Name: Die phänotypische und funktionale Analyse von aktivierten regulatorischen T-Zellen isoliert von chronischer lymphatischer Choriomeningitisvirus-infizierte Mäuse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 17 s
Description: Erfahren Sie die phänotypische und funktionale Analyse von regulatorischen T-Zellen aus chronisch lymphozytärem Choriomeningitisvirus-infizierten Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Bewertung der suppressiven Aktivität in vitro.

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Diese Arbeit wurde unterstützt durch das Basic Science Research Program der National Research Foundation of Korea (NRF), finanziert vom Bildungsministerium (2015R1A6A3A01020610 an HJP) und ein Stipendium vom Korean Health Technology R&D Project, Ministerium für Gesundheit, Wohlfahrt und Familie, Republik Korea (HI15C0493 an SJH).

In dieser Studie wurden die Mäuse in einem spezifischen Pathogen freie Einrichtung des Yonsei Laboratory Animal Research Center of Yonsei University gehalten. mit von der International genehmigten Protokollen Animal Care und Use Committee des Yonsei Laboratory Animal Research Center an der Yonsei University Alle Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit den koreanischen Food and Drug Administration Richtlinien durchgeführt. 1. Herstellung der Lösungen <ol><li> Bereiten 2% RPMI-Medium durch Verdünnen fötalem Rinderserum (FBS) und 2% Penicillin-Streptomycin und 1% in RPMI </li><li> Bereiten komplettem RPMI-Medien. Zu RPMI Medien Hinzufügen 10% FBS, 1% Penicillin-Streptomycin, 1% L-Glutamin und 50 uM 2-Mercaptoethanol. </li><li> Bereiten fluoreszenzaktivierte Zellsortierung (FACS) Puffer. so, Ergänzungs phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) mit 2% FBS zu tun. </li><li> Bereiten Sie T-Zell-Isolationspuffer. Dazu ergänzen PBS mit 2% FBS und 2 mM ethylenediaminetetraacetic Säure. </li></ol> 2. Isolierung von Milzlymphozyten <ol><li> Entfernen der Milzen von naiven oder LCMV CL13-infizierten Mäusen , wie zuvor beschrieben , 19 und legen sie in 60 mm x 15 mm Petrischalen , die 10 ml von 2% RPMI - Medien. HINWEIS: In dieser Studie Experimenten 5 bis 6 Wochen alten C57B1L / 6J weibliche Mäuse erhielten 2 x 10 6 plaquebildenden Einheiten (pfu) von LCMV CL13 durch intravenöse Injektion über die Schwanzvene. Opfern , um die Mäuse am Tag 16 nach der Infektion (16 d pi) 25. Analyse ge angepassten naive Mäuse wurden am selben Tag. </li><li> Legen Sie eine Zelle Sieb in einen 50-ml-Röhrchen und spülen Sie ihn mit 2 ml 2% RPMI Medien. Legen Sie die Milz auf die 70 &amp; mgr; m Zellsieb und schleifen den Kolben einer Spritze. Spülen Sie die Zelle Sieb mit 2 ml 2% RPMI Medien und entfernen Sie sie aus dem 50-ml-Tube. </li><li> Füllen des Röhrchens mit 2% RPMI-Medium und Zentrifugation bei 300 × g für 5 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen und resuspendierenZellpellet in 1 ml Lysepuffer ACK. Inkubieren der Proben bei Raumtemperatur (RT) für 5 min. HINWEIS: Das Volumen der ACK Lysepuffer oben für eine Milz angegeben ist. Scale up das Volumen entsprechend für gepoolte Milzproben. </li><li> Füllen des Röhrchens mit 2% RPMI-Medium und Zentrifugation bei 300 xg für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen und Resuspendieren der Zellen in einer Dichte von 1 x 10 7 Zellen / ml in kompletten RPMI - Medium. HINWEIS: Für die Live-Zellzählung, Flecken Zellen mit Trypanblau und nur Zellen leben zählen, die nicht gefärbt werden mit Hämozytometer. </li></ol> 3. Phänotypisierung von Splenic Herkömmliche T (T conv) Zellen und T - Zellen reg HINWEIS: Vor Isolierung T reg Zelle, untersuchen den Phänotyp splenic von naiven oder infizierten Mäusen isoliert Lymphozyten durch die Zellen mit verschiedenen Antikörpern Färbung und Durchflusszytometrie sie durch die Strömung zu analysieren. <ol><li> Dann werden 50 &amp; mgr; l der Zellen(5 x 10 5 Zellen) unter insgesamt Milz- Lymphozyten in jede Vertiefung einer neuen U-Boden - 96-Well - Platte und fügen 150 ul Puffer FACS pro Vertiefung. Zentrifuge bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. </li><li> Überstand verwerfen. Rühre das Zellpellet und mit 200 &amp; mgr; l FACS-Puffer pro Vertiefung. Zentrifuge bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C (2 mal). </li><li> Bereiten Sie die Antikörper-Cocktail für die Färbung Zelloberflächenmarker in 50 &amp; mgr; l FACS-Puffer pro Vertiefung mit den folgenden Antikörpern und Reagenzien. Anti-CD4 violetten Farbstoff, Anti-CD25 grünen Farbstoff, Anti-PD-1 violetten Farbstoff, Anti-CD8-PerCP Cy5.5 Farbstoff und die Lebensfähigkeit der Zellen Nachweisreagenz nahen Infrarot (IR) fluoreszierenden Reaktivfarbstoff. HINWEIS: Um den Phänotyp von aktivierten T - reg - Zellen zu analysieren, anti-CD103 23,25 kann für Zelloberflächenmarker Färbung hinzugefügt werden. </li><li> Zellpellet mit 50 ul Antikörper-Cocktail pro Vertiefung. Inkubieren für 20 min im Dunkeln bei 4 ° C. Wasche die Zellen zweimal mitFACS-Puffer durch Zentrifugation bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. </li><li> Nach dem letzten Waschschritt, dekantiert den Überstand und fixieren die Zellen für 20 min im Dunkeln bei 4 ° C mit 100 ul Puffer Fixierung hergestellt gemäß dem Protokoll des Herstellers. </li><li> Waschen Sie die Zellen zweimal mit dem Permeabilisations-Waschpuffer (hergestellt nach dem Protokoll des Herstellers) durch Zentrifugation bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. </li><li> Bereiten Sie die Antikörperlösung für die intrazelluläre Foxp3-Färbung und Zellpellet mit 50 ul Anti-Foxp3 Antikörperlösung. HINWEIS: weiter Um die Phänotypen von T conv und T reg Zellen analysieren, anti-CTLA kann in diesem Schritt hinzugefügt werden. </li><li> Inkubieren für 20 min im Dunkeln bei 4 ° C und wiederholen Sie Schritt 3.6. Nach dem letzten Waschschritt, Resuspendieren des Zellpellets in 200 &amp; mgr; l FACS - Puffer und den Phänotyp der Zellen durch Durchfluss - Zytometer 25 untersuchen. </li><li> Tor der lebenden Zellen population. Um die Phänotypen von T conv Zellen während der LCMV - Infektion CL13 