Name: Multifunktionale, Mikropipette-basierte Methode für den Einbau und Stimulation der bakteriellen mechanosensitiven Ionenkanäle in Droplet Schnittstelle Bilayers (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-19T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: Lernen Sie eine mikropipettenbasierte Methode zur Bildung von Droplet Interface Bilayers zur Untersuchung bakterieller mechanosensitiver Ionenkanäle. Diese Technik ermöglicht präzise mechanische Stimulation und elektrophysiologische Messungen.

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Forschung in dieser Veröffentlichung berichtet, wird von der Air Force Office of Scientific Research Grund Initiative Statt FA9550-12-1-0464 unterstützt.

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<li>Sarles, S. A., Leo, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-inspired+electroactive+polymer+materials+incorporating+biomolecular+materials%5BTitle%5D)+AND+%22SPIE+Smart+Structures+and+Materials%2B+Nondestructive+Evaluation+and+Health+Monitoring%22%5BJournal%5D)">Cell-inspired electroactive polymer materials incorporating biomolecular materials.</a> SPIE Smart Structures and Materials+ Nondestructive Evaluation and Health Monitoring. , 797626(2011).</li>
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</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Mechanosensation bedeutet eine der ersten sensorischen Übertragungswegen, die in lebenden Organismen entwickelt. Mit diesem Phänomen für das Studium und das Verständnis der mechanisch-elektrischen Eigenschaften der DIB, ist ein entscheidender Schritt in Richtung Funktions Anregungen reagierende Materialien. Es geht um die Einbeziehung und Aktivierung eines mechanosensitive Kanal, MscL, in der DIB als mechanoelektrische Wandler und einem Dehnungsmessstreifen zu spannen Erhöhung der Lipid-Doppelschicht-Schnittstelle zu erkennen. Auf einer anderen Note könnte die Funktion der MS Kanäle, durch die Grundmaterialeigenschaften des Lipiddoppelschichten einschließlich der Dicke, intrinsische Krümmung und Kompressibilität geregelt werden. Im Lichte des zuvor erwähnt, stellt die Mikropipette eine Technik hilfreich, da die Forscher die Fähigkeit, MS Kanäle in DIB untersuchen und Einblicke in die Struktur der Lipid-Doppelschicht, wie auch die Lipid-Protein-Wechselwirkungen. In den vergangenen drei Jahrzehnts, Patch-Clamp war der primäre Methode, um MS-Kanälen zu untersuchen, da sie eine Klemm sowohl Spannung und Anspannung. , Patch-Clamp erfordert jedoch sperrige Ausrüstung und nicht für eine Miniaturisierung, eine Eigenschaft für das Engineering von sensorischen und Umwandlungsvorrichtungen erforderlich geeignet. DIB aufgrund ihrer Einfachheit, Stabilität und Kompaktheit stellen eine geeignete Umgebung, um die Aktivität MscL studieren. Hier haben wir erstrecken vorherigen Fortschritte in den DIB Bildungstechniken, indem sie eine Mikropipette Technik, mit der Fähigkeit, die Größe der Tröpfchen und Doppelschicht-Schnittstelle, die chemische Zusammensetzung von jedem Tröpfchen und die Spannung an der Grenzfläche durch dynamische Stimulation steuern. Die Technik besteht aus Verankerungs wässrigen Tröpfchen, enthaltend Proteoliposomen zu den Spitzen der koaxial gegenüberliegenden Glaskapillaren. Die Tröpfchen werden in ein Bad aus organischem Lösungsmittel gegeben und bei Kontakt gebracht einer Lipiddoppelschicht bildet sich an der Schnittstelle. Die Mikropipetten sind p angebrachtiezoelectric Oszillatoren ermöglicht die horizontale Verschiebung der Tröpfchen. Dynamisch Komprimieren der Tröpfchen führt zu einer Erhöhung der Grenzflächenspannung an der Wasser-Öl-Grenzfläche und damit eine Erhöhung der Doppelschichtspannung. Zwei wichtige Aspekte zu differenzieren diese Methode von der ähnlichen und vor kurzem veröffentlichten Kontaktdaten Blase Doppelschicht (CBB) Technik 37. Verwendung der Technik hierin dargestellt, wird die Größe der Bilayer kontrollierte Verwendung von Mikromanipulatoren und damit die Volumen der Tröpfchen konstant bleiben, im Gegensatz zu dem CBB-Methode. Darüber hinaus fordert der CBB Technik zur Druckpumpen, die nicht in der in dieser Veröffentlichung macht es einfacher und leichter zu bauen stellten Verfahren notwendig sind. Wir sind in der Lage, zu integrieren und zu stimulieren bakteriellen MscL erstmals ohne Verwendung eines Patch-Pipette oder chemische Modifikationen 38. Da das System erleichtert die Bildung von robusten asymmetrische Lipid-Doppelschichtmembranen, es ahmt den lIPID Asymmetrie in biologischen Membranen gefunden. Dies erlaubt uns, die Wirkung von gesteuerten Membranzusammensetzung oder Asymmetrie auf die Aktivität MscL studieren. Zusätzlich wird durch Bildverarbeitungstechniken, hilft diese Methode schätzen die Spannung an der Doppelschicht-Schnittstelle. Diese Technik hilft beim Verständnis der Prinzipien der Umwandlung zwischen der Masse und Oberflächenkräfte im DIB erleichtert die Messungen der Grundmembraneigenschaften und verbessert das Verständnis MscL Reaktion auf Spannung Membran. Obwohl dieses Verfahren führt einen Schritt näher zu einer biomolekularen stimuliresponsive Materialsystems und zu einer anderen physiologischen Umgebung zu MscL untersuchen, gibt es Einschränkungen für das System. Spannung in diesem System kann wegen der Gegenwart der Lipidreservoir in der Form von Liposomen in jedem Tröpfchen, die Spannung an der Öl / Wasser-Grenzfläche zu entlasten neigt geklemmt werden. Daher wird derzeit mechanosensitive Kanäle stimuliert werdenin DIB nur im dynamischen Betrieb. Das Vorhandensein von Luftblasen in dem System beeinflusst die Genauigkeit und Reproduzierbarkeit der Experimente. In der Hydrogele Luftblasen könnten Verlust, wenn die elektrische Verbindung zur Folge haben. Während wir beschreiben die Verwendung der Mikropipette basiertes Verfahren für die Stimulation der MscL könnte die Technik verwendet, um andere Arten von MS Kanäle zu untersuchen und das Potential hat, die von Forschern verwendet, um eine Vielzahl von Biomolekülen zu untersuchen. Zum Beispiel hat ähnliche Einstellung in unserem Labor verwendet, um die mechanoelektrische Antwort eines Kanals freien Tröpfchengrenzfläche Bilayermembran studieren. Verschiedene Proteine ​​konnte wieder hergestellt werden und aktiviert mit diesen stark kontrollierten Setup unter Berücksichtigung, dass die Rekonstitution Umgebungen jedes Biomolekül variieren. Die in diesem Artikel beschriebenen Verfahren berührt eine wesentlich breitere Anwendung Potenzial, das nur für die Phantasie des Forschers begrenzt.

