Name: Echokardiographische Ansätze und Protokolle für die umfassende phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-14T12:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 12 s
Description: Lernen Sie die Echokardiographie zur umfassenden phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht die nichtinvasive Bewertung kardialer und valvulärer Funktion.

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Einleitung der Narkose Proper Einleitung und Aufrechterhaltung einer Narkose ist entscheidend für die genaue Beurteilung der Veränderungen der Herzventil und Herzfunktion in Mäusen. Angesichts der raschen Einleitung der Narkose, ausgelöst durch Isofluran und der relativ langen Wash-out-Zeit dieses Anästhetikum folgende tiefe Narkose, wir haben keine Stand-alone-Anästhesie Kammer zur Induktion verwenden. Stattdessen, wie oben im Detail erwähnt, Tiere werden direkt an die Anästhe...

Altern ist mit einem progressiven Anstieg der kardiovaskulären Kalzifizierung 1 verbunden. Hämodynamisch signifikante Aortenklappenstenose betrifft 3% der Bevölkerung im Alter von über 65 2, und bei Patienten mit noch moderaten Aortenklappenstenose (Spitzengeschwindigkeit von 3-4 m / s) haben eine 5 - jährige ereignisfreies Überleben von weniger als 40% 3. Derzeit gibt es keine wirksame Behandlung das Fortschreiten der Aortenklappe Verkalkung zu verlangsamen, und chirurgische Ersatz der Aortenklappe ist die einzige verfügbare Behandlung für fortgeschrittenen Aortenklappenstenose 4. Ziel Studien an ein tieferes Verständnis der Mechanismen zu gewinnen, die für die Initiierung und Progression der Aortenklappe Verkalkung beitragen , sind ein wichtiger erster Schritt in pharmakologischen und nicht-chirurgische Verfahren bewegt sich in Richtung Aortenklappenstenose 5, 6 zu verwalten. genetischly-veränderten Mäusen haben eine wichtige Rolle gespielt , unser Verständnis der Mechanismen zu entwickeln , die zu einer Vielzahl von Krankheiten beitragen und 6 die Biologie der Aortenklappenstenose Ziel in den Vordergrund kommen jetzt von mechanistischen Studien zu verstehen, 7, 8. Im Gegensatz zu anderen kardiovaskulären Erkrankungen wie Atherosklerose und Herzinsuffizienz-wo Standardprotokolle zur Auswertung Gefäß- und Herzfunktion zum größten Teil sind gut etablierte-gibt es einzigartige Herausforderungen im Zusammenhang mit der in vivo Phänotypisierung von Herzklappenfunktion bei Mäusen. Während die jüngsten Bewertungen gründliche Diskussionen über die Vor- und Nachteile auf zahlreiche Bildgebung und invasive Modalitäten zur Verfügung gestellt haben verwendet , um Ventilfunktion bei Nagern 9, 10, 11, bisher beurteilen zu können , sind wir von einer Veröffentlichung nicht bewusst , dass ein umfas bietetsendes, Schritt-für-Schritt-Protokoll für in Mäusen Ventilfunktion Phänotypisierung Herz. Der Zweck dieses Manuskripts ist, die Verfahren und Protokolle beschreiben Herzklappenfunktion in Mäusen Phänotyp auf. Alle Methoden und Verfahren wurden von der Mayo Clinic Institutional Animal Care und Use Committee genehmigt. Schlüsselkomponenten dieses Protokolls umfassen, die Tiefe der Anästhesie, die Bewertung der Herzfunktion und die Bewertung der Herzklappenfunktion. Wir hoffen, dass dieser Bericht nicht nur dazu dienen, die Ermittler zu führen Interesse in der Forschung auf dem Gebiet der Herzklappenerkrankungen zu verfolgen, sondern auch einen nationalen und internationalen Dialog zu Protokoll Normung starten Datenreproduzierbarkeit und Gültigkeit in diesem schnell wachsenden Markt zu gewährleisten. Wichtig erfordert eine gute Kenntnis der Grundsätze der Sonographie (allgemein und Terminologie in Sonografie), erfolgreiche Abbildung hochauflösenden Ultraschallsysteme verwenden, um ein Verständnis der grundlegenden principles der kardialen Physiologie und umfangreiche Erfahrung mit Sonographie eine präzise und zeitspar Beurteilung der Herzfunktion bei Nagetieren zu ermöglichen.

