Name: Seitenwurzel induzierbaren Systems in Arabidopsis Und Mais (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-14T16:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Lernen Sie das seitliche Wurzel-induzierbare System für Pflanzenbiologie mit Arabidopsis thaliana und Mais. Diese Methode ermöglicht synchronisierte Seitenwurzelbildung durch Hormonbehandlung für zytologische und histologische Analysen.

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Die Autoren danken Davy Opdenacker für die technische Unterstützung und die Fotografie. Wir danken Dr. Annick Bleys herzlich für hilfreiche Vorschläge zur Verbesserung des Manuskripts. Diese Arbeit wurde finanziert durch das Interuniversity Attraction Poles Programme IUAP P7/29 "MARS" des belgischen Föderalen Büros für Wissenschaftspolitik, durch das FWO Grant G027313N und durch die Agentur für Innovation durch Wissenschaft und Technologie, IWT (IR).

1. Arabidopsis LRIS Protocol Hinweis: Der Text bezieht sich auf &quot;klein&quot; oder &quot;groß&quot; angelegten Experimenten. Kleinen Maßstab Versuche, wie Markierungslinie Analyse und histologischen Färbung 6, 14, erfordern nur ein paar Proben. Großversuche, wie die quantitative Echtzeit-qRT-PCR, Mikroarrays 9-11 oder RNA-Sequenzierung, erfordern eine größere Menge von Proben. Als solche wird eine Menge von etwa 1000 Sämlinge pro Probe wurde durch Vanneste et al. 11 verwendet, um Mikroarray nach Wurzelsegment Dissektion durchführen. TAG 1 <ol><li> Sterilisation von Arabidopsis-Samen Hinweis: Wählen Sie eine der folgenden Verfahren für die Saatgut Sterilisation. Einer von ihnen ist geeignet für die nächsten Schritte des Protokolls. Gassterilisation (1.1.2) stellt zwei Hauptvorteile gegenüber Flüssigkeitssterilisation (1.1.1): Es dauert weniger Zeit beim Umgang mit einer großen tauber von Saatgut, weil kein Pipettieren muss für die einzelnen Proben auftreten; und die sterilisierten Samen können für einen längeren Zeitraum gelagert werden. Es erfordert jedoch einen Exsikkator und sorgfältige Handhabung. <ol><li> Flüssigkeitssterilisation <ol><li> Gießen Sie die gewünschte Anzahl von Samen in Mikrozentrifugenröhrchen. Verwenden Sie bis zu 20 mg (~ 800 Samen) in einem 1,5-ml-Röhrchen oder 40 mg (~ 1600 Samen) in einem 2 ml Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> 1 ml 70% Ethanol. Invertieren oder schütteln für 2 min. </li><li> Ersetzen Sie die 70% Ethanol mit 1 ml Sterilisationslösung für 15 min. (Bereiten Sie frische Sterilisationslösung: 3,85 ml Natriumhypochlorit (NaOCl) stock (12%) (ACHTUNG: Dunstabzug), 5 ul Tween 20, bis zu 10 ml mit Wasser Kehren Sie die Röhrchen mehrere Male, um sicherzustellen, dass alle Samen zu kommen. in Kontakt mit der Lösung. </li><li> In einem laminaren Luftstrom Schrank, ersetzen Sie die Sterilisationslösung mit 1 ml sterilem destilliertem Wasser und spülen Sie die Samen 5 mal für 5 Minuten durch wiederholtely Austausch mit 1 ml frischem sterilem destilliertem Wasser. </li></ol></li><li> Gassterilisation <ol><li> Gießen der gewünschten Anzahl von Samen in einem 2 ml Mikrozentrifugenröhrchen. Verwenden Sie einzelne Rohre bei der Arbeit mit mehreren unabhängigen Linien, und ordnen sie in einem Kunststoff-Mikrozentrifugenröhrchen Box oder Halter eröffnet. Wenn die Anzahl von Samen in einem Rohr 500 übersteigt (12,5 mg), unterteilen die Samen in die entsprechende Anzahl von Rohren zur erfolgreichen Sterilisation zu gewährleisten. Stellen Sie sicher, die Kappen der Nachbarrohre einander nicht decken. Zusammenpassen, die Deckel der Kiste auf dem Boden, wie es braucht, um im Exsikkator als auch für die Sterilisation ist. </li><li> Legen Sie die Box in der Schüssel mit einem Exsikkator, zusammen mit einem Becherglas (ACHTUNG: Dunstabzug). </li><li> Füllen Sie das Becherglas mit 100 ml von 12% NaOCl (ACHTUNG: Abzugshaube). Setzen Sie den Deckel auf dem Exsikkator, aber lassen Sie eine kleine Öffnung, wo das Becherglas platziert. </li><li> 3 ml 37% ige Salzsäure (rauchende) (CAUTION: Verwendung Dunstabzug) in das Becherglas durch die kleine Öffnung und der Exsikkator schnell zu schließen. Die Lösung perlt seit einiger Zeit aufgrund von Cl 2 -Gas-Formation. Lassen Sie das System geschlossen O / N (oder zumindest 8 h). </li><li> Entfernen Sie den Deckel des Exsikkator. Nehmen Sie die Box und bedecken Sie es mit dem Deckel, um eine Verunreinigung während des Transports zu vermeiden. </li><li> Legen Sie die Box in einem laminaren Luftstrom Kabinett, entfernen Sie den Deckel und lassen Sie die Samen für etwa 1 h bei RT, um Gas-Release zu ermöglichen. Hinweis: Seeds sicher trocken in geschlossenen Mikrozentrifugenröhrchen bei 4 ° C gelagert werden bis zu 2 Wochen. </li></ol></li></ol></li><li> Laterale Wurzelinduktion in Arabidopsis <ol><li> Seitenwurzel Inhibition (NPA-Behandlung) <ol><li> Vorzubereiten Wachstumsmedium für in-vitro-Wachstum. Das Medium von halber Stärke Murashige und Skoog Salzgemisch 15, 0,1 g / l Myo-Inositol, 10 g / l Saccharose enthält und mit 0,5 gepuffertg / L 2- (N-Morpholino) ethansulfonsäure (MES). </li><li> Passen Sie mit 1 M KOH den pH-Wert auf 5,7. Hinzufügen von 8 g / l von Pflanzengewebe Agar und autoklaviert das Medium für 20 Minuten bei 121 ° C. </li><li> Bereiten Sie eine 25 mM Stammlösung von NPA in Dimethylsulfoxid (DMSO) (ACHTUNG: Verwenden Sie Schutzhandschuhe). In laminarem Luftstrom kühlt man das autoklavierte Medium auf etwa 65 ° C (das ist die Temperatur, bei welcher die Flasche mit der Hand gehalten werden soll), und geben 25 mM NPA-Stammlösung, um eine Endkonzentration von 10 uM NPA erhalten. </li><li> Homogenisierung nach Zugabe durch leichtes Schütteln der Flasche für 10 Sekunden. Gießen Sie 50 ml Medium pro Quadratpetrischale (12 cm x 12 cm). Hinweis: Bei der Großversuch, tragen Sie eine Nylon-Mesh (20 um), um einfache Übertragung zu gewährleisten. Vorbereitung einer Masche (9 cm x 9 cm) zum Autoklavieren (Figur 1A). Wenn autoklaviert das Armierungsgewebe in das Wachstumsmedium mit sterilen Pinzetten (1B). Schieben Sie die Masche in das Wachstumsmedium mit einem sterilized drigalsky sicherstellen, dass es in gutem Kontakt mit dem Wachstumsmedium (1B) ist (ACHTUNG: Arbeiten unter sterilen Bedingungen). </li><li> Die Saat auf den NPA-Platten. Hinweis: Bei einem Großversuch ist geplant, säen 2 dicht und gut ausgerichteten Reihen mit 50 Samen, um die Probenahme zu erleichtern (siehe 1.2.2.3). <ol><li> Im Falle von flüssigen Sterilisation, die Saat auf NPA-Platten mit einer 200 ul-Pipette. Abgeschnitten 3-4 mm von dem Ende der Pipettenspitzen in sterilen Bedingungen (oder vor der Sterilisation der Spitzen), um in der Lage, um die Samen pipettieren sein. Pipette nach oben und unten ein paar Mal, um erneut zu suspendieren die Saat, so pipettieren etwa 150 &amp; mgr; l sterilem Wasser mit 10 - 20 Samen und warten, bis der Samen Sediment am Boden der Spitze. (ACHTUNG: Arbeiten unter sterilen Bedingungen) Hinweis: Beim Berühren der Agar oder die Maschen sanft mit der Spitze, wird ein Wassertropfen mit einem Startkapital von ihm (1C) freigegeben werden. </li> &lt;li&gt; Im Falle der Gassterilisation, die Saat mit autoklaviert toothpicks.Pinch den Zahnstocher in den Agar, bevor die Samen, um eine klebrige Oberfläche zu gewährleisten. Nehmen Sie den Samen einer nach dem anderen mit dem Zahnstocher und verteilen die Samen auf den Platten (1D). Alternativ fügen sterilem Wasser auf den Samen, und säen, wie in 1.2.1.5.1 beschrieben (ACHTUNG: Arbeiten unter sterilen Bedingungen). </li></ol></li><li> Verschließen Sie die Platten mit atmungs Klebeband und speichern sie Platten bei 4 ° C im Dunkeln für mindestens 2 Tage und höchstens eine Woche. Dies ist für die Schichtung und stellt sicher, synchronisiert und effizienter Keimung erforderlich. Anmerkung: Alternativ können Samen vor der Aussaat geschichtet, in destilliertem Wasser in Mikrozentrifugenröhrchen, die weniger Kühlraum benötigt getaucht. In diesem Fall speichern Sie die Röhrchen für mindestens eine Woche bei 4 ° C, und bewegen Sie die Platten auf die Wachstumskammer unmittelbar nach der Aussaat (siehe 1.2.1.7). TAG 3 </li&gt; <li> Bewegen die Platten an der Wachstumskammer (Dauerlicht (110 &amp; mgr; E m -2 s -1), 21 ° C) für 5 Tage (2 Tage der Keimung und 3 Tagen Wachstum) in einer fast vertikalen Position (80 bis 