analysieren, untersuchen die Häufigkeit von Foxp3 - PD-1 + Zellen unter CD4 + oder CD8 + T - Zellen. HINWEIS: Basierend auf experimentellen Ergebnissen der Prozentsatz der Foxp3 - PD-1 + mehr als 50% sowohl in CD4 + und CD8 + T - Zell - Populationen mit 16 d pi mit LCMV CL13. <ol><li> Um die Frequenz und Phänotypen von T reg Zellen analysieren, untersuchen Sie die Frequenzen von Foxp3 + oder Foxp3 + PD-1 + Zellen unter CD4 + T - Zellen. HINWEIS: Basierend auf experimentellen Ergebnissen der Prozentsatz der Foxp3 + Foxp3 + bzw. PD-1 + Zellen ist mehr als 20% der CD4 + T - Zellpopulation, respectively. </li></ol></li></ol> 4. Isolierung von CD4 + CD25 + T - Zellen reg HINWEIS: Die Volumina aller Reagenzien unten angegeben sind für eineAusgangszellzahl von 1 x 10 7 gesamt Splenozyten. <ol><li> Bereiten Sie die Zellen, wie in Abschnitt 2 unter Verwendung von naiven und LCMV chronisch infizierten Mäusen beschrieben. Waschen Sie die Zellen durch Zugabe von 10 ml der T-Zellisolierungspuffer. Zentrifuge bei 300 × g für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen vollständig und Zellpellet in 40 ul Puffer. </li><li> Für CD4 + T - Zell - Anreicherung der magnetischen Zellseparationssystem, 10 ul Biotin-Antikörper - Cocktail hinzufügen und gut mischen. Inkubieren für 10 min bei 4 ° C. </li><li> Zugabe von 30 ul Puffer, 20 ul von Anti-Biotin - Mikrokügelchen für die Kennzeichnung von nicht-CD4 + T - Zellen und 10 &amp; mgr; l von CD25-PE - Antikörpers zur Fluoreszenzmarkierung von CD25 + Zellen. Gut mischen und Inkubation für 15 min im Dunkeln. </li><li> 2 ml Puffer und übergeben die Zellen durch ein 40 &amp; mgr; m Zellsieb in ein neues 50 ml Rohrzelltrümmer zu entfernen. Waschen Sie die Zellen durch Zentrifugation bei 300 xg für 10 min bei 4 ° C.Überstand verwerfen vollständig und Resuspendieren des Zellpellets in 500 &amp; mgr; l Puffer mit einer Dichte von bis zu 1,25 x 10 8 Zellen. </li><li> Übernehmen Sie die Zellen auf die Säule und sammeln die nicht markierten Zellen, die die Säule passieren. Die Säule wird durch Zugabe von 2 ml Puffer und Zentrifugieren bei 300 xg für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen vollständig und Resuspendieren der isolierten CD4 + T - Zellen in 90 ul Puffer. </li><li> Für magnetische Markierung von CD25 + Zellen, mit 10 &amp; mgr; l anti-PE - Mikrokügelchen, gut mischen und bei 4 ° C für 15 min im Dunkeln inkubiert. </li><li> 2 ml Puffer und wasche die Zellen durch Zentrifugation bei 300 xg für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen vollständig und Resuspendieren des Zellpellets in 500 &amp; mgr; l Puffer mit einer Dichte von bis zu 1 x 10 8 Zellen. </li><li> Um die CD4 + CD25 + T - reg - Zellen anreichern, gelten die Zellen auf die Säule für eine positive Selektion, und waschen Sie die column durch Zugabe von 2 ml Puffer. Wiederholen Sie die Wäsche dreimal. </li><li> Wenn die Säule nach dem letzten Waschschritt leer ist, fügen Sie 1 ml Puffer auf die Säule, und spülen Sie den Kolben der magnetisch markierten CD4 + CD25 + Zellen. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 4,8-4,9 um die Reinheit der isolierten CD4 + CD25 + T reg Zellen zu verbessern. Waschen der Zellen mit FACS-Puffer durch Zentrifugation bei 300 xg für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen und Resuspendieren der isolierten CD4 + CD25 + T reg Zellen bei einer Konzentration von 2 x 10 6 Zellen / ml in kompletten RPMI - Medium. </li><li> Um die Reinheit der isolierten CD4 + CD25 + T - reg - Zellen zu überprüfen, können 2 x 10 5 Zellen aus der Summe der isolierten CD4 + CD25 + T - reg - Zellen. Beflecken die Zellen mit 50 &amp; mgr; l FACS-Puffer, enthaltend anti-CD4-FITC und die Lebensfähigkeit der Zellen Nachweisreagenz nahen IR-fluoreszierenden Reaktivfarbstoff. HINWEIS: CD25 wurde bereits mit PE während der Isolierung gekennzeichnet. </li><li> Inkubieren für 20 min im Dunkeln bei 4 ° C. Waschen der Zellen mit FACS-Puffer durch Zentrifugation bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. Nach dem Waschen des Zellpellets in 100 &amp; mgr; l FACS-Puffer resuspendiert und die Reinheit mittels Durchflusszytometrie überprüfen. </li><li> Tor der Live-Zellpopulation. Um die Reinheit von T reg Zellen analysieren, bestätigen den Prozentsatz der CD4 + CD25 + Zellen. HINWEIS: Basierend auf experimentellen Ergebnissen der Prozentsatz der CD4 + CD25 + Zellen unter gereinigter Zellen über etwa 80%. </li></ol> 5. Isolierung von CD8 + T - Zellen und Labeling of CD8 + T - Zellen HINWEIS: Die Volumina aller Reagenzien unten angegeben sind für eine Startzellzahl von 1 x 10 7 Splenozyten insgesamt. <ol><li> Vorbereitung der Zellen, wie in Kapitel 2 unter Verwendung von naiven Mäusen beschrieben. Waschen Sie die Zellen durch Zugabe von 10 ml der T-Zellisolations Schwabbelscheibeer. Zentrifuge bei 300 × g für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen vollständig und Zellpellet in 40 ul Puffer. </li><li> Für CD8 + T - Zell - Isolierung der magnetischen Zellseparationssystem, 10 ul Biotin-Antikörper - Cocktail für Nicht-CD8 + T - Zell - Markierung hinzufügen und gut mischen. Inkubieren Sie für 5 min bei 4 ° C. </li><li> Zugabe von 30 ul Puffer und 20 ul Anti-Biotin-Mikrokügelchen. Gut mischen und Inkubation für 10 min bei 4 ° C. </li><li> Übernehmen Sie die Zellen auf die Säule und sammeln die nicht markierten Zellen, die die Säule passieren. Die Säule wird durch Zugabe von 2 ml Puffer dreimal. </li><li> Zentrifuge bei 300 × g für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen vollständig und Resuspendieren der isolierten CD8 + T - Zellen in 2 ml Puffer. </li><li> Um die Reinheit der isolierten Zellen kontrollieren, bereiten 50 ul Antikörperlösung in FACS-Puffer. Resuspendieren der 2 x 10 5 Zellen unter isolierten CD8 + T - cells in 50 ul Antikörperlösung. HINWEIS: Antikörper-Lösung herzustellen, fügen Anti-CD8-FITC, und die Lebensfähigkeit der Zellen Nachweisreagenz (nahen IR-fluoreszierenden Reaktivfarbstoff) in FACS-Puffer. </li><li> Inkubieren für 20 min im Dunkeln bei 4 ° C. Waschen der Zellen mit FACS-Puffer durch Zentrifugation bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. Nach dem Waschen Zellpellet in 100 ul FACS-Puffer, und überprüfen Sie die Reinheit der Zellen mittels Durchflusszytometrie. </li><li> Tor der Live-Zellpopulation. Um die Reinheit von CD8 + T - Zellen zu überprüfen, bestätigen den Prozentsatz der CD8 + T - Zellen. HINWEIS: Basierend auf experimentellen Ergebnissen der Prozentsatz der CD8 + Zellen unter den Zellen gereinigt wird über etwa 90%. </li><li> Hinzufügen PBS zu den isolierten CD8 + T - Zellen. Zentrifuge bei 300 × g für 10 min bei 4 ° C. Überstand verwerfen. Resuspendieren der isolierten CD8 + T - Zellen in einer Konzentration von 1 x 10 7 Zellen / ml in PBS. </li><li> Um die CD8 + T CE - Kennzeichnunglls für die in vitro - Suppression Assay Zellproliferation Verfolgungs violetten Farbstoff in PBS verdünnen , um eine Konzentration von 5 uM bei RT zu erhalten. HINWEIS: Die ungefähre Anregungs- und Emissionspeaks des Zellproliferation Verfolgungs violetten Farbstoff in der Studie verwendet werden, sind 405 und 450 nm, respectively. </li><li> Gut mischen gleiche Volumina der Zellproliferation Verfolgungs violetten Farbstoff (5 &amp; mgr; M) und der Zellsuspension (1 x 10 7 Zellen / ml von CD8 + T - Zellen) in einem 15 ml - Röhrchen, und Inkubieren bei 20 min bei 37 ° C. Mischen Sie den Schlauch alle 10 min. </li><li> Füllen Sie den Schlauch mit kaltem komplettem RPMI Medien auf, und lassen Sie das Röhrchen für 10 min bei RT. Zentrifuge bei 300 × g für 10 min bei RT. Überstand verwerfen vollständig und Resuspendieren der Zellen in einer Konzentration von 2 x 10 6 Zellen / ml mit vorgewärmten RPMI Komplettmedium. Inkubieren der Zellen für 15 min bei RT. </li></ol> 6. Einrichten der In - vitro - Suppression - Test unter Verwendung CD4 + CD25 + T &lt;sub&gt; reg und CD8 + T - Zellen <ol><li> Zur Herstellung von anti-CD3 / CD28-beschichteten Kügelchen, übertragen das entsprechende Volumen von magnetischen Kügelchen auf ein 15 ml Röhrchen (2,5 ul / 1 x 10 5 Zellen). Fügen Sie ein gleiches Volumen von PBS und mischen. Waschen durch Zentrifugation bei 300 g für 2 min bei 4 ° C und den Überstand verwerfen. Verdünnen Sie die magnetischen Kügelchen in komplettem Medium (50 &amp; mgr; l / Well). </li><li> Aliquot von 50 &amp; mgr; l CD4 + CD25 + T reg Zellen pro Vertiefung U-Boden 96-Well - Platte (1 x 10 5 Zellen / Vertiefung). Je 50 ul von CD8 + T - Zellen als Responder - T (T bzw.) Zellen pro Vertiefung (1 x 10 5 Zellen / Vertiefung). In 50 ul des verdünnten anti-CD3 / CD28-beschichteten Kügelchen in pro Vertiefung. HINWEIS: In diesem Schritt Etikett und Kontrollvertiefungen setzen sich wie folgt zusammen : &quot;nicht - stimulierten CD8 + T - Zellen nur&quot; ohne anti-CD3 / CD28-beschichteten Kügelchen; &quot;CD8 + T - Zell - only&quot; mit anti-CD3 / CD28-beschichteten Kügelchen; &quot;CD8 + T - Zellen erst&quot;Mit anti-CD3 / CD28-beschichteten Kügelchen;&quot;. T reg Zelle nur &quot;mit anti-CD3 / CD28-beschichteten Kügelchen T reg Zellen können durch vollständige Medien und co-kultiviert mit T bzw. Zellen in einem anderen Verhältnis von T verdünnt werden , bzw. Zellen: T reg Zellen (1: 0,25-1: 1). </li><li> Zugabe von 50 &amp; mgr; l oder geeigneten Volumen Medium in alle Vertiefungen auf ein Gesamtvolumen von 200 ul. Die Platte mit Folie und Inkubation in einem CO 2 Inkubator bei 37 ° C für 72 Stunden. </li></ol> 7. Analyse der CD8 + T - Zellproliferation und Cytokin - Produktion von CD8 + T - Zellen <ol><li> Für die Cytokinproduktion Analyse nach 3 Tagen Kultur, trennen den Überstand von jeder Vertiefung in eine andere Platte und führen enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). HINWEIS: Der Überstand kann bei -70 ° C aliquotiert und gelagert werden. In diesem Experiment wurde anti-Maus-IFN-γ Antikörper-beschichteten Platte verwendet IFN-γ Produktion Übereinstimmung zu erkennening des Herstellers s Protokoll. Zu IFN-γ Produktion von proliferierenden CD8 + T - Zellen auf einem Einzelzellebene, intrazelluläre Cytokin - Färbung bestimmen kann durchgeführt werden. </li><li> Nach Abtrennen der Überstand aus jeder Vertiefung, waschen Sie die Platte, die Zellen mit FACS-Puffer und Zentrifuge bei 300 g für 2 min bei 4 ° C (3-mal) enthält. </li><li> Nach dem Waschen den Überstand verwerfen. Resuspendieren des Zellpellets mit 50 ul Antikörper - Cocktail für die Färbung von proliferierten CD8 + T - Zellen. Inkubieren für 20 min im Dunkeln bei 4 ° C. HINWEIS: Antikörper-Cocktail vorzubereiten, fügen anti-CD4 FITC, anti-CD8-PerCP-Cy5.5, und die Lebensfähigkeit der Zellen Nachweisreagenz (nahen IR-fluoreszierenden Reaktivfarbstoff) in FACS-Puffer. HINWEIS: Antikörper gegen verschiedene Marker wie CD44 oder CD69 können mit anderen Antikörpern kombiniert werden , um zu bestätigen , Aktivierung von CD8 + T - Zellen. Denken Sie daran , dass CD8 + T - Zellen haben bereits mit der Zellproliferation Tracking v markiert wordenIolet Farbstoff in Schritt 5.10. </li><li> Wasche zweimal durch Zentrifugation bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. Nach dem letzten Waschschritt, den Überstand verwerfen, und fixieren die Zellen für 20 Minuten im Dunkeln bei 4 ° C mit 100 ul Fixierungspuffer. </li><li> Wasche zweimal durch Zentrifugation bei 300 × g für 2 min bei 4 ° C. Die Proliferation der Zellproliferation Verfolgungs violetten Farbstoff-markierten CD8 + T - Zellen mittels Durchflusszytometrie resuspendieren der Zellen mit 200 &amp; mgr; l FACS - Puffer und zu messen. <ol><li> Tor der CD8 + T - Zell - Population unter den lebenden Zellen. Messen Sie die Prozentsätze der geteilten und ungeteilten Zellen gemäß der Verdünnung der Zellproliferation Verfolgungs violetten Farbstoff und CD8 + T - Zell - Verdünnung nach der folgenden Gleichung. Inhibition% = [(% der proliferierten CD8 + T - Zellen in Abwesenheit von T - Zellen reg -% der proliferierten CD8 + T - Zellen in Gegenwart von T reg Zellen) / (% der proliferierten CD8 + T - Zellen indas Fehlen von T reg - Zellen)] x 100. Weitere Analyse der Daten durch die Durchflusszytometrie Software 25 verwendet wird . </li></ol></li></ol>