In den letzten zehn Jahren, wobei die Anordnung der künstlichen Lipid-Doppelschichten wurde wesentlich durch die Entwicklung der Tröpfchengrenzfläche Bilayer Verfahren vorgerückt. Bekannt als stabil und robust, verhängt DIBs sich als alternative Modellsysteme zur klassischen gemalt (Mueller) und gefaltet (Montal-Müller) planare Doppelschichten 1. Obwohl die Idee der Verwendung von Tröpfchen auf Lipiddoppelschichten zu erstellen geht zurück auf die 1960er Jahre 2, es war nicht bis vor kurzem Popularität gewonnen. Der erste erfolgreiche Versuch wurde von der Takeushi Gruppe 3, gefolgt von mehreren Studien, die Doppelschichtbildung unter Verwendung eines Netzwerks von Tröpfchen durch die Bayley Gruppe 4-6 berichtet. In jüngerer Zeit wurden Verkapselungstechniken vom Leo-Gruppe 7-9, der das Konzept der Verwendung von DIBs als Bausteine ​​neuartige Stimuli reagierende Materialsysteme 10 Pionierarbeit vorgeschlagen. In früheren Studien wurden DIB ihre Fähigkeit, an elektrische 9,11, chem reagieren erwiesenschen 10,12 und optische Reize 13. Verschiedene Biomolekülen mit unterschiedlichen Funktionalitäten stimuliresponsive wurden effektiv stimuliert, wenn in der DIB 10,14 rekonstituiert. Angesichts dieser erfolgreichen Versuche eine wichtige Frage aufgeworfen: könnte die DIB reagieren auf mechanische Reiz, wenn geeignete Biomoleküle eingebaut? Die auf einem DIB wirkenden Grenzflächenkräfte unterscheiden sich von denen in anderen Zweischichtsystem 15,16. Daher konnte die Spannung in der Doppelschicht von den Tröpfchen gehalten durch Regulieren Spannung an den Wasser-Lipid-Öl-Schnittstellen gesteuert werden; ein Konzept, nicht mit den lackierten oder gefaltete Doppelschicht-Systeme anwendbar. MscL Kanälen, die weithin als Osmolyt Freigabeventile und Grundelemente der bakteriellen Cytoplasmamembran bekannt ist, reagieren auf erhöhte Membranspannung 17,18. Im Falle einer hypoosmotischen Schocks, mehrere Kanäle, die in der Membran einer kleinen Zelle 19 kann eine mas erzeugensive Durchlässigkeit als Reaktion auf schnell los Ionen und kleinen Molekülen, spart Bakterien aus der Lyse 20. Biophysikalisch wird MscL gut untersucht und vor allem durch die herausragende Patch-Clamp-Technik 21-23 gekennzeichnet. Zuverlässige Strukturmodelle erklären Gating-Mechanismus 24,25 MscL ist vorgeschlagen auf die seines Homologen Kristallstruktur 26,27, Modellierung 28, und die Ergebnisse der umfangreiche Experimente 24,29-31 basiert. Unter einer angelegten Spannung von ~ 10 mN / m, der geschlossene Kanal, der von einem engen Bündel von Transmembran-Helices besteht, verwandelt sich in einen Ring der stark geneigten Helices Bildung einer ~ 28 einen mit Wasser gefüllten leitenden Poren 21,24,32. Es wurde auch festgestellt, daß die Hydrophobie des hermetischen Durchlaß, an der Kreuzung der inneren TM1 Domänen angeordnet ist, bestimmt die Aktivierungsschwelle des Kanals 33. Entsprechend wurde festgestellt, dass durch Verringerung der Hydrophobizität des Gate, die tension Schwellen konnte abgesenkt 22 werden. Diese Eigenschaft der MscL möglich das Design der verschiedenen steuerbaren Ventile 34 hergestellt, in erster Linie für Drug-Delivery-Zwecke. Für alle oben genannten Eigenschaften und auf der Grundlage ihrer grundlegenden Rolle der Übersetzung Zellmembran übermäßigen Spannungen in elektrophysiologischen Aktivitäten, macht MscL eine großartige Passform als mechanoelektrische Wandler in DIBs. In diesem Artikel präsentieren wir eine ursprüngliche Mikropipette-basierte Methode, um DIBs bilden und messen die Aktivität der einge MscL Kanäle unter mechanischer Stimulation. Wir berichten zum ersten Mal, die Reaktion der DIBs zu mechanischen Reiz und der funktionellen Wiederherstellung des V23T niedrigschwelligen Mutante MscL in DIBs 35. Die Versuchsanlage besteht aus Lipid-umhüllten wässrigen Tröpfchen auf die Spitzen der zwei gegenüberliegende Glasmikropipetten verankert Borosilikatglas. Wenn Tröpfchen in Kontakt gebracht einer Lipiddoppelschicht-Schnittstelle ist foRMED. Diese Technik bietet Kontrolle über die chemische Zusammensetzung und die Grße jedes Tröpfchens (bulk) sowie die Abmessungen der Doppelschicht-Schnittstelle. Zusätzlich könnte asymmetrische Membranen mit verschiedenen Lipidzusammensetzungen in jeder Broschüre leicht gebildet werden. Mit einer der Mikropipetten, um eine harmonische piezoelektrischen Aktuator angeschlossen ist, bietet die Möglichkeit, eine vorprogrammierte Einzelzyklus oder Schwing Reiz anzuwenden. Spannung wird auf den künstlichen Membran, durch die Kompression der beiden Tröpfchen stütz geliefert. Als Ergebnis der Tröpfchenverformung, die Bereiche Wasser-Lipid-Öl-Schnittstellen erhöhen, und gleichzeitig wird der Winkel zwischen den Tröpfchen verringert, was zu einer Erhöhung der Membranspannung und transiente MscL Aktivierung. Durch Analyse der Formen der Tröpfchen während der Verformung könnte die Spannung an der Grenzfläche erzeugt geschätzt werden. Auch wenn der Schwerpunkt in diesem Artikel ist auf den mechanisch-Übertragungseigenschaften des DIB wir auch betonen, dass andere Arten von Bio-Moleküle, wie Alamethicin, kann durch dieses multifunktionale Plattform aktiviert werden. Wir stellen hier alle technischen Aspekte der Herstellung, der Montage und Durchführung von Messungen mit diesem neuen Verfahren in einem Schritt-für-Schritt-Weise.