<table><tbody><tr><td>Hochauflösendes Ultraschallgerät</td><td>VisualSonics, Fujifilm</td><td>Vevo 2100&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran-Diffusor (in der Lage, 1 % bis 1,5 % Isofluran gemischt mit 1 L/min 100 % O2</td><td>VisualSonics, Fujifilm</td><td>N/A-Schallköpfe</td><td></td></tr><tr><td>für kleine Mäuse (550D) oder größere Mäuse (400) zu liefernMicroScan</td><td>, VisualSonics, Fujifilm</td><td>MS 550D, MS 400</td><td></td></tr><tr><td>Tierplattform</td><td>VisualSonics, Fujifilm</td><td>11503</td><td></td></tr><tr><td>Fortschrittliche physiologische Überwachungseinheit</td><td>VisualSonics, Fujifilm</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Terrell</td><td>NDC 66794-019-10</td><td></td></tr><tr><td>Nasenkonus und Schlauch verbunden mit Isofluran-Diffusor und 100% O2</td><td>Custom Engineered in-house</td> <td>-</td><td></td></tr> <tr><td>Haarrasierer</td><td>Andis Super AGR+ Tierarzt-Clipper</td><td>AD65340</td><td></td></tr><tr><td>Ultraschallgel</td><td>Parker Laboratories</td><td>REF 01-08</td><td></td></tr><tr><td>Elektroden-Gel&nbsp;</td><td>Parker Laboratories</td><td>REF 15-25</td><td></td></tr><tr><td>Klebebänder</td><td>Fisher Laboratories</td><td>1590120B</td><td></td></tr><tr><td>Papierhandtücher</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

echokardiographische ansätze und protokolle für die umfassende phänotypischen charakterisierung von herzklappenerkrankungen bei mäusen

Echocardiographic Approaches and Protocols for Comprehensive Phenotypic Characterization of Valvular Heart Disease in Mice

Das Ziel dieses Manuskripts und des begleitenden Videos ist es, einen Überblick über die Methoden und Ansätze zu geben, die zur Bildgebung der Herzklappenfunktion bei Nagetieren verwendet werden, mit detaillierten Beschreibungen der geeigneten Methoden für die Anästhesie, der verwendeten echokardiographischen Fenster, der bildgebenden Ebenen und Sondenausrichtungen für die Bildaufnahme, der Methoden zur Datenanalyse und der Grenzen neuer Technologien zur Bewertung der Herz- und Klappenfunktion. Wichtig ist, dass wir auch mehrere zukünftige Forschungsbereiche in der Herz- und Herzklappenbildgebung hervorheben, die genutzt werden können, um Einblicke in die Pathogenese von Klappenerkrankungen in präklinischen Tiermodellen zu gewinnen. Wir schlagen vor, dass ein systematischer Ansatz zur Bewertung der Herz- und Herzklappenfunktion bei Mäusen zu robusteren und reproduzierbareren Daten führen und die Entdeckung bisher unterschätzter Phänotypen bei genetisch veränderten und/oder physiologisch gestressten Mäusen erleichtern kann.

Beispiele von Bildern, die aus tierischen Herzultraschallbildgebungs routinemßig erhalten werden, werden in diesem Manuskript enthalten. Eine Abbildung der Wandler Platzierung auf der Brust des Tieres vorgesehen ist, dem Leser ein klares Verständnis davon zu geben, wo der Wandler positioniert ist, um die Bilder zu erhalten, wie beschrieben. Eine Fotografie des Ultraschalllaboraufbau ist auch, vor allem der Wandler Ultraschall soll die Bedeutung der richtigen Ausrüstung zu betonen, verwen...

