um EPG-Elektroden minus die Blattlaus vorzubereiten. Zuerst schmilzt ein Stück Lötmetall auf der Spitze eines Lötkolben (A). Dann tauchen Sie den Kopf des Messingstift in einen Tropfen Lötwasser (B), und wenden Sie es mit dem geschmolzenen Metall am Löten Bolzenspitze (C). Sofort nach diesem Schritt an das Ende einer Kupferdraht an der Spitze der Lötkolben, um sie auf den Kopf des Messingstift (EF) zu kleben. Mit einem Skalpell oder einem Messer, schneiden Sie ein Stück der Golddraht (G). Tauchendas freie Ende des Kupferdrahtes auf dem silbernen Kleber (H) (am anderen Ende an den Messingstift verbunden), und schnell kommen die Golddraht, um sie (I), bevor der Silber austrocknet. Der Golddraht ist ein ausgezeichneter Leiter und kann polarisiert werden. In Wirklichkeit in der Mehrzahl der Fälle die Polarisation zu klein, um erkannt werden, und wenn ja, kann er für die Offset-Spannung (V) kompensiert werden. Panels JO, Schritte erforderlich, um eine Blattlaus (oder andere hemipteran Insekten) an die Elektrode anzuschließen. Zunächst heben eine Blattlaus mit einem feinen Aquarellpinsel und auf die Öffnung der Vakuumsauger (J). Schalten Sie die Vakuumpumpe und die Abdeckung des Luftventils Loch mit einem Stück Papier, um Unterdruck anwenden. Tauchen Sie die Spitze des Insekts Stift in die Silber Kleber (K), und legte einen kleinen Klebetropfen auf der Oberseite des Blattlaus Bauch, unter einem Stereomikroskop (LM). Innerhalb dernächste ~ 20 sec vor der Silberkleber Tröpfchen auf die Blattlaus trocknet, setzen Sie das Ende der Golddraht des Insekts Elektrode in die nasse Tröpfchen aus Silber Leim, und halten Sie es in Platz für 1-3 min, bis das Silber Leim vollständig luftgetrocknet (N). An dieser Stelle deaktivieren Absaugung durch Entfernen des Stück Papier, das den Luftventilöffnung der Absaugvorrichtung umfasst und entfernen Sie vorsichtig die Blattlaus, von der Absaugvorrichtung: Anheben der Blattlaus nach der Verdrahtung erfordert oft etwas Hilfe von einem feinen Pinsel (O). P Panel zeigt eine Übersicht über die gesamte EPG einzurichten innerhalb des Faraday-Käfig, und Panel Q zeigt eine Übersicht der Anlage-Blattlaus-Kombination für EPG. Siehe Abschnitt 2 für eine ausführlichere Erklärung dieses Prozesses. Kleinbuchstaben sind Etiketten, die sich auf die Elemente, die man braucht, um EPG-Elektroden machen: ein: Löten Bolzen; b: geschmolzene Lötmetall;c: Lötwasser; d: Messing Steckerstift (Nagel); e: Kupferdraht; f: Ø 18 um Golddraht; g: Absaugvorrichtung; h: Blattlaus; i: auf Wasserbasis Silber Kleber; j: Faraday-Käfig; k: Pflanzen Elektrode; l: Eingangsbuchse (BNC) des EPG Vorverstärker.

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</ol>

WFT hat die EPG Systems als Vorsorgeaktivität ins Leben gerufen und ist finanziell an diese angeschlossen.

Dieser Artikel enthält ein detailliertes Protokoll zur elektrischen Penetration Graph (EPG) Aufnahmen. Die EPG-Technik ist gut etabliert, mit 100-200 aktive Nutzer weltweit, und es hat für viele Studien zu verschiedenen Themen, zum Beispiel implementiert: a) Resistenz von Wirtspflanzen auf Blattläuse und andere Stilett tragenden Insekten 13; b) Pflanzenvirus und Erreger Übertragungsmechanismen 14; c) Insektizid Wirkungsweise (Toxizität und Verhaltensänderungen) 15; d) EPGs wurden sogar n...

