Name: Extraktion von Pflanzenbasis Kapseln für Mikroverkapselung Anwendungen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 54 s
Description: Lernen Sie die optimierte Extraktion von Sporopollenin-Exin-Kapseln aus Lycopodium clavatum-Sporen für Mikroverkapselungsanwendungen. Diese Methode reduziert die Extraktionszeit erheblich und ermöglicht die Beladung hydrophiler Verbindungen.

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Diese Arbeit wurde von der National Research Foundation (NRF-NRFF2011-01) und dem National Medical Research Council (NMRC/CBRG/0005/2012) unterstützt.

1. Extraktion von Sporopollenin Exine Kapseln (SECs) von L. clavatum Spores Hinweis: Der Extraktionsprozess SEC beinhaltet ein entflammbares Pulver (L. clavatum), heiße ätzende Säuren und brennbare Lösungsmittel, also richtige persönliche Schutzausrüstung (Schutzbrille, Gesichtsmaske, Handschuhe, Kittel) genehmigte Risikobewertung auf Nutzung und Entsorgung Chemikalien von autorisiertem Laborpersonal ist von wesentlicher Bedeutung. <ol><li> Spore Entfettung <ol><li> Bereiten Sie eine Reflux - Set-up in einem Abzug durch einen Glaskühler, Wasserzirkulationssystem, und Wasserbad (Abbildung 1). </li><li> Man wiegt 100 g L. clavatum Sporen ohne Staubbildung und weg von jeder Zündquelle. Hinweis: Die hier verwendeten Sporen im Handel erhalten wurden (siehe Materialliste). </li><li> Transfer Sporen langsam zu einer 1 L Polytetrafluorethylen (PTFE) Rundkolben mit einem magnetischen Rührstab. </li><li> In 500 ml Aceton zu den Sporen in derPTFE-Kolben und schüttelt den Kolben sanft um eine homogene Suspension zu bilden. </li><li> Setzen Sie den PTFE-Kolben im Wasserbad Satz bei 50 ° C und eine Verbindung zum Rückflußkühler. </li><li> Führen Sie unter Rückfluß in Aceton für 6 Stunden mit 200 Umdrehungen pro Minute gerührt und dann lassen bei RT abkühlen. </li><li> Filtern Sie die Suspension mit Filterpapier unter Vakuum und sammeln die entfettet Sporen in großen (15 cm Durchmesser) Petrischalen aus Glas. </li><li> Trocknen der Sporen bei Raumtemperatur (fume hood) durch Abdecken mit Aluminiumfolie mit Löchern für die Lösungsmittelverdampfung. </li></ol></li><li> Acidolyse <ol><li> Bereiten Sie 85% (v / v) Phosphorsäure mit entsalztem Wasser (DI) und übertragen entfettet trockenen Sporen in einen 1 l PTFE-Kolben. </li><li> Hinzufügen 500 ml Phosphorsäure (85% v / v) zu den entfetteten Sporen. </li><li> Setzen Sie den PTFE-Kolben in einem Wasserbad Satz bei 70 ° C und eine Verbindung zum Rückflußkühler. </li><li> Führen leichtem Rückfluß (70 ° C) in Phosphorsäure für 30 h und dann lassenbei Raumtemperatur kühlen. </li><li> Verdünnen Sie die Suspension von 500 ml warmem DI Wasser und die SECs durch Vakuumfiltration mit Filterpapier sammeln. </li><li> Übertragen Sie die SECs in einen 3 L Becherglas eine Reihe von Waschungen durchzuführen. </li></ol></li><li> SEC Waschen <ol><li> Legen Sie die 3 L Becherglas enthält SECs in einem Abzug. </li><li> Hinzufügen 800 ml heißem (50 ° C) DI Wasser zu den SECs unter leichtem Rühren für 10 min. </li><li> Filtern Sie die Suspension durch mit Filterpapier und eine Vakuumfiltration Set-up. </li><li> Sammeln Sie die SECs in einem sauberen 3 L Becherglas. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.1. bis 1.3.4. fünf Mal. </li><li> Hinzufügen 600 ml heißem (45 ° C) Aceton zu dem SECs unter leichtem Rühren für 10 min. </li><li> Sammeln Sie die SECs durch Filtration unter Vakuum und übertragen Sie die SECs auf eine saubere 3 L Becherglas. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.6. und 1.3.7. unter Verwendung von 600 ml heißem (50 ° C) 2 M Chlorwasserstoffsäure. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.6. und 1.3.7. mit 600 ml hot (50 ° C) 2 M Natriumhydroxid. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.1 und 1.3.4 achtmal. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.6. und 1.3.7. unter Verwendung von 600 ml heißem (45 ° C) Aceton. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.6. und 1.3.7. mit 600 ml heißem (45 ° C) Ethanol. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 1.3.6. und 1.3.7. mit 800 ml heißem (50 ° C) DI-Wasser. </li><li> Übertragen Sie die sauber SECs bis sechs große Petrischalen aus Glas und trocken in einem Abzug bei RT für 24 Stunden alle Wassergehalt zu entfernen. </li><li> Trocknen Sie die SECs in einem Vakuumofen bei 60 ° C und 1 mbar Vakuum 10 h oder bis zur Gewichtskonstanz. </li><li> Sammeln Sie die getrockneten SECs und Transfer in eine Polypropylenflasche. </li><li> Bewahren Sie die SECs in einem trockenen Schrank. </li></ol></li></ol> 2. Charakterisierung von SECs <ol><li> Führen Sie rasterelektronenmikroskopische Analyse 41 in verschiedenen Stadien Sporen und SECs verwenden. </li><li> Führen Elementaranalyse 41 in verschiedenen Stadien Sporen und SECs verwenden. Dry alle Proben bei 60 ° C für mindestens 1 Stunde vor der Elementaranalyse und Berechnung des Proteingehalts unter Verwendung Prozent Stickstoff mit einem Multiplikationsfaktor von 6,25. 11 Ergebnisse erhalten für jede Probe drei Messungen verwendet wird . </li><li> Führen Sie Micromeritic Eigenschaften Analyse ein dynamisches Bild Particle Analyzer verwendet wird . 41 </li><li> Scannen nicht verarbeiteten, verarbeitet und FITC-BSA-loaded SECs konfokalen Laser - Scanning - Mikroskopie. 41 </li></ol> 3. Biomakromoleküls Encapsulation von Vakuum-Loading-Technik <ol><li> Bereiten 1,2 ml 125 mg / ml Rinderserumalbumin (BSA) -Lösung unter Verwendung von DI-Wasser und in ein 50 ml Polypropylenröhrchen. </li><li> Man wiegt 150 mg SECs und Transfer zum BSA-Lösung. </li><li> Vortexen das Röhrchen für 10 min eine homogene Lösung zu bilden. </li><li> Decken Sie die Röhrchen mit Filterpapier. </li><li> Übertragen Sie das Rohr zu einem Gefriertrockner Kolben und trocken für 4 Stunden mit Vakuum bei 1 mbar. </li><li> Führen Sie die Schritte 3.1bis 3,5. für drei unabhängige Chargen. </li><li> Sammeln Sie die BSA-beladenen SECs und entfernen Sie die Agglomerate mit einem Mörser und Stößel. </li><li> Übertragen Sie die BSA-loaded SECs auf eine 50-ml-Röhrchen und 2 ml DI-Wasser, um den Rest BSA zu entfernen. </li><li> Sammeln Sie die SECs durch Zentrifugation bei 4704 × g für 5 min und den Überstand verwerfen. </li><li> Wiederholen Sie die Wäsche mit VE-Wasser einmal. </li><li> Decken Sie die Röhrchen mit BSA-beladenen SECs mit Filterpapier. </li><li> Übertragen Sie die SECs zu einem Gefrierschrank (-20 ° C) und einfrieren für 1 Stunde. </li><li> Frieren Sie trocknen die SECs für 24 Stunden und Speicher in einem Gefrierschrank bis zur weiteren Charakterisierung. </li><li> Bereiten Sie die Placebo SECs ohne BSA dem gleichen Verfahren wie in den Schritten 3.1 verwenden. bis 3.13. </li><li> Bereiten Sie die FITC-BSA loaded SECs 3.1 das gleiche Verfahren wie in Schritten. bis 3.13. </li></ol> 4. Bestimmung der Umhüllungs-Effektivität <ol><li> Wiegen 5 mg BSA-loaded SECs in 2 ml Polypropylenröhrchen. </li><li> In 1,4 ml Phosphate gepufferte Kochsalzlösung, pH 7,4 (PBS) und Vortex für 5 min. </li><li> Sonde beschallen die Suspension bei 40% Amplitude für 3 Zyklen von 10 sec. </li><li> Filtern Sie die Lösung mit einem 0,45 um-Polyethersulfon (PES) Filter. </li><li> Führen die gleiche Prozedur wie in den Schritten 4.1. bis 4.4. mit Placebo SECs. </li><li> Messen Sie die Absorption bei 280 nm mit Placebo als Rohling. </li><li> Quantifizierung der Menge an BSA verkapselt eine BSA - Standardkurve unter Verwendung von (200 bis 1.000 &amp; mgr; g / ml) in PBS. 42 </li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

In dieser Arbeit wird eine systematische Analyse der SEC - Extraktion aus L. clavatum Sporen präsentiert und dieser Bericht zeigt , dass es möglich ist , eine höhere Qualität Kapseln zu produzieren , während auch eine deutliche Straffung der vorbestehenden häufigsten verwendete Protokoll zu erreichen. 11 Im Gegensatz zu dem bestehenden Protokoll eine hohe Prozesstemperatur erforderlich ist (180 ° C) und eine lange Prozessdauer (7 Tage), 11 die aktuelle Optimierungs wurde SEC - Extraktionsv...

Es gibt großes Interesse an natürlichen Pflanzenbasis Kapseln aus Pflanzensporen und Pollen für die Verwendung in der Mikroverkapselung Anwendungen erhalten. 1-15 In der Natur, Sporen und Pollen Schutz für empfindliche genetische Materialien gegen raue Umgebungsbedingungen. Die Grundstruktur der Pflanzensporen und Pollen umfasst typischerweise eine äußere Hüllschicht (exine), eine innere Mantelschicht (intine) und die interne zytoplasmatische Material. Die exine besteht aus einem chemisch robust Biopolymer 1,9,10,13,16 bezeichnet als Sporopollenin und die intine besteht hauptsächlich aus cellulosischen Materialien besteht. 16-18 leeren Kapseln kann nach verschiedenen Verfahren zur Entfernung von 7,9 cytoplasmatische Material isoliert werden , Proteine und die intine Schicht. 2,12,16 Diese Sporopollenin exine Kapseln (SECs) eine überzeugende Alternative zu synthetischen Vergussmassen bieten aufgrund ihrer engen Größenverteilung und eine einheitliche Morphologie. 7,9,13,19,20 dieEntwicklung von standardisierten Prozessen SECs aus verschiedenen Pflanzenarten, wie Lycopodium clavatum zu erhalten, öffnet sich das Potential für eine breite Palette von Mikroverkapselung Anwendungen auf den Gebieten der Arzneimittelabgabe, Nahrungsmittel und Kosmetika. 6,10-13,21 Um SECs zu erhalten, zytoplasmatische Inhalte zu entfernen , Sporen und Pollen mit organischen Lösungsmitteln und unter Rückfluß erhitzt in alkalischen Lösungen behandelt Forscher zuerst. 22-25 jedoch wurde die verbleibende Kapselstruktur des Cellulose intine Schicht enthalten noch bestimmt. Um diese zu entfernen, erkundeten die Forscher die Verwendung von längeren saure Hydrolyse Verarbeitung Salzsäure, heißer Schwefelsäure oder heiße Phosphorsäure über mehrere Tage mit, 22-25 mit Phosphorsäure die bevorzugte Methode der SEC intine Entfernung zu werden. 2 jedoch laufend Forschung in den letzten Jahren hat gezeigt, dass verschiedene Sporen und Pollen haben unterschiedliche Grade der Widerstandsfähigkeit gegenüber der harten Verarbeitung michthoden verwendet. 26,27 Einige Sporen und Pollen vollständig abgebaut sind und alle strukturelle Integrität in stark alkalischen Lösungen zu verlieren, oder stark in stark sauren Lösungen beschädigt werden. 16 Die Variabilität in SEC als Reaktion auf die Behandlungsbedingungen ist aufgrund subtile Variationen in der chemischen Struktur und Morphologie des exine Sporopollenin exine Material zwischen den Arten. 28 Aufgrund der Variabilität in der Robustheit Sporopollenin exine Kapseln (Sekunden), ist es notwendig , die Verarbeitungsbedingungen für die einzelnen Arten von sporen und Pollen zu optimieren. Pflanzensporen aus der Spezies L. clavatum haben die am häufigsten untersuchten einzelne Quelle von SECs werden. Es wird vorgeschlagen , dass dies in erster Linie wegen seiner breiten Verfügbarkeit ist, niedrige Kosten, Monodispersität und chemische Robustheit 9,29 Die Sporen leicht geerntet werden können und enthalten sporoplasmic Inhalte in Form von Gruppen von 1 -. 2 um Zellorganellen und biomolecules. 11 L. clavatum Sporen wurden als natürliches Pulverschmiermittel, 30,31 Basis für Kosmetika, 30 und in der Kräutermedizin 32-36 für eine breite Palette von therapeutischen Anwendungen eingesetzt. Die SECs von L. erhalten clavatum wurden zur Verkapselung gezeigt werden , widerstandsfähiger Verarbeitung als SECs aus anderen Arten von Sporen und Pollen. 2 Nach der Bearbeitung wurden die resultierenden SECs worden ihre komplizierten microridge Strukturen und hohe morphologische Homogenität gezeigt zu halten , während eine große innere Hohlraum bereitstellt. 7 Studien zeigen , dass L. clavatum SECs kann zur Verkapselung von Arzneimitteln, Impfstoffen 10,13, 11 - Proteine, 7,14 Zellen, 8 Öle, 5-7,9 und Nahrungsergänzungsmittel. 5,15 Beobachteter SEC Ladewirkungsgrade sind relativ hoch im Vergleich zu herkömmlichen verwendet werden , Verkapselungsmaterialien. 7 Es gibt auch eine Reihe von Vorteilen berichtetDas am häufigsten verwendete SEC Extraktionsverfahren für L. SEC Einkapselung wie die Fähigkeit , Geschmack zu maskieren, 6,10 und einen gewissen Grad an natürlicher Schutz gegen Oxidation zu sorgen. 12 in den vorliegenden Studien, clavatum basiert auf vier Hauptschritte. Schritt eins ist Lösungsmittel Rückflußkochen in Aceton bis zu 12 Stunden bei 50 ° C , um die Sporen zu entfetten. 11 Schritt zwei alkalisch Rückfluß in 6% Kaliumhydroxid für bis zu 12 h bei 120 ° C zytoplasmatischen und proteinöse Materialien zu entfernen. 11 Stufe drei ist Säure Rückfluss in 85% iger Phosphorsäure für bis zu 7 Tage bei 180 ° C , um die Cellulose - intine Material zu entfernen. 11 Schritt vier ist ein umfassendes Waschvorgang Wasser, Lösungsmittel, Säuren und Basen alle verbleibenden nicht exine Material zu entfernen und chemische Rückstände. Die Hauptziele der SEC-Extraktion in Bezug auf Verkapselungsanwendungen sind Kapseln zu produzieren, die leeren zytoplasmatischer Material, frei from potenziell allergene Proteine und morphologisch intakt. 2,37 jedoch von einem industriellen Fertigungs Sicht ist es auch wichtig ist , weitere wirtschaftliche und ökologische Faktoren wie Energieeffizienz, Produktionsdauer, Sicherheit, und die daraus resultierenden Abfall zu betrachten. Im Hinblick auf die Energieeffizienz, sowohl bei hohen Temperaturen und lange Bearbeitungszeiten beeinflussen die Produktionskosten sowie Umweltbelastung. Produktionsdauer und Laufzeit sind wichtige Faktoren, die die Verarbeitung der Rentabilität. Besonders besorgniserregend ist , dass Hochtemperatur - Sicherheitsfragen Phosphorsäure Verarbeitung erhöht und wird in korrosiven Skalierung führen bekannt , die in die Instandhaltung der Infrastruktur und Verzögerungen bei der Batch - Laufzeiten zu einem signifikanten Anstieg führt. 38-40 Wo es möglich ist , die Minimierung der Anzahl der erforderlichen Schritte führen kann deutlich den produzierten Abfall zu reduzieren. Jedoch verwendet das allgemein vierstufigen Prozess von L. clavatum SEC Extraktion hat einfach evolved aus Jahrzehnten der Forschung und hat wenig tatsächlichen Prozessoptimierung hatte. Vor kurzem Mundargi et al., Machte 41 einen wesentlichen Beitrag zu den laufenden Arbeiten in diesem Bereich durch die systematische Auswertung und eines der am häufigsten berichteten SEC Extraktionstechniken zu optimieren. Im ersten Abschnitt dieser Studie: Sporen Entfettung wird 6 h bei 50 ° C unter Verwendung von Aceton-Verarbeitung gezeigt; sporoplasm und intine Abschiebungsverfahren demonstriert für 30 Stunden bei 70 ° C 85% ige Phosphorsäure Verarbeitung verwendet wird; ausgiebiges Waschen mit Wasser, Lösemittel, Säure und Base wird verwendet, um die Entfernung von restlichem sporoplasmic Inhalte zu zeigen; und SEC Trocknung wird gezeigt, unter Verwendung von Konvektion Trocknen und Vakuumofentrocknung. Im dritten Abschnitt wird SEC Vakuumlade Vakuum Laden eines Modellproteins demonstrierte Verwendung von Rinderserumalbumin (BSA), gefolgt von BSA-geladen-SEC Waschen und Lyophilisieren. Im vierten Abschnitt wird die determination des Wirkungsgrades BSA Verkapselung Zentrifugation demonstrierte Verwendung Sondenbeschallung und UV / Vis-Spektrometrie.

<table><tbody><tr><td>Lycopodium clavatum Sporen (s-Typ)</td><td>Sigma</td><td>19108-500G-F</td><td></td></tr><tr><td>Rinderserumalbumin</td><td>Sigma</td><td>A2153-50G</td><td></td></tr><tr><td>FITC-konjugiert BSA</td><td>Sigma</td><td>A9771-250MG</td><td></td></tr><tr><td>Phosphorsäure (85% w/v)</td><td>Sigma</td><td>438081-2,5L</td><td></td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Sigma</td><td>V800202&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Natriumhydroxid</td><td>Sigma</td><td>S5881-1KG&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Aceton</td><td>Sigma</td><td>V800022</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>AcME&nbsp;</td><td></td><td></td>C000356</tr><tr><td>Deionisiertes Wasser</td><td>Millipore gereinigtes Wasser&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Qualitatives Filterpapier (Sorte Nr. 1, Baumwollzellulose)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mikrokügelchen aus Polystyrol (50 &plusmn; 1 & micro; m)&nbsp;</td><td>Thermowissenschaftlich (CA, USA)</td><td>4250A</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield&nbsp;</td><td>Vector labs (CA, USA)</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>Sticky-Dias, D 263 M Schott Glas, Nr.1.5H (170 &mu; m, 25 mm x 75 mm) unsteriler Objektträger</td><td>Ibidi GmbH (München, Deutschland)</td><td>10812</td><td></td></tr><tr><td>Commercial Lycopodium SECs (L-Typ)</td><td>Polysciences, Inc. (PA, USA)</td><td>16867-1</td><td></td></tr><tr><td>Heizplatten</td><td>IKA, Deutschland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rasterelektronenmikroskop</td><td>Jeol, Japan</td><td>&nbsp; JFC-1600</td><td></td></tr><tr><td>Elementar-Analysator</td><td>Elementar, Deutschland</td><td>VarioEL III</td><td></td></tr><tr><td>FlowCam: Das Tischsystem</td><td>Fluid Imaging Technologies, USA</td><td>FlowCamVS</td><td></td></tr><tr><td>Konfokales Laser-Scanning-Mikroskop</td><td>Carl Zeiss, Deutschland</td><td>LSM710</td><td></td></tr><tr><td>Gefriertrockner</td><td>Labconco, USA&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UV-Spektrometer</td><td>Boeco, Deutschland</td><td>S220</td><td></td></tr></tbody></table>

extraktion von pflanzenbasis kapseln für mikroverkapselung anwendungen

Extraction of Plant-based Capsules for Microencapsulation Applications

Mikrokapseln, die aus pflanzlicher Basis Sporen oder Pollen bieten eine robuste Plattform für ein breites Spektrum von Mikroverkapselung Anwendungen. Sporopollenin exine Kapseln (SECs) erhält, wenn Sporen und Pollen verarbeitet werden, um die interne sporoplasmic Inhalte zu entfernen. Die resultierenden hohlen Mikrokapseln mit einem hohen Grad an Micromeritic Einheitlichkeit aufweisen und komplizierte mikrostrukturellen Eigenschaften auf die besonderen Pflanzenarten im Zusammenhang behalten. Hier zeigen wir einen optimierten Prozess für die Herstellung von SECs von Keulen-Bärlapp - Sporen und für die Beladung von hydrophilen Verbindungen in diese SECs. Die aktuelle SEC Isolierungsverfahren wurde in SEC Isolations kürzlich optimiert, um signifikant die Verarbeitungsanforderungen zu reduzieren, die konventionell verwendet werden, und die Produktion von intakten Mikrokapseln zu gewährleisten. Natürliche L. clavatum Sporen werden mit Aceton entfettet, mit Phosphorsäure behandelt und extensiv sporoplasmi zu entfernen gewaschenc Inhalt. Nach Aceton Entfettung, alle sporoplasmic einen einzigen Schritt Verarbeitung 85% unter Verwendung von Phosphorsäure gezeigt Inhalte zu entfernen ist. Durch die Begrenzung der Säurebearbeitungszeit auf 30 Stunden, ist es möglich, saubere SECs zu isolieren und SEC Fracturing vermeiden, die gezeigt worden ist, mit einer verlängerten Verarbeitungszeit auftreten. Ausgiebiges Waschen mit Wasser, verdünnte Säuren, verdünnte Basen und Lösungsmittel sichergestellt, dass alle sporoplasmic Material und chemische Rückstände ausreichend entfernt werden. Die Vakuumbeladungstechnik wird verwendet, um ein Modellprotein (Rinderserumalbumin) als repräsentative hydrophile Verbindung zu laden. Vakuumbelastung stellt eine einfache Technik verschiedene Verbindungen ohne die Notwendigkeit einer scharfen Lösungsmittel oder unerwünschte Chemikalien zu laden, die oft in anderen Mikroverkapselung Protokolle erforderlich sind. Auf der Grundlage dieser Isolation und Belastungsprotokollen bieten SECs ein vielversprechendes Material für den Einsatz in einem breiten Spektrum von Mikroverkapselung-Anwendungen, wie Therapeutika, Lebensmittel, Kosmetika und Körperpflege proddukten.

Schlanke Extraktionsverfahren für Sporopollenin Exine Kapseln Die L. clavatum SEC Extraktion wurde durch drei Hauptschritte erzielt: (1) Entfettung mit Aceton; (2) Acidolyse mit Phosphorsäure 85% (v / v); und (3) Umfangreiche SEC Waschen unter Verwendung von Lösungsmitteln. Die Strömung des rationalisierte SEC Extraktionsprozess in Abbildung 1 A dargestellt wird . - Ich</stron...

Dieses Protokoll / Manuskript beschreibt einen optimierten Prozess für die Herstellung von Sporopollenin exine Kapseln (SECs) von Keulen-Bärlapp - Sporen und für die Beladung von hydrophilen Verbindungen in diese SECs.

Extraktion von Pflanzenbasis Kapseln für Mikroverkapselung Anwendungen

Microcapsules derived from plant-based spores or pollen provide a robust platform for a diverse range of microencapsulation applications. Sporopollenin ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, einen optimierten Prozess zur Gewinnung von Sporopollenin-Exin-Kapseln, oder SECs, für Mikroverkapselungsanwendungen zu etablieren. Diese Methode kann schnell saubere Mikrokapseln für Anwendungen in der Lebensmittel- und Gesundheitsbranche bereitstellen. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass die Extraktionsdauer für SECs erheblich verkürzt werden kann, um saubere, intakte SECs zu erzeugen.Obwohl diese Methode Einblicke in den optimierten Extraktionsprozess der SEC sowie eine umfassende schrittweise Charakterisierung ermöglicht, kann sie auch zur Untersuchung grundlegender mikrostruktureller und morphologischer Eigenschaften verschiedener pflanzlicher Biomaterialien verwendet werden. Personen, die mit dieser Methode neu beginnen, haben in der Regel Schwierigkeiten aufgrund des herkömmlichen 8- bis 10-tägigen Extraktionsverfahrens, das stark ätzende Säuren bei erhöhten Temperaturen beinhaltet. Um dieses Verfahren zu beginnen, richten Sie eine Rückflussapparatur in einem Abzug mit einem Glas-Kühler, einem Wasserkreislaufsystem und einem Wasserbad ein.Da der SEC-Extraktionsprozess stark ätzende Säuren und organische Lösungsmittel verwendet, sollte der Prozess unter Verwendung geeigneter persönlicher Schutzausrüstung wie Schutzbrille, Laborkittel, Gesichtsmaske und Handschuhen mit Gefahrenhinweis durchgeführt werden. Wiegen Sie sorgfältig 100 Gramm L-clavatum-Sporen ab, ohne Staub zu erzeugen und fern von jeder Zündquelle. Überführen Sie die Sporen anschließend langsam in einen einkolbenförmigen PTFE-Kolben mit einem magnetischen Rührstab mit einem Fassungsvermögen von einem Liter.Geben Sie 500 Milliliter Aceton zu den Sporen hinzu und schütteln Sie das Kolben vorsichtig, um eine homogene Suspension zu bilden. Stellen Sie nun das Kolben in ein Wasserbad, das auf 50 Grad Celsius eingestellt ist und mit dem Rückflusskühler verbunden ist. Erhitzen Sie die Suspension unter Rühren mit 200 U/min sechs Stunden lang zum Rückfluss.Nachdem die Suspension auf Raumtemperatur abgekühlt ist, filtrieren Sie sie unter Vakuum mithilfe von Filterpapier und sammeln Sie die entfetteten Sporen in großen Glas-Petri-Schalen. Trocknen Sie die Sporen bei Raumtemperatur, indem Sie die Petri-Schalen mit perforierter Aluminiumfolie abdecken, um die Verdunstung des Lösungsmittels zu ermöglichen. Nach dem Umsetzen der getrockneten, entfetteten Sporen in einen einliterigen PTFE-Kolben geben Sie 500 Milliliter 85%ige Phosphorsäurelösung hinzu.Stellen Sie den Kolben in ein Wasserbad, das auf 70 Grad Celsius eingestellt ist, und schließen Sie ihn an den Rückflusskühler an. Erhitzen Sie die Suspension unter Rühren 30 Stunden im Rückfluss. Nachdem die Suspension auf Raumtemperatur abgekühlt ist, verdünnen Sie sie mit 500 Milliliter warmem entionisiertem Wasser und gewinnen Sie die SECs durch Vakuumfiltration mit Filterpapier.Überführen Sie danach die SECs in einen dreiliterfassenden Glasbecher, um eine Reihe von Waschungen durchzuführen. Geben Sie im Abzug 800 Millimeter heißes deionisiertes Wasser zu den SECs und rühren Sie vorsichtig 10 Minuten lang um. Anschließend filtrieren Sie die Suspension unter Vakuum mithilfe von Filterpapier.Überführen Sie die SECs in einen sauberen dreiliterigen Glasbecher. Nachdem Sie die vorherigen Schritte fünfmal wiederholt haben, geben Sie 600 Milliliter heißes Aceton zu den SECs und rühren vorsichtig 10 Minuten lang um. Sammeln Sie die SECs durch Filtration unter Vakuum und überführen Sie sie in einen sauberen dreiliterigen Glasbecher.Nachdem die vorherigen Schritte mit den geeigneten Lösungsmitteln wiederholt wurden, überführen Sie die gereinigten SECs in sechs große Glas-Petri-Schalen und lassen Sie sie 24 Stunden lang bei Raumtemperatur in einem Abzug trocknen, um das gesamte Wasser zu entfernen. Anschließend trocknen Sie die SECs 10 Stunden lang im Vakuumofen bei 60 Grad Celsius und einem Vakuum von einem Millibar oder bis zur Gewichtskonstanz. Danach überführen Sie die getrockneten SECs in eine Polypropylenflasche zur Aufbewahrung in einem Trockenschrank.Stellen Sie 1,2 Milliliter einer Lösung aus Rinderserumalbumin (BSA) in entionisiertem Wasser her und geben Sie diese in einen 50-Milliliter-Polypropylenbehälter. Fügen Sie 150 Milligramm SECs zur BSA-Lösung hinzu. Vortexen Sie die Mischung 10 Minuten lang, um eine homogene Lösung zu erhalten.Nachdem Sie das Röhrchen mit Filterpapier abgedeckt haben, überführen Sie es in einen Gefriertrocknerkolben und trocknen es vier Stunden lang unter Vakuum bei einem Millibar. Sobald die mit BSA beladenen SECs trocken sind, entfernen Sie die Agglomerate mit einem Mörser und Stößel. Überführen Sie die mit BSA beladenen SECs nun in ein 50-Milliliter-Röhrchen und geben Sie zwei Milliliter entionisiertes Wasser hinzu, um die restliche BSA zu entfernen.Sammeln Sie die SECs durch Zentrifugation bei 4.704 × g für fünf Minuten. Entsorgen Sie nach Beendigung das Überstand. Wiederholen Sie die Waschung mit entionisiertem Wasser.Danach den Schlauch mit den mit BSA beladenen SECs mit Filterpapier abdecken. Anschließend die SECs für eine Stunde in einen Gefrierschrank überführen. Die SECs 24 Stunden lang gefriertrocknen.Bewahren Sie die SECs bis zur weiteren Charakterisierung im Gefrierschrank auf. Verwenden Sie fünf Milligramm der mit BSA beladenen SECs in einem zweimilliliter-Polypropylenrohr. Geben Sie 1,4 Milliliter PBS hinzu und wirbeln Sie fünf Minuten lang im Vortex. Danach die Suspension dreimal für jeweils zehn Sekunden mit einem Ultraschallsondengerät bei 40 % Amplitude beschallen. Anschließend die Lösung durch einen 0,45-Mikrometer-Polyethersulfon-Filter filtrieren. Nach Durchführung der vorherigen Schritte mit den Placebo-SECs die Extinktion der mit BSA beladenen SECs bei 280 Nanometern unter Verwendung des Placebos als Blindwert messen.Schließlich quantifizieren Sie die Menge des verkapselten BSA unter Verwendung einer BSA-Standardkurve in PBS. REM-Bilder zeigen intakte Sporen mit einer einzigartigen Mikrostruktur, und vor der Verarbeitung wurden im Querschnittsbild organelle im Maßstab von Mikrometern im Sporoplasma beobachtet. Nach Entfettung der Sporen und Behandlung mit Alkali wurden keine morphologischen und strukturellen Veränderungen beobachtet.SEM-Bilder nach der Acidolyse zeigen intakte SECs, die frei von sporoplasmatischen Materialien sind. Bei entfetteten und alkalibehandelten SECs wird durch CHN-Analyse kein wesentlicher Abbau proteinhaltiger Materialien beobachtet. Der Großteil der proteinhaltigen Materialien wird durch Acidolyse entfernt.Die DIPA-Analyse zeigt die gleichmäßige Größenverteilung der SECs nach Acidolyse für bis zu 30 Stunden. Die strukturelle Integrität der SECs nimmt mit verlängerter Acidolyse ab. Die Daten aus REM und DIPA zeigen, dass nach dem Entfettungsschritt die Acidolyse intakte SECs mit einer gleichmäßigen Größenverteilung erzeugt hat.Die CLSM-Daten zeigen, dass unbehandelte SECs aufgrund von Sporoplasma-Bestandteilen in der Sporenkammer eine Autofluoreszenz aufweisen. Nach der reinen Acidolysebehandlung werden sämtliche sporoplasmatischen Inhalte entfernt. Nach der Einschließung von FITC-BSA wird eine grüne Fluoreszenz innerhalb der SECs beobachtet.Die REM-Bilder zeigen intakte Mikrorillen nach der BSA-Beladung. Es wurden keine wesentlichen Änderungen im Durchmesser, in der Rundheit und im Seitenverhältnis nach der BSA-Beladung in SECs beobachtet. Die Quantifizierung von BSA aus eingeschlossenen SECs bestätigt die Konsistenz des Mikroverkapselungsprozesses mit 0,170 ± 0,01 Gramm BSA-Beladung pro Gramm SECs.Wenn der optimierte SEC-Extraktionsprozess einmal beherrscht ist, kann er bei korrekter Durchführung innerhalb von 48 Stunden durchgeführt werden. Bei der Anwendung dieses Verfahrens auf verschiedene Pflanzensporen und -pollen ist es wichtig, schrittweise die strukturelle, morphologische und elementare Analyse durchzuführen, um intakte und saubere Kapseln zu erhalten. Nach diesem Verfahren können weitere Extraktionsprozesse unter Verwendung von alkalischen Enzymen durchgeführt werden, um die Eignung des optimierten Verfahrens für unterschiedliche pflanzliche Kapseln zu überprüfen.Nach ihrer Entwicklung ebnete diese Technik Forschern auf den Gebieten der Mikroverkapselung, Arzneimittelfreisetzung und Gewebeengineering den Weg, vielfältige pflanzliche SECs als Biomaterialien der nächsten Generation zu erforschen. Nach dem Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man SECs aus Pflanzensporen und Pollenkörnern extrahiert und charakterisiert sowie die Verkapselung von Wirkstoffen und biologischen Makromolekülen in SECs durchführt.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

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