<table><tbody><tr><td>0,22 &Mikro; m Filter</td><td>Corning</td><td>430624</td><td></td></tr><tr><td>1,2-Diphytanoy-sn-glycero-3-phosphocholin (DPhPC)</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>850356P</td><td>Gekauft als lyophilisiertes Pulver</td></tr><tr><td>34-Gauge Mikrofil</td><td>World Precision Instruments</td><td>MF24G-5</td><td></td></tr><tr><td>400 mL Zentrifugenflaschen</td><td>ThermoFisher</td><td>3141</td><td>Nalgene</td></tr><tr><td>Agilent Function/Arbitrary Waveform Generator, 20 MHz</td><td>Keysight Technologies</td><td>33220A</td><td></td></tr><tr><td>Ampicillian</td><td>ThermoFisher</td><td>BP1760</td><td>ACS Grade</td></tr><tr><td>Avanti&reg; Mini-Extruder</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>610000</td><td></td></tr><tr><td>Axio Scope.A1</td><td>Carl</td> <td>Zeiss-AxioCam</td><td></td></tr> <tr><td>HSm</td><td>Carl Zeiss-Axopatch</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>200B Verstärker&nbsp;</td><td>Molecular</td> <td>Devices-BCA-Protein-Assay-Kit</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Pierce&nbsp;</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>BK Precision 4017B 10 MHz DDs Sweep-/Funktionsgenerator</td><td>Digi-Key</td><td>BK4017B-ND</td><td></td></tr><tr><td>Kapillaren aus Borosilikatglas</td><td>World Precision Instruments</td><td>1B100F-4</td><td></td></tr><tr><td>Dialyseschlauch</td><td>7 Spectra/</td><td>Por 132113</td><td>MWCO 8000, 7,5 mm</td></tr><tr><td>Durchmesser DigiData 1440A System</td><td>Molecular</td> <td>Devices-DNAse</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DN25</td><td></td></tr><tr><td>DPhPC</td><td>Avanti</td><td>850356C</td><td></td></tr><tr><td>E-625 PZT Servo-Controller&nbsp;</td><td>Physik Instrumente</td><td>E-526</td><td></td></tr><tr><td>FPLC System</td><td>Pharmacia Biotech-HCl</td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td>J.T. Baker</td><td>9535-33</td><td></td></tr><tr><td>Hexadecan, 99%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>544-76-3</td><td></td></tr><tr><td>Homoginizer</td><td>Wheaton</td><td>357426</td><td>15 mL</td></tr><tr><td>Imidazol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I5513</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Affymetrix</td><td>17886</td><td></td></tr><tr><td>IRGACURE&reg; 2959</td><td>IRGACURE&reg;</td><td></td><td></td>555047962</tr><tr><td>Isoporen-Membranfilter&nbsp;</td><td>EMD Millipore</td><td>VCTP02500</td><td></td></tr><tr><td>Isopropylalkohol</td><td>VWR International</td><td>BDH1133-4LP</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3911</td><td>ACS Grade</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Mallinckrodt</td><td>7100</td><td>ACS Grade</td></tr><tr><td>Kimble-Chase</td><td>Kontes</td><td>420401-1515</td><td>Flex-Column</td></tr><tr><td>LED-100 UV Spot Härtung System</td><td>Electro-Lite, corp.</td><td>81170</td><td></td></tr><tr><td>Lysozyme</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L6876</td><td></td></tr><tr><td>Manuelle Patch-Clamp-Mikromanipulatoren</td><td>Thorlabs</td><td>PCS-520N</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>ThermoFisher</td><td>M33</td><td>ACS Grade</td></tr><tr><td>Mikroelektrodenhalter&nbsp;</td><td>World Precision Instruments</td><td>MEH1S</td><td></td></tr><tr><td>Mikropipettenabzieher</td><td>Sutter Instruments</td><td>P-1000</td><td></td></tr><tr><td>MOPS, mindestens 99,5 % Titration</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1254-100G</td><td></td></tr><tr><td>N2 Gas</td><td>Airgas</td><td>UN1066</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>EMD</td><td>SX0420-1</td><td>ACS Grade</td></tr><tr><td>Ni NTA Agarosekügelchen</td><td>Qiagen</td><td></td><td></td>1000632</tr><tr><td>Optisch klares gegossenes Acrylrohr, 2-1/2" OD x 2" ID</td><td>McMaster-Carr</td><td>8486K545</td><td></td></tr><tr><td>P-601 PiezoMove Biegegeführter Linearantrieb</td><td>Physik Instrumente</td><td>P-601</td><td></td></tr><tr><td>PAGE Gel</td><td>Bio-Rad</td><td>456-9033</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm M&reg; Allzweck-Laborfilm</td><td>Parafilm&reg;</td><td>PM999</td><td></td></tr><tr><td>Phenylmethylsulfonylfluorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7626</td><td></td></tr><tr><td>Poly(ethylenglykol)1000 dimethacrylat</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>15178-100</td><td></td></tr><tr><td>Membranfilter aus Polycarbonat (PCTE), Schwarz, 0,4 Mikron, 25 mm, 100/Pk</td><td>Sterlitech Corporation</td><td><a href="http://www.sterlitech.com/filters/membrane-disc-filters/polycarbonate-membranes/hydrophilic-polycarbonate-membrane-filters/hydrophilic-polycarbonate-membrane-filter-pctb0425100.html">PCTB0425100</a></td><td></td></tr><tr><td>Kaliumchlorid&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5405-500G</td><td></td></tr><tr><td>Puderfreie weiche Nitril-Untersuchungshandschuhe&nbsp;</td><td>VWR International</td><td>CA89-38-272</td><td></td></tr><tr><td>Ersatzdichtung 1,0 mm</td><td>World Precision Instruments</td><td>GO1-100</td><td></td></tr><tr><td></td><td>SDS Sigma-Aldrich</td><td>L5750</td><td></td></tr><tr><td>Silberdraht</td><td>GoodFellow</td><td>147-346-94</td><td>Je nach Anwendung können verschiedene Durchmesser verwendet werden.</td></tr><tr><td>Natriumazid</td><td>Affymetrix</td><td>21610</td><td></td></tr><tr><td>Reagenzgläser</td><td>ThermoFisher</td><td>14-961-27</td><td>12 x 130 mm</td></tr><tr><td>Trypton</td><td>ThermoFisher</td><td>BP1421</td><td></td></tr><tr><td>Ultracal 30K</td><td>Millipore</td><td>UFC803024</td><td>Amicore Ultra 30 MWCO</td></tr><tr><td>VWR Leichte Gewebewischer</td><td>VWR International</td><td>82003-820</td><td></td></tr><tr><td>VWR Scientific 50D Ultraschall Reiniger</td><td>VWR International</td><td>13089</td><td></td></tr><tr><td>Wasserreiniger</td><td>Barnstead</td><td>D11931</td><td></td></tr><tr><td>Hefe</td><td>ThermoFisher</td><td>BP1422</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-octylglucopyranosid</td><td>Anatrace</td><td>O311S</td><td></td></tr></tbody></table>