Dieses Protokoll bietet eine detaillierte Beschreibung des echokardiographischen Ansatzes für eine umfassende Phänotypisierung der Herz- und Herzklappenfunktion bei Mäusen.

Echokardiographische Ansätze und Protokolle für die umfassende phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen

The aim of this manuscript and accompanying video is to provide an overview of the methods and approaches used for imaging heart valve function in ...

Das übergeordnete Ziel dieses Echoprotokolls ist es, Methoden und Ansätze zu zeigen, die zur Abbildung der Herzklappenfunktion bei Nagetieren verwendet werden. Die Methoden, die wir Ihnen heute vorstellen, können Schlüsselfragen auf dem Gebiet der Herzerkrankungen beantworten, wobei ein besonderer Schwerpunkt auf der Bewertung des Herzens als integrierte Einheit unter den Bedingungen von Herzklappenerkrankungen liegt. Die Auswirkungen dieses Ansatzes auf das Gebiet der Herzklappenerkrankungen sind tiefgreifend, da die umfassende echokardiographische Bewertung des Herzens nicht nur die Erkennung von Herzklappenfunktionsstörungen bei mehreren Herzklappen ermöglicht, sondern es den Forschern auch ermöglicht, das komplexe Zusammenspiel zwischen der Herzfunktion und verschiedenen Messungen der Herzklappenfunktion zu verstehen.Obwohl diese Methode zur Charakterisierung von Tiermodellen genutzt werden kann, in denen eine Herzklappenerkrankung unser primärer Defekt ist, kann sie auch auf andere Systeme angewendet werden, bei denen eine Herzklappenfunktionsstörung sekundär zu anderen Beleidigungen wie Herzinsuffizienz oder einem thorakalen Aortenaneurysma auftreten kann. Daher ist es unsere Empfehlung, dass in den meisten Forschungsstudien routinemäßig eine umfassende Herz- und Herzklappen-Phänotypisierung durchgeführt werden sollte. Wir hatten die Idee, unseren Ansatz für eine umfassende Herz- und Herzklappen-Phänotypisierung zu filmen, nachdem wir an einer Reihe von Meetings teilgenommen hatten, bei denen es eine tiefgreifende Variabilität in den Methoden und Protokollen gab, die zur Beurteilung der Herzklappenfunktion verwendet wurden.Wir hoffen, dass dieses Manuskript und das begleitende Video eine Diskussion in der Praxis über die besten Methoden und Standards anregt, die letztendlich mit den jüngsten Initiativen der National Institutes of Health zur Verbesserung der Genauigkeit und Reproduzierbarkeit von Forschungsstudien übereinstimmen. Der Hauptvorteil der Echokardiographie besteht darin, dass sie in der Lage ist, die Morphologie und Funktion des Herzens in Echtzeit nichtinvasiv zu beurteilen. Es ist einfach durchzuführen und kann seriell ausgeführt werden.Daher ist es am besten für serielle Follow-up-Studien geeignet. Im Allgemeinen werden Personen, die neu in der Bildgebung von Herz- und Herzklappen sind, aufgrund logistischer Herausforderungen im Zusammenhang mit der Verabreichung und Titration der Anästhesie sowie der technischen Herausforderungen im Zusammenhang mit den sehr kleinen anatomischen Fenstern, die für die Echokardiographie verwendet werden können, und der Notwendigkeit, kardiale Strukturen und Sondenausrichtungen während der Bildgebung