90 °) Wurzelwachstum auf, und nicht in dem Medium zu gewährleisten. TAG 8 </li></ol></li><li> Laterale Wurzelinduktion (NAA Treatment) <ol><li> Bereiten Sie die gleichen Wachstumsmediums, wie in 1.2.1.1 und 1.2.1.2 beschrieben. Bereiten Sie eine 50 mM Stammlösung von NAA in DMSO (ACHTUNG: Verwenden Sie Schutzhandschuhe). Kühlen Sie das autoklavierte Medium auf 65 ° C und fügen NAA Lösung für das Medium, um eine Endkonzentration von 10 &amp; mgr; M zu erhalten NAA (ACHTUNG: Arbeiten unter sterilen Bedingungen). <ol><li> Homogenisierung nach Zugabe durch leichtes Schütteln der Flasche für 10 Sekunden. Gießen Sie 50 ml Medium pro Quadratpetrischale (12 cm x 12 cm). </li></ol></li><li> Übertragen Sie die Sämlinge aus den Platten, die Wachstumsmedium mit 10 &amp; mgr; M NPA ergänzt um jene supgänzt mit 10 uM NAA. <ol><li> Haken Sie die Arme des gebogenen Pinzette unter den Keimblättern des Keimlings und nehmen Sie es vorsichtig von der Platte. Nur übertragen Sämlinge von denen die Wurzeln vollständig in Kontakt mit der NPA-Wachstumsmedium und vorzugsweise nach unten gewachsen. </li><li> Überfliegen die Wurzel über die NAA-enthaltenden Wachstumsmedium Oberfläche über eine kleine Distanz. Stellen Sie sicher, dass die Pflanzenwurzeln sind in gutem Kontakt mit dem Wachstumsmedium. Falls erforderlich, drücken Sie die Wurzel vorsichtig in das Wachstumsmedium Fläche mit der Pinzette. Hinweis: Bei einem Großexperiment, entfernen Sie alle Sämlinge, die in Kontakt mit dem Netz und Übertragung durch Anheben des Mesh an den beiden oberen Ecken mit einer Pinzette nicht. Sicherzustellen, dass die Maschen in guten Kontakt mit dem NAA haltigen Medium durch Abschöpfen des Netzes über die Agaroberfläche über einen kleinen Abstand (1E). </li></ol></li><li> Verschließen Sie die neuen Platten mit atmungsBand und legen Sie sie in der Wachstumskammer (conDauerlicht (110 &amp; mgr; E m -2 s -1), 21 ° C) in einer vertikalen Position für die gewünschte Zeit nach der Induktion bis zur Probenahme. Hinweis: Bei einem Großexperiment, mit einem Skalpell, um die Wurzelsegmente auf einmal direkt auf dem Netz geschnitten und probieren Sie sie durch sanftes Abkratzen der Oberfläche des Netzes. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. LRIS Maize Protocol <ol><li> Schichtung der Maiskörner <ol><li> Maiskörner Inkubieren bei 4 ° C im Dunkeln für mindestens 1 Woche. Hinweis: Dieses Protokoll wurde mit dem B73 Maisinzuchtlinie entwickelt. </li></ol></li><li> Sterilisation von Maiskörnern TAG 1 Anmerkung: Obwohl Maissämlinge müssen nicht unter sterilen Bedingungen gezüchtet werden, wird empfohlen, um die Maiskörner zu sterilisieren und mit Sterilgutes von Pilzwachstum in der Papierrolle zu verhindern,System. <ol><li> Legen Sie die erforderliche Anzahl von Maiskörnern in einem sterilisierten Glasbecher. </li><li> 100 ml Sterilisationslösung (6% NaOCl in Wasser) (ACHTUNG: Abzugshaube). </li><li> Fügen Sie einen Magnetrührstab und das Becherglas auf einem Magnetrührer bei niedriger Rührgeschwindigkeit (ca. 250 UpM) bei Raumtemperatur für 5 min. </li><li> Fünfmal für 5 min gründlich durch Ersetzen der Lösung mit 100 ml frischem sterilem Wasser. </li></ol></li><li> Aussaat Maiskörner <ol><li> Setzen Sie auf Handschuhe, um das Risiko einer Kontamination zu verringern, und nehmen Sie eine Rolle Papiertücher. </li><li> Reißen Sie zwei Strecken der Handtuchpapier mit einer Gesamtlänge von zwei Blätter (ungefähr 92 cm x 24 cm), und legen Sie sie auf der jeweils anderen auf einer sauberen Oberfläche (2A). </li><li> Falten Sie die Blätter zu verdoppeln über die Länge (ungefähr 92 cm x 12 cm) (2A). </li><li> Verwenden einer Pinzette zu 10 Kerne in etwa 2 cm von der Spitze über t verteilener gesamten Länge des Papiers, ohne dabei einen Zwischenraum von 8 cm zwischen jedem Kernel und 8 cm an beiden Enden frei (2B). Sicherstellen, dass die Keimwurzel des Kernels nach unten und in Richtung des Papiers (2B). </li><li> Sanft rollen Sie das Papier über die Länge, während die Samen an Ort und Stelle (2B). Um den Roll zu erleichtern, ist es optional, ersten sprühen Sie das Papier mit sterilem Wasser. </li><li> Setzen Sie die Papierrollen in sterilisierte Glasröhren von ca. 6 cm Durchmesser und 14 cm Höhe (zB 250 ml Zentrifugenröhrchen) und legen Sie sie in einem Rack (2C). </li></ol></li><li> Laterale Wurzelinduktion in Mais <ol><li> Bereiten Sie eine 50 mM NPA-Stammlösung (gelöst in DMSO) (ACHTUNG: Verwenden Sie Schutzhandschuhe). </li><li> Für jedes Rohr, einen 50 uM NPA Lösung durch Zugabe von 125 ul von 50 mM NPA Stammlösung zu 125 ml sterilem Wasser in einem sterilisierten Glasbecher. </li><li> Gut mischen undPour 125 ml der 50 uM NPA-Lösung über der Papierrolle in das Rohr. Die Papierrolle wird die Lösung absorbieren und völlig durchnässt. Hinweis: Bei Verwendung von Papierrollen und Rohre mit anderen Dimensionen, die Lautstärke entsprechend an. Die Flüssigkeit sollte auf halber Strecke das Rohr zu erreichen, um eine ausreichende Aufnahme zu gewährleisten. </li><li> Legen Sie die Papierrollensystem in einer Wachstumskammer für drei Tage (27 ° C, Dauerlicht, 70% relative Luftfeuchtigkeit). Stellen Sie sicher, dass die Papierrollen bleiben Hinzufügen von zusätzlichen 50 uM NPA-Lösung eingeweicht, da die Lösung im Laufe der Zeit (2D) verdampft. TAG 4 </li><li> Bereiten Sie eine 50 mM NAA-Stammlösung (gelöst in DMSO) (ACHTUNG: Verwenden Sie Schutzhandschuhe). </li><li> Für jedes Rohr, bereiten eine 50 uM NAA Lösung durch Zugabe von 125 &amp; mgr; l aus der 50 mM NAA Lager zu 125 ml sterilem Wasser in einem sterilisierten Glasbecher. </li><li> Sanft Großteil der verbleibenden NPA-Lösung von den Papierrollen und legen Sie diem in sterilem Wasser für 5 Minuten, um es zu waschen (ACHTUNG: Verwenden Sie Schutzhandschuhe). Sanft das meiste Wasser aus der Papierrollen. Wiederholen Sie diesen Waschschritt dreimal. </li><li> Gut mischen und gießen Sie die 50 uM NAA-Lösung über die Papierrollen in den Rohren. Sicherstellen, dass sie völlig durchnässt werden. </li><li> Legen Sie die Papierrollensystem in der Wachstumskammer (27 ° C, Dauerlicht, 70% relative Feuchtigkeit) nach der Induktion der gewünschten Dauer. </li></ol></li><li> Laterale Wurzelinduktion in Zufälliges Crown Wurzeln von Mais Hinweis: Die LRIS wie oben beschrieben induziert Seitenwurzeln in der Primärwurzel. Doch in Mais und anderen Monokotyledonen, der primären Wurzel und den embryonalen Samen Wurzeln, zusammen mit ihren Seitenwurzeln, sind während der Keimlingsentwicklung vor allem wichtig. Zu einem späteren Zeitpunkt in das Pflanzenwachstum ergeben sich die post-embryonale Adventivwurzeln auf dem Stamm und zu entwickeln Seitenwurzeln, eine neue Wurzelsystem 16 bilden auch. Die LRIS kann auch nützlich seind, um Seitenwurzeln auf diesen post-embryonale zufällige Krone Wurzeln, indem Sie einige kleinere Anpassungen an der LRIS auf der embryonalen Primärwurzel zu induzieren. <ol><li> Um die Papierrollen zu machen, erstellen Sie ein Sandwich von Papieren mit jeweils zwei Schichten aus Handtuchpapier auf der Außenseite und zwei Lagen Papier Keimung innerhalb. Legen Sie die sterilisiert Kernel (siehe Schritte 2,1 bis 2,2) in zwischen den beiden Platten der Keimung Papier. Keimung Papier, verglichen mit Handtuch Papier, wird weniger anfällig für durch die Wurzelhaare und Seitenwurzeln, die machen die Öffnung der Papierrollen später leichter durchdrungen werden können. Auf der anderen Seite werden die beiden äußeren Schichten Handtuchpapier Absorption der Flüssigkeit zu erleichtern. </li><li> Legen Sie die Brötchen in 700 ml Glasröhrchen und gießen sterilem Wasser ohne NPA über sie. Sicherstellen, dass sie völlig durchnässt werden. </li><li> Keimen die sterilisierten Kerne in der Wachstumskammer (siehe Schritt 2.4.9). </li><li> Wachsen die Setzlinge bis die zufällige Kronenwurzelnbeginnen zu entstehen (6 Tage B73). Sicherstellen, dass die Papierrollen werden nass zu jeder Zeit durch Zugabe von sterilem Wasser, wenn nötig gehalten wird. </li><li> Transfer in ein 25 &amp; mgr; M NPA-Lösung für 4 Tage (siehe Schritte 2.4.1 bis 2.4.4), gefolgt von einem ähnlichen Induktion Seitenwurzel Initiierung durch Ersetzen der NPA-Lösung mit einer 50 &amp; mgr; M NAA Lösung nach einem Waschschritt (siehe Schritt 2.4 0,5 bis 2.4.9). </li></ol></li></ol>