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<li>Merianos, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maternal+alloantibodies+induce+a+postnatal+immune+response+that+limits+engraftment+following+in+utero+hematopoietic+cell+transplantation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Maternal alloantibodies induce a postnatal immune response that limits engraftment following in utero hematopoietic cell transplantation in mice.</a> J Clin Invest. 119 (9), 2590-2600 (2009).</li>
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<li>Wang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+GARP+selectively+identifies+activated+human+FOXP3%2B+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Expression of GARP selectively identifies activated human FOXP3+ regulatory T cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (32), 13439-13444 (2009).</li>
<li>Myers, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-2-independent+and+TNF-alpha-dependent+expansion+of+Vbeta5%2B+natural+regulatory+T+cells+during+retrovirus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">IL-2-independent and TNF-alpha-dependent expansion of Vbeta5+ natural regulatory T cells during retrovirus infection.</a> J Immunol. 190 (11), 5485-5495 (2013).</li>
</ol>

S.-J.H. hat ein Patent und erhält Patentgebühren im Zusammenhang mit dem PD-1-Signalweg. Die anderen Autoren haben keine finanziellen Interessenkonflikte.

Obwohl nur eine kleine Anzahl von T reg Zellen in Mäusen und Menschen vorhanden sind , ist es wichtig , ihre Funktion zu verstehen , wie sie die Immunantwort bei der Regulierung und Aufrechterhaltung der Immuntoleranz eine wichtige Rolle spielen. Die Anzahl und die unterdrückenden Funktionen von T reg Zellen erhöht sich während einer chronischen Virusinfektion 15-20 sowie Krebsprogression 13,14. Dies ist wahrscheinlich aufgrund der fortgesetzten Antigen-Stimulation. Zur Auswer...

