Name: Reproduzierbare motorische Defizit nach Aortengelenk in einem Rattenmodell der Rückenmark Ischämie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: Erfahren Sie eine minimal-invasive Technik zur Erzeugung von Rückenmark-Ischämie bei Ratten mittels Fogarty-Katheter. Diese Methode ermöglicht kontrollierte motorische Defizite durch variable Aortenokklusionszeiten für Neurowissenschaften.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren haben keine Anerkennung.

Dieses Protokoll wurde von der Institutional Animal Care und Use Committee von Seoul National University Bundang Hospital genehmigt. Tierpflege und Experimente wurden nach den United States National Institutes of Health Guide für die Pflege und Verwendung von Labortieren durchgeführt. 1. Chirurgische Vorbereitung <ol><li> Vor der Operation, spülen Sie die Katheter mit steriler Kochsalzlösung, um Durchgängigkeit zu gewährleisten. </li><li> Setzen Sie eine Heizdecke auf den Operationstisch und decken Sie den Tisch mit einer sterilen Abdeckung ab. </li><li> Legen Sie männliche Sprague-Dawley-Ratten (270-330 g) in eine Acrylbox mit 3,0% -4,0% Isofluran in 100% Sauerstoff ein. </li><li> Schmiermittel auf die Augen der Ratte auftragen. </li><li> Legen Sie die Ratte auf den Operationstisch in der Rückenlage und halten Sie die Anästhesie unter Verwendung einer Gesichtsmaske mit kontinuierlicher Verabreichung von inhaliertem Isofluran (1,0% -2,5 Vol .-%). </li><li> Legen Sie eine rektale Sonde zur Überwachung und Aufrechterhaltung der Körpertemperatur zwischen 37,0-38,0 ° C. </lI&gt; </ol> 2. Femoralarterie-Katheterisierung <ol><li> Schütteln Sie den richtigen Leistenbereich mit Betadin und 70% Ethanol. </li><li> Machen Sie eine 2-cm horizontale Hautinzision mit Schere auf der rechten Leiste Bereich. </li><li> Mit einem Retraktor das chirurgische Feld aussetzen. </li><li> Die Femoralarterie aus der umgebenden Vene und Nerven zerlegen. Isoliere einen 1-cm-Abschnitt der Arterie mit gebogener Pinzette und abgestumpfter Pinzette. </li><li> Mit einer 4,0 schwarzen Seidennaht, legen Sie eine lose Krawatte an den proximalen und distalen Enden der Arterie, um die Belichtung zu maximieren. </li><li> Machen Sie einen Einschnitt auf die Oberschenkelarterie mit Mikroschere. </li><li> Ein 2-Fr. Ballon-Kipp-Katheter in die Oberschenkel-Arterie mit Mikro-Pinzette. Sichern Sie den Katheter ca. 1 cm vom Katheterkopf mit der proximalen Ligatur und befestigen Sie die distale Ligatur. </li></ol> 3. Carotis-Arterie-Katheterisierung <ol><li> Schrubben Sie den rechten vorderen Hals mit BetadIne und 70% Ethanol, und dann machen eine Hautinzision. </li><li> Mit einem Retraktor das chirurgische Feld aussetzen. Isoliere einen 1-cm-Abschnitt der Arterie und binden sie lose mit einer Seidennaht an den proximalen und distalen Enden der Arterie, um die Exposition zu maximieren. </li><li> Punktion der Carotis-Arterie mit einem 24 G intravenösen Katheter, und die proximalen 1 cm des Katheters in Richtung des Herzens voranzutreiben. </li><li> Sichern Sie den Katheter mit der proximalen Ligatur und verbinden Sie dann die distale Ligatur. </li><li> Mit einem 3-Wege-Hahn das distale Ende des Katheters mit dem salzgefüllten Mikrorohr und dem externen Reservoir verbinden. </li></ol> 4. Tail Artery Katheterisierung <ol><li> Schrubben Sie den ventralen Bereich des Schwanzes mit Betadin und 70% Ethanol, und machen Sie eine 2-cm Hautinzision. </li><li> Dissektieren Sie die Schwanz-Arterie aus den umgebenden Strukturen und isolieren Sie einen 1 cm Abschnitt der Arterie mit gebogenen Pinzetten und abgestumpfter Pinzette. </li><li> Mit einem 4,0 schwarzen Seiden Naht, legen Sie eine lockereBinden an den proximalen und distalen Enden der Arterie, um die Belichtung zu maximieren. </li><li> Punktion der Schwanz-Arterie mit einem 24 G intravenösen Katheter, und voran den Katheter in die Arterie. </li><li> Sichern Sie den Katheter mit einer proximalen Ligatur an den Gefäß (ca. 1 cm vom Katheterkopf) und binden Sie die distale Ligatur. </li><li> Verbinden Sie den distalen Teil des Katheters mit der arteriellen Drucküberwachung. </li></ol> 5. Induktion der Rückenmark Ischämie <ol><li> Nachdem die Katheterisierung abgeschlossen ist, führe die 2 Fr. Ballon-Kopfkatheter in die absteigende Thorax-Aorta, so dass die Spitze des Katheters die linke Subclavia-Arterie erreicht. </li><li> Setzen Sie eine Tiefe von 10 cm von der Einführungsstelle ein. </li><li> Inkorporieren Sie 150 Einheiten Heparin in einer Konzentration von 100 Einheiten / ml in den Carotis-Katheter. </li><li> Den Katheterballon mit 0,05 ml Kochsalzlösung aufblasen. </li><li> Gleichzeitig das Blut in den äußeren Blutbehälter aus dem c abtropfen