Die Fähigkeit, Fern elektrische Signale zu erzeugen ist ein vorteilhaftes Merkmal der mehrzelligen Organismen, die für effiziente Reaktionen auf externe Reize ermöglicht. Diese Eigenschaft wurde unabhängig in Pflanzen und Tieren entwickelt, und stellt somit einen Fall konvergente Evolution. Da die elektrischen Signale werden mit wichtigen Funktionen bei Tieren wie neuronale Übertragung und Muskelkontraktion, die molekulare Basis, Mechanismus der Übertragung, und die Funktion der Stimulus-induzierten elektrischen Signale bei Tieren verbunden sind Gegenstand intensiver Forschung. Im Gegensatz dazu hat reizinduzierte elektrische Anzeige in Pflanzen wenig Forschung Aufmerksamkeit erhalten. Obwohl Pflanzen haben keine Nerven oder Muskeln, scheint es genügend Beweise, um davon ausgehen, dass Stimulus-induzierten elektrischen Signale in Pflanzen spielen eine Schlüsselrolle in ihren Reaktionen auf Umweltfaktoren sein. Das Phloem, das lebendige Komponente der Anlage Gefäßsystem, hat als Hauptunter postuliertstrate für die Übertragung von Stimulus-induzierten elektrischen Signalen aus angeregt / zu nicht-stimulierten / unbeschädigten Bereiche 2 beschädigt. Die wichtigsten Zellen im Phloem sind die Siebelemente (SE), relativ einfach, länglichen Zellen. Die Enden der SE sind an anderen SEs verbunden ist, die eine durchgehende, mit niedrigem Widerstand, Sieb Rohrsystem, das in der gesamten Anlage verteilt wird. Es gibt jedoch nur sehr wenige Untersuchungen über die elektrischen Eigenschaften dieser hochspezialisierten Zellen. In diesen früheren Studien zugegriffen Forscher SEs entweder mit Glasmikroelektroden 3 oder mit Glaselektroden, die verbunden wurden, um zu pflanzen eingefügt Stilette von Blattläusen, nachdem stylectomy (Schneiden) 4. Glasmikroelektroden aus Glaskapillaren, die an einem Ende mit Wärme in einer feinen Spitze von weniger als 1 um im Durchmesser gezogen, und dann mit einer KCl-Lösung gefüllt ist. Eine Ag / AgCl oder Platindraht, in die KCl gefüllte Glaselektrode eingeführt wird dann an den Eingang des Verstärkers verbunden ist und ein BezugspunktElektrode in das Bad um die Zelle von Interesse eingeführt wird, den Stromkreis. Dieser Aufbau wird der Unterschied im Potential zwischen der extrazellulären Referenten Elektrode und der intrazellulären Meßelektrode, dh das Membranpotential der Zelle 5. Mit diesem Verfahren hergestellt Umrath die erste intrazelluläre Aufnahme von einer Pflanzenzelle, wobei die Algen Nitella 6,7. Nitella ist eine relativ einfache Organismen mit großen Zellen, und damit zugänglich für die intrazelluläre Elektrophysiologieexperimente. Im Gegensatz dazu ist das Einfügen von intrazellulärem Glaselektroden in die kleinen Zellen von mehrzelligen, dreidimensionalen Landpflanzen technisch anspruchsvoll, erfordert hochqualifiziertes Forscher, sowie ausgefeilte Visualisierung, Mikromanipulation, und Vibrationsmaschinen. Obwohl Glaselektroden geeignet, von oberflächlichen Zellen in Pflanzen wie Wurzelhautzellen 8 aufzuzeichnen sind, intrazelluläre recordings von Zellen tief in der Pflanze Gewebe, wie SEs, sehr wahrscheinlich zu Schäden induzierten Reaktionen eingebettet, verwirrend die Ergebnisse. 1989, Fromm und Eschrich berichteten über die Verwendung eines alternativen Verfahrens, die so genannte &quot;Blattlaus Methode&quot;, bei der Glaselektroden an Blattläusen Stiletts nach stylectomy 4 gekoppelt. Die Blattlaus Verfahren ist minimal-invasiv, weil flexible Stilette verursachen keine Gewebe oder Zellschäden, Glaselektroden zu tun. Aphid Stilette sind der Natur tolle Erfindung für Pflanzen Penetration, und Blattläuse sind deutlich mehr qualifizierte als Menschen bei der Suche nach SEs. Leider ist dieses Verfahren auch Blattlaus anspruchsvolle in Bezug auf technisches Know-how und Ausrüstung. Zusätzlich hängt der Erfolg eines jeden Experiments, die diese Technik umsetzt ganz auf die Blattlaus wobei in Vorschubbetrieb - mit dem Stilett stabil in einer SE eingesetzt, bei der stylectomy. Das Denken in Retrospektive, kann man sehen, dass die Chancen für den Erfolg dieser Technik könnte ich gewesen seinindem dem Versuchsaufbau ein Instrument, das angibt, ob oder ob nicht die Blattlaus Stilett in der SE bei Anwendung stylectomy ermöglicht mproved. 1964, McLean und Kinsey beschrieben ein &quot;elektronisches Überwachungssystem&quot; für die Untersuchung des Fressverhaltens von Blattläusen in Echtzeit 9,10. In diesem System wurden die Blattlaus und das Stilett penetrierten Pflanze in eine elektrische Schaltung integriert ist. Später, im Jahr 1978, entwickelt Tjallingii eine modifizierte Version des Systems, die so genannte &#39;Electrical Penetration Graph &quot;(EPG) System 11,12. Während der ursprüngliche elektronische Überwachungssystem empfindlich gegenüber den Widerstand-Ursprung Potentiale werden, wobei der EPG-Systems, die elektromotorische Kraft (emf) entstand Potentialen, dh, in der Pflanze oder in das Insekt erzeugt, könnte zusätzlich zu Potenziale aus der aufzuzeichnenden Widerstand (R) in der Insekten. Dies stellt eine wichtige Verbesserung, da beide Signalkomponenten, emf und R,liefern biologische relevante Informationen über Ereignisse während Pflanzen Eindringen von Blattläusen. Was die EPG Vorverstärker empfindlich für die R-Komponenten ist seine relativ niedrigen Eingangswiderstand von 1 G &amp; Omega, die in etwa dem Durchschnitt der Pflanze / Blattlausresistenz ist. Eine geringe Offsetspannung (1, V) von etwa +100 mV wird der Anlage, die dann in Pflanzen und Insekten auf einer Seite unterteilt ist, und der Eingangswiderstand auf der anderen aufgetragen. Die Spannungen und ihre Änderungen an einem Punkt (1A, B) zwischen der Insekten und dem Eingangswiderstand gemessen. Daher werden die R-Komponenten stellen anlagen Blattlausresistenz Modulationen der Offset-Spannung, während die EMK-Komponenten sind ein gewisser Anteil von Pflanzenpotentiale an der Stilettspitze und Potentiale im Insekt verursacht wird. Die Pflanzenpotenziale - relevanteste hier - sind vor allem Membranpotentiale der Pflanzenzellen durch die Blattlaus Stilette punktiert. Die Insekten Potentiale offensichtlich in erster LinieStrömungspotentiale durch Flüssigkeitsbewegungen innerhalb der beiden Stilett Kanälen verursacht, dh, das Essen und die Speichelgänge; keine internen Nerven- oder Muskelpotentiale sind in der EPG aufgezeichnet. In der Praxis sind die Stilettspitze dient als Elektrodenspitze. Alle Pflanzenzellen negativ innen relativ zur positiven Außenseite der Zelle geladen. Der elektrische Strom (dh die Bewegung geladener Ionen in wässriger Lösung) von innen nach außen und umgekehrt fließt, sehr durch die hohe Beständigkeit der Zellmembran beschränkt. Normalerweise wird das Ruhepotential konstant gehalten wird. Allerdings, wenn negative Ionen ausziehen oder positiven Ionen bewegen sich in die Zellmembran, wird das Membranpotential reduziert, dh, es depolarisiert. Depolarisation bei Zellanregung. Ionen treffen dann in oder aus zu bewegen, wenn bestimmte Ionenkanäle in der Membran geöffnet werden, oder wenn die Membran beschädigt und Ionen austreten und aus. Alle Zellen haben Ionenkanäle und Pumpen in tHe-Plasmamembran, die das Membranpotential in seine Ruheniveau zu bringen, indem die ursprüngliche Konzentration der verschiedenen Ionen innerhalb der Zelle. Das Ruhepotential und seine Veränderungen EMK-Komponenten, und daher ist die EPG geeignete Technik, um sie zu messen. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/52826/52826fig1.jpg" /> Abbildung 1. EPG-Elektroden. Die EPG-Elektrode ist ein lebendiges Blattlaus in die Elektrik Penetration Graph (EPG) Schaltkreis, dessen Führungsstab wird in ein Sieb Element (SE) in Stallfütterung Modus eingefügt integriert. Wenn das Stilett-aufgespießt SE in Ruhe ist (Feld A), wird die Spannung in der Schaltung von EPG aufgezeichnet wird, ist stabil und in der Ruhepotentialpegel (Tafel C, Rest). Wenn das SE angeregt wird, dessen Membran depolarisiert (Feld B), die in der EPG als eine allmähliche Zunahme der Spannung (Panel C Depolarisation) sichtbar gemacht wird. Da das Ionengleichgewicht in der SE kehrt zur Ruhe, das heißt es repolarIZES, die Spannung von EPG aufgezeichnet allmählich auf den Rest Potentialpegel (Tafel C, Repolarisation). In Panel C, &quot;A&quot; und &quot;B&quot; beziehen sich auf die in den Feldern A und B, gezeigt Szenarien. V = einstellbare Offset-Spannungsquelle. Ri = Eingangswiderstand. Parallel zum 1 GOhm externen Widerstand besitzt der Verstärker eine interne (in der OpAmp) hoch 1,5 Tw Widerstand (Platten A und B, in grau). Durch die Fernsteuerung des Schalters die EPG Vorverstärker kann von normal bis Forschungszentrum für Elektro-Modus, der ermöglicht den Erhalt hochgenaue Spannungswerte geändert werden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52826/52826fig1highres.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> Im nächsten Abschnitt stellen wir die Leser mit einem Basisprotokoll für die Durchführung EPG Experimente, die für beide Insekten konzentriert und Pflanzenstudien konzentriert ist.