Regulatorische T (T reg) Zellen exprimieren forkhead box P3 (Foxp3) als Transkriptionsfaktor für ihre Entwicklung und Funktion 1. Zusätzlich exprimieren T reg Zellen verschiedene andere Moleküle wie CD25 2, Lymphozytenaktivierung Gen 3 (LAG-3) 3, Glucocorticoid-induzierter Tumor necrosis factor receptor 4 und zytotoxische T-Lymphozyten assoziiertes Protein 4 (CTLA-4) 5 auf ihrer Oberfläche oder intrazelluläre Region. Während einer chronischen Infektion mit verschiedenen Arten von Krankheitserregern wie Viren 6,7, Bakterien 8,9 und Parasiten 10-12, oder im Verlauf der Krebsentwicklung 13,14 geworden T reg Zellen in aktivierten Zellen differenziert, verbesserte Unterdrückungsfunktion anzeigt Targeting - Effektor CD4 + und CD8 + T - Zellen. Eine Reihe von Arbeiten haben vorgeschlagen , dass erweitert und aktivierten T - reg - Zellen auf die Beeinträchtigung der CD8 + T - Zell - respons beitragene während Freund Retrovirus (FV) Infektion 15-17. FV-induzierte T - Zellen hemmen reg IFN-γ oder Granzym B Expression und zytotoxische Reaktivität von CD8 + T - Zellen 15-17. Darüber hinaus wurde in einem Herpes simplex - Virus - Infektionsmodell berichtet geführt , die Depletion von CD4 + CD25 + T - Zellen in reg Expansion der virusspezifischen CD8 + T - Zellen und schwere Gewebeschäden durch Infiltration von immunopathogenen CD4 + T - Zellen 18-20. Mäuse chronisch mit dem 13 - Stamm von lymphatischer choriomeningitis Virusklon infiziert (LCMV CL13) 21-24 haben den Phänotyp und die Funktion der Effektor - T - Zellen (T eff) und T reg Zellen während der chronischen Virusinfektion weit verbreitet zu charakterisieren. Während persistent LCMV - Infektion, Virus-spezifischen T - Zellen eff schrittweise ihre Effektor - Funktion verlieren und erschöpft T (T exh) Zellen werden. Auf der anderen Seite, Treg Zellen verstärken ihre Fähigkeit , 25 Virus-spezifischen T - Zell - Antwort zu unterdrücken. Die Abnahme der Funktionsfähigkeit der T eff Zellen kann durch verschiedene Faktoren wie Aufregulation von inhibitorischen Rezeptoren auf T eff Zellen veränderte Funktion von Antigen-präsentierenden Zellen, die Herstellung von immunregulatorischen Zytokine und erhöhter Frequenz oder verstärkte Funktion von T reg erklärt Zellen 26. Unter den Faktoren , die bei T - Zell - Unterdrückung, den programmierten Zelltod - Protein-1 (PD-1) exprimierenden T exh Zellen und T - reg - Zellen wurden als Kennzeichen der Antigen Persistenz und unterdrückende Umwelt weit betrachtet. Vor kurzem wurde berichtet , dass die Blockade des PD-1 - Weg und Ablation von T reg Zellen verbesserte T - Zell - Funktion führen und Viruslast während LCMV chronischen Infektion 27 verringert. Darüber hinaus werden T reg Zellen während einer chronischen Infektion von Mäusen mit LCMV aktiviert 23,25 </sup&gt; und ihre unterdrückende Funktion 25 verstärkt. PD-1 ist stark auf T - Zellen exprimiert reg sowie T exh Zellen und der Grad der PD-1 durch T - Zellen exprimiert reg korreliert mit der Stärke ihrer suppressive Funktion T - Zell - Proliferation 25 zu hemmen. Hier beschreiben wir ein Verfahren mit den Merkmalen von aktivierten T - reg - Zellen von Mäusen , infiziert mit LCMV CL13 und ruhenden T reg Zellen isoliert aus naiven Mäusen isoliert zu vergleichen. Weiterhin erläutern wir eine Reihe von Prozessen aktiviert T reg Zellen zu trennen und ihre ex vivo Phänotyp zu untersuchen, sowie ihre suppressive Aktivität in vitro zu messen.