multifunktionale, mikropipette-basierte methode für den einbau und stimulation der bakteriellen mechanosensitiven ionenkanäle in droplet schnittstelle bilayers

Multifunctional, Micropipette-based Method for Incorporation And Stimulation of Bacterial Mechanosensitive Ion Channels in Droplet Interface Bilayers

MscL, eine große Leitfähigkeit mechanosensitive Kanal (MSC), ist ein allgegenwärtiges Osmolyt Ablassventil, die Bakterien überleben abrupten hypo-osmotischen Schocks hilft. Es wurde entdeckt, und mit Hilfe der Patch-Clamp-Technik fast drei Jahrzehnte rigoros sucht. Seine grundlegende Rolle übersetzen Spannung auf der Zellmembran in Antwort Permeabilität aufgebracht ist es ein starker Kandidat als mechanoelektrischen Wandlers in künstliche Membran-basierte Biomoleküle wirken. Serving als Bausteine ​​zu solchen Geräten können Tropfenschnittstelle Doppelschichten (DIBs) als neue Plattform für die Einbeziehung und Stimulierung der MscL Kanäle verwendet werden. Hier beschreiben wir eine Mikropipette-basierte Methode, um DIBs bilden und messen die Aktivität der einge MscL Kanäle. Dieses Verfahren besteht aus Lipid-umhüllten wässrigen Tröpfchen auf die Spitzen der zwei gegenüberliegende (koaxial positioniert) Borsilikatglas-Mikro verankert. Als Tropfen in Kontakt gebracht werden, ist ein Lipid-Doppelschicht-Schnittstellegebildet. Diese Technik bietet Kontrolle über die chemische Zusammensetzung und die Größe der einzelnen Tröpfchen sowie die Abmessungen der Doppelschicht-Schnittstelle. Mit einer der Mikropipetten, um eine harmonische piezoelektrischen Aktuator befestigt bietet die Möglichkeit, eine gewünschte oszillierende Impulse zu liefern. Durch Analyse der Formen der Tröpfchen während der Deformation kann die Spannung an der Grenzfläche erzeugt geschätzt werden. Unter Verwendung dieser Technik wird die erste Aktivität MscL Kanäle in einem DIB-System gemeldet. Neben MS-Kanälen können Aktivitäten anderer Arten von Kanälen mit dieser Methode untersucht werden, was beweist, die Multifunktionalität dieser Plattform. Das hier vorgestellte Verfahren ermöglicht die Messung der Grundmembraneigenschaften, eine bessere Kontrolle über die Bildung von symmetrischen und asymmetrischen Membranen, und ist eine Alternative zu stimulieren und zu studieren mechanosensitive Kanälen.