lassenArotid-Arterie, um den proximalen arteriellen Druck auf 80 mmHg zu regulieren. </li><li> Verbinden Sie das arterielle Drucküberwachungssystem mit dem verbleibenden Lumen des 3-Wege-Absperrhahns und steuern Sie die Blutentwässerung mit der Überwachung des arteriellen Drucks. </li><li> Bestätigen Sie den Erfolg der Aortenklappe durch eine abrupte Abnahme und kontinuierlichen Verlust des distalen arteriellen Drucks. </li><li> Nach Aortengelenk von 9, 10 oder 11 min entleeren Sie den Fogarty-Katheterballon und reinigen das abgetrocknete Blut. </li></ol> 6. Post-chirurgische Versorgung und neurologische Beurteilung <ol><li> Bei der Überwachung des arteriellen Drucks durch die Schwanzarterie entfernen Sie die Katheter aus den Oberschenkel- und Carotis-Arterien und schließen die Wunden mit Seidennähten. </li><li> Nach der Bestätigung, dass der arterielle Druck in den normalen Bereich zurückgewonnen wird, entfernen Sie den Katheter aus der Schwanz-Arterie und schließen Sie die Wunde. </li><li> Nach der Erholung von der Anästhesie, die Ratte in den Käfig zurückgeben. </li><li> Schätze halloNd-Gliedmaßenmotor-Funktion bei 24 h nach der Operation mit dem Motor-Defizit-Index ( Tabelle 1 ). Der Motor-Defizit-Index ist definiert als die Summe der Ambulations-Score und der Platzierungs- / Schrittreflex-Score. Ein Motor-Defizit-Index von 6 zeigt das maximale Defizit an. </li></ol> 7. Histopathologische Auswertung <ol><li> Nach der neurologischen Beurteilung, betäubt Ratten mit Maske-geliefertes Isofluran, opfern sie durch transkardiale Perfusion mit 100 ml heparinisierte Kochsalzlösung unter Anästhesie und extrahiere das Rückenmark. 8 </li><li> Setzen Sie die Schnurabschnitte von der Ebene der Lendenwirbel 3-5 in Paraffin ein. </li><li> Fleckquerschnitte mit Hämatoxylin und Eosin (H &amp; E). </li><li> Beobachten Sie die Motorneuronverletzung unter einem Mikroskop. 9 </li></ol> 8. Statistische Analyse <ol><li> Führen Sie eine statistische Analyse mit dem Statistischen Paket für die Sozialwissenschaften Version 20. Der Motor defIcit-Index der drei Gruppen wurde mit dem Kruskal-Wallis-Test verglichen, gefolgt von einem Mann-Whitney U -Test. Ein P- Wert &lt;0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen. </li></ol>

<ol><li>Greenberg, R. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contemporary+analysis+of+descending+thoracic+and+thoracoabdominal+aneurysm+repair%3A+a+comparison+of+endovascular+and+open+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Contemporary analysis of descending thoracic and thoracoabdominal aneurysm repair: a comparison of endovascular and open techniques.</a> Circulation. 118 (8), 808-817 (2008).</li>
<li>Okita, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fighting+spinal+cord+complication+during+surgery+for+thoracoabdominal+aortic+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Gen+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Fighting spinal cord complication during surgery for thoracoabdominal aortic disease.</a> Gen Thorac Cardiovasc Surg. 59 (2), 79-90 (2011).</li>
<li>Fleck, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+outcome+in+thoracoabdominal+aortic+aneurysm+repair%3A+the+role+of+cerebrospinal+fluid+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22Neurocrit+Care%22%5BJournal%5D)">Improved outcome in thoracoabdominal aortic aneurysm repair: the role of cerebrospinal fluid drainage.</a> Neurocrit Care. 2 (1), 11-16 (2005).</li>
<li>Kouchoukos, N. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypothermic+bypass+and+circulatory+arrest+for+operations+on+the+descending+thoracic+and+thoracoabdominal+aorta%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Hypothermic bypass and circulatory arrest for operations on the descending thoracic and thoracoabdominal aorta.</a> Ann Thorac Surg. 60 (1), 67-76 (1995).</li>
<li>Taira, Y., Marsala, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+proximal+arterial+perfusion+pressure+on+function%2C+spinal+cord+blood+flow%2C+and+histopathologic+changes+after+increasing+intervals+of+aortic+occlusion+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Effect of proximal arterial perfusion pressure on function, spinal cord blood flow, and histopathologic changes after increasing intervals of aortic occlusion in the rat.</a> Stroke. 27 (10), 1850-1858 (1996).</li>
<li>Tveten, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+vascularity.+III.+The+spinal+cord+arteries+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Radiol+Diagn+%28Stockh%29%22%5BJournal%5D)">Spinal cord vascularity. III. The spinal cord arteries in man.</a> Acta Radiol Diagn (Stockh). 17 (3), 257-273 (1976).</li>