<table><tbody><tr><td>FITC Ratte Anti-Maus CD4</td><td>RM4-5</td><td>BD Biosciences</td><td>553047</td></tr><tr><td>Cytofix/Cytoperm</td><td></td><td>BD Biosciences</td><td>554714</td></tr><tr><td>U-Boden Gewebekulturplatten</td><td></td><td>BD Biosciences</td><td>353077</td></tr><tr><td>Fixationspuffer</td><td></td><td>BD Biosciences</td><td>554655</td></tr><tr><td>FITC Ratte Anti-Maus CD25</td><td>7D4</td><td>BD Biosciences</td><td>553072</td></tr><tr><td>Zellsieb, 70 mm</td><td></td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td></tr><tr><td>Zellsieb, 40 mm</td><td></td><td>BD Biosciences</td><td>352340</td></tr><tr><td>Brilliant Violet 421 Anti-Maus CD279 (PD-1)</td><td>29F.1A12</td><td>BioLegend</td><td>135217</td></tr><tr><td>Brilliant Violet 605 Anti-Maus CD4</td><td>RM4-5</td><td>Biolegend</td><td>100547</td></tr><tr><td>APC Anti-Maus/Ratte Foxp3&nbsp;</td><td>FJK-16s</td><td>eBioscience</td><td>17-5773</td></tr><tr><td>Foxp3/Transkriptionsfaktor-Färbepuffer-Set</td><td></td><td>eBioscience</td><td>00-5223</td></tr><tr><td>PerCP-Cyanin5.5 Anti-Maus CD8a</td><td>53-6.7</td><td>eBiosicence</td><td>45-0081</td></tr><tr><td>Maus IFN-gamma Platin-ELISA</td><td></td><td>eBiosicence</td><td>BMS606</td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td></td><td>GE Life Sciences</td><td>SH30027</td></tr><tr><td>PBS (1x)</td><td></td><td>GE Life Sciences</td><td>SH30256</td></tr><tr><td>ACK Lysing Buffer</td><td></td><td>Gibco</td><td>A10492-01</td></tr><tr><td>L-Glutamin, 200 mM Lösung</td><td></td><td>Gibco&nbsp;</td><td>Artikel-Nr.: 25030</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin, 10.000 U/ml</td><td></td><td>Gibco&nbsp;</td><td>Tel.: 10378-016</td></tr><tr><td>LIVE/DEAD Fixierbares Nahinfrarot-Flecken-Kit</td><td></td> für tote Zellen <td>Life technologies</td><td>L-34975</td></tr><tr><td>CD8a+ T-Zell-Isolationskit, Maus</td><td></td><td>Miltenyibiotec</td><td>130-104-075</td></tr><tr><td>CD4+ CD25+ Regulatorisches T-Zell-Isolationskit, Maus</td><td></td><td>Miltenyibiotec</td><td>130-091-041</td></tr><tr><td>MACS-Trennsäulen, LD-Säulen</td><td></td><td>Miltenyibiotec</td><td>130-042-901</td></tr><tr><td>MACS Trennsäulen, LS-Säulen</td><td></td><td>Miltenyibiotec</td><td>130-042-401</td></tr><tr><td>EDTA, 0,5 M (pH 8,0)</td><td></td><td>Promega</td><td>V4231</td></tr><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td></td><td>Sigma Life Science</td><td>M7522</td></tr><tr><td>Fötales Rinderserum</td><td></td><td>Thermo</td><td>Fisher Scientific SH30919.03</td></tr><tr><td>CellTrace Kit</td> <td>zur Proliferation violetter Zellen</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>C34557</td></tr><tr><td>BD Canto II Durchflusszytometer</td><td></td><td>BD Biosciences</td><td></td></tr><tr><td>Flowjo</td><td></td><td>TreeStar</td><td></td></tr><tr><td>Hämatozytomer</td><td></td><td>Marienfeld superior</td><td></td></tr></tbody></table>

die phänotypische und funktionale analyse von aktivierten regulatorischen t-zellen isoliert von chronischer lymphatischer choriomeningitisvirus-infizierte mäuse

Phenotypic and Functional Analysis of Activated Regulatory T Cells Isolated from Chronic Lymphocytic Choriomeningitis Virus-infected Mice

Regulatory T (T reg) Zellen, die Foxp3 als Transkriptionsfaktor exprimieren, sind Untergruppen von CD4 + T - Zellen. T reg - Zellen spielen eine entscheidende Rolle bei der Immuntoleranz und Homöostase Wartung durch die Immunantwort regulieren. Die primäre Rolle der T reg Zellen ist , die Proliferation von Effektor - T (T eff) Zellen und die Produktion von Zytokinen wie IFN-γ, TNF-α und IL-2 zu unterdrücken. Es wurde gezeigt , dass T reg Zellen die Fähigkeit , die Funktion von T - Zellen zu hemmen eff während persistent Pathogen - Infektion und der Entwicklung von Krebs verbessert. Um die Funktion von T reg Zellen unter ruhenden oder entzündeten Bedingungen, die eine Vielzahl von in - vitro - Unterdrückung Tests unter Verwendung von Maus oder humanen T - reg - Zellen klären entwickelt worden. Das Hauptziel dieser Studie ist es, ein Verfahren zu entwickeln , um die Unterschiede im Phänotyp und unterdrückende Funktion zwischen ruhenden und aktivierten T reg zu vergleichenZellen. Um aktivierten T - reg - Zellen wurden die Mäuse infiziert mit lymphatischer choriomeningitis Virus (LCMV) Klon 13 (CL13), eine chronische Belastung von LCMV isolieren. T reg Zellen aus der Milz von LCMV CL13-infizierten Mäusen isoliert zeigten sowohl die aktivierten Phänotyp und verbesserte suppressive Aktivität gegenüber T - Zellen aus naiven reg Mäusen isoliert ruht. Hier beschreiben wir die Basisprotokoll für ex vivo - Phänotyp - Analyse aktivierten T - reg - Zellen unterscheiden von T reg ruhenden Zellen. Weiterhin beschreiben wir ein Protokoll für die Messung der suppressive Aktivität von vollständig aktivierten T reg Zellen.

Wir erzeugten Mäuse mit persistenten Virusinfektion , indem sie mit 2 × 10 6 pfu von LCMV CL13 intravenös injiziert wird . Um die phänotypische Veränderungen in T reg Zellen und T conv Zellen während der chronischen Virusinfektion, Milzlymphozyten erhalten von naiven und infizierten Mäusen wurden gefärbt mit verschiedenen Antikörpern und analysiert mittels Durchflusszytometrie untersucht. CD4 + T conv (1A, oberes Fel...

Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Analyse des Phänotyps von regulatorischen T (Treg)-Zellen, die von naiven und chronischen lymphozytären Choriomeningitis-Virus-infizierten Mäusen isoliert wurden. Darüber hinaus stellen wir einen Prozess zur Verfügung, um die suppressive Aktivität derT-reg-Zellen zu bewerten.