<ol><li>Van Norman, J. M., Xuan, W., Beeckman, T., Benfey, P. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((To+branch+or+not+to+branch%3A+the+role+of+pre-patterning+in+lateral+root+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">To branch or not to branch: the role of pre-patterning in lateral root formation.</a> Development. 140, 4301-4310 (2013).</li>
<li>Dolan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+organisation+of+the+Arabidopsis+thaliana+root%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cellular organisation of the Arabidopsis thaliana root.</a> Development. 119, 71-84 (1993).</li>
<li>Bell, J. K., McCully, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+histological+study+of+lateral+root+initiation+and+development+in+Zea+mays%5BTitle%5D)+AND+%22Protoplasma%22%5BJournal%5D)">A histological study of lateral root initiation and development in Zea mays.</a> Protoplasma. 70, 179-205 (1970).</li>
<li>Benkova, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local%2C+efflux-dependent+auxin+gradients+as+a+common+module+for+plant+organ+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Local, efflux-dependent auxin gradients as a common module for plant organ formation.</a> Cell. 115, 591-602 (2003).</li>
<li>Beeckman, T., Burssens, S., Inzé, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+peri-cell-cycle+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">The peri-cell-cycle in Arabidopsis.</a> J. Exp. Bot. 52, 403-411 (2001).</li>
<li>Himanen, K., Boucheron, E., Vanneste, S., de Almeida Engler, J., Inzé, D., Beeckman, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxin-mediated+cell+cycle+activation+during+early+lateral+root+initiation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Auxin-mediated cell cycle activation during early lateral root initiation.</a> Plant Cell. 14, 2339-2351 (2002).</li>
<li>Jansen, L., Parizot, B., Beeckman, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+system+for+lateral+roots+in+Arabidopsis+thaliana+and+maize%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Inducible system for lateral roots in Arabidopsis thaliana and maize.</a> Methods Mol Biol. 959, 149-158 (2013).</li>
<li>Casimiro, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxin+transport+promotes+Arabidopsis+lateral+root+initiation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Auxin transport promotes Arabidopsis lateral root initiation.</a> Plant Cell. 13, 843-852 (2001).</li>
<li>Himanen, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcript+profiling+of+early+lateral+root+initiation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Transcript profiling of early lateral root initiation.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 101, 5146-5151 (2004).</li>
<li>De Smet, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Receptor-like+kinase+ACR4+restricts+formative+cell+divisions+in+the+Arabidopsis+root%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Receptor-like kinase ACR4 restricts formative cell divisions in the Arabidopsis root.</a> Science. 322, 594-597 (2008).</li>
<li>Vanneste, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+cycle+progression+in+the+pericycle+is+not+sufficient+for+SOLITARY+ROOT%2FIAA14-mediated+lateral+root+initiation+in+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Cell cycle progression in the pericycle is not sufficient for SOLITARY ROOT/IAA14-mediated lateral root initiation in Arabidopsis thaliana.</a> Plant Cell. 17, 3035-3050 (2005).</li>
<li>De Rybel, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+the+root+cap+in+root+branching+revealed+by+the+non-auxin+probe+naxillin%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">A role for the root cap in root branching revealed by the non-auxin probe naxillin.</a> Nat. Chem. Biol. 8, 798-805 (2012).</li>
<li>Jansen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+transcriptomics+as+a+tool+for+the+identification+of+root+branching+genes+in+maize%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Biotechnol.+J%22%5BJournal%5D)">Comparative transcriptomics as a tool for the identification of root branching genes in maize.</a> Plant Biotechnol. J. 11, 1092-1102 (2013).</li>
<li>Parizot, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diarch+symmetry+of+the+vascular+bundle+in+Arabidopsis+root+encompasses+the+pericycle+and+is+reflected+in+distich+lateral+root+initiation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Diarch symmetry of the vascular bundle in Arabidopsis root encompasses the pericycle and is reflected in distich lateral root initiation.</a> Plant Physiol. 146, 140-148 (2008).</li>
<li>Murashige, T., Skoog, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+revised+medium+for+rapid+growth+and+bio+assays+with+tobacco+tissue+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Plant%22%5BJournal%5D)">A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures.</a> Physiol. Plant. 15, 473-497 (1962).</li>
<li>Bellini, C., Pacurar, D. I., Perrone, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adventitious+roots+and+lateral+roots%3A+similarities+and+differences%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">Adventitious roots and lateral roots: similarities and differences.</a> Annu Rev Plant Biol. 65, 639-666 (2014).</li>
<li>Grunewald, W., Parizot, B., Inzé, D., Gheysen, G., Beeckman, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+biology+of+roots%3A+One+common+pathway+for+all+angiosperms%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Plant+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Developmental biology of roots: One common pathway for all angiosperms?</a> Int. J. Plant Dev. Biol. 1, 212-225 (2007).</li>
<li>Parizot, B., Beeckman, T. Genomics of root development. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aParizot%2C+B+%22Root+Genomics+and+Soil+Interactions%22">Root Genomics and Soil Interactions</a>. Crespi, M. , 3-28 (2012).</li>
<li>Bargmann, B. O., Birnbaum, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+activated+cell+sorting+of+plant+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Fluorescence activated cell sorting of plant protoplasts.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2010).</li>
<li>Nakazono, M., Qiu, F., Borsuk, L. A., Schnable, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-capture+microdissection%2C+a+tool+for+the+global+analysis+of+gene+expression+in+specific+plant+cell+types%3A+identification+of+genes+expressed+differentially+in+epidermal+cells+or+vascular+tissues+of+maize%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Laser-capture microdissection, a tool for the global analysis of gene expression in specific plant cell types: identification of genes expressed differentially in epidermal cells or vascular tissues of maize.</a> Plant Cell. 15, 583-596 (2003).</li>
<li>Ludwig, Y., Hochholdinger, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+microdissection+of+plant+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Laser microdissection of plant cells.</a> Methods Mol Biol. 1080, 249-258 (2014).</li>
<li>Beeckman, T., Engler, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+easy+technique+for+the+clearing+of+histochemically+stained+plant+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Mol.+Biol.+Rep%22%5BJournal%5D)">An easy technique for the clearing of histochemically stained plant tissue.</a> Plant Mol. Biol. Rep. 12, 37-42 (1994).</li>
<li>Ditengou, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+induction+of+lateral+root+initiation+in+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Mechanical induction of lateral root initiation in Arabidopsis thaliana.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 105, 18818-18823 (2008).</li>
<li>Lucas, M., Godin, C., Jay-Allemand, C., Laplaze, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxin+fluxes+in+the+root+apex+co-regulate+gravitropism+and+lateral+root+initiation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Bot%22%5BJournal%5D)">Auxin fluxes in the root apex co-regulate gravitropism and lateral root initiation.</a> J. Exp. Bot. 59, 55-66 (2008).</li>
<li>Wang, S., Taketa, S., Ichii, M., Xu, L., Xia, K., Zhou, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lateral+root+formation+in+rice+%28Oryza+Sativa.+L.%29%3A+differential+effects+of+indole-3-acetic+acid+and+indole-3-butyric+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Growth+Regul%22%5BJournal%5D)">Lateral root formation in rice (Oryza Sativa. L.): differential effects of indole-3-acetic acid and indole-3-butyric acid.</a> Plant Growth Regul. 41, 41-47 (2003).</li>
<li>Martinez-de la Cruz, E., Garcia-Ramirez, E., Vazquez-Ramos, J. M., Reyes de la Cruz, H., Lopez-Bucio, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxins+differentially+regulate+root+system+architecture+and+cell+cycle+protein+levels+in+maize+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22J+Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Auxins differentially regulate root system architecture and cell cycle protein levels in maize seedlings.</a> J Plant Physiol. 176, 147-156 (2015).</li>
<li>Beyer, E. M., Morgan, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+ethylene+on+uptake%2C+distribution%2C+and+metabolism+of+indoleacetic+acid-1-14C+and+-2-14C+and+naphthaleneacetic+acid-1-14C%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Effect of ethylene on uptake, distribution, and metabolism of indoleacetic acid-1-14C and -2-14C and naphthaleneacetic acid-1-14C.</a> Plant Physiol. 46, 157-162 (1970).</li>
<li>Delbarre, A., Muller, P., Imhoff, V., Guern, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+mechanisms+controlling+uptake+and+accumulation+of+2%2C4-dichlorophenoxy+acetic+acid%2C+naphthalene-1-acetic+acid%2C+and+indole-3-acetic+acid+in+suspension-cultured+tobacco+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Comparison of mechanisms controlling uptake and accumulation of 2,4-dichlorophenoxy acetic acid, naphthalene-1-acetic acid, and indole-3-acetic acid in suspension-cultured tobacco cells.</a> Planta. 198, 532-541 (1996).</li>
<li>Bailey-Serres, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microgenomics%3A+genome-scale%2C+cell-specific+monitoring+of+multiple+gene+regulation+tiers%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">Microgenomics: genome-scale, cell-specific monitoring of multiple gene regulation tiers.</a> Annu Rev Plant Biol. 64, 293-325 (2013).</li>
<li>Perez-Torres, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphate+availability+alters+lateral+root+development+in+Arabidopsis+by+modulating+auxin+sensitivity+via+a+mechanism+involving+the+TIR1+auxin+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Phosphate availability alters lateral root development in Arabidopsis by modulating auxin sensitivity via a mechanism involving the TIR1 auxin receptor.</a> Plant Cell. 20, 3258-3272 (2008).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Im Arabidopsis LRIS Protokoll ist es wichtig, nur die Keimlinge, die vollständig in Kontakt mit der NPA-enthaltenden Wachstumsmedium gezüchtet wurden übertragen. Dies stellt sicher, daß Seitenwurzelinitiierung über den gesamten Wurzellänge blockiert. Um Verwundung der Pflänzchen bei der Übertragung zu verhindern, können die Arme der Pinzette unter gekrümmte den Kotyledonen der Sämling eingehängt werden. Bei der Übertragung, stellen Sie sicher, dass die Sämling Wurzeln sind in ausreichenden Kontakt mit dem NAA-h...