<table><tbody><tr><td>Messing Steckerstifte</td><td>EPG Systems/hardw.shop</td><td></td><td>&Phi; 1,2 mm</td></tr><tr><td>Dünner Kupferdraht</td><td>EPG Systems/hardw.shop</td><td></td><td>ca. &Phi; 0,2 mm</td></tr><tr><td>Dünner Golddraht</td><td>EPG Systeme</td><td></td><td>&Phi; 18 & micro; m</td></tr><tr><td>Lötflüssigkeit</td><td>Eisenwaren Shop</td><td></td><td>passend zum Lötdraht</td></tr><tr><td>Harzgefüllter Lötdraht</td><td>Eisenwaren Shop</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Styropor</td><td>beliebig</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Silberkleber auf Wasserbasis</td><td>EPG Systems</td><td></td><td><a href="http://www.epgsystems.eu/">Rezept in: www.epgsystems.eu</a></td></tr><tr><td>Papiertücher</td><td>Kimberly-Clark</td><td>5511</td><td></td></tr><tr><td>Lötschraube</td><td>beliebig</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Hund Wetzlar</td><td></td><td>Mindestvergrößerung beträgt 10X</td></tr><tr><td>Kleine Schere</td><td>Fine Science Tools</td><td>14088-10</td><td></td></tr><tr><td>Skalpell</td><td>Fine Science Tools</td><td>10050-00</td><td></td></tr><tr><td>Feine Pinzette</td><td>Fine Science Tools</td><td>11231-20</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>A. Hartenstein</td><td>L46</td><td></td></tr><tr><td>Aquarellpinsel</td><td>beliebig</td><td></td><td>Anzahl 1 oder 2</td></tr><tr><td>Luftsauger</td><td></td><td></td><td>siehe Beschreibung in: www.epgsystems.eu</td></tr><tr><td>Insektenstifte</td><td>beliebig</td><td></td><td>Nr. 1 oder 2</td></tr><tr><td>Fester Tisch</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Faradayscher Käfig</td><td></td><td></td><td>Handarbeitscomputer</td></tr><tr><td></td><td>Fujitsu Siemens</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Datenerfassungssoftware</td><td>EPG Systems</td><td></td><td>Stylet+d</td></tr><tr><td>Giga-4 (-8) Das komplette System</td><td>EPG Systems</td><td></td><td></td></tr><tr><td>umfasst Folgendes:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hauptsteuerbox mit USB-Ausgang</td><td></td><td>Di155/Di710</td><td>12/14 Bit, Rate 100&nbsp; Hz (softw. fixed)</td></tr><tr><td>EPG-Sonden 4 (8)</td><td></td><td></td><td>50x DC Vorverstärker</td></tr><tr><td>Schwenkklemmen an Stab</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DC-Netzteil</td><td></td><td></td><td>bipolar, 230/115 VAC bis -/+8 VDC</td></tr><tr><td>Pflanzenelektroden und -kabel</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zusätzliche Prüf- und Massekabel</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