Die Figuren 1 und 2 zeigen die Versuchsanordnung und Einrichtungen verwendet, um die Proteinaktivität im Verlauf der mechanischen Stimulation der Lipiddoppelschichtmembran aufzuzeichnen. Um elektrische Störungen in unsere Messungen zu minimieren, wird die Arbeitsstation innerhalb einer im Labor hergestellten Faradayschen Käfig gelegt, geerdet, um eine Masseverbindung über die Axopatch 200 B-Verstärker. Bildung einer stabilen isolierenden Lipiddoppelschicht ist ein wichtiger Schritt in dieser Studie. In dieser Anordnung sammelt eine Lipidmonoschicht an der Öl / Wasser-Grenzfläche der wässrigen Tröpfchen in einem Bad aus einem organischen Lösungsmittel getaucht. Wenn Tröpfchen in Kontakt gebracht wird überschüssiges Öl beseitigt, und die gegnerische Lipidmono dünn auf ein Zwei Molekül dicke Lipiddoppelschicht. Die am weitesten verbreitete Technik in Doppelschichtcharakterisierung verwendeten Voltage-Clamp. Mit Spannungsklemmen, wird die Spannung über die Doppelschicht auf einem konstanten Wert gehalten, während der Strom gemessen wird, Fig. 4 </strong&gt; schildert einen typischen Echtzeit-Stromaufnahme des ursprünglichen Doppelschichtbildung. Kenntnis der spezifischen Kapazität (~ 0,6 &amp; mgr; F / cm 2) 5 des DPhPC Lipiddoppelschicht, kann der Bereich der gebildeten Doppelschicht berechnet werden. Die Doppelschichtbereich könnte durch Änderung der Position der Tröpfchen (4A) gesteuert werden. Verwendung des piezoelektrischen Aktuators, könnten verschiedene Arten von Wellenformen (sinusförmig, quadratisch, dreieckig, etc.) Bei verschiedenen Frequenzen, Amplituden und Tastverhältnissen an die Tröpfchen horizontal aufgebracht werden und axial oszillieren sie und damit Doppelschichtspannung und die Fläche verändert werden konnte (4B). Wenn die DIB mechanisch stimuliert wird, während eine konstante DC-Potential über die Membran eine niedrigschwellige (gain-of-function) V23T Mutante MscL erzeugt zuverlässig Aktivitäten, einschließlich vor allem Unter leitenden Zustand und gelegentlich vollständige Öffnung Ereignisse (Abbildung 5) . Diese events sind identisch mit denen erfasst unter Verwendung der Patch-Clamp-Technik aus intakten inneren E. coli Membranen und Liposomen, die mit dem gereinigten V23T MscL rekonstituiert. Die Ergebnisse in 5 zeigen, dass Gating tritt in Antwort auf einen Anstieg in der Spannung, da alle Stromspitzen bei der Spitzenkompression beobachtet. Bei der Spitzenkompression ist die relative Flächenausdehnung der Tröpfchen maximal und daher ist die Spannung an der Grenzfläche maximal. Alamethicin, einem spannungsgesteuerten Ionenkanal und eine der am besten untersuchten Peptide, erhöht die Durchlässigkeit der Membran, wenn eine Gleichspannung an die Membran 36 angelegt. Die Fähigkeit der Lipiddoppelschicht-Schnittstelle, um Transmembranproteine ​​und Peptide Host wird auch durch Ausführen Spannungsanschnitt aktuellen Aufnahmen mit Alamethicin Peptid getestet. Alamethicin ist mit der Phospholipidlösung zu einer Endkonzentration von 100 ng / ml gemischt. 6 zeigt die Strommessungen unter<html> Spannungsklemme (115 mV). Die Tröpfchen in diesem Experiment sind voneinander um kleine Doppelschicht-Schnittstelle und damit eine höhere Widerstandsfähigkeit und kleinere Kapazität erreichen gezogen. Die Torschaltung Verhalten der Alamethicin Peptid wird durch die diskreten Schritte Strom (Figur 6) gezeigt. Das Histogramm auf der rechten Seite des Diagramms zeigt die Änderungen in der Leitfähigkeit von der Basisebene (0,0962 ns), die im Grunde ist der erste Leitfähigkeitspegel des Kanals selbst. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53362/53362fig1.jpg" /> Abb. 1: Eine schematische die Hauptteile und die Abmessungen der Ölbehälter der Beschreibung Der Ölbehälter ist an der Maschinenhalle an der Virginia Tech gefertigt. Es besteht aus einem maschinell bearbeiteten zylindrischen Acrylröhre auf die Oberfläche einer Acrylfolie verklebt. Die Abmessungen und die Konstruktion kann modifiziert werden, um verschiedene Anwendungen oder mehr als zwei Mikrozubringen./53362/53362fig1large.jpg &quot;Target =&quot; _ blank &quot;&gt; Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen. <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/53362/53362fig2.jpg" /> Abb. 2: Versuchsaufbau und Mikropipetten Zubereitung (A) Die Standardarbeitsplatz zur Bildung mechanisch stimulierende und Charakterisierung der Schnittstelle Doppelschichten umfasst ein Mikroskop, 3-Achsen-Manipulatoren, eine Digitalkamera, piezoelektrischen Oszillator, Schwingungsisolation Tisch und einen Faradayschen Käfig (nicht gezeigt). (B) Der Versuchsaufbau besteht aus zwei gegenüberliegenden PEG-DMA Hydrogel gefüllten Mikro horizontal in ein Bad aus Hexadecan Öl positioniert sind. Jeder der Mikropipetten enthält eine Ag / AgCl-Elektrode, um eine elektrische Verbindung bereitzustellen. Eine dritte Mikropipette mit Proteoliposom Lösung gefüllt wird verwendet, um die Tröpfchen an der Spitze der anderen Mikro bilden. (C) Das DIB Stromantwort gemessen werden konnteVerwendung einer Kombination aus dem Pflaster Verstärker und dem rauscharmen Datenerfassungssystem. (D) Eine geschlossene up-Bild, das die wässrigen Tröpfchen an der Spitze der Mikropipetten gebildet. (E) Ag / AgCl-Elektroden, indem die Spitze von zwei 250 um Silberdrähten in Bleiche hergestellt. Die Elektroden werden dann durch zwei Borosilikatglas Kapillaren mit PEG-DMA-Hydrogel, das mit UV-Licht gehärtet wird zur Verfestigung gefüllt zugeführt. Eine gerade Mikroelektrodenhalter mit Stiftstecker wird verwendet, um eine der Mikropipetten auf die heads des Patches Verstärker anschließen. <img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/53362/53362fig3.jpg" /> Abb. 3: Bilder, welche die Bildung von Doppelschichten Tröpfchengrenzfläche (A) Eine 10 &amp; mgr; m-Mikropipette mit Proteo gefüllt ist unter dem Mikroskop in der Nähe der Mikropipettenspitzen positioniert ist. Unter Verwendung einer Spritze zu der Mikropipette verbunden ist, verzichtet werden kleine Voluminader Proteoliposomen zu kugelförmigen Tröpfchen auf das gewünschte Volumen zu bilden. Lassen Sie die Monoschicht bilden, indem die Tröpfchen zu zehn Minuten sitzen. Bringt die Tröpfchen in Kontakt; die Doppelschicht bilden, nachdem das gesamte Öl an der Grenzfläche eliminiert wird. (B) Während die Doppelschicht gebildet wird, kann die chemische Zusammensetzung bei beiden Seiten der Grenzfläche durch die Injektion gewünschten Chemikalien unter Verwendung eines mikrofeinen Mikro gesteuert werden. (C) Die Tröpfchen im Augenblick der ersten Berührung. (D) Die Tröpfchen, wenn die Lipid-Doppelschicht gebildet wird. <img alt="Figur 4" src="/files/ftp_upload/53362/53362fig4.jpg" /> Abbildung 4: Echtzeit-Messungen zeigen, sowohl für den ersten Verdünnung und anschließende Expansion der Schnittstelle (A) Strom im Verlauf der Doppelschicht durch das Anlegen einer Dreiecks elektrischen Potential gemessen.. Der Betrag des gemessenen Stroms ist direkt proportional zu der capaciAbstand und somit der Bereich der Doppelschicht-Schnittstelle. Je näher sich die Tröpfchen zusammengeführt werden, desto größer ist die Fläche der Grenzfläche, und umgekehrt. (B) Bei Anwendung mechanischer Erregung, der Bereich der Doppelschicht-Schnittstelle Zunahmen und Abnahmen bei der gleichen Frequenz wie das Anregungssignal. <img alt="Figur 5" src="/files/ftp_upload/53362/53362fig5.jpg" /> Abb. 5: Echtzeit-Messungen zeigen die Reaktion der Doppelschicht gegen mechanische Anregung als auch die Ansteuerung der V23T Mutante MscL Die Form des Stromantwort ist sinusförmig, was zu einer sinusförmigen Veränderung infolge betrifft in Doppelschicht-Kapazität die Doppelschicht Bereich zu ändern. Die Stromspitzen an der Spitze jedes Zyklus auftritt, geben Teilleitfähigkeit Gating des V23T Mutante. Ein Polardiagramm zeigt an, dass weitere Gating zu Spitzenkompression, die eine Erhöhung der Spannung bei der Doppelschicht-Interface spiegelt auftritt. Abb. 6: Aktuelle Messungen unter Spannungsklemme und entsprechende Histogramm der Leitfähigkeitsniveaus für Gating-Aktivität der einge Alamethicin Kanäle Der Gating-Verhalten des Alamethicin Peptid wird durch die diskreten stufenweisen Anstieg der kurzfristigen gezeigt. Die Leitfähigkeitsniveaus entsprechen sehr gut mit früheren Messungen von unserer Arbeitsgruppe an der Virginia Tech 7 durchgeführt.