Die phänotypische und funktionale Analyse von aktivierten regulatorischen T-Zellen isoliert von chronischer lymphatischer Choriomeningitisvirus-infizierte Mäuse

Regulatory T (Treg) cells, which express Foxp3 as a transcription factor, are subsets of CD4+ T cells. Treg cells play crucial roles in immune tolerance ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die in-vitro-suppressive Funktion von regulatorischen T-Zellen zu bewerten, die aus Mäusen mit chronischer Virusinfektion isoliert wurden. Diese Methode kann helfen, Fragen bezüglich des Phänotyps und der in-vitro-suppressiven Funktion aktivierter regulatorischer T-Zellen während einer chronischen Virusinfektion zu beantworten. Mithilfe dieser Technik lässt sich die direkte Wirkung regulatorischer T-Zellen auf Individuen mit positiver T-Zell-Antwort in vitro untersuchen.Dies ist ein großer Vorteil dieser Technik. Überführen Sie zunächst fünf mal zehn hoch fünf gesamt splenische Lymphozyten in 50 µL FACS-Puffer in jedes Brunnen einer neuen U-förmigen 96-Well-Platte, gefolgt von 150 µL FACS-Puffer. Zentrifugieren Sie die Platte und entfernen Sie den Überstand.Danach die Zellpellets aufwirbeln und die Zellen zwei weitere Male mit jeweils 200 µL FACS-Puffer pro Mulde waschen. Nach dem zweiten Waschschritt die Pellets in jeweils 50 µL Antikörpercocktail pro Mulde für 20 Minuten im Dunkeln bei vier Grad Celsius resuspendieren. Anschließend die Zellen zwei Mal mit FACS-Puffer waschen und den Überstand abgießen.Als Nächstes fixieren Sie die Zellen 20 Minuten im Dunkeln bei vier Grad Celsius mit 100 Mikroliter Fixierpuffer, gefolgt von zwei Waschungen mit Permeabilisierungspuffer. Nach der zweiten Waschung resuspendieren Sie die Zellen in 50 Mikroliter Anti-FOXP3-Antikörper. Um die mit anti-CD3-CD28 beschichteten Perlen vorzubereiten, überführen Sie das entsprechende Volumen magnetischer Perlen in ein 15-Milliliter-Röhrchen und geben ein gleiches Volumen PPS hinzu.Vorsichtig die Lösung durch Pipettieren mischen und die magnetischen Kügelchen zentrifugieren. Am Ende der Waschung das Überstand entfernen und die Kügelchen in 50 µL komplettem Medium pro Vertiefung verdünnen. Anschließend 50 µL von je 1 × 10⁵ CD4-positiven, CD25-positiven regulatorischen T-Zellen pro Vertiefung in einer 96-Loch-U-Boden-Platte ansäen, gefolgt von 50 µL von je 1 × 10⁵ CD8-positiven Reaktions-T-Zellen pro Vertiefung.Nachdem alle Zellen ausplattiert wurden, 50 Mikroliter der verdünnten, mit anti-CD3-CD28 beschichteten Perlen zu jedem Well hinzufügen und bis zu 50 Mikroliter Medium hinzufügen, um das Gesamtvolumen jedes Wells auf 200 Mikroliter aufzufüllen. Anschließend die Platte mit Folie abdecken und 72 Stunden lang bei 37 Grad Celsius in einem Kohlendioxid-Inkubator inkubieren. Zur Analyse der Zytokinproduktion von CD8-positiven T-Zellen die Überstände nach dreitägiger Kultivierung in eine andere 96-Well-Platte überführen und die Überstände gemäß den Herstelleranweisungen mittels ELISA analysieren.Um die Proliferation der CD8-positiven T-Zellen zu analysieren, waschen Sie die Zellen in der Platte dreimal mit FACS-Puffer. Anschließend resuspendieren Sie die Pellets in 50 Mikroliter eines geeigneten Antikörpercocktails gegen proliferierte CD8-positive T-Zellen und inkubieren 20 Minuten im Dunkeln bei vier Grad Celsius. Am Ende der Inkubation waschen Sie die Zellen zweimal mit FACS-Puffer und fixieren sie 20 Minuten im Dunkeln bei vier Grad Celsius mit 100 Mikroliter Fixierungspuffer.Abschließend die Zellen zwei weitere Male in FACS-Puffer waschen und die Pellets in 200 Mikrolitern FACS-Puffer resuspendieren. Anschließend den Prozentsatz der mit Phylat doppelt markierten, CD8-positiven T-Zell-Proliferation mittels Durchflusszytometrie bestimmen. In aus Milzzellen gewonnenen Lymphozyten von naiven und infizierten Mäusen wird PD-1 spezifisch in konventionellen FOXP3-negativen CD4-positiven sowie FOXP3-negativen CD8-positiven Zellen von mit LCMV-Klon 13 infizierten Mäusen hochreguliert.Die Häufigkeit von FOXP3-positiven, CD4-positiven regulatorischen T-Zellen ist bei mit LCMV-Klon 13 infizierten Mäusen doppelt so hoch wie bei naiven Mäusen, wobei die meisten FOXP3-positiven, CD4-positiven Zellen zusätzlich ein aktiviertes PD-1-hoch-Phänotyp aufweisen. CD8-positive Effektor-T-Zellen können erfolgreich ohne signifikante Kontamination durch andere Immunzellen abgetrennt werden. Nach der Isolierung regulatorischer T-Zellen lässt sich eine dominante Population von CD25-positiven, CD4-positiven T-Zellen mit einer Reinheit von über 80 Prozent erhalten.Die Stimulation isolierter regulatorischer und reagierender T-Zellen durch anti-CD3-CD28-beschichtete Kügelchen führt zu einer dosisabhängigen Hemmung der CD8-positiven reagierenden T-Zellen. Tatsächlich wird die Proliferation der CD8-positiven reagierenden T-Zellen signifikant gehemmt, wenn diese im Verhältnis 1:1 mit regulatorischen T-Zellen aus chronisch infizierten Mäusen kultiviert werden. Auch die Produktion von Interferon-gamma durch die CD8-positiven reagierenden Zellen ist signifikant gehemmt, wenn die CD8-positiven reagierenden T-Zellen mit aktivierten regulatorischen T-Zellen aus chronisch infizierten Mäusen koinkubiert werden, verglichen mit der Koinkubation mit ruhenden regulatorischen T-Zellen aus naiven Mäusen.Wir haben festgestellt, dass diese Technik in 80 Stunden abgeschlossen werden kann, wenn sie ordnungsgemäß durchgeführt wird. Während Sie dieses Verfahren durchführen, ist es wichtig, frisch isolierte regulatorische T-Zellen unmittelbar nach ihrer Isolierung zu verwenden. Durch diese Entwicklung ebnete diese Technik den Forschern auf dem Gebiet der Medizin den Weg, die Funktion regulatorischer T-Zellen bei chronisch entzündlichen Erkrankungen zu untersuchen.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man ein in-vitro-Regulationsverfahren zur Unterdrückung regulatorischer T-Zellen mithilfe eines Ko-Kultursystems aus regulatorischen und reagierenden T-Zellen einrichtet.

phenotypic-functional-analysis-activated-regulatory-t-cells-isolated

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Eine schnelle, einfache und kostengünstige Protokoll für die Erzeugung von Spender-derived multivirus-spezifische CTLs (RCTL) zur Infusion einer allogenen hämatopoetischen Stammzelltransplantation (HSCT) Empfänger die Gefahr der Entwicklung CMV, Adv. oder EBV-Infektionen. Dieses Herstellungsverfahren ist GMP-konform und sollte die breitere Umsetzung von T-Zell-Immuntherapie über spezialisierte Zentren zu gewährleisten.