eine neue anwendung der electrical penetration graph (epg) zur erfassung und messung elektrischer signale in phloem siebelemente

A New Application of the Electrical Penetration Graph (EPG) for Acquiring and Measuring Electrical Signals in Phloem Sieve Elements

Elektrophysiologischen Eigenschaften von Zellen werden häufig in vitro untersucht, nachdem distanziert sie aus ihrer natürlichen Umgebung. Die Untersuchung der elektrischen Übertragung zwischen entfernten Zellen in einem Organismus erfordert jedoch in vivo, artefaktfreie Aufzeichnungen von Zellen in ihrer natürlichen Umgebung eingebettet. Die Übertragung der elektrischen Signale von bis unverwundete Bereiche in einer Pflanze verwundet ist seit langer Fantasie der Botaniker. Das Phloem, das lebende Teil der Pflanze, die Gefäßsystem in der gesamten Anlage verteilt wird, hat als Hauptgewebe in elektrischen Übertragung in Pflanzen postuliert. Der Mangel an geeigneten elektrophysiologischen Methoden mit zahlreichen Herausforderungen für die Untersuchung der elektrischen Eigenschaften der Phloem-Zellen in vivo. Hier einen neuen Ansatz für die intrazelluläre Elektrophysiologie der Siebelemente (SE), die lebenden Blattläuse oder andere Phloem-Fütterung hemipteran Insekten verwendet, in der elektrischen Eindringen gra integrierten präsentieren wirph (EPG) Schaltung. Die Vielseitigkeit, Robustheit und Genauigkeit dieser Methode war es möglich, zu erfassen und zu untersuchen im Detail die wundinduzierten elektrischen Signale in SEs der zentralen Venen der Modellpflanze Arabidopsis thaliana 1. Hier zeigen wir, dass EPG-Elektroden können leicht für die intrazelluläre elektrophysiologischen Ableitungen von SEs in Rand Venen eingeführt werden, sowie um die Kapazität der SE, mit elektrischen Signalen an mehrere externe Stimuli reagieren zu studieren. Die EPG Ansatz zur intrazellulären Elektrophysiologie des SEs angewendet werden, um eine Vielzahl von Pflanzenarten für viele Forschungsziele umgesetzt werden, in einer Vielzahl von Pflanzen / Insekt Kombinationen und.