Das Wurzelsystem ist von entscheidender Bedeutung für das Pflanzenwachstum, da es sicherstellt, Verankerung und die Aufnahme von Wasser und Nährstoffen aus dem Boden. Weil die Expansion eines Wurzelsystem stützt sich hauptsächlich auf die Herstellung von Seitenwurzeln, ihre Einführung und Bildung weitgehend untersucht worden. Seitenwurzeln in einer bestimmten Untergruppe von Perizykel Zellen initiiert, die so genannte Gründerzellen 1. In den meisten Dikotyledonen wie Arabidopsis thaliana, sind diese Zellen an den Protoxylem Polen 2 angeordnet, wohingegen in Monokotyledonen wie Mais, werden sie an den Phloem Pole 3 gefunden. Gründer-Zellen werden durch eine erhöhte Auxin Reaktion 4 markiert, gefolgt von der Expression spezifischer Zellzyklusgene (zB CYCLIN B1; 1 / CYCB1; 1), wonach sie eine erste Serie von asymmetrischen anticlinal Divisionen 5 unterzogen werden. Nach einer Reihe von koordinierten Antiklinale und perikline Divisionen wird ein Seitenwurzel Primordium ausgebildet ist, dass schließlich wird als ein hervorutonomous Seitenwurzeln. Der Ort und Zeitpunkt des Seitenwurzel Initiation sind jedoch nicht vorhersehbar, da diese Ereignisse weder reichlich, noch synchronisiert. Dies erschwert die Verwendung von molekularen Ansätzen wie Transkriptomik, um diesen Prozess zu studieren. Um dies zu bewältigen, wurde ein Seitenwurzel induzierbare System (LRIS) entwickelt worden, 6, 7. In diesem System werden die Sämlinge zuerst mit N-1-Naphthylphthalamidsäure (NPA), der Auxin-Transport und die Akkumulation hemmt folglich blockiert Seitenwurzelinitiations behandelten 8. Durch anschließendes Überführen der Keimling zum Medium, das die synthetischen Auxin 1-Naphthalin Essigsäure (NAA), reagiert die gesamte Perizykel Schicht auf den erhöhten Auxin Ebenen dadurch massiv Induktionsseitenwurzel Einleitung Zellteilungen 6. Als solche führt dieses System, um schnelle, synchrone und umfangreiche Seitenwurzeln Einweihungen, was eine einfache Sammlung von Wurzelproben für eine bestimmte Stufe der späten angereichertral Wurzelentwicklung. Anschließend kann diese Proben verwendet werden, um genomweite Expressionsprofile während der seitlichen Wurzelbildung zu bestimmen. Die LRIS hat bereits bedeutende Wissen über Seitenwurzel Einleitung in Arabidopsis und Mais 9-13, aber die Notwendigkeit ergab, dieses System auf andere Pflanzenarten gelten wird noch deutlicher, da mehr Genome sequenziert werden, und es gibt ein wachsendes Interesse an Wissen, um wirtschaftliche Bedeutung zu übertragen Spezies. Hier werden die detaillierten Protokolle des Arabidopsis und Mais LRISs angegeben. Als nächstes wird ein Beispiel für die Verwendung des Systems vorgesehen ist, die darstellt, wie Transkriptomik Daten aus dem Mais LRIS gewonnen kann verwendet werden, um funktionelle Homologe, die eine konservierte Funktion während der seitlichen Wurzel Einleitung in verschiedenen Pflanzenarten zu identifizieren. Schließlich Richtlinien, um die LRIS Optimierung für andere Pflanzenarten vorgeschlagen.