Bakterielle mechanosensitive Kanäle können als mechanoelektrische Wandler in biomolekularen Geräten verwendet werden. Tropfenschnittstelle Doppelschichten (DIBs), Zell-inspirierten Bausteine ​​für solche Geräte, stellen neue Plattformen zu integrieren und zu stimulieren mechanosensitive Kanäle. Hier zeigen wir, einen neuen Mikropipette Verfahren zur Bildung DIB, die die Untersuchung mechanosensitiver Kanäle unter mechanischer Stimulation.

Multifunktionale, Mikropipette-basierte Methode für den Einbau und Stimulation der bakteriellen mechanosensitiven Ionenkanäle in Droplet Schnittstelle Bilayers

MscL, a large conductance mechanosensitive channel (MSC), is a ubiquitous osmolyte release valve that helps bacteria survive abrupt hypo-osmotic shocks. ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, Mezcal-Kanäle funktional in ein Tropfengrenzflächen-Bilayer-System zu rekonstituieren und die Reaktion dieser mechanosensitiven Kanäle auf harmonische mechanische Reize zu untersuchen. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung der mechanoelektrischen Aktivität des V 23 T-Mescal-Mutanten nach Rekonstitution in ein Tropfengrenzflächen-Bilayer-System unter Anwendung harmonischer mechanischer Anregung. Der wesentliche Vorteil dieser Technik liegt darin, dass sie die technischen Vorzüge sowohl der Patch-Clamp-Technik als auch der Tropfengrenzflächen-Bilayer-Methode kombiniert und zudem die Miniaturisierung sowie die gezielte Steuerung der chemischen Zusammensetzung jeder Membranseite ermöglicht.Zur Herstellung von Liposomen bereiten Sie 10 Milliliter einer Lipidlösung mit zwei Milligramm pro Milliliter vor, indem Sie 10 Milliliter Kaliumchlorid-Puffer zu 20 Milligramm D-P-H-P-C-synthetischen Lipiden hinzufügen, die als lyophilisiertes Pulver bezogen wurden. Stellen Sie sicher, dass sowohl die Lipidförm als auch die Pufferlösung gründlich vermischt sind. Die Mischung sollte homogen und trüb erscheinen, sobald alles gelöst ist.Gefrieren Sie die Mischung bei minus 20 Grad Celsius, und tauen Sie danach die neue Lipidmischung vollständig auf, wobei die Mischung bei Raumtemperatur und nicht in einer beheizten Umgebung aufgetaut werden sollte. Nach insgesamt sechs Gefrier-Tau-Zyklen verwenden Sie einen kommerziell erhältlichen Extruder, um die Lipide zu extrudieren, indem Sie die gesamte Lipidsuspension zunächst durch einen 0,4-Mikron-Polycarbonat-Membranfilter und anschließend sechsmal durch einen 0,1-Mikron-Membranfilter pressen. Dieser Prozess ergibt Partikel mit Durchmessern nahe 100 Nanometern.Um das &Ouml;lspeicher herzustellen, bohren Sie zwei sich gegen&uuml;berliegende L&ouml;cher durch die Wand eines Acrylzylinders mit einem Durchmesser von zwei Zoll und einer L&auml;nge von 1,5 Zentimetern. Die L&ouml;cher sollten einen Durchmesser von einem Millimeter haben und einen Zentimeter vom Boden entfernt sein. Anschlie&szlig;end bohren Sie zwei vier Millimeter gro&szlig;e L&ouml;cher, die konzentrisch zu den zuvor gebohrten ein Millimeter gro&szlig;en L&ouml;chern liegen.Die Tiefe der Löcher sollte jeweils einen Millimeter betragen. Achten Sie darauf, sie nicht ganz durchzubohren. Diese Löcher dienen dazu, die Gummidichtungen aufzunehmen.Platzieren und verkleben Sie zwei Gummidichtungen mit einem Innendurchmesser von einem Millimeter in den größeren Löchern, um ein Austreten von Öl zu verhindern. Danach verkleben Sie die Maschine am Zylinder mit einer 10 cm × 10 cm großen dünnen Acrylplatte unter Verwendung eines universellen Epoxidharzes am Tag des Experiments, schneiden ein sieben Zentimeter langes Stück eines 250-Mikrometer-dicken Silberdrahts zu und tauchen anschließend die Spitzen zwei Stunden lang in Bleichmittel ein. Eine graue Färbung zeigt an, dass sich eine Silberchlorid-Beschichtung gebildet hat.Mit einem Glaszahn einen 10 cm langen Bornsilikatglas-Kapillar mit einem Außendurchmesser von 1 mm und einem Innendurchmesser von 0,58 mm in zwei 5 cm lange Kapillaren teilen. Mit einer 1-ml-Spritze und einer stumpfen Nadel mit 18 Gauge die Kapillaren mit dem P-E-G-D-M-A-Hydrogel füllen, um ein Quellen des hydratisierten Hydrogels aus der Kapillare heraus zu verhindern. An den Spitzen einen Freiraum von 3 mm belassen und sicherstellen, dass sich keine Luftblasen in den Kapillaren befinden.Setzen Sie die Silber-Silberchlorid-Elektroden in die mit Hydrogel gefüllten Kapillaren ein. Härten Sie das P-E-G-D-M-A-Hydrogel durch radikalische Photopolymerisation bei Bestrahlung mit ultraviolettem Licht für zwei Minuten bei einem Watt unter Verwendung einer UV-Punktquelle aus. Der Versuch wird unter einer Faraday-Kabine aufgebaut, die an eine Masseverbindung des Patch-Verstärkers angeschlossen ist. Befestigen Sie eine der Mikropipetten an einem geraden Mikroelektrodenhalter mit einem männlichen Anschluss.Verbinden Sie dann den Mikroelektrodenhalter mit der Headstage des Patch-Verstärkers. Um die Headstage zu erden, löten Sie einen isolierten Kupferdraht mit einer Dicke von 18 Gauge an einen geeigneten Anschluss für die Headstage, und montieren Sie die Headstage auf einem dreidimensionalen manuellen Mikromanipulator, indem Sie zuerst die Montageplatte der Headstage am Mikromanipulator befestigen und anschließend die Headstage mit der Montageplatte