In einer früheren Studie haben wir die EPG-Elektrodentechnik mit dem Zweck der Charakterisierung der elektrischen Signale in SEs des Mittelader während Raupe Angriff 1 hergestellt implementiert. Die Mittelader ist eine bevorzugte Insertionsstelle für konventionellen Glaselektroden, sowie für Glas Mandrin Elektroden, weil es SE-dichten und relativ robust, damit zugänglich für die Fixierung für die Implementierung dieser Techniken benötigt. Dabei nutzten wir die Vielseitigkeit des EPG-Elektrode mit dem Zweck de...

Electrical Penetration Graph (EPG) ist eine gut etablierte Technik zur Untersuchung des Fressverhaltens von stiletttragenden Insekten. Hier zeigen wir eine neue Anwendung von EPG als nicht-invasives Werkzeug für die Erfassung intrazellulärer elektrophysiologischer Aufzeichnungen von Siebelementen (SEs), den Zellen, die das Phloemgefäßsystem in Pflanzen bilden.

Eine neue Anwendung der Electrical Penetration Graph (EPG) zur Erfassung und Messung elektrischer Signale in Phloem Siebelemente

Electrophysiological properties of cells are often studied in vitro, after dissociating them from their native environments. However, the study of ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, die elektrischen Langstreckensignale zu untersuchen, die über die Siebröhren von einer von einer Raupe gefressenen Pflanzenregion zu einer intakten Region in der Pflanze weitergeleitet werden. Dies wird erreicht, indem ein elektrischer Penetrationsgraph (EPG) oder EPG-Schaltkreis aufgebaut wird, der einen halb lebenden Insekten, wie beispielsweise einen Blattlaus, und eine Pflanze integriert. Die Blattlaus sticht ihren Stechrüssel in die Pflanze ein, wodurch der Stromkreis geschlossen wird, und die EPG-Aufzeichnung beginnt.Schließlich sticht die Blattlaus ihren Stechapparat in ein Siebelement und speichelt einige Minuten lang hinein, gefolgt von der lang andauernden Aufnahmephase; sowohl die Speichel- oder E1-Phase als auch die Aufnahme- oder E2-Phase enthalten kleine und rhythmische Strömungspotenziale. Anschließend wird eine Raupe auf ein Blatt gesetzt und frisst dort. Während die EPG-aufgezeichnete Blattlaus weiterhin aus dem Fluss eines benachbarten Blattes ernährt wird, löst der von der Raupe an der Mittelrippe verursachte Schaden ein elektrisches Signal aus, das über das Phloem zu den anderen Blättern übertragen wird, einschließlich des Blattes, von dem aus die mit dem EPG-Draht verbundene Blattlaus sich ernährt.Die Größe des Signals kann durch Vergleich mit einem Kalibrierimpuls bekannter Größe gemessen werden, der zuvor während der E-Zwei- oder Aufnahmephase angewendet wurde. Die Ergebnisse zeigen, dass eine durch Raupen verursachte Schädigung eines Blattes durchgängig ein komplexes und signifikant großes elektrisches Signal in der Nachbarblattströmung induziert, bestehend aus einer ersten langsamen Komponente und einer zweiten, schnellen Komponente, die der ersten überlagert ist. Die elektrische Penetrationsgraphik-Technik wurde in den 1960er Jahren eingeführt.Die EPG-Überwachung hat wesentlich zu unserem Wissen über die Pflanzendurchdringung durch Blattläuse und andere Hemiptera beigetragen. Das Hauptaugenmerk liegt dabei auf der Untersuchung von Mechanismen der Wirtspflanzenresistenz sowie der Mechanismen der Übertragung von Pflanzenviren. Daher entwickelte ich ein Konzept, EPG als Methode für die intrazelluläre Elektrophysiologie in Pflanzen zu nutzen, indem eine Verbindung hergestellt wird zwischen EPG-Aufzeichnungen und intrazellulären Aufzeichnungen, die mit herkömmlichen Glaselektroden durchgeführt werden, die in beiden Fällen – sowohl bei den EPG-Aufzeichnungen als auch bei den konventionellen Aufzeichnungen mit Glaselektroden – mit Kaliumchlorid gefüllt sind.Es gibt zwei Spannungsstufen, eine relativ hohe Spannungsstufe, die der intrazellulären Position der Spitze der Glas-Elektrode oder der Spitze des AEs-Stils entspricht, und eine relativ niedrige Spannungsstufe, die der intrazellulären Position der Glas-Elektrode oder des AEs-Öhrchens entspricht. Im Fall von EPG. Wenn man Blattläuse für PG-Aufnahmen aufzieht, hängt die Wahl der Pflanze und der Blattlausart vom Forschungsziel ab; für Untersuchungen zum schnellen Opana ist die Blattlaus geeignet, sie in einem Gewächshaus in Käfigen aufzuziehen, die die Aufzucht umgeben.Pflanzen müssen mit feinem Maschenschutz mit Öffnungen von weniger als einem Millimeter vor Blattläusen und Parasitoiden geschützt werden, wobei die Käfigdeckel aus transparentem Material bestehen sollten, um die Photosynthese zu ermöglichen. Alle zwei Wochen muss die Blattlauspopulation auf frische Pflanzen umgesiedelt werden. Es werden lediglich 10 bis 20 erwachsene Exemplare