genau zu identifizieren, zu kämpfen haben. Wir hoffen, dass die visuelle Demonstration unseres Ansatzes die Geschwindigkeit beschleunigt, mit der Forscher lernen können, Echokardiographie bei Mäusen durchzuführen, und letztendlich als Plattform für die Diskussion von Best Practices für die Bildgebung von Kleintieren dienen wird.Schalten Sie zunächst das Ultraschallgerät ein, das mit einem Hochfrequenz-Ultraschallwandler ausgestattet ist. Geben Sie die ID des zu messenden Tieres sowie Datum, Uhrzeit und alle anderen relevanten Informationen ein. Heizen Sie die Plattform auf 37 Grad Celsius vor, fassen Sie die Maus dann vorsichtig am Schwanz auf und halten Sie das Tier fest im Nacken.Führen Sie die Nase des Tieres in den Nasenkegel und leiten Sie die Anästhesie ein, wie im begleitenden Textprotokoll beschrieben. Legen Sie das Tier nach der Sedierung schnell und präzise in Rückenlage auf die Plattform und achten Sie darauf, dass die Vorder- und Hinterfüße auf den EKG-Sensoren der Plattform liegen. Verwenden Sie Klebeband, um das Tier an allen vier Gliedmaßen zu befestigen, den Kopf im Nasenkonusapparat zu stabilisieren und den Schwanz zu stabilisieren.Überprüfen Sie als Nächstes die Herzfrequenz mit den EKG-Sensoren in der Plattform oder mit einem externen Gerät. Stellen Sie sicher, dass die Herzfrequenz zu Beginn zwischen 600 und 700 Schlägen pro Minute liegt. Überwachen Sie die Herzfrequenz und stellen Sie sicher, dass sie unter keinen Umständen unter 450 Schläge pro Minute fällt.Überwachen Sie zusätzlich die Körpertemperatur mit einem rektalen Thermometer und halten Sie die Temperatur zwischen 36,5 Grad Celsius und 38 Grad Celsius. Solange die Vitalwerte stabil sind, verwenden Sie eine elektrische Haarschneidemaschine, die für die Verwendung mit feinem Haar entwickelt wurde, um die Haare von der Brust der Maus abzurasieren. Nehmen Sie dann ein feuchtes Papiertuch und wischen Sie die Brust ab, um alle verbleibenden Haare zu entfernen.Wenn das Tier sicher auf der Plattform befestigt ist und der Kopf wegzeigt, neigen Sie den Tisch um 15 bis 20 Grad nach links, um das Herz näher an die Brustwand zu bringen. Tragen Sie dann eine großzügige Menge Ultraschallgel auf den Schallkopf oder direkt auf die Brust des Tieres auf. Positionieren Sie den Schallkopf parasternal etwa 90 Grad senkrecht mit der Längsachse des Herzens, so dass der Bildindexmarker des Schallkopfs nach posterior zeigt.Schieben Sie im Zwei-DB-Modus die Defilade des Schallkopfs, bis die Aortenklappe entlang der kurzen Achse in Sicht kommt. Drehen Sie anschließend den Schallkopf im Uhrzeigersinn, bis die Bildindexmarkierung auf cadad zeigt. Dies ist die parasternale Längsachsenansicht.Beobachten Sie den Aortenweg, die Aortenklappe, den linksventrikulären Ausflusstrakt, die Mitralklappe, den linken Vorhof und einen Teil des rechtsventrikulären Ausflusstrakts auf der Bildanzeige. Messen Sie die größte atriale posteriore Dimension der Aorta mit dem elektronischen Messschieber, der mit dem in das Gerät integrierten Messwerkzeug verbunden ist. Reduzieren Sie anschließend die Bildbreite, sodass sich nur die Aortenklappe auf der Bildanzeige