verbinden. Befestigen Sie die zweite Mikropipette mithilfe geeigneter Schrauben über einen selbstgefertigten Verbinder am Linearantrieb und montieren Sie beides auf einem zweiten Mikromanipulator.Die Mikropipetten sollten einander gegenüberliegend ausgerichtet und horizontal ausgerichtet sein. Als Nächstes in einem Glasfläschchen 0,1 Milliliter der D-P-H-P-C-Liposomen mit 0,01 Milliliter der V 23 T Mescal Protea-Liposomenlösung mischen. Mit einer 34-Gauge-Microfill-Nadel die Spitzen beider Mikropipetten mit einer Proteosomenlösung füllen.Platzieren Sie das Reservoir auf der Oberseite eines aufrechten Mikroskops und führen Sie die Mikropipetten durch die gegenüberliegenden ein Millimeter durchmessenden Löcher. Füllen Sie anschließend das Reservoir bis zur Oberfläche mit Hexadekan, um an der Spitze der Mikropipetten kugelförmige Tröpfchen zu bilden. Verwenden Sie eine dritte Mikropipette aus Borosilikatglas mit einem Durchmesser von 10 Mikron, die an einem dritten Mikromanipulator befestigt ist, um verdiente V23T-Mescal-Protea-Liposom-Lösung an den Spitzen der Mikropipetten abzugeben und die Tröpfchen zu bilden.Steuern Sie die Größe der Tröpfchen, indem Sie das Volumen nach Bedarf verringern oder erhöhen, und lassen Sie sie 10 Minuten ruhen, damit sich die Monolagen vollständig bilden können. Bringen Sie anschließend die Tröpfchen schichtweise in Kontakt. Die Bildung erfolgt innerhalb von einer bis zwei Minuten.Nachdem die Software und die Ausrüstung wie im Textprotokoll beschrieben eingerichtet wurden, verwenden Sie ein BNC-Kabel, um die Ausgabe eines Wellenformgenerators mit dem externen Befehlseingangsvorschalter zu verbinden. Senden Sie eine dreieckförmige Wellenform mit 10 Hertz und 500 Millivolt Spitzen-zu-Spitze-Spannung an die Kopfstufe. Verwenden Sie dazu den Mikromanipulator.Bewegen Sie die Glas-Mikropipetten horizontal, um die Tröpfchen in Kontakt zu bringen, bis sie sich leicht berühren, und warten Sie, bis eine Dünnschichtbildung der Doppelschicht erfolgt. Der Fortschritt des Doppelschichtbildungsprozesses kann visuell durch das Mikroskop beobachtet und durch Strommessung überwacht werden. Stellen Sie die Größe der Doppelschicht auf etwa 250 Mikrometer im Durchmesser ein, indem Sie die Position des auf dem Aktuator befestigten Tröpfchens mit Hilfe des Manipulators steuern; die Größe der Doppelschicht kann visuell durch das Mikroskop geschätzt werden.Nachdem die Doppelschicht gebildet und stabilisiert ist, stimulieren Sie die Tropfen, indem Sie mithilfe eines Funktionsgenerators ein sinusförmiges Signal senden, um das in der Doppelschicht eingebaute Mescal-Protein zu aktivieren. Senden Sie eine sinusförmige Wellenform mit einer Spitze-zu-Spitze-Amplitude von 175 Mikrometer, einer Frequenz von 0,2 Hertz und einer Tastverhältnis von 50 % an den Piezoelektrik-Server-Controller. Eine typische Echtzeit-Stromaufnahme ist hier dargestellt.Die gemessene Kapazität der Doppelschicht nimmt plötzlich zu, was auf eine Ausdünnung und Bildung der Doppelschicht hinweist, bevor sie einen stabilen Zustand erreicht. Die Doppelschicht konnte kontrolliert werden, indem die Position der Tröpfchen verändert wurde, während die DIB mechanisch stimuliert wurde, wobei ein konstantes Gleichstrompotential über die Membran aufrechterhalten wurde. Der V 23 T-Mutant von Mezcal erzeugt zuverlässige Aktivitäten, die hauptsächlich aus subleitfähigen Zuständen und gelegentlich aus vollständigen Öffnungsereignissen bestehen.Die Gating-Erscheinung tritt hauptsächlich bei maximaler Kompression auf, was darauf hinweist, dass sie mit einer Zunahme der Doppelschichtspannung zusammenhängt, wie in der Polardarstellung gezeigt. Hier wird die Eignung dieser Technik zur Untersuchung anderer Biomolekültypen hervorgehoben. Ethin, ein spannungsabhängiger Ionenkanal, erhöht die Membranpermeabilität durch Anlegen eines Gleichstrom-Transmembranpotentials One master.Diese Technik kann innerhalb von zwei Stunden durchgeführt werden, wenn sie ordnungsgemäß ausgeführt wird. Während des Durchführens dieses Verfahrens ist es wichtig, daran zu denken, die Glas-Kapillaren nicht versehentlich zu beschädigen oder anderweitig zu beeinträchtigen. Sie müssen den Aufbau erneut starten und sicherstellen, dass alle Drähte nach der Entwicklung verbunden sind.Diese Technik ebnete den Forschern auf dem Gebiet der dehnungsaktivierten Kanäle den Weg, neue Methoden zu erforschen, über die äußere Kräfte an das Gatter von in DIB eingebetteten, mechanosensitiven Kanälen übermittelt werden können. Nach dem Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Tropfen-Grenzflächen schichtweise bildet, mechanosensitive Kanäle in künstliche Membranen einbaut und diese Kanäle mechanisch stimuliert.

multifunctional-micropipette-based-method-for-incorporation

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Microiontophoresis bringt Bewegung von Ionen aus einer Mikropipette in Reaktion auf eine Differenz des elektrischen Potentials zwischen den innerhalb und außerhalb der Mikropipette. Biologisch aktive Moleküle sind dabei im Verhältnis zur elektrischen Strom geliefert. Wir illustrieren Acetylcholin microiontophoresis in Verbindung mit Mikromanipulation an Endothel-abhängige Vasodilatation in der Mikrozirkulation zu untersuchen.