<li>Woollam, D. H., Millen, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+arterial+supply+of+the+spinal+cord+and+its+significance%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurol+Neurosurg+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">The arterial supply of the spinal cord and its significance.</a> J Neurol Neurosurg Psychiatry. 18 (2), 97-102 (1955).</li>
<li>Kennedy, H. S., Puth, F., Van Hoy, M., Le Pichon, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+removing+the+brain+and+spinal+cord+as+one+unit+from+adult+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+%28NY%29%22%5BJournal%5D)">A method for removing the brain and spinal cord as one unit from adult mice and rats.</a> Lab Anim (NY). 40 (2), 53-57 (2011).</li>
<li>Umehara, S., Goyagi, T., Nishikawa, T., Tobe, Y., Masaki, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Esmolol+and+landiolol%2C+selective+%CE%B21+adrenoreceptor+antagonists%2C+provide+neuroprotection+against+spinal+cord+ischemia+and+reperfusion+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Esmolol and landiolol, selective β1 adrenoreceptor antagonists, provide neuroprotection against spinal cord ischemia and reperfusion in rats.</a> Anesth Analg. 110 (4), 1133-1137 (2010).</li>
<li>De Ley, G., Nshimyumuremyi, J. B., Leusen, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemispheric+blood+flow+in+the+rat+after+unilateral+common+carotid+occlusion%3A+evolution+with+time%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Hemispheric blood flow in the rat after unilateral common carotid occlusion: evolution with time.</a> Stroke. 16 (1), 69-73 (1985).</li>
<li>Coyle, P., Panzenbeck, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collateral+development+after+carotid+artery+occlusion+in+Fischer+344+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Collateral development after carotid artery occlusion in Fischer 344 rats.</a> Stroke. 21 (2), 316-321 (1990).</li>
<li>Levine, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anoxic-ischemic+encephalopathy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Anoxic-ischemic encephalopathy in rats.</a> Am J Pathol. 36, 1-17 (1960).</li>
<li>Prior, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time+course+of+changes+in+collateral+blood+flow+and+isolated+vessel+size+and+gene+expression+after+femoral+artery+occlusion+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Time course of changes in collateral blood flow and isolated vessel size and gene expression after femoral artery occlusion in rats.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 287 (6), H2434-H2447 (2004).</li>
<li>Yang, H. T., Feng, Y., Allen, L. A., Protter, A., Terjung, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+and+specificity+of+bFGFincreased+collateral+flow+in+experimental+peripheral+arterial+insufficiency%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Efficacy and specificity of bFGFincreased collateral flow in experimental peripheral arterial insufficiency.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 278 (6), H1966-H1973 (2000).</li>
<li>Kakinohana, M., Fuchigami, T., Nakamura, S., Sasara, T., Kawabata, T., Sugahara, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrathecal+administration+of+morphine%2C+but+not+small+dose%2C+induced+spastic+paraparesis+after+a+noninjurious+interval+of+aortic+occlusion+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Intrathecal administration of morphine, but not small dose, induced spastic paraparesis after a noninjurious interval of aortic occlusion in rats.</a> Anesth Analg. 96 (3), 769-775 (2003).</li>
<li>Horiuchi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+the+delta-opioid+agonist+SNC80+on+hind-limb+motor+function+and+neuronal+injury+after+spinal+cord+ischemia+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">The effects of the delta-opioid agonist SNC80 on hind-limb motor function and neuronal injury after spinal cord ischemia in rats.</a> Anesth Analg. 99 (1), 235-240 (2004).</li>
<li>Griepp, R. B., Griepp, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spinal+cord+perfusion+and+protection+during+descending+thoracic+and+thoracoabdominal+aortic+surgery%3A+the+collateral+network+concept%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Spinal cord perfusion and protection during descending thoracic and thoracoabdominal aortic surgery: the collateral network concept.</a> Ann Thorac Surg. 83 (2), S865-S869 (2007).</li>
</ol>

Die Autoren haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen. Diese Arbeit wurde durch die Gewährung von 2012R1A1A3014010 von der National Research Foundation der koreanischen Regierung unterstützt.