benötigt; die übrigen Blattläuse können entsorgt werden.Für EPG-Aufnahmen an Insekten muss eine spezielle Elektrode aus Messing-Steckverbindern, einem ein bis zwei Zentimeter langen Kupferdraht, beispielsweise aus einem elektrischen Kabel, und einem etwa 1,5 Zentimeter langen Stück sehr dünnem Golddraht hergestellt werden. Verwenden Sie außerdem einen wasserbasierten Silberkleber sowie einen einfachen kleinen Lötkolben mit Lötfett und Lötzinn. Zum Beginn schmelzen Sie zunächst ein Stück Lötzinn am Ende des Lötkolbens ab.Tauchen Sie dann die Spitze des Messingnagels in einen Tropfen Lötfett. Berühren Sie sofort die Spitze des Kupferdrahts mit der Spitze des Lötstifts, wodurch dieser an dem Messingstift festgelötet wird. Schütteln oder wirbeln Sie nun den Silberkleber gründlich, damit die Emulsion nicht abgesetzt ist.Öffnen Sie die Flasche und tauchen Sie das freie Ende des Kupferdrahts unter einem Stereomikroskop in den Klebstoff auf dem Deckel ein. Verbinden Sie das Goldgeflecht mit einer Überlappung von mindestens einem Millimeter und lassen Sie den Silberkleber trocknen. Versuchen Sie, nach dem Trocknen des Klebers, diesen nicht auf die Mikroskopplatte zu verschmieren. Überprüfen Sie die Verbindung zwischen dem Silberkleber und dem goldfarbenen Draht an den Stellen, an denen Teile der verbundenen Drähte nicht verklebt sind.Fügen Sie frischen Kleber mit einem kleinen Stift oder Kupferdraht hinzu, bis das Insekt fertig ist. Die fertige Elektrode kann sicher auf Styropor aufbewahrt werden. Um den Blattlaus zu fixieren, verwenden Sie eine einfache, aus Haushaltsmaterialien gebaute Vakuumeinrichtung.Die Absaugung wird durch ein kleines Stück Papier über einer Einlassöffnung gesteuert. Schalten Sie das Vakuumgerät ein und bewegen Sie es unter dem Stereomikroskop, um die Absaugspitze zu zentrieren. Sammeln Sie einen Blattlaus mit einem kleinen Wasserfarbpinsel der Größe zwei oder kleiner ein und befestigen Sie die Blattlaus mit der Bauchseite an der Absaugspitze, um einfachen Zugang zur Rückenseite zu erhalten.Entfernen Sie mithilfe des Pinsels jegliches Oberflächenwachs vom Abdomen, das bei der Kohlblattlaus besonders reichlich vorhanden ist. Schütteln oder vortexturieren Sie danach den Silberkleber gründlich und tragen Sie mit einer feinen Insektennadel einen kleinen Tropfen Silberkleber auf das Dorsum der Blattlaus auf. Lassen Sie dies zwei bis drei Minuten lang trocknen.Schütteln Sie das Gefäß erneut und geben Sie einen Klebetropfen auf den getrockneten ersten Tropfen. Befestigen Sie dann den Golddraht der vorbereiteten Insektenelektrode in den zweiten Tropfen Silberkleber. Halten Sie den Draht während des Trocknens in Position, solange der Kleber noch feucht ist.Falls Klebstoff zufällig auf die Beine oder in einen Teil des Blattlauses gelangt, beginnen Sie mit einem neuen Tier von vorn. Die Insekten-Elektrode kann wiederverwendet werden. Sobald der Klebstoff getrocknet ist.Schalten Sie das Vakuum aus und befreien Sie die Blattlaus vom Vakuumsystem. Das verkabelte Insekt ist nun bereit, für EPG-Aufnahmen verwendet zu werden. Einige Blattläuse können ohne Vakuumfixierung verkabelt werden.Platzieren Sie die Blattlaus in diesem Fall auf ein Stück Laborpapier, das rau genug ist, damit die Blattlaus Halt findet. Während des Auftragens des Klebers kann ein Golddraht in den ersten Tropfen des Silberklebers eingeführt werden. Wenn dieser Tropfen zu klein ist oder zu schnell trocknet, wird sich der Golddraht nicht richtig befestigen.Platzieren Sie in diesem Fall einfach einen kleinen Tropfen Silberleim auf dem ersten Tropfen, fügen Sie den Golddraht ein und warten Sie, bis der Leim getrocknet ist. Heben Sie dann den Blattlaus mit Hilfe eines feinen Pinsels vom Löschpapier ab. Bewahren Sie die verdrahteten Blattläuse auf, indem Sie den Messingnagel in den Styropor stecken, bis sie benötigt werden.Beginnen Sie damit, die Versuchspflanzen auf eine nichtleitende Unterlage wie eine Petrischale in die Faraday-Kabine zu stellen. Stecken Sie nun eine Pflanzenelektrode in den Boden jedes Topfes. Die Pflanzenelektrode ist keine Erdungselektrode, die mit der Faraday-Kabine verbunden werden muss.Danach wird der Messingstift der Elektrode mit dem EPG verbunden. Die Position der Pflanze und des Insekts wird vorab so justiert, dass das Insekt mit der gewünschten Stelle an der Pflanze in Kontakt steht. Über die Style plus Interface-Software, die eine feste Abtastrate von 100 Hertz aufweist, wird ein Dateiname eingegeben, die Aufzeichnungsdauer festgelegt und ein Text in die Kommentarzeilen eingetragen, um Details des Experiments zu spezifizieren.Starten Sie dann die Aufnahme über die Software, indem Sie auf die Schaltfläche „Start“ in der oberen linken Ecke klicken. Beginnen Sie das Experiment, indem Sie die verdrahtete Blattlaus auf die Pflanze senken, bis zu acht Kanäle, was bedeutet, dass acht verdrahtete Insekten gleichzeitig mit einem EPG-Setup aufgezeichnet werden können, entweder jeweils eines pro Pflanze oder mehrere Blattläuse auf einer Pflanze. Wenn die Blattlaus ihren Stechrüssel in die Pflanze einführt, wird der Stromkreis geschlossen.Die schwankenden Spannungen des EPG-Signals erscheinen auf dem Computerbildschirm; nehmen Sie Anpassungen der Pflanzenspannung und des Verstärkungsfaktors für eine optimale Aufzeichnung vor. In den meisten Fällen dauert es mindestens eine Stunde, bis eine Blattlaus die Fließphase erreicht. Ein anhaltendes Saugen in der Fließphase zeigt sich durch mindestens 10 Minuten lang andauernde E2-Wellenform.An diesem Punkt ist die Elektrode bereit, elektrische Signale aus dem Siebröhrenleiter aufzuzeichnen, wobei diese nur induziert werden sollten, wenn das E zwei-Signal stabil ist. Es ist wichtig, einen oder mehrere Kalibrierimpulse zu geben, die später zur Abschätzung der Größe der elektrischen Signale verwendet werden. Das Schneiden eines Blattes mit einer Schere induziert regelmäßig ein elektrisches Fernsignal, das vom EPG-aufzeichnenden Blattlaus erfasst wird.In einem realistischeren Experiment wird eine hungrige Raupe als Verletzungsagent verwendet. Vom Fressverhalten der Raupe verursachte Schäden induzieren konstant langsame und schnelle elektrische Signale, die zu den anderen Blättern wandern und mit EPG-Elektroden erfasst werden können. Das durch die Einführung der Raupe erzeugte Rauschen beeinträchtigt die elektrophysiologische Antwort der Pflanze nicht, könnte sie aber überlagern; um dieses Rauschen zu minimieren, sollten entsprechende Maßnahmen ergriffen werden.Der Experimentator sollte geerdet sein, um zu testen, ob eine fressende Raupe elektrische Signale in dem gefressenen Blatt induziert. Eine hungrige Raupe wird auf das Blatt gesetzt, das auch den EPG-aufgezeichneten Blattlaus trägt, während zwei verschiedene Blätter nacheinander an der Verbindung zwischen Blattrand und Blattlamina mit einer Schere durchtrennt werden. Eine EPG-Elektrode, die an der Mittelrippe eines intakten Blattes angebracht ist, das Nachbar zu beiden durchtrennten Blättern ist, detektierte ähnliche elektrische Antworten aus demselben Siebröhrenelement auf diese Verletzungen.Diese elektrophysiologischen Signale bestanden aus einer langsamen Depolarisation, auf die eine schnelle Depolarisation überlagert war. In einem weiteren Experiment wurden ebenfalls zwei Blätter abgeschnitten, wobei in diesem Fall eines ein Nachbarblatt des Blattes war, das die EPG-Elektrode enthielt, während das andere kein Nachbarblatt des mit der EPG-Elektrode versehenen Blattes war. In diesem Fall reagierte das einzelne Siebröhrenelement unterschiedlich auf die Wunden.Die Verletzung des nicht benachbarten Blattes rief zunächst nur ein langsames elektrisches Signal hervor, während die Verletzung des benachbarten Blattes ein komplexes Signal mit langsamen und schnellen Komponenten auslöste. Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass SIV-Elemente in der Lage sind, die Lage der Schädigung zu erkennen. Hierzu wurde ein Blatt einer Arabidopsis-Pflanze mit einer über das EPG-System angeschlossenen Blattlaus untersucht, wobei intrazelluläre Ableitungen von einem randständigen Siebelement durchgeführt wurden. Das Durchtrennen eines benachbarten Blattes induzierte ein elektrisches Signal, das zu dem Siebelement geleitet wurde, in welches der Blattlausspeichelstiel eingedrungen war.Im Gegensatz zu Siebröhrenelementen in Hauptadern reagierten die Siebröhrenelemente in Randadern auf entfernte Schäden nur mit einer einzigen langsamen Depolarisationswelle, die möglicherweise der langsamen Depolarisationswelle in zentralen Siebröhrenelementen entspricht. Die elektrische Penetrationsgrafik oder Wiederholung ist eine Methode, die dabei helfen kann, zentrale Fragen auf den Gebieten der Pflanzen-Elektrophysiologie und Pflanzenphysiologie zu beantworten, beispielsweise welche Kanäle den elektrischen Langstreckensignalen zugrunde liegen, die von Blatt zu Blatt wandern, und vor allem, welche Rolle diese Signale bei der Anpassung der Pflanzen an ihre Umwelt spielen. Nach dem Anschauen dieses Videos sollten Sie eine Vorstellung davon haben, wie man Pflanzen und Insekten für die EPG vorbereitet.Die Aufzeichnung von Insektenverdrahtungen scheint kompliziert, doch wir haben gezeigt, dass sie ziemlich einfach ist und könnte Sie ermutigen, sie in Ihrer eigenen Forschung anzuwenden.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Environment