befindet, indem Sie die Schaltfläche für die Bildbreite im Bedienfeld anpassen.Positionieren Sie die Untersuchungslinie im M-Modus an der Stelle, an der sie die Spitzen der Aortenklappe schneidet, um den Abstand zwischen den Aortenklappenhöckern genau zu beurteilen. Messen Sie in der M-Modus-Anzeige der Aortenklappe den Höckerabstand mit dem elektronischen Messschieber. Während Sie sich noch in der parasternalen Längsachsenansicht der Aortenklappe befinden, drücken Sie die Farbdoppler-Steuertaste im Bedienfeld, um den Farbdoppler auf den Bereich der Aortenklappe anzuwenden.Drücken Sie anschließend die Steuertaste für den Post-Wave-Doppler. Platzieren Sie das Probenvolumen nach der Welle mit dem Track Ball in der proximalen aufsteigenden Aorta direkt über der Aortenklappe und stellen Sie sicher, dass der Winkel zwischen dem Ultraschallstrahl und dem Blutfluss weniger als 60 Grad beträgt, indem Sie die Plattform und/oder den Schallkopf neigen. Messen Sie dann die Spitzengeschwindigkeit über die Spektralanzeige mit den elektronischen Messschiebern.Platzieren Sie zunächst den Schallkopf in der apikalen Position im B-Modus und positionieren Sie den Schallkopf so, dass er zum Kopf der Maus hin abgewinkelt ist. Beobachten Sie den rechten Ventrikel, den linken Ventrikel, den rechten Vorhof und den linken Vorhof auf dem Bilddisplay. Bringen Sie aus der apikalen Vier-Kammer-Ansicht die Mitralklappe in den Fokus, indem Sie die Bildbreite reduzieren.Platzieren Sie dann den Cursor im M-Modus über der Mitralklappe, um die Dicke der Segel zu beurteilen. Wenden Sie in der apikalen Vier-Kammer-Ansicht einen Farbdoppler an, um die Strömung vom linken Vorhof durch die Mitralklappe während der Diastole abzubilden. Beobachten Sie die Strömung durch die Mitralklappe, die rot codiert ist.Aus der Sicht der apikalen Lungenachse neigen oder richten Sie die Schallkopfspitze mit einer Wippbewegung aus, so dass sich der rechte Ventrikel in der Mitte der Bildanzeige befindet. Reduzieren Sie die Bildbreite, so dass in der Bilddarstellung nur der rechte Ventrikel zu sehen ist. Tragen Sie dann Farbdoppler im Bereich der Trikuspidalklappe auf.Bewegen Sie anschließend den Schallkopf in eine modifizierte parasternale Längsachsenposition auf Höhe der Aortenklappe. Kippen Sie dann den Schallkopf leicht nach oben, um eine kurze Achsenansicht des Pulmonalventils zu erhalten. Wenden Sie in dieser Ansicht die Bildgebung im M-Modus an, um den Trennungsabstand der Pulmonalklappe auszuwerten.Tragen Sie dann Farbdoppler im Bereich der Pulmonalklappe auf, um eine Klappeninsuffizienz und Stenose zu beurteilen. Platzieren Sie den Schallkopf im Zwei-DB-Modus in der parasternalen Kurzachsenposition auf Höhe der Papillarmuskulatur, um eine kurze Achsenansicht des linken Ventrikels zu erhalten. Drücken Sie in dieser Ansicht die Taste M-Modus in der Systemsteuerung.Positionieren Sie den Cursor im M-Modus mit dem Trainingsball in der Mitte der linken Ventrikelhöhle auf Höhe der Papillenmuskulatur und erhalten Sie Bilder im M-Modus. Messen Sie dann die Dimension der linksventrikulären Höhle an der Enddiastole, bei der der Abstand zwischen der Innenwand