Generierung von Multivirus-spezifischen T-Zellen zu verhindern / zu behandeln virale Infektionen nach allogenen hämatopoetischen Stammzelltransplantation

Adenovirale Gentransfer in naiven CD4-T-Zellen mit transgenen Expression des Coxsackie Adenovirus-Rezeptor ermöglicht die molekulare Analyse von regulatorischen...

Adenovirale Transduktion von Naive CD4 T-Zellen zu Treg Differenzierung Studieren

Wir entwickelten ein in vitro Assay, um die Rolle von immunWege in der Regulation der Zytokin-Sekretion von HIV-spezifischen CD4 + T-Zellen zu untersuchen.

In vitro-Test, um die Auswirkungen von immun Pathways auf die HIV-spezifischen CD4 T-Zell-Effektor-Funktion auswerten

Makrophagen sind Plastikzellen des hämatopoetischen Systems, die eine entscheidende Rolle bei der schützenden Immunität und Homöostase haben. In diesem Bericht beschreiben wir optimierte in vitro- Techniken zur phänotypischen und funktionellen Charakterisierung von pfropf-infiltrierenden regulatorischen Makrophagen, die sich im transplantierten Organ unter toleranten Bedingungen ansammeln.

Funktionelle Charakterisierung von regulatorischen Makrophagen, die eine pfropfreaktive Immunität hemmen

Lymphozyten sind die Hauptakteure bei adaptiven Immunantworten. Hier stellen wir ein Lymphozytenreinigungsprotokoll vor, um die physiologischen Funktionen der gewünschten Moleküle bei der Lymphozytenaktivierung in vitro und in vivo zu bestimmen. Die beschriebenen experimentellen Verfahren eignen sich zum Vergleich der Funktionsfähigkeit von Kontroll- und genetisch veränderten Lymphozyten.

Isolation und Aktivierung von murinen Lymphozyten

Viele experimentelle Systeme wurden die Mechanismen regulieren T-Zell-Entwicklung und Funktion in einer Immunantwort zu verstehen, verwendet. Hier ist ein genetischer Ansatz retrovirale Transduktion unter Verwendung beschrieben, die wirtschaftlich ist, Zeit effizient, und vor allem sehr informativ bei der Identifizierung von Regulationswege.

Retrovirale Transduktion von T-Helferzellen als genetischer Ansatz zur Untersuchung Mechanismen der Kontrolle ihrer Differenzierung und Funktion

Dieses Papier beschreibt Protokolle zur Bewertung der Tfh- und GC-B-Antwort im Mausmodell einer Influenza-Virusinfektion.

Bewertung von T Follicular Helper Cells und Germinal Center Response During Influenza A Virus Infection in Mice

In dieser Arbeit werden zwei optimierte Protokolle für die Untersuchung von residenten und peripher abgeleiteten Immunzellen innerhalb des zentralen Nervensystems, einschließlich des Gehirns, des Rückenmarks und der Hirnhäute, vorgestellt. Jedes dieser Protokolle trägt dazu bei, die Funktion und Zusammensetzung der Zellen zu bestimmen, die diese Kompartimente unter stationären und entzündlichen Bedingungen besetzen.

Isolierung von Geweben des Zentralnervensystems und zugehörigen Hirnhäuten für die nachgeschaltete Analyse von Immunzellen

Die aktuelle Studie zeigt Protokolle zur Bewertung der frühen Schicksalsbindung von virusspezifischenT-FH-Zellen und zur Manipulation der Genexpression in diesen Zellen.

Zugang zur frühen Differenzierung der virusspezifischen follikulären Helferzelle CD4+ T-Zellen in akuten LCMV-infizierten Mäusen

Die Studie zeigt die Rolle der Haut bei der Modulation der Immunantwort bei Mäusen durch epikutane (EC) Immunisierung. Die EC-Immunisierung mit einem Proteinantigen kann in Kombination mit erregerassoziierten molekularen Mustern Immunantworten bei Kontaktüberempfindlichkeit unterdrücken oder die hautinduzierte Suppression rückgängig machen. Die EC-Immunisierung ist vielversprechend und bietet einen wirksamen, nadelfreien Ansatz für die Immuntherapie.

Mausmodell der epikutan induzierten Immunmodulation

Dieses Protokoll bietet eine In-vitro-Kokulturstrategie zur Untersuchung der Auswirkungen regulatorischer T-Zellen auf die Proliferation und Differenzierung von Effektor-T-Zellen.

In vitro Funktionelle Analyse regulatorischer T-Zellen: Fokus auf Proliferation und Differenzierung

Erfahren Sie die phänotypische und funktionale Analyse von regulatorischen T-Zellen aus chronisch lymphozytärem Choriomeningitisvirus-infizierten Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Bewertung der suppressiven Aktivität in vitro.

Die phänotypische und funktionale Analyse von aktivierten regulatorischen T-Zellen isoliert von chronischer lymphatischer Choriomeningitisvirus-infizierte Mäuse (Video) | JoVE Journal

Die phänotypische und funktionale Analyse von aktivierten regulatorischen T-Zellen isoliert von chronischer lymphatischer Choriomeningitisvirus-infizierte Mäuse

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