Umwelt

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Diese Präsentation demonstriert eine Methode, bei der die Elektroporation von adhärenten, kultivierten Zellen zur Untersuchung der interzellulären, junktionalen Kommunikation verwendet wird, während die Zellen auf einem Objektträger wachsen, der mit leitfähigem und transparentem Indium-Zinnoxid beschichtet ist.

Ein Funktionstest für Gap Junction-Prüfung; Elektroporation von adhärenten Zellen auf Indium-Zinn-Oxid

Transporter in Zellmembranen ermöglichen die differentielle Segregation von Ionen über Zellmembranen oder Zellschichten hinweg und spielen eine entscheidende Rolle bei der Physiologie, Reparatur und Pathologie des Gewebes. Wir beschreiben die ionenselektive selbstreferenzierende Mikroelektrode, die die Messung spezifischer Ionenflüsse an einzelnen Zellen und Geweben in vivo ermöglicht.

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Anwendung der Elektrophysiologie Messung die Aktivität von Electro-neutralen Transporter zu studieren

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Human iPSC-Derived Cardiomyozyte Networks auf Multiwell Micro-Elektroden-Arrays für recurrent Action Potential Recordings

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Poröse substratbasierte Elektroporation mit transepithelialer elektrischer Impedanzüberwachung

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Überwachung von Elektroporations-induzierten Veränderungen der Aktionspotentialbildung in gentechnisch veränderten Tet-On-Spiking-HEK-Zellen

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Eine neue Anwendung der Electrical Penetration Graph (EPG) zur Erfassung und Messung elektrischer Signale in Phloem Siebelemente (Video) | JoVE Journal

Eine neue Anwendung der Electrical Penetration Graph (EPG) zur Erfassung und Messung elektrischer Signale in Phloem Siebelemente

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