Name: Untersuchung der Proteinsequenz-Struktur-Dynamik Beziehungen zu Bio3D-Web (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 51 s
Description: Erfahren Sie die interaktive Analyse von Proteinsequenzen, Strukturen und Dynamik mit Bio3D-Web. Diese webbasierte Plattform ermöglicht reproduzierbare Analysen ohne Programmierkenntnisse für die Strukturbiologie.

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Wir danken Dr. Guido Scarabelli und Hongyang Li für umfangreiche Tests während der gesamten Entwicklung sowie die Bio3D User Community und die University of Bergen strukturellen Bioinformatik Workshop Teilnehmer für Feedback und Kommentare, die diese Anwendung verbessert haben.

HINWEIS: Eine typische Bio3D-Web-Sitzung verläuft durch fünf aufeinanderfolgende und abhängige Schritte (siehe Abbildung 1 für eine schematische Darstellung). Jeder Schritt wird als aufeinanderfolgende Navigationsregisterkarte der Webapplikation SEARCH, ALIGN, FIT, PCA und eNMA implementiert. 1. Struktursuche und Auswahl (SEARCH) <ol><li> Eingangsstruktur <ol><li> Erhalten Sie die PDB-ID der Adenylat-Kinase (Adk), zB durch die Suche nach dem PDB [http://www.rcsb.org/pdb]. Alternativ erhalten Sie die Protein-Aminosäuresequenz von Interesse, zB von UniProt [http://uniprot.org]. </li><li> Geben Sie die vier Zeichen lange PDB-ID für Adk ( zB 1AKE) ein, oder fügen Sie eine Proteinsequenz in das Textfeld im Feld &quot;Input-Struktur oder Sequenz&quot; ein. </li></ol></li><li> Hit Auswahl <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Hit Auswahl) im ersten Bedienfeld oder blättern Sie einfach nach unten. B) &quot;Auswahl treffen&quot;Zur weiteren analyse </li><li> Vergewissern Sie sich, dass der Schieberegler &quot;Gesamtzahl der enthaltenen Strukturen beschränken&quot; auf seinen maximalen Wert gesetzt ist, um alle Strukturen über dem Cutoff zu enthalten. </li><li> Senken Sie die &quot;Anpassen der Einschluss BitScore Cutoff&quot;, um mehr entfernte Hits einzuschließen, oder erhöhen Sie es auszuschließen. </li></ol></li><li> Optionale Trefferfilterung <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Hit Auswahl) im ersten Panel oder blättern Sie einfach nach unten C) &quot;Optionale Filterung der zugehörigen Strukturen für die weitere Analyse&quot;. </li><li> Vergewissern Sie sich, dass die ausgewählten Treffer relevante Strukturen darstellen, indem Sie Details der Tabelle, zB PDB-Namen, Spezies und gebundene Liganden, untersuchen. </li><li> Manuelles Verfassen der ausgewählten Teilmenge von Strukturen, wenn nötig, indem man auf die Zeilen der Tabelle klickt. HINWEIS: Zeilen, die mit einer blauen Farbe hervorgehoben werden, zeigen PDB-IDs, die für weitere Analysen in nachfolgenden Registerkarten ausgewählt wurden. </li></ol></li></ol> 2. Multiple Sequence Alignment Analysis (ALIGN) <ol><li> Klicken Sie auf die Registerkarte ALIGN, um die Sequenzausrichtung der ausgewählten Strukturen auf der Registerkarte SEARCH auszuführen. </li><li> Ausrichtungsübersicht <ol><li> Überprüfen Sie die Ausrichtungsübersicht in Panel A) &quot;Alignment Summary&quot;. Stellen Sie sicher, dass die interessierenden Regionen ausgerichtet sind und nicht durch Lücken in einer oder mehreren Strukturen maskiert sind. </li><li> Wenn nötig, schalten Sie die &quot;Display-Ausrichtungsbearbeitungsoptionen&quot; und entfernen Sie unerwünschte PDB-IDs, z. B. PDBs mit fehlenden Resten. </li></ol></li><li> Sequenzausrichtungsanalyse <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Analyse), um eine sequenzbasierte Clusteranalyse der gesammelten Strukturen durchzuführen. </li><li> Wählen Sie die Plotoption Dendrogramm. Passen Sie den Cluster in den K-Gruppen-Schieberegler an, um die Strukturen in k-Gruppen zu partitionieren. </li><li> Ändern Sie ggf. die Clustering-Methode, indem Sie das Kontrollkästchen Weitere Clustering- und Ausgabeoptionen umschalten. </li></oL&gt; </li><li> Rückstandskonservierungsanalyse <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Konservierung), um die säulenweise Rückstände zu berechnen. </li><li> Wählen Sie die Aligned-Struktur-Sets aus, um ein Diagramm der Rückstands-Konservierung an jeder Ausrichtungsposition zu erzeugen. </li><li> Wählen Sie Strukturen, die mit der PFAM-Saatgutausrichtung ausgerichtet sind, um die Erhaltung zu erhalten, die in Bezug auf die zugehörige PFAM-Saatgutausrichtung berechnet wird, die repräsentative Mitglieder der Familie enthält. </li></ol></li><li> Sequenzausrichtung <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Ausrichtung), um die vollständige Sequenzausrichtung mit dem Visualisierungswerkzeug im Browser anzuzeigen. </li></ol></li></ol> 3. Struktur Anpassung und Analyse (FIT) <ol><li> Führen Sie die Strukturüberlagerung durch, indem Sie die Registerkarte FIT eingeben. </li><li> Strukturüberlagerung <ol><li> Umschalten des Kontrollkästchens &quot;Show PDBs&quot;, um das ausgerichtete Protei zu visualisierenN-Strukturen im Browser. </li><li> Stellen Sie sicher, dass die Proteinstrukturen den entsprechenden und relevanten Regionen durch visuelle Inspektionen überlagert werden. Klicken und ziehen Sie die Maus über die Strukturen zu drehen, und blättern zu zoomen. </li><li> Passen Sie die Farbgebung der Strukturen an, indem Sie auf die &quot;Farboptionen&quot; klicken. Farboptionen umfassen Ausrichtungsposition, strukturelle Variabilität pro Position, RMSD-Clustergruppen, Sequenzclustergruppen, ausgerichtete Regionen und Sekundärstruktur. </li><li> Laden Sie die überlagerten Strukturen entweder als herkömmliche PDB-Dateien oder als einzelne PyMOL-Session-Datei zur Visualisierung in einem spezialisierten molekularen Viewer-Programm herunter. </li></ol></li><li> Strukturanalyse <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Analyse), um eine strukturbasierte Clusterung der gesammelten PDB-Strukturen durchzuführen. </li><li> Umschalten der RMSD-Heatmap im Dropdown-Menü Plotoptionen. </li><li> Passen Sie die Clustering-Optionen an, einschließlich der Clustering-Methode selbst, Indem Sie das Kontrollkästchen &quot;Mehr Clustering und Ausgabeoptionen&quot; umschalten. HINWEIS: Pairwise RMSD-Daten können auch als Dendrogramm, Histogramm oder Wärmekarte visualisiert werden. </li></ol></li><li> Rückstandsschwankungen <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (RMSF), um die strukturelle Variabilität jedes Restes (als RMSF-Plot dargestellt) mit großen sekundären Strukturelementen, die in den Randbereichen der x-Achse dargestellt sind, zu betrachten. </li><li> Um die kristallographischen B-Faktoren der Referenzstruktur auf das RMSF-Plot zu überlagern, schalte das Kontrollkästchen Show B-Faktoren ein. </li></ol></li></ol> 4. Hauptkomponentenanalyse (PCA) <ol><li> Führen Sie die Hauptkomponentenanalyse durch, indem Sie die Registerkarte &quot;PCA&quot; eingeben. </li><li> Visualisierung der Hauptkomponenten <ol><li> Schalten Sie das Kontrollkästchen &quot;PC-Trajektorie anzeigen&quot; ein, um die von den PCs mit dem In-Browser-Visualisierungstool beschriebenen Bewegungen zu visualisieren. </li><li> Stellen Sie sicher, &quot;PrinCipal Component 1 &quot;wird aus dem ersten Dropdown-Menü ausgewählt. </li><li> Um die von anderen PCs beschriebenen Bewegungen zu visualisieren, wählen Sie den gewünschten PC aus dem Dropdown-Menü &quot;Select Principal Component&quot;. </li><li> Ändern Sie die Farbgebung der Trajektorie aus dem Dropdown-Menü &quot;Farboptionen&quot;. </li><li> Wählen Sie &quot;Variabilität pro Position&quot; von den &quot;Farboptionen&quot; bis zur Farbverschiebung. </li><li> Klicken Sie im Bedienfeld &quot;Principal Component Visualization&quot; auf die Schaltfläche &quot;PDB-Trajektorie herunterladen&quot;, um eine Trajektorienansicht der von den PCs beschriebenen Bewegung zu erhalten. </li><li> Klicken Sie auf die Schaltfläche &quot;PyMOL herunterladen&quot;, um eine PyMOL-Sitzungsdatei zu erzeugen, die die Bewegungen als Vektorfeld angibt. </li></ol></li><li> Konformeranalyse <ol><li> Projizieren Sie die einzelnen Strukturen auf zwei ausgewählte PCs, indem Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; klicken. </li><li> Vergewissern Sie sich, dass &quot;PC auf X-Achse&quot; auf 1 gesetzt ist und &quot;PC oN Y-Achse &quot;bis 2. Um die Strukturen auf andere PCs zu projizieren, stellen Sie die PC-Nummerierung entsprechend ein. </li><li> Wählen Sie &quot;Cluster by PC Subspace&quot;, um die Strukturen im Plot durch PC-basiertes Clustering zu färben. &quot;RMSD&quot;, um durch &quot;RMSD-basiertes&quot; Clustering zu färben; Und &quot;Sequenz&quot;, um nach sequenzbasierter Clusterung zu färben. </li><li> Klicken Sie auf alle einzelnen Punkte in der Handlung, um die Strukturen zu kennzeichnen. Alternativ markieren Sie eine oder mehrere Strukturen in der Tabelle &quot;PCA Conformer Plot Annotation&quot; unterhalb der Handlung. </li><li> Schieben Sie die PCs im Subraum-Schieberegler auf, um mehr / weniger PCs für den Clustering-Algorithmus einzuschließen. </li></ol></li><li> Rückstandsbeiträge <ol><li> Berechnen Sie die Rückstandsbeiträge zu den einzelnen PCs, indem Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Rückstandsbeiträge) klicken. </li><li> Zeichnen Sie die Beiträge für weitere PCs, indem Sie die PC-Nummer in das Textfeld &quot;Select Principal Component&quot; einfügen. </li><li> Toggle die &quot;Spread liNes &quot;Kontrollkästchen vermeiden, die Rückstandsbeiträge übereinander zu platzieren. </li><li> Schalten Sie das Kontrollkästchen &quot;Multiline Plot&quot; aus, um die Rückstandsbeiträge in separaten Plots zu zeichnen. </li><li> Schalten Sie die &quot;Show RMSF&quot; ein, um die RMSF-Werte (auf der Registerkarte FIT) einzuschließen. </li></ol></li></ol> 5. Ensemble Normalmodusanalyse (eNMA) <ol><li> Klicken Sie auf die Registerkarte eNMA, um die normale Modi (NMs) zu berechnen. </li><li> Filterstruktur <ol><li> Passen Sie die Anzahl der Strukturen an, indem Sie den &quot;Cutoff&quot; für die Strukturintegration / den Ausschluss senken oder erhöhen. </li><li> Klicken Sie auf die grüne &quot;Run Ensemble NMA&quot;, um die NMA-Berechnung zu starten. </li></ol></li><li> Normalmodi Visualisierung <ol><li> Scrollen Sie nach unten zum zweiten Panel der eNMA-Registerkarte (Normal Modes Visualization) zur Visualisierung der NMs. HINWEIS: Standardmäßig wird der NM mit der höchsten Überlappung (Ähnlichkeit) zu PC-1 im visuellen angezeigtFenster. </li><li> Um die von anderen NMs oder anderen PDB-Strukturen beschriebenen Bewegungen zu visualisieren, wählen Sie die gewünschte NM und Struktur aus den Dropdown-Menüs &quot;Select Mode&quot; und &quot;Show NMs for structure&quot; . </li></ol></li><li> Rückstandsschwankungen <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Next&quot; (Fluctuations), um die rückstandsbedingten Fluktuationen der für eNMA ausgewählten Strukturen zu berechnen. </li><li> Schalte den &quot;Cluster von RMSD&quot; ein, um die Fluktuationsprofile durch RMSD-basiertes Clustering zu färben. </li><li> Schalte den &quot;Cluster von RMSIP&quot; ein, um die Fluktuationsprofile durch RMSIP-basiertes Clustering zu färben. </li><li> Umschalten Sie das Kontrollkästchen &quot;Spread Linien&quot;, um die gruppierten Fluktuationsprofile voneinander zu unterscheiden. </li></ol></li><li> Vergleich von NMA und PCA <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Next&quot; (PCA-vs-NMA), um die Ähnlichkeit zwischen den einzelnen NMs und PCs zu berechnen. </li><li> Wählen Sie ein PDB-ID aus dem Dropdown-Menü &quot;Vergleich NMs der Struktur&quot;, um die Ähnlichkeit zwischen den NMs dieser Struktur zu den im PCA-Tab berechneten PCs zu berechnen. </li></ol></li><li> Überlappungsanalyse <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot;Weiter&quot; (Überlappungsanalyse), um die Überlappung zwischen berechneten NMs und dem Strukturdifferenzvektor zwischen zwei ausgewählten Strukturen zu berechnen. </li><li> Wählen Sie eine &quot;Referenz&quot; PDB ID aus dem Dropdown-Menü &quot;Vergleich NMs der Struktur&quot; und oder eine oder mehrere PDB-IDs in der Strukturtabelle für den paarweisen Vergleich mit dem Referenz-PDB. </li></ol></li><li> Clusteranalyse <ol><li> Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche &quot; Weiter&quot; (Clustering), um das Strukturclustering basierend auf der paarweisen NM-Ähnlichkeit (RMSIP) auszuführen. </li></ol></li></ol>

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Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Bio3D-web kann verwendet werden, um die strukturellen, dynamischen und funktionellen Zustände von Proteinen interaktiv aus den verfügbaren kristallographischen Strukturen zu untersuchen und abzubilden. Darüber hinaus können die NMA- und PCA-basierten Clustering-Ergebnisse zusammen mit den Annotationen und der sequenzbasierten Analyse besonders nützlich sein, um repräsentative Strukturen für eine zeitaufwändige Analyse, wie z. B. Ensemble-Kleinmolekül-Docking- oder Molekulardynamik-Simulationen, auszuwählen. Bio3D-web erleichtert damit die fortgeschrittene strukturelle Bioinformatik-Analyse für ein breiteres Spektrum von Forschern durch die Verringerung des erforderlichen Fachwissens. Das aktuelle Design von Bio3D-Web unterstreicht die Einfachheit über die umfassende Einbeziehung der vielen Analysemethoden, die im gesamten Standalone-Bio3D-Paket zur Verfügung stehen. In vielen Fällen ist es vorgesehen, dass die Forscher Bio3D-Web nutzen, um allgemeine Trends in ihrer Proteinfamilie oder Superfamilie von Interesse zu verstehen, die dann mehr spezialisierte Analysen informieren können. Bio3D-web ist dasUm die biomolekularen Strukturdatensätze schnell zu erforschen und als hypothesenerzeugendes Werkzeug zu fungieren. Wir ermutigen die Benutzer, ihre Daten weiter zu erforschen, indem sie den Bio3D-Code in dem reproduzierbaren Bericht bereitstellen, der auch alle Abfragedetails und Analyseergebnisse speichert. In dem oben genannten repräsentativen Beispielprotokoll zeigen wir die Fähigkeit von Bio3D-web, die strukturellen Merkmale der funktionalen Konformationsübergänge von Adk aufzudecken. Zusätzliche Anwendungen von Bio3D-web beinhalten die Struktur- und Dynamikanalyse von vom Benutzer hochgeladenen PDB-Strukturen. Zum Beispiel kann der Benutzer neue Strukturen oder sogar Proteinsequenzen zur Analyse hochladen. Die zuvor erwähnten Analyseschritte, insbesondere der eNMA-Schritt, können sowohl lokale als auch globale Trends in Proteinbewegungen offenbaren, wobei kollektive Bewegungen von funktioneller Bedeutung sind. Der Vergleich mit Apo-Strukturen kann auch Merkmale von ungebundenen, gebundenen Konformationsübergängen zeigen. Weitere Anwendungsbeispiele fürEine Reihe von verschiedenen Proteinfamilien werden online zur Verfügung gestellt. Obwohl alle Proteine ​​flexible und dynamische Einheiten sind, haben nicht alle Proteine ​​atomare Auflösungsstrukturen, die in verschiedenen Zuständen verfügbar sind ( zB aktive und inaktive Zustände). Unsere Sicht auf den Proteinstrukturraum ist somit begrenzt und daher ist die Einsicht aus Werkzeugen wie Bio3D-Web notwendigerweise auch für bestimmte Proteine ​​begrenzt. Doch mit aktuellen technologischen Fortschritten und neuen Initiativen für die Strukturgenomik wird das hier vorgestellte Protokoll zunehmend zu einem wichtigen Weg, um Einblicke in wichtige Struktur-Funktions-Beziehungen zu gewinnen. Ein kritischer Schritt, der bei der Analyse von weiter entfernten Proteinen besonders wichtig ist, ist das mögliche Auftauchen von Ausrichtungsfehlern auf der Registerkarte ALIGN. Ausrichtungsfehler treten unvermeidlich auf, wenn die Sequenzähnlichkeit unter 30% sinkt und der Benutzer in solchen Fällen die Sequenzausrichtung überprüfen und korrigieren mussAuf der Registerkarte ALIGN. Ausrichtungsfehler führen möglicherweise zu falschen überlagerten Strukturen in der FIT-Registerkarte und maskieren die relevantesten Konformationsvariationen für den nachfolgenden PCA. Darüber hinaus sollte der Anwender sich über fehlende Reste in den ausgewählten PDB-Strukturen bewusst sein, wie bei der aktuellen Implementierung PCA kann nur an Proteinresten durchgeführt werden, bei denen alle Strukturen ihr entsprechendes Kohlenstoff-Alpha-Atom aufgelöst haben. Wenn folglich ein ausgewählter PDB ungelöste Reste für eine bestimmte Region des Proteins aufweist, wird diese Region von PCA weggelassen. Bio3D-Web ist derzeit auf die Analyse von Single-Chain-PDB-Strukturen beschränkt. Folglich können Funktionsbewegungen, die auf der quaternären Ebene auftreten, nicht mit dem aktuellen Protokoll erforscht werden. Obwohl wir derzeit neue Algorithmen entwickeln, um solche Analysen in Bio3D-Web einzubeziehen, ist die einzige aktuelle Option durch konventionelle Bio3D-Nutzung. Bio3D-Web ist die einzige Online-BewerbungIon, das es ermöglicht, Struktursets abzufragen und zu identifizieren, ihre Sequenzmuster und strukturelle Variabilität zu interpretieren und mechanistische Informationen sowohl von der Analyse als auch von der Vorhersage ihrer strukturellen Plastizität zu extrahieren. Eine breite Palette an molekularen Visualisierungswerkzeugen und Online-Servern ermöglicht es Forschern, einzelne biomolekulare Strukturen zu erforschen und zu analysieren. Allerdings erfordern die vorhandenen Werkzeuge für die Analyse der Sequenz, Struktur und Dynamik großer heterogener Proteinfamilien oftmals umfangreiche Rechenkenntnisse und sind in der Regel nur für Benutzer mit relevanten Programmierkenntnissen zugänglich. Zum Beispiel benötigt das Bio3D-Paket R 8 , ProDy benötigt Python und Maven erfordert Matlab-Kenntnisse 9 , 10 . Bio3D-Web im Gegensatz dazu erfordert keine Programmierkenntnisse und erhöht so die Zugänglichkeit und verringert die Eintrittsbarriere zur Durchführung fortgeschrittener Vergleichsfolge, Struktur und dyNamics analyse Darüber hinaus ist die Vorbereitung, Kuration, Annotation und Aufräumung von molekularen Strukturen, die häufig für eine effiziente Analyse notwendig ist, im Bio3D-Web Service enthalten. Darüber hinaus wird die Einschränkung für die Durchführung einer solchen Analyse auf fähige Berechnungsressourcen durch unsere Serverinstanz gemildert, die eine umfangreiche Analyse vieler Strukturen ermöglicht, die von jedem modernen Webbrowser initiiert und gesteuert werden können. Die offene Entwicklung von Bio3D-Web ist im Gange (siehe https://bitbucket.org/Grantlab/bio3d). Wir setzen fort, neue Analysefunktionalität hinzuzufügen und bestehende Methoden zu verbessern. Die zukünftige Entwicklung konzentriert sich auf die Hinzufügung von Distanzmatrix-basierten PCA- und Torsions-PCA, umfangreichere Sequenz-Konservierungsansätze, die eine phylogenetische Komponente, Ensemble-Bindungsstellenidentifizierung und neue Ansätze für eine dynamische Netzwerkanalyse über Proteinfamilien beinhalten. In dieser Hinsicht repräsentiert die aktuelle Webanwendung den AnfangszeigerT für viele andere kollaborative strukturelle bioinformatische Analysen-Workflows, indem es reproduzierbare und zugängliche Schritte auf benutzerdefinierte experimentelle Struktur-Sets ermöglicht. Wir planen auch zukünftige Unterstützung von rekonstruierten biologischen Einheitskoordinatensätzen zusätzlich zu Einzel- und Mehrfachketten aus der asymmetrischen Einheit der PDB-Strukturen. Zusätzliche Features beinhalten das verbesserte Speichern und Laden von kollaborativen Arbeitsräumen zusammen mit einer Undo-Möglichkeit. Bio3D-web ist eine Online-Anwendung für die interaktive Analyse von biomolekularen Strukturdaten. Bio3D-Web läuft auf jedem modernen Webbrowser und bietet Funktionalität für: (1) Die Identifizierung der verwandten Proteinstruktur setzt auf benutzerdefinierte Schwellenwerte der Ähnlichkeit; (2) Ihre mehrfache Ausrichtung und Strukturüberlagerung; (3) Sequenz- und Strukturerhaltungsanalyse; (4) Inter-Conformer-Relationship-Mapping mit Hauptkomponentenanalyse und (5) Vergleich der vorhergesagten internen Dynamik über Ensemble nochMal Modusanalyse Diese integrierte Funktionalität bietet einen kompletten Workflow für die Untersuchung von sequenzstruktur-dynamischen Beziehungen innerhalb von Proteinfamilien und Superfamilien. Zusätzlich zu einer bequemen, einfach zu bedienenden dynamischen Schnittstelle zur Erforschung der Effekte von Parameter- und Methodenwahlen zeichnet Bio3D-web auch die vollständigen Benutzereingaben und die nachfolgenden grafischen Ergebnisse einer Benutzersitzung auf. Dies ermöglicht es Benutzern, die Reihenfolge der Analyseschritte, die ihre Ergebnisse erstellt haben, einfach zu teilen und zu reproduzieren. Bio3D-Web ist vollständig in der R-Sprache implementiert und basiert auf den Paketen Bio3D und Shiny R. Es kann von unserem Online-Server ausgeführt werden oder lokal auf jedem Computer mit R installiert werden. Dies schließt lokale Server-Installation, um eine benutzerdefinierte Multi-User-Instanz mit Zugriff auf prioritäre strukturelle Datensätze wie die in der pharmazeutischen Industrie. Voller Quellcode und umfangreiche Dokumentation finden Sie unter einer GPL-3 Open-Source-Lizenz von: http://thegrantlab.org/ Bio3d / webapps

Die Proteindatenbank (PDB) enthält jetzt mehr als 120.000 Proteinstrukturen - viele davon sind dieselbe Proteinfamilie, aber unter verschiedenen experimentellen Bedingungen gelöst. Diese mehrfachen Strukturen stellen eine unschätzbare Ressource für das Verständnis der Feinheiten der Proteinform und -funktion dar. Beispielsweise kann der rigorose Vergleich dieser Strukturensembles wichtige molekulare Mechanismen 1 , 2 , 3 aufzeigen und über die Konformationsdynamik informieren, die an Prozessen einschließlich der Ligandenbindung, der enzymatischen Katalyse und der biomolekularen Erkennung 4 , 5 , 6 , 7 beteiligt ist . Neue Erkenntnisse können oft aus der detaillierten Großanalyse der Sequenz, Struktur und Dynamik von Proteinfamilien gewonnen werden. Dies erfordert jedoch typischerweise ein beträchtliches BioinfOrmatik und Computerprogrammierkenntnisse zusammen mit der Vertrautheit mit den zu untersuchenden Proteinsystemen. Zum Beispiel benötigen Softwarepakete wie Bio3D, ProDy und Maven die Programmierung in R, Python und Matlab bzw. 8 , 9 , 10 . Umgekehrt sind Online-Tools zur Analyse der strukturellen Flexibilität im Allgemeinen auf die Untersuchung der einzelnen Strukturen 11 , 12 beschränkt . Eine Ausnahme in dieser Hinsicht ist der kürzlich entwickelte WebNM @ Server, der den Vergleich von Flexibilitätsmustern ermöglicht, die aus der Normalmodusanalyse (NMA) mehrerer vorjustierter benutzerdefinierter Strukturen erhalten wurden 13 . Jedoch fehlt diesem Server ein automatisiertes Verfahren zur Identifizierung von Strukturen zum Vergleich, deren Ausrichtung oder weitere Analyse über NMA hinaus. Ein weiterer neuer Beitrag ist die Online-PDBFlex-Datenbank, die Pre-c präsentiertGestoßene Analyse von PDB-Strukturen, die 95% oder höhere Sequenzidentität teilen 14 . Allerdings ist die Analyse von vielfältigeren Struktursets derzeit nicht verfügbar. Wir haben bereits Bio3D-web präsentiert - eine einfach zu bedienende Webapplikation zur Analyse von Proteinsequenz-Struktur-dynamischen Beziehungen 15 . Bio3D-Web ist einzigartig in der Bereitstellung von einfach zu bedienenden integrierten Funktionalität für die Identifikation, Vergleich und detaillierte Analyse der großen homologen Struktur-Sets online. Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll für die Online-Untersuchung der Proteinsequenz-Struktur-Dynamik-Beziehung mit Bio3D-Web vor. Bio3D-web bietet eine Vielzahl von Funktionen, um die fünf wichtigsten Schritte der Datenanalyse zu unterstützen, die in Abbildung 1 gezeigt sind und im Folgenden ausführlich diskutiert werden. Diese Schritte bilden einen Workflow, der sich von der Abfragesequenz oder der Struktureingabe über mehrere Ebenen der Sequenzstruktur-dynamischen Analyse erstreckt, um zusammenzufassenY berichtsgenerierung Die Ergebnisse sind sofort über umfangreiche In-Browser-Visualisierungs- und Plottergeräte sowie durch das Herunterladen von Ergebnisdateien in gängigen Formaten verfügbar. Neben einer komfortablen, einfach zu bedienenden, dynamischen Schnittstelle zur Erforschung der Effekte von Parameter- und Methodenwahlen zeichnet Bio3D-web auch die vollständigen Benutzereingaben und nachfolgenden grafischen Ergebnisse der Session eines Benutzers als einen spürbaren, reproduzierbaren Bericht in PDF-, DOC- und HTML-Formaten auf. User-Sessions können zu zukünftigen Zeiten gespeichert und neu geladen werden und komplette Ergebnisse heruntergeladen und weiter interpretiert werden durch das Bio3D R-Paket auf der lokalen Maschine eines Benutzers. Bio3D-web wird durch das Bio3D R-Paket zur Analyse der biomolekularen Struktur, der Sequenz und der molekularen Simulationsdaten 8 , 16 angetrieben. Insbesondere Bio3D-Algorithmen zur starren Kernidentifikation 8 , Überlagerung, Hauptkomponentenanalyse(PCA) 8 und die Ensemble-Normalmodusanalyse (eNMA) 16 bilden die Basis der Anwendung. Wir nutzen auch Bio3D-Protokolle, die von pHMMER 17 für die Identifizierung verwandter Proteinstrukturen und MUSCLE 18 für die mehrfache Sequenzausrichtung abhängen. Struktur- und Sequenz-Annotationen werden über Bio3D-Dienstprogramme aus den RCSB-PDB 19- und PFAM-Datenbanken 20 abgeleitet . Bio3D-Web kann von unserem Online-Server aus betrieben werden oder lokal auf jedem Computer installiert werden. R. Bio3D-Web steht allen Benutzern offen und wird kostenlos unter einer GPL-3 Open-Source-Lizenz von: http: // thegrantlab zur Verfügung gestellt. Org / bio3d / webapps

<table><tbody><tr><td>Bio3D-web</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Web-site</td><td>http://thegrantlab.org/bio3d-web/</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Anforderungen</td><td>Webbrowser</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

untersuchung der proteinsequenz-struktur-dynamik beziehungen zu bio3d-web

Investigating Protein Sequence-structure-dynamics Relationships with Bio3D-web

Wir zeigen die Nutzung von Bio3D-Web für die interaktive Analyse von biomolekularen Strukturdaten. Die Bio3D-Web-Anwendung bietet Online-Funktionalität für: (1) Die Identifizierung der verwandten Proteinstruktur setzt auf benutzerdefinierte Schwellenwerte der Ähnlichkeit; (2) Ihre mehrfache Ausrichtung und Strukturüberlagerung; (3) Sequenz- und Strukturerhaltungsanalyse; (4) Inter-Conformer-Relationship-Mapping mit Hauptkomponentenanalyse und (5) Vergleich der vorhergesagten internen Dynamik über Ensemble-Normalmodusanalyse. Diese integrierte Funktionalität bietet einen kompletten Online-Workflow zur Untersuchung von sequenzstruktur-dynamischen Beziehungen innerhalb von Proteinfamilien und Superfamilien.

Adenylat-Kinase (Adk) ist ein ubiquitäres Enzym, das dazu dient, das Gleichgewicht zwischen zytoplasmatischen Nukleotiden, die für viele zelluläre Prozesse essentiell sind, zu erhalten. Adk arbeitet durch katalysieren der reversiblen Übertragung einer Phosphorylgruppe von ATP zu AMP. Diese Reaktion begleitet von gut untersuchten ratenbegrenzenden Konformationsübergängen 3 , 21 . Hier analysieren wir alle derzeit verfügbaren Adk-Strukturen mit Bio3D-web, um detaillierte Features und mechanistische Prinzipien dieser wesentlichen Übergänge zu vermitteln. Wir können unsere Bio3D-Web-Analyse von Adk beginnen, indem wir den RCSB-PDB-Code einer bekannten Adk-Struktur eingeben. Wenn zum Beispiel die Eingabe der PDB-ID 1AKE in Panel A der SEARCH-Registerkarte 167 Sequenz ähnliche Strukturen zurückgibt, aus denen die Top 26 automatisch zur weiteren Analyse ausgewählt werden (siehe Panel B). Die Annotation vorhandenEd in Panel C zeigt an, dass diese ausgewählten Strukturen alle von E. coli sind, wurden durch Röntgenbeugung in einem Bereich von Raumgruppen gelöst; Haben einen Auflösungsbereich von 1,63 bis 2,8 Å und wurden mit einer Reihe von verschiedenen Liganden (einschließlich keine Liganden, AMP, ADP, MG und dem Inhibitor AP5) co-kristallisiert. Beachten Sie, dass zusätzliche Anmerkungsdetails angezeigt werden können, indem Sie im Panel C auf &quot;Show / Hide Columns&quot; klicken. Bei der Eingabe der ALIGN-Registerkarte wird eine mehrfache Sequenzausrichtung durchgeführt. Die erste Tafel der ALIGN-Registerkarte zeigt eine Zusammenfassung der Ausrichtung an, die Details über die Anzahl der Sequenzzeilen (entspricht der Anzahl der PDB-Strukturen) sowie die Anzahl der Positionen ( dh Ausrichtungsspalten) enthält. Dies schließt eine Spezifikation der Anzahl der Spalt- und Spalt-Spalten ein. Die Figur auf der rechten Seite der ersten Reihe liefert eine schematische Darstellung der Sequenzausrichtung. Hier thE graue Bereiche repräsentieren Nichtspaltpositionen, während weiße Flächen in der Ausrichtung Lücken entsprechen. Eine Darstellung der Sequenzkonservierung ist oberhalb der Ausrichtung mit roten Bereichen gezeigt, die gut konservierte Positionen anzeigen, und Weiß, das weniger konserviert zeigt. Beachten Sie, dass die Sequenzen in dieser Figur auf der Grundlage ihrer Ähnlichkeit, die durch das Clustering-Dendrogramm auf der linken Seite zur Verfügung gestellt wird, geordnet sind. Das zweite Panel dieser Registerkarte erleichtert das Clustering der ausgewählten PDBs auf der Grundlage ihrer paarweisen Sequenzähnlichkeit, die entweder als Dendrogramm oder als Wärmekarte visualisiert werden kann. Standardmäßig ist ein Dendrogramm (oder Baumdiagramm) dargestellt, das die Anordnung von Clustern darstellt. Die y-Achse des Dendrogramms repräsentiert den Abstand (in Bezug auf die Sequenzidentität) zwischen den Clustern. Die Strukturüberlagerung erfolgt automatisch beim Eingeben der Registerkarte FIT. Die überlagerten Strukturen, die interaktiv in Panel A, Indica angezeigt werdenTe die Anwesenheit eines relativ starren Kernbereichs (mit den Resten 1-29, 68-117 und 161-214), siehe &quot;optionale Kern- und RMSD-Details&quot; an der Unterseite der FIT-Registerkarte für Details). Zwei weitere variable Nukleotid-bindende Regionen (Reste 30-67 und 118-167) sind ebenfalls deutlich sichtbar ( Abbildung 2 ). RMSD-basierte Clustering-Gruppen diese Strukturen in zwei verschiedene Konformationen. Ein Klick auf die PCA- Registerkarte zeigt deutlich die Beziehung zwischen den Strukturen in Bezug auf die Verschiebungen dieser Regionen, die effektiv über die gebundenen Nukleotidspezies in verwandten Strukturen schließen ( Abbildung 2B und 2C ). Die Mehrheit der Strukturen befindet sich in der &quot;geschlossenen&quot; Form (blau in Abbildung 2C ) und ist mit einem gebundenen Liganden oder Inhibitor assoziiert. Im Gegensatz dazu sind &quot;offene&quot; Konformationen Nukleotid und Inhibitor frei. Das ist im Einklang mitDie umfangreiche Erforschung der Adk-Struktur und -Dynamik, die darauf hinweist, dass eine offene Konfiguration dieser Regionen für die Nukleotidbindung und eine geschlossene Konformation für eine effiziente Phosphoryl-Übertragung und Unterdrückung von schädlichen Hydrolyse-Ereignissen erforderlich ist. Es ist bemerkenswert, dass ein einzelner PC 97% der gesamten mittleren quadratischen Verschiebung in diesem Adk-Struktur-Set erfasst und eine klare und überzeugende Beschreibung des offenen, geschlossenen Übergangs zusammen mit den einzelnen Restbeiträgen zu dieser funktionalen Verschiebung bereitstellt (Panel C der App Und Fig. 2 ). Der Besuch der NMA-Registerkarte und die Erhöhung der Anzahl der für die Berechnung berücksichtigten Strukturen (über die Verringerung des Cutoffs zum Filtern ähnlicher Strukturen) zeigt an, dass offene Zustandsstrukturen im Vergleich zu den geschlossenen Formularstrukturen eine verbesserte lokale und globale Dynamik aufweisen ( Abbildung 2D und Panel C von App) . Vergleich von PCA- und NMA-Ergebnissen fürEinzelne Strukturen (Panel D) zeigt an, dass der erste Modus aller offenen Formularstrukturen eine relativ hohe Überlappung zu PC1 (mit einem Mittelwert von 0,37 ± 0,04) aufweist. Im Gegensatz dazu zeigen geschlossene Formstrukturen niedrigere Werte (mit einem Mittelwert von 0,30 ± 0,01). RMSIP-Werte für offene Formstrukturen (0,62 ± 0,003) sind ebenfalls höher als die der geschlossenen Strukturen (0,56 ± 0,008). Darüber hinaus zeigt die Überlappungsanalyse, dass die ersten Modi des offenen Zustands in guter Übereinstimmung mit der Konformationsänderung sind, die die Differenz der offenen und geschlossenen Zustände (Tafel E) beschreibt. Das auf RMSIP-Werte basierende Clustering zeigt wieder eine konsistente Partitionierung von offenen und geschlossenen Zustandsstrukturen (Panel F). Gemeinsam zeigen diese Ergebnisse die Existenz von zwei großen deutlichen Konformationszuständen für Adk. Diese unterscheiden sich durch eine kollektive niederfrequente Verschiebung von zwei Nukleotid-Bindungsstellenregionen, die unterschiedliche Flexibi aufweisenBei der Nukleotidbindung. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/55640/55640fig1.jpg" /> Abbildung 1: Bio3D-Web-Übersicht mit Screenshots der PCA- und NMA-Tabs. Bio3D-web nimmt eine vom Benutzer bereitgestellte Proteinstruktur oder Sequenz als Eingabe in die SEARCH-Registerkarte ( 1 ) ein. Der Server stellt eine Liste der verwandten Strukturen zur Verfügung, die für eine weitere Analyse ausgewählt werden können. ( 2 ) Die Registerkarte ALIGN bietet die Sequenzausrichtung und die Analyse der in der SEARCH-Registerkarte ausgewählten Strukturen. ( 3 ) Auf der Registerkarte FIT werden alle Strukturen in 3D überlagert und visualisiert, zusammen mit den Ergebnissen der konventionellen paarweisen Strukturanalyse. ( 4 ) Die Hauptkomponentenanalyse des Struktursatzes wird auf der Registerkarte PCA durchgeführt, um Interkonformer-Beziehungen zu charakterisieren. ( 5 ) Die normale Modusanalyse auf jeder Struktur kann auf der Registerkarte eNMA durchgeführt werdenDynamische Trends für die vorhandenen strukturellen Zustände zu erforschen. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55640/55640fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/55640/55640fig2.jpg" /> Abbildung 2: Ergebnisse der Bio3D-Web-Analyse der Adenylatkinase. ( A ) Verfügbare PDB-Strukturen der Adenylatkinase, die dem identifizierten invarianten Kern überlagert sind. Strukturen werden nach RMSD-basiertem Clustering gefärbt, das auf der Registerkarte FIT bereitgestellt wird. ( B ) Die Visualisierung der Hauptkomponenten ist auf der Registerkarte PCA verfügbar, um die wichtigsten Konformationsvariationen im Datensatz zu charakterisieren. Hier ist die Trajektorie, die der ersten Hauptkomponente entspricht, in der Rohrdarstellung gezeigt, die die großräumige Schließbewegung des Proteins zeigt. ( C ) Strukturen sind prAuf ihre beiden ersten Hauptkomponenten in einem Konformerplot, der eine niederdimensionale Darstellung der Konformationsvariabilität zeigt, Jeder Punkt (oder jede Struktur) wird nach benutzerdefinierten Kriterien gefärbt, in diesem Fall werden PCA-basierte Clusterergebnisse erzielt. ( D ) Die Normalmodusanalyse auf der Registerkarte eNMA schlägt eine verbesserte lokale und globale Dynamik für Strukturen im offenen Zustand (rot) im Vergleich zu den geschlossenen Formularen (blauen) Strukturen vor. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55640/55640fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a>

Ein Protokoll für die Online-Untersuchung von Proteinsequenz-Struktur-Dynamik-Beziehungen mit Bio3D-Web wird vorgestellt.

Untersuchung der Proteinsequenz-Struktur-Dynamik Beziehungen zu Bio3D-Web

We demonstrate the usage of Bio3D-web for the interactive analysis of biomolecular structure data. The Bio3D-web application provides online functionality ...

Das übergeordnete Ziel von Bio3D-web ist die interaktive Analyse der Sequenz-, Struktur- und Konformationsvielfalt von Proteinfamilien. Bio3D-web ist eine neue Webanwendung, die dabei helfen kann, die Beziehungen zwischen Sequenz, Struktur und Dynamik innerhalb großer Proteinfamilien zu verstehen. Der Hauptvorteil von Bio3D-web liegt darin, dass es interaktive und reproduzierbare Online-Analysen von Sequenzen, Strukturen und Dynamiken ermöglicht, ohne dass vom Nutzer Programmierkenntnisse erforderlich sind.Um eine Struktur zur Analyse einzugeben, suchen Sie in der Protein-Datenbank nach der PDB-ID von Adenylatkinase. Geben Sie die vierstellige PDB-ID für Adenylatkinase ein oder fügen Sie eine Proteinsequenz in das Textfeld des Eingabefelds für Struktur oder Sequenz ein. Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche „Weiter zur Trefferauswahl“ im ersten Panel oder scrollen Sie einfach nach unten zum Panel B „Trefferauswahl“ für die weitere Analyse.Stellen Sie sicher, dass der Schieberegler für die maximale Anzahl eingeschlossener Strukturen auf seinen Höchstwert eingestellt ist, um alle Strukturen oberhalb der Schwelle einzubeziehen. Senken Sie die BitScore-Einschluss-Schwelle, um entfernter verwandte Treffer einzubeziehen, oder erhöhen Sie sie, um Treffer auszuschließen. Überprüfen Sie durch Inspektion der Tabellendetails wie PDB-Name, Spezies und gebundene Liganden, ob die ausgewählten Treffer relevante Strukturen darstellen.Klicken Sie auf den Reiter „Ausrichten“, um die Sequenzalignierung der ausgewählten Strukturen aus dem Suchreiter durchzuführen. Es kann zu Fehlern bei der Alignierung kommen, insbesondere bei der Analyse von weiter entfernt verwandten Proteinen, beispielsweise wenn die Sequenzähnlichkeit unter 30 % liegt. Überprüfen Sie die Sequenzalignierung im Reiter „Ausrichten“ daher stets sorgfältig und korrigieren Sie sie gegebenenfalls. Überprüfen Sie die Alignierungszusammenfassung in der Zusammenfassung der Panel-A-Ausrichtung.Stellen Sie sicher, dass die Regionen von Interesse ausgerichtet sind und nicht durch Lücken in einer oder mehreren Strukturen maskiert werden. Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche „Nächste Analyse“, um eine sequenzbasierte Clusteranalyse der gesammelten Strukturen durchzuführen. Klicken Sie anschließend auf die blaue Schaltfläche „Nächste Konservierung“, um die spaltenweise Restkonservierung zu berechnen.Wählen Sie die ausgerichteten Struktur-Sets aus, um ein Diagramm der Restkonservierung an jeder Alignierungsposition zu erstellen. Führen Sie die Strukturüberlagerung durch, indem Sie den Registerkarte „Fit“ wechseln. Stellen Sie sicher, dass die Proteinstrukturen durch visuelle Inspektion auf entsprechende und relevante Bereiche überlagert wurden.Klicken und ziehen Sie mit der Maus über die Struktur, um sie zu drehen, und scrollen Sie, um zu vergrößern. Passen Sie die Färbung der Strukturen an, indem Sie auf die Farboptionen klicken. Klicken Sie dann auf die blaue Schaltfläche „Nächste Analyse“, um eine strukturbasierte Clusterung der gesammelten PDB-Strukturen durchzuführen.Schalten Sie die RMSD-Wärmekarte im Dropdown-Menü der Diagrammoptionen um. Klicken Sie auf die blaue RMSF-Schaltfläche, um die Strukturvariabilität jedes Rests anzuzeigen, wobei die wichtigsten sekundären Strukturelemente in den Randbereichen der X-Achse dargestellt sind. Führen Sie eine Hauptkomponentenanalyse durch, indem Sie den PCA-Reiter auswählen.Um die Hauptkomponenten zu visualisieren, aktivieren Sie das Kontrollkästchen „show PC trajectory“, um die durch die Hauptkomponenten beschriebenen Bewegungen mit dem im Browser integrierten Visualisierungswerkzeug darzustellen. Stellen Sie sicher, dass Hauptkomponente eins im ersten Dropdown-Menü ausgewählt ist. Um die Bewegungen, die durch andere Hauptkomponenten beschrieben werden, zu visualisieren, wählen Sie die gewünschte Hauptkomponente im Dropdown-Menü „choose principal component“ aus.Projizieren Sie die einzelnen Strukturen auf zwei ausgewählte Hauptkomponenten, indem Sie auf die blaue Schaltfläche „Weiteres Diagramm“ klicken. Stellen Sie sicher, dass die Hauptkomponente auf der X-Achse auf eins und die Hauptkomponente auf der Y-Achse auf zwei gesetzt ist. Um die Strukturen auf andere Hauptkomponenten zu projizieren, passen Sie die Nummerierung der Hauptkomponenten entsprechend an.Klicken Sie auf beliebige einzelne Punkte in der Grafik, um die Strukturen zu beschriften. Alternativ markieren Sie eine oder mehrere Strukturen in der Tabelle zur PCA-Konformer-Grafik-Anmerkung unterhalb der Grafik. Berechnen Sie die Beiträge der Reste zu den einzelnen Hauptkomponenten, indem Sie auf die blaue Schaltfläche „nächste Resteinträge“ klicken.Zeichnen Sie die Beiträge zusätzlicher Hauptkomponenten, indem Sie die PC-Nummer im Textfeld „Hauptkomponente auswählen“ eingeben. Klicken Sie auf den eNMA-Reiter, um die Berechnung der Normalmoden zu starten. Passen Sie die Anzahl der Strukturen an, indem Sie die Grenze für die Ein- oder Ausschließung von Strukturen senken oder erhöhen.Klicken Sie auf die grüne Schaltfläche „Run Ensemble-NMA“, um die Berechnung der Normalmodenanalyse zu starten. Scrollen Sie nach unten zum zweiten Bereich der eNMA-Registerkarte, der als Visualisierung der Normalmoden bezeichnet wird, um die Normalmoden zu visualisieren. Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche „Next Fluctuations“, um die restepweise Fluktuation der für die Ensemble-Normalmodenanalyse ausgewählten Strukturen zu berechnen.Schalten Sie den Cluster nach RMSD um, um die Fluktuationprofile basierend auf der RMSD-Clusterung einzufärben. Schalten Sie das Kontrollkästchen für die Streuliniendarstellung, um die gruppierten Fluktuationprofile voneinander getrennt darzustellen. Klicken Sie anschließend auf die blaue Schaltfläche „Weiter PCA versus NMA“, um die Ähnlichkeit zwischen den einzelnen Normalmoden und Hauptkomponenten zu berechnen.Klicken Sie auf die blaue Schaltfläche „Weiter“ unten, um einen Bericht mit Analyseergebnissen, benutzerdefinierten Eingaben und Parameterauswahlen zu erstellen. Der Bericht kann in gemeinsam nutzbaren PDF-, Word- und HTML-Formaten heruntergeladen werden. Der Bericht enthält außerdem einen Link, um die Analysesitzung zu einem späteren Zeitpunkt erneut aufzurufen, der auch mit Mitarbeitern geteilt werden kann.Hier gezeigte verfügbare PDB-Strukturen von Adenylatkinase, überlagert auf dem identifizierten invarianten Kern. Die Strukturen sind entsprechend der auf RMSD basierenden Clusterung aus dem Register „Fit“ eingefärbt. Die Visualisierung der Hauptkomponenten ist im Register „PCA“ verfügbar, um die wichtigsten konformationellen Variationen im Datensatz zu charakterisieren.Hier wird die Trajektorie, die der ersten Hauptkomponente entspricht, in Röhrendarstellung gezeigt, wobei die großskalige Schließbewegung des Proteins sichtbar ist. Die Strukturen werden auf ihre beiden ersten Hauptkomponenten in einem Konformerenplot projiziert, der eine niedrigdimensionale Darstellung der konformationellen Variabilität zeigt. Jeder Punkt oder jede Struktur ist gemäß benutzerdefinierter Kriterien eingefärbt, in diesem Fall nach Ergebnissen einer auf der PCA basierenden Clusterung.Die Normalmodenanalyse im eNMA-Tab deutet auf verbesserte lokale und globale Dynamik von Strukturen im offenen Zustand im Vergleich zum geschlossenen Zustand hin. Bio3D-web kann verwendet werden, um Sequenz- und Struktursätze zu untersuchen und allgemeine Trends in der gewünschten Proteinfamilie innerhalb weniger Minuten zu verstehen. Bio3D-web hat mir geholfen, die strukturelle Analyse der Kinesin-Superfamilie zu unterstützen.Bio3D-web bietet einen vollständigen Workflow für maßgeschneiderte Untersuchungen von Sequenz-Struktur-Dynamik-Beziehungen. Dieser Workflow ermöglicht die Abbildung von Interkonformitätsbeziehungen mittels PCA und den quantitativen Vergleich lokaler und globaler Dynamiken über große Mengen heterogener Strukturen hinweg unter Verwendung der Ensemble-NMA. Es wird erwartet, dass die meisten Forscher Bio3D-web nutzen werden, um allgemeine Trends in ihrer gewünschten Proteinfamilie zu verstehen, was anschließend weiterführende spezialisierte Analysen leiten kann.Bio3D-web ist daher als ein hypothetengenerierendes Werkzeug konzipiert, das gemeinsam nutzbare Zusammenfassungsberichte umfasst, in denen alle vom Anwender definierten Parameter enthalten sind. Die Ergebnisse von Bio3D-web können heruntergeladen werden und sind vollständig kompatibel mit dem Bio3D-R-Paket für weitere detaillierte Analysen. Für eine gegebene Proteinfamilie sind mittlerweile viele Strukturen verfügbar, die oft unter unterschiedlichen Bedingungen bestimmt wurden.Der Vergleich dieser großen Anzahl von Strukturen kann uns Aufschluss über strukturelle Mechanismen geben, die für ihre Funktion entscheidend sind, wie beispielsweise die Ligandenbindung, Katalyse und allosterische Regulation. Bio3D-web ist breit zugänglich und einfach zu bedienen, ohne dass spezielle Software installiert oder eine neue Programmiersprache erlernt werden muss. Bio3D-web wird von allen gängigen Browsern unterstützt.Der vollständige Quellcode und die Einrichtungsanweisungen für die lokale Einrichtung sind kostenlos verfügbar.

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