Microiontophoresis und Mikromanipulation für Intravital Fluoreszenz-Imaging der Mikrozirkulation

Eine Haftung Frequenz-Assay zur Messung der Rezeptor-Ligand-Wechselwirkung Kinetik, wenn beide Moleküle auf der Oberfläche der interagierenden Zellen verankert sind beschrieben. Diese mechanisch-basierter Assay wird beispielhaft mit einer Mikropipette unter Druck menschlichen roten Blutkörperchen als Haftvermittler Sensor und Integrin αLβ2 und ICAM-1 als interagierende Rezeptoren und Liganden.

Adhesion Frequency-Assay für In Situ Kinetics Analyse der Cross-Junktionaler Molecular Interactions an der Zell-Zell-Schnittstelle

Hier beschreiben wir eine schnelle und einfache Methode, um Zellen Steifigkeit zu messen. Das allgemeine Prinzip dieser Methode besteht darin, Membranverformung in Reaktion auf wohldefinierte negativen Druck durch eine Mikropipette an die Zelloberfläche aufgebracht messen. Diese Methode bietet ein leistungsfähiges Werkzeug zur biomechanischen Eigenschaften von Substrat-anhaftenden Zellen zu studieren.

Mikropipette Aspiration von Substrat-attached Cells zu schätzen Zelle Stiffness

Dieses Video zeigt die Induktion axonaler Varikositäten durch Anwendung mikromechanischer Stimulation auf Neuronen. Das System besteht aus einer Mikropipette, die über einen Schlauch an einer Spritze mit Puffer befestigt ist. Mit Hilfe eines Mikromanipulators wird die Mikropipette über den Neuronen positioniert. Anschließend wird Flüssigkeitsdruck angewendet, um Krampfadern in den Axonen zu induzieren.

Induktion axonaler Varizen mit einem mikromechanischen Stimulus auf Neuronen

Dieser Artikel stellt ein Protokoll für die Aussaat knappe Bevölkerung der Zellen mittels Pipettenspitzen Tröpfchen mikrofluidischen Geräten um höhere Effizienz der Kapselung von Zellen in Tröpfchen zu bieten.

Eine Pipettenspitze basierte Methode für das Seeding Zellen Tröpfchen mikrofluidischen Plattformen

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll für die Bildung von Lipid Bilayer mit einer Kontakt-Blase Bilayer Methode. Eine Wasser-Blase wird in einem organischen Lösungsmittel, geblasen, wobei eine Monolage an der Wasser-Öl-Grenzfläche gebildet wird. Zwei Pipetten werden manipuliert, um die Luftblasen zu einem Bilayer anzudocken.

Lipid Bilayer Experimente mit Kontakt Blase Bilayer für Patch-reckenden

Weich, nutzen Niederleistungs-biomolekularen Memristoren ähnlicher Zusammensetzung, Struktur und Mechanismen der Bio-Synapsen umschalten. Hier vorgestellten wird ein Protokoll zu montieren und zu charakterisieren, biomolekulare Memristoren aus isolierenden Lipid Bilayer gebildet zwischen Wassertröpfchen in Öl gewonnen. Die Einbeziehung der Spannung aktiviert Alamethicin Peptide Ergebnisse in Memristive ionische Leitfähigkeit durch die Membran.

Montage und Charakterisierung der biomolekularen Memristors bestehend aus Ionenkanal-dotierte Lipidmembranen

Mechanische Kräfte sind wichtig für die Steuerung der Zellmigration. Dieses Protokoll demonstriert die Verwendung von elastischen Hydrogelen, die mit einer Glasmikropipette und einem Mikromanipulator verformt werden können, um Zellen mit einem lokalen Steifigkeitsgradienten zu stimulieren, um Veränderungen in der Zellstruktur und Migration hervorzurufen.

Einzelzelle Durotaxis Assay zur Beurteilung der mechanischen Steuerung der zellulären Bewegung und verwandter Signalereignisse

Dieses Protokoll beschreibt, wie die TIRF-Mikroskopie verwendet werden kann, um einzelne Ionenkanäle zu verfolgen und ihre Aktivität in geträgerten Lipidmembranen zu bestimmen, wodurch das Zusammenspiel zwischen lateraler Membranbewegung und Kanalfunktion definiert wird. Es beschreibt, wie die Membranen vorbereitet, die Daten aufgezeichnet und die Ergebnisse analysiert werden.

Einzelmolekül-Bildgebung der lateralen Mobilität und Ionenkanalaktivität in Lipiddoppelschichten mittels Totalreflexionsfluoreszenzmikroskopie (TIRF)

Die Erforschung des zellulären Verhaltens unter mechanischer Belastung ist entscheidend für Fortschritte in der Zellmechanik und Mechanobiologie. Wir stellen die Fluoreszenz-Mikropipetten-Aspirationstechnik (fMPA) vor, eine neuartige Methode, die kontrollierte mechanische Stimulation mit einer umfassenden Analyse der intrazellulären Signalübertragung in einzelnen Zellen kombiniert. Diese Technik untersucht neue eingehende Studien der Mechanobiologie lebender Zellen.

Fluoreszenz-Mikropipetten-Aspirationsassay zur Untersuchung der Mechanosensorik roter Blutkörperchen

Ein experimentelles Protokoll wird vorgestellt, um Gramicidin-A-dotierte Tröpfchen-Interface-Doppelschichten zusammenzusetzen, elektrisch zu stimulieren und zu analysieren. Lipid-Protein-Struktur-Funktion-Beziehungen werden quantifiziert, indem Veränderungen der Membranfläche, des Ionenflusses und der Einkanal-Leitfähigkeit gemessen und diese Reaktionen auf plastizitätsähnliche Veränderungen der ionischen Leitung in einem von elektrischen Synapsen inspirierten Membranmodell in Beziehung gesetzt...

Lipid-Protein-Membranstruktur-Funktions-Charakterisierung mittels Tropfen-Interface-Doppelschichten

Lernen Sie eine mikropipettenbasierte Methode zur Bildung von Droplet Interface Bilayers zur Untersuchung bakterieller mechanosensitiver Ionenkanäle. Diese Technik ermöglicht präzise mechanische Stimulation und elektrophysiologische Messungen.

Multifunktionale, Mikropipette-basierte Methode für den Einbau und Stimulation der bakteriellen mechanosensitiven Ionenkanäle in Droplet Schnittstelle Bilayers (Video) | JoVE Journal

Multifunktionale, Mikropipette-basierte Methode für den Einbau und Stimulation der bakteriellen mechanosensitiven Ionenkanäle in Droplet Schnittstelle Bilayers

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