und der Hinterwand am größten ist, und an einer Endsystole, bei der die Einwärtsbewegung sowohl der Innen- als auch der Hinterwand maximal ist. Bewegen Sie als Nächstes den Schallkopf zum apikalen Fenster, tragen Sie Farbe auf die Mitralklappe auf und platzieren Sie das Probenvolumen an den Spitzen der Mitralklappensegel.Messen Sie die maximale Mitraleinströmungsgeschwindigkeit anhand der spektralen Darstellung der pulsgewellten Dopplergeschwindigkeiten über die Mitralklappe. Das Probenvolumen liegt zwischen dem Zu- und Abfluss des linken Ventrikels und nicht den Schließ- und Öffnungssignalen der Mitral- und Aortenklappe. Messen Sie die isovolumische Relaxationszeit, die isovolumische Kontraktionszeit und die linksventrikuläre Ejektionszeit.Führen Sie dann eine Gewebedoppler-Bildgebung des Mitralringes in der apikalen Längsachsenansicht durch. Drücken Sie die TGI-Steuertaste und platzieren Sie das Probenvolumen an der medialen Seite des Mitralrings. Wenn Sie fertig sind, entfernen Sie überschüssiges Ultraschallgel von der Maus.Entfernen Sie vorsichtig das Klebeband, mit dem das Tier befestigt ist, und schalten Sie die Anästhesie aus. Legen Sie das Tier auf ein saugfähiges Papiertuch und beobachten Sie das Tier, bis das Brustbein liegt. Hier ist eine Bewertung der Aortenklappenfunktion bei einer normalen Maus im Vergleich zur Aortenklappenfunktion bei einer Maus mit kalkhaltiger Aortenklappenerkrankung dargestellt.Bei der Maus mit verkalkten Klappen sind die Höcker verdickt und haben eine erhöhte Echogenität, was zu einer eingeschränkten Öffnung während der Systole führt. Aus dem apikalen Fenster zeigt sich eine Längsachsenansicht der Mitralklappe. Die Dicke des Mitralsegels kann mit der Abfragelinie des M-Modus gemessen werden.Die Messung der Dicke der Mitralklappe kann angesichts der dünnen, schlecht echogenen und sich schnell bewegenden Segel der normalen Mitralklappe eine große Herausforderung darstellen. Der Farbdoppler, der in dieser modifizierten Längsachsenansicht der Mitralklappe gezeigt wird, zeigt einen Mosaik-Farbstrahl an der Mitralklappe während der Systole. Die blaue Farbe ist ein Hinweis auf eine Mitralklappeninsuffizienz.Aus dem parasternalen Fenster werden sowohl Kurz- als auch Längsachsenansichten der Pulmonalklappe erhalten. In diesem Bild wird die Abfragelinie des M-Modus über die Pulmonalklappe angewendet, und der Abstand zwischen den Ventilhöckern kann aus dieser Ansicht gemessen werden. Einmal gemeistert, kann diese Technik in 15 bis 20 Minuten durchgeführt werden, wenn sie richtig ausgeführt wird.Wenn Sie dieses Verfahren ausprobieren, ist es wichtig, über Grundkenntnisse der Anatomie und Physiologie des Herzens, über Kenntnisse der Prinzipien und Terminologie der Sonographie und über Erfahrung im Herzultraschall zu verfügen, um eine genaue und zeiteffiziente Beurteilung der Herzfunktion bei Nagetieren zu ermöglichen. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Herzultraschall bei Nagetieren durchführt, indem Sie Bilder aus verschiedenen Bildgebungsebenen erhalten und Echo-Doppler-Parameter messen, die die Herz- und Herzklappenfunktion angemessen beschreiben.

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Forschung

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Medicine

Medizin

Transthorakale Echokardiographie bietet eine nichtinvasive Methode zur Beurteilung der Herzfunktion bei Mäusen. Eine Kombination aus Ultraschall und Doppler bildgebenden Verfahren kann verwendet werden, um dreidimensionale Messungen der Herz-und intrakardialen Blutflusses, die zusammen eine Beurteilung der kardialen systolischen und diastolischen Leistung zu erzielen.

Transthorakale Echokardiographie in Mäuse

Dieses Video zeigt die Verwendung eines schienengebundenen Hochfrequenz-Ultraschall-Sonde zur Echokardiographie auf einer narkotisierten Maus durchführen. Die Methoden beschreiben sowohl herkömmliche zweidimensionale und M-Modus Messungen der Herzfunktion neben neuere, leistungsfähigere Werkzeuge wie Farb-Doppler-, Dehnungs-Analyse, sowie allgemeine und gezielte Kontrast-Bildgebung.

Murine Echokardiographie und Ultraschall-Bildgebung

Dieses Video beschreibt ein Protokoll zur Durchführung einer Echokardiographie an einer Labormaus.

Maus-Echokardiographie: Eine nicht-invasive Technik zur Beurteilung der Herzmorphologie

Dieser Artikel enthält ein Protokoll für die echokardiographische Beurteilung der Rechtsherzgröße und Lungenhochdruck bei Mäusen. Die Anwendungen umfassen Phänotyp Bestimmung und Serienbewertung in transgenen und Toxin-induzierten Maus-Modellen der Kardiomyopathie und Lungengefäßerkrankung.

Echokardiographische Beurteilung des rechten Herzens bei Mäusen

Das Ziel dieses Protokolls ist es, nicht-invasiven Herz strukturelle und funktionelle Veränderungen in einem Mausmodell der Herzkrankheit durch Quer Aortakonstriktion geschaffen beurteilen zu können, unter Verwendung von B- und M-Mode-Echokardiographie und Farbe / Puls-Doppler-Bildgebung.

Beurteilung der Herz Morphologische und funktionelle Veränderungen in Maus-Modell der Quer Aortakonstriktion durch Echokardiographie

Das folgende Protokoll beschreibt die Methodik für die Erfassung und Analyse von echokardiographischen Bilder verwendet, um die linke atriale Volumen (LAV), Aorta (Ao) Durchmesser und Lungenarterie (PA) Durchmesser bei Mäusen zu erhalten. Diese Technik ist eine nicht-invasive, nicht-terminalen Prozedur, die Beurteilung der Herz-Lungen-Funktion ermöglicht.

Murine Echokardiographie von Linker Vorhof, Aorta und Lungenarterie

Echokardiographische Untersuchung wird häufig bei Mäusen verwendet. Teure hochauflösende Ultraschall-Geräte wurden für diesen Zweck entwickelt. Dieses Protokoll beschreibt eine erschwingliche echokardiographische Verfahren kombiniert mit histologischen morphometrische Analysen kardiale Morphologie zu bestimmen.

Echokardiographische und histologische Untersuchung der kardiale Morphologie in der Maus

Hier beschreiben und vergleichen wir zwei Positionen, um die apikale Vierkammeransicht bei Mäusen zu erhalten. Diese Positionen ermöglichen die Quantifizierung der rechten ventrikulären Funktion, liefern vergleichbare Ergebnisse und können austauschbar genutzt werden.

Echokardiographische Messung rechtsventrikulärer diastolischer Parameter in der Maus

Das vorliegende Protokoll beschreibt die echokardiographische Beurteilung der linksventrikulären Morphologie, Funktion und des koronaren Blutflusses bei 7 Tage alten neugeborenen Mäusen.

Echokardiographische Charakterisierung der linksventrikulären Struktur, Funktion und Koronarfluss bei neugeborenen Mäusen

Dieser Artikel beschreibt die diagnostischen Methoden der angeborenen Herzfehler (KHK) der Maus unter Verwendung der fetalen Echokardiographie, der Nekropsie und der episkopischen Fluoreszenzbilderfassung (EFIC) unter Verwendung der episkopischen konfokalen Mikroskopie (ECM), gefolgt von einer dreidimensionalen (3D) Rekonstruktion.

Eine Pipeline zur Charakterisierung struktureller Herzfehler in der fetalen Maus

Lernen Sie die Echokardiographie zur umfassenden phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen. Diese Methode ermöglicht die nichtinvasive Bewertung kardialer und valvulärer Funktion.

Echokardiographische Ansätze und Protokolle für die umfassende phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen (Video) | JoVE Journal

Echokardiographische Ansätze und Protokolle für die umfassende phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen

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