<table><tbody><tr><td>ARABIDOPSIS LRIS</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saatgut</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arabidopsis Saatgut</td><td></td><td></td><td>Col-0 ecotype</td></tr><tr><td>Gassterilisation von Saatgut</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikrozentrifugenröhrchen 1,5 ml</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>0030 125.215</td><td>Eppendorf Mikroröhrchen 3810X, PCR clean</td></tr><tr><td>Mikrozentrifugenröhrchen 2 ml</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>0030 120.094</td><td>Eppendorf Safe-Lock Mikrozentrifugenröhrchen</td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Merck KGaA</td><td>1,003,171,000</td><td>37% (Rauch) für die Analyse EMSURE ACS,ISO,Reag. Ph Eu</td></tr><tr><td>Glasexsikkator</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td></td><td>Pyrex</td></tr><tr><td>Glasbecher</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kunststoff Mikrozentrifugenröhrchen Box oder Halter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><stark>Bleiche Sterilisation von Saatgut</stark></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Chem-Lab nv</td><td>CL00.0505.1000</td><td>Ethanol, abs. 100% a.r. verdünnt auf 70%</td></tr><tr><td>Natriumhypochlorit (NaOCl)</td><td>Carl Roth</td><td>9062.3</td><td>12%</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>P1379</td><td></td></tr><tr><td>steriles Wasser</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><stark>Wachstumsmedium</stark></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Salzgemisch</td><td>DUCHEFA Biochemie B.V.</td><td>M0221-0050</td><td></td></tr><tr><td>Myo-Inositol</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>I5125-100G</td><td></td></tr><tr><td>2-(N-morpholino)ethansulfonsäure (MES)</td><td>DUCHEFA Biochemie B.V.</td><td>M1503.0100</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>VWR, International LLC</td><td>27483.294</td><td>D(+)-Saccharose Ph. Eur.</td></tr><tr><td>KOH</td><td>Merck KGaA</td><td>1050211000</td><td>Pellets für die Analyse (max. 0,002% Na) EMSURE ACS,ISO,Reag. Ph Eur</td></tr><tr><td>Plant Tissue Culture Agar</td><td>LabM Limited</td><td>MC029</td><td></td></tr><tr><td>Laterale Wurzelinduktionschemikalien</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>N-1-naphthylphthalamsäure (NPA)</td><td>DUCHEFA Biochemie B.V.</td><td>Nr. N0926.0250</td><td>10 &micro; M (Arabidopsis)</td></tr><tr><td>1-Naphthalinessigsäure (NAA)</td><td>DUCHEFA Biochemie B.V.</td><td>Nr. N0903.0050</td><td>10 &micro; M (Arabidopsis)</td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxid (DMSO)</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>494429-1L</td><td></td></tr><tr><td>Herstellung eines Netzes für Transfer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nylon-Mesh</td><td>Prosep byba</td><td></td><td>Synthetisches Nylon-Mesh 20 & micro; m</td></tr><tr><td>Aussaat und Setzlingshandling</stark>quadratische Petrischalenplatten</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td>GOSSELIN</td><td>BP124-05</td><td>12 x 12 cm</td></tr><tr><td>50 ml DURAN Röhrchen</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>CLS430304</td><td>Corning&nbsp; 50 ml Zentrifugenröhrchen</td></tr><tr><td>drigalski</td><td>Carl Roth</td><td>K732.1</td><td></td></tr><tr><td>Pipette</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>geschnittene Pipettenspitzen</td><td>Daslab</td><td>162001X</td><td>Universal 200, 5 mm Spitze vor dem Autoklavieren abschneiden</td></tr><tr><td>atmungsaktives Klebeband&nbsp;</td><td>3M Deutschland GmbH</td><td>Kat.-Nr. 1530-1</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette</td><td>Fiers nv/sa</td><td>K342.1; K344.1</td><td>Dumont Pinzette Typ A Nr. 5; Dumont Pinzette Typ e Nr 7</td></tr><tr><td><stark>Wachstumsbedingungen</stark></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wuchs Raum</td><td></td><td></td><td>21 > C, continuous light</td></tr><tr><td>Materials</td><td>Company</td><td>Katalog<</td><td>>Kommentare</td></tr><tr><td>MAIZE LRIS</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saatgut</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Maiskörner</td><td></td><td></td><td>B-73</td></tr><tr><td><stark>Bleichsterilisation von Kernen</stark></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glasbecher</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>Magnetrührer&nbsp;</td><td>Fiers nv/sa</td><td>C267.1</td><td></td></tr><tr><td>Natriumhypochlorit (NaOCl)</td><td>Carl Roth</td><td>9062.3</td><td>12%</td></tr><tr><td>steriles Wasser</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><stark>Lateralwurzelinduktionschemikalien</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>N-1-naphthylphthalamsäure (NPA)</td><td>DUCHEFA Biochemie B.V.</td><td>Nr. N0926.0250</td><td>50 &micro; M (Mais-Primärwurzel), 25 & Mikro; M (Adventituswurzel Mais)</td></tr><tr><td>1-Naphthalinessigsäure (NAA)</td><td>DUCHEFA Biochemie B.V.</td><td>Nr. N0903.0050</td><td>50 &micro; M (Mais)</td></tr><tr><td>Dimethylsulfoxid (DMSO)</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>494429-1L</td><td></td></tr><tr><td>Aussaat und Sämlingshandhabung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Papierhandtücher</td><td>Kimberly-Clark Professional*</td><td>6681</td><td>SCOTT Handtücher - Rolle / Weiß; Blattformat (24 x 46 cm)</td></tr><tr><td>Saatgutkeimpapier</td><td>Anchor Paper Company</td><td></td><td>10 X 15 38# Saatgutkeimpapier</td></tr><tr><td>Pinzette</td><td>Fiers nv/sa</td><td>K342.1; K344.1</td><td>Dumont Pinzette Typ A Nr. 5; Dumont Pinzette Typ e nr 7</td></tr><tr><td>250 ml (Zentrifuge) Röhrchen</td><td>SCHOTT DURAN</td><td>2160136</td><td>ca. 5,6 cm Durchmesser und 14,7 cm Höhe&nbsp;</td></tr><tr><td>700 ml Röhrchen</td><td>DURAN GROUP</td><td>213994609</td><td>Zylinder, Rundfußrohr, D 60&nbsp; x 250</td></tr><tr><td>Gestell</td><td></td><td></td><td>für Maisrohre, hausgemachtes</td></tr><tr><td>steriles Wasser</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><stark>Wachstumsbedingungen</stark></td><td></td><td></td><td></td></tr>Wachstum <tr><td>Schrank</td><td></td><td></td><td>27 &/Grad; C, Dauerlicht, 70% relative Luftfeuchtigkeit</td></tr></tbody></table>

seitenwurzel induzierbaren systems in<em&gt; arabidopsis</em&gt; und mais

Lateral Root Inducible System in Arabidopsis and Maize

Die seitliche Wurzelentwicklung trägt wesentlich zum Wurzelsystem bei und ist daher entscheidend für das Pflanzenwachstum. Die Untersuchung der lateralen Wurzelinitiierung ist jedoch mühsam, da sie nur in wenigen Zellen innerhalb der Wurzel und auf unvorhersehbare Weise stattfindet. Um dieses Problem zu umgehen, wurde ein Lateral Root Inducible System (LRIS) entwickelt. Durch die nachfolgende Behandlung der Sämlinge mit einem Auxin-Transporthemmer und einem synthetischen Auxin erfolgt eine hochgradig kontrollierte laterale Wurzelinitiierung synchron in der Primärwurzel, was eine reichliche Beprobung eines gewünschten Entwicklungsstadiums ermöglicht. Das LRIS wurde zunächst für Arabidopsis thaliana entwickelt, kann aber auch auf andere Pflanzen angewendet werden. Dementsprechend wurde es für den Einsatz in Mais (Zea mays) angepasst. Es wird ein detaillierter Überblick über die verschiedenen Schritte des LRIS in beiden Werken gegeben. Die Kombination dieses Systems mit vergleichender Transkriptomik ermöglichte es, funktionelle Homologe von Arabidopsis-lateralen Wurzelinitiationsgenen in anderen Spezies zu identifizieren, wie hier für das CYCLIN B1 dargestellt; 1 (CYCB1; 1) Zellzyklus-Gen in Mais. Abschließend werden die Grundsätze diskutiert, die bei der Entwicklung eines LRIS für andere Pflanzenarten zu berücksichtigen sind.

Anwendung des LRIS um des Seitenwurzel Initiation Prozess durchzuführen Vergleichs Transcriptomics Eine Anwendung der LRIS ist der Vergleich und die Korrelation von Genexpressionsprofilen in seitlichen Wurzelbildung in verschiedenen Arten. Vergleichende Transkriptomik nähert schaffen die Möglichkeit, orthologen Genen in der lateralen Wurzelentwicklung in verschiedenen Spezies beteiligt lokalisieren. Seitenwurz...

Das Lateral Root Inducible System (LRIS) ermöglicht die synchrone Induktion von Seitenwurzeln und wird für Arabidopsis thaliana und Mais vorgestellt.

Seitenwurzel induzierbaren Systems in<em&gt; Arabidopsis</em&gt; Und Mais

Lateral root development contributes significantly to the root system, and hence is crucial for plant growth. The study of lateral root initiation is ...

Das übergeordnete Ziel des induzierbaren Systems für Seitenwurzeln besteht darin, die Initiierung von Seitenwurzeln bei Pflanzen mithilfe von Hormonbehandlungen synchron auszulösen. Pflanzenwurzeln sind verborgen und gelten als äußerst schwer zu untersuchen. Wir haben ein In-vitro-System entwickelt, das es ermöglicht, den Prozess der Initiierung von Seitenwurzeln auf zytologischer, histologischer und molekularer Ebene zu untersuchen.Im Allgemeinen könnten Wissenschaftler, die neu in dieser Methode sind, Schwierigkeiten haben, da die Pflanzen möglicherweise noch keinen ausreichenden Kontakt mit dem Medium hergestellt haben, was eine homogene Induktion der Seitenwurzeln verhindert. Eine visuelle Demonstration dieser Methode hilft dabei, die kritischen Schritte aufzuzeigen, die berücksichtigt werden sollten, um eine homogene Induktion sicherzustellen. Obwohl dieses System ursprünglich an der kleinen Pflanze Arabidopsis entwickelt wurde, kann es auch auf andere Systeme wie Mais, Reis oder Gerste angewendet werden.Beginnen Sie damit, ein 20-Mikrometer-Nylonnetz mit einer sterilen Pinzette auf das mit NPA angereicherte Wachstumsmedium aufzubringen. Drücken Sie das Netz vorsichtig mit einem Drigalski auf das Wachstumsmedium, um sicherzustellen, dass es gut mit dem Medium in Kontakt steht. Danach stechen Sie einen sterilen Holzspatel in den Agar, um eine klebrige Oberfläche am Spatel zu erzeugen.Verwenden Sie den Zahnstocher, um eine Charge gassterilisierter Samen gleichmäßig auf die vorbereiteten Platten zu verteilen. Verschließen Sie die Platten mit atmungsaktivem Klebeband und lagern Sie sie mindestens zwei Tage und maximal eine Woche bei vier Grad Celsius im Dunkeln. Dies ist zur Stratifikation erforderlich und gewährleistet eine synchronisierte und effiziente Keimung.Am dritten Tag die Platten für zwei Tage zur Keimung und anschließend für drei Tage zum Wachsen in den Wachstumsraum bringen, wobei ein Winkel von 80 bis 90 Grad eingehalten werden sollte. Am achten Tag die Wurzeln identifizieren, die vollständig in Kontakt mit dem Netz gewachsen sind, sowie umgekehrt die Wurzeln, die nicht in Kontakt mit dem Netz stehen. Alle Keimlinge entfernen, deren Wurzeln nicht mit dem Netz in Kontakt sind.Überführen Sie die Sämlinge enthaltende Netzstrukturen auf Platten, die mit 10 Mikromolar NAA ergänzt wurden. Sobald sie auf der Platte liegen, streichen Sie das Netz bei Bedarf leicht über die Oberfläche des Mediums, um sicherzustellen, dass guter Kontakt mit dem Wachstumsmedium besteht. Um eine homogene Induktion in allen Sämlingen sicherzustellen, ist es wichtig, die Sämlinge zu verwerfen, die auf dem mit NPA ergänzten Medium nicht in Kontakt mit dem Netz gewachsen sind, und das Netz bei Bedarf auf dem mit NAA ergänzten Medium ordnungsgemäß abzustreifen.Versiegeln Sie die neuen Platten mit atmungsaktiver Folie und stellen Sie sie für die gewünschte Zeit nach der Induktion in senkrechter Position in den Wachstumsraum. Wenn die Proben gesammelt werden sollen, schneiden Sie die Wurzelsegmente mit einem Skalpell auf einmal direkt auf dem Netz durch und nehmen Sie sie auf, indem Sie vorsichtig die Oberfläche des Netzes abstreifen. Im Folgenden zeigen wir einige Schritte des induzierbaren Systems für Seitenwurzeln bei Mais.Beginnen Sie mit der Sterilisation der Maiskörner, indem Sie die erforderliche Anzahl Körner in einen sterilen Glasbecher geben. Fügen Sie dann 100 Milliliter einer 6%igen Natriumhypochlorit-Lösung in Wasser zum Becher hinzu und geben Sie einen magnetischen Rührstab dazu. Stellen Sie den Becher auf einen magnetischen Rührer und rühren Sie fünf Minuten lang bei Raumtemperatur mit geringer Geschwindigkeit um.Entfernen Sie die Bleichlösung vorsichtig. Ersetzen Sie sie durch 100 Milliliter frisches steriles Wasser und spülen Sie die Samen für fünf Minuten. Wiederholen Sie diesen Schritt fünfmal.Ziehen Sie ein Paar Handschuhe an und reißen Sie zwei Streifen Küchenpapier ab, die Sie übereinander auf eine saubere Oberfläche legen. Anschließend falten Sie die Blätter entlang der Länge doppelt. Verteilen Sie mithilfe einer Pinzette 10 Kerne in einem Abstand von etwa zwei Zentimetern vom oberen Rand entlang der gesamten Länge des Papiers, wobei zwischen den Kernen jeweils ein Abstand von acht Zentimetern eingehalten wird und an beiden Enden jeweils acht Zentimeter frei bleiben.Stellen Sie sicher, dass der Keimling des Samens nach unten und in Richtung des Papiers zeigt. Rollen Sie das Papier vorsichtig entlang der Länge auf, während Sie die Samen an ihrem Platz halten. Das Besprühen des Papiers mit steriler Wasser kann diesen Schritt erforderlichenfalls erleichtern.Legen Sie die Rollen in sterilisierte Glasröhrchen und fügen Sie zusätzliche Röhrchen in den Halter ein. Gießen Sie 125 Milliliter einer 50-Mikromolar-NPA-Lösung über die Papierrolle im Röhrchen. Die Papierrolle nimmt die Lösung auf und wird vollständig durchtränkt.Stellen Sie das Papierrollensystem drei Tage lang in einen Wachstumsschrank. Achten Sie darauf, dass die Papierrollen während der Inkubation durch Zugabe zusätzlicher NPA-Lösung nach Bedarf weiterhin durchfeuchtet bleiben. Um eine homogene Induktion der Seitenwurzelbildung sicherzustellen, ist es wichtig zu überprüfen, dass die Papierrollen in der NPA-Lösung feucht gehalten werden, die Wurzeln jedoch nicht direkt in der Flüssigkeit selbst liegen.Nach drei Tagen auf NPA weist der Maiskeimling einen kleinen Spross und eine Wurzel von etwa zwei bis drei Zentimetern Länge auf. Am vierten Tag drücken Sie vorsichtig die restliche NPA-Lösung aus den Papierrollen heraus und legen die Rollen in sterilem Wasser ein, bis sie gesättigt sind. Nach etwa fünf Minuten drücken Sie das meiste Wasser vorsichtig aus den Papierrollen heraus.Wiederholen Sie den Waschschritt dreimal. Nach dem letzten Spülgang drücken Sie das meiste Wasser heraus und legen das Papier zurück in das Röhrchen. Gießen Sie eine 50 µM Lösung von NAA über die Papierrollen in den Röhrchen, bis diese vollständig durchtränkt sind.Danach das Papierrollensystem für die gewünschte Dauer nach der Induktion in den Wachstumsschrank stellen. Im Vergleich zu Keimlingen der Oxin-Antwort-Markerlinie pDR5-GUS, die nicht auf NAA gezüchtet wurden oder eine Stunde lang auf NAA gewachsen sind, zeigen Keimlinge, die zwei Stunden lang auf NAA gezüchtet wurden, eine Oxin-Antwort, die eines der ersten Ereignisse ist, die die Initiation von Seitenwurzeln auslösen. Diese Teilungen beginnen sich ab etwa zwei Stunden ausgehend von der Spitze nach oben zu bewegen und nehmen mit verlängerter Exposition gegenüber NAA zu.Mit der Zellzyklus-Marker-Linie pCYCB1;1-Gus sind die ersten Zellteilungen, die zur Bildung lateraler Wurzeln führen, etwa sechs Stunden nach Beginn der NAA-Behandlung sichtbar. Mikroarrays und quantitative RT-PCR können verwendet werden, um die Expression verschiedener Gene in den unterschiedlichen Bereichen der Wurzeln von Arabidopsis und Mais während der Induktion lateraler Wurzeln zu bewerten. Sowohl bei Arabidopsis als auch beim Mais führen die induzierten Teilungen bei längerem Wachstum der Pflanzen zur Entwicklung und zum Wachstum lateraler Wurzeln.Als Machbarkeitsnachweis für das System an Mais hier Keimlinge, die unter verschiedenen Bedingungen zur Vergleichbarkeit gezüchtet wurden. Keimlinge, die 10 Tage lang auf Wasser gezüchtet wurden, weisen Seitenwurzeln auf, die nicht synchron initiiert wurden und entlang der Achse weit auseinanderliegen. Keimlinge, die 10 Tage lang auf NPA gezüchtet wurden, enthalten überhaupt keine Seitenwurzeln.Keimlinge, die drei Tage auf NPA gezüchtet und anschließend mit NAA behandelt wurden, zeigen eine massive und synchronisierte Induktion von Seitenwurzeln. In diesem Video haben wir Ihnen gezeigt, wie man ein induzierbares System für Seitenwurzeln einrichtet, das sich bei der Entdeckung grundlegender neuer Erkenntnisse zum Wurzelverzweigungsprozess als äußerst wichtig erwiesen hat. Wir haben Ihnen gezeigt, wie es bei Arabidopsis und Mais funktioniert, doch lässt es sich problemlos auf andere gewünschte Pflanzenarten anpassen.Viel Glück.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Wir präsentieren die Prozedur, um eine Samenschale Bettwäsche-Assay (Pressluftatmer) aus Arabidopsis thaliana Samen zusammenzubauen. Der Pressluftatmer wurde gezeigt, dass ein leistungsfähiges Werkzeug, um genetisch und in vitro zu erforschen, wie die Kontrollen Endosperm die Keimung der Samen in ruhenden Samen und in Reaktion auf Licht Cues. Das Atemschutzgerät ist prinzipiell anwendbar unter jeder Situation, in der Mehlkörper wird vermutet, um embryonale Wachstum beeinflussen.

Ein Mantel Bettwäsche Seed-Test zur Genetisch erkunden<em&gt; In-vitro-</em&gt; Wie das Endosperm Kontrollen Keimung der Samen in<em&gt; Arabidopsis thaliana</em

Ein Doppelstrang-RNA-Interferenz (dsRNAi)-Technik wird eingesetzt, um nach unten zu regulieren den Mais Cinnamoyl Coenzym A-Reduktase (ZmCCR1)-Gen zu niedrigeren Pflanzen Ligningehalt. Lignin Down-Regulation aus der Zellwand wird durch mikroskopische Analysen visualisiert und durch die Klason Verfahren quantifiziert. Änderungen der Zusammensetzung in kristalliner Cellulose und Hemicellulose werden analysiert.

Lignin Herunterregulierung<em&gt; Zea mays</em&gt; Über dsRNAi und Klason Lignin Analyse

Viele entwicklungsrelevante Gene haben zell- oder gewebespezifische Expressionsmuster. In dieser Arbeit werden LM-RNA-seq-Experimente zur Identifizierung von Genen beschrieben, die an der Grenze zwischen Maisblatt, Blatt, Scheide und in lg1-R-Mutanten im Vergleich zum Wildtyp unterschiedlich exprimiert werden. Die hier diskutierten experimentellen Überlegungen gelten für transkriptomische Analysen anderer Entwicklungsphänomene.

Experimentelles Design für Laser Mikrodissektion RNA-Seq: Lehren aus einer Analyse von Maisblattentwicklung

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Die Übersetzung der Ribosomenaffinitätsreinigung (TRAP) bietet die Möglichkeit, Entwicklungsprogramme mit minimaler Verarbeitung von Organen und Geweben zu sezieren. Das Protokoll liefert hochwertige RNA aus Zellen, die mit einem grünen fluoreszierenden Protein (GFP)-markierten ribosomalen Untereinheit begezielt sind. Nachgeschaltete Analysewerkzeuge wie qRT-PCR oder RNA-seq zeigen Gewebe- und zelltypspezifische Expressionsprofile auf.

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