In der aktuellen Studie zeigten wir ein Rattenmodell der Rückenmarks-Ischämie auf der Grundlage von Taira und Marsala-Methode 5 , die in Abhängigkeit von der Aorten-Okklusionszeit variablen Grade des motorischen Defizits im Hinterglied induziert. Die Länge der Aortenverschluss kann den Grad des motorischen Defizits beeinflussen. Wenn die Aortenverschlusszeit länger ist, wird das motorische Defizit stärker. So können Forscher ein gewisses Maß an motorischem Defizit err...

Paraplegie ist eine tödliche Komplikation der Thorakoabdominal Aortenaneurysma Chirurgie. Es ergibt sich aus einer Rückenmarks-Ischämie-Reperfusions-Verletzung, die beim Querschneiden und Entklemmen der Aorta auftritt. 1 Es wurden mehrere Strategien einschließlich systemischer Hypothermie und zerebrospinaler Drainage eingeführt, um das Rückenmark zu schützen, 2 , 3 , 4 aber viele Patienten bleiben von der Verletzung betroffen. Es wurden mehrere Tier-Rückenmark-Ischämie-Modelle eingeführt, um ihre Pathogenese zu untersuchen und Schutzstrategien gegen die Verletzung zu entwickeln. In der aktuellen Studie skizzieren wir ein Rattenmodell der Rückenmark Ischämie auf der Grundlage von Taira und Marsala-Methode. 5 Das Wirbelsäulen-Zirkulationssystem bei Ratten ist dem Rückenmarks-Gefäß- und Kollateralsystem beim Menschen sehr ähnlich, obwohl es einige Unterschiede in der Größe undLage. 6 , 7 So ist eine Ratte ein anatomisch geeignetes Tier, das für ein experimentelles Modell verwendet wird, das die Pathogenese, Komplikationen und die Behandlung der Rückenmarksämie untersucht. Darüber hinaus produziert dieses Rückenmark-Ischämie-Modell eine zuverlässige Aorten-Okklusion mit minimalem Eingriff durch die Verwendung einer intravaskulären Ballon-Okklusion der Thorax-Aorta. In dieser Studie haben wir gezeigt, dass dieses Rattenmodell der Rückenmarks-Ischämie reproduzierbare motorische Defizite in den Hinterbeinen induziert, die in Abhängigkeit von der Aortenklappenzeit stark variieren.

<table><tbody><tr><td>Fogarty Katheter für arterielle Embolektomie</td><td>Edward Life Sciences</td><td>120602F</td><td>ein Katheter mit Ballonspitze, der in die Oberschenkelarterie eingeführt</td></tr> wird <tr><td>BD Insyte-N Autoguard Shielded IV Katheter&nbsp;</td><td>BD&nbsp;</td><td>381411</td><td>intravenöser 24-Gauge-Katheter</td></tr><tr><td>50 mL Spritze</td><td>KOREA IMPFSTOFF&nbsp;</td><td>KOVAX-SPRITZE 50mL</td><td>Gesichtsmaske</td></tr><tr><td>1 mL Spritze</td><td>KOREA VACCINE</td><td>KOVAX-SPRITZE 1ml</td><td></td></tr><tr><td>Recal-Sonde</td><td>HARVARD APPARATUS</td><td>50-7221F</td><td>Rektale Sonde zur Temperaturüberwachung</td></tr><tr><td>Mikrodissektion Federschere</td><td>Jeung do bio & Pflanze co.LTD.</td><td>JD-S-10</td><td>Micro-Scissor</td></tr><tr><td>SCISSOR (sharp-sharp)Jeung</td> <td>do bio & Pflanze co.LTD.</td><td>S-51-12-S</td><td>Scherenaufroller</td></tr><tr><td></td><td>Jeung do bio & Pflanze co.LTD.</td><td>JD-S-74A</td><td>Retraktor</td></tr><tr><td>Mikro-Zange</td><td>Jeung do bio & Pflanze co.LTD.</td><td>JD-S-29</td><td>Mikro-Pinzette</td></tr><tr><td>MOSQUITO PINZETTE (gebogen)</td><td>Jeung do bio & Pflanze co.LTD.</td><td>S-44-CPK</td><td>Gebogene Pinzette</td></tr><tr><td>VERBANDZANGE</td><td>Jeung do bio & Pflanze co.LTD.</td><td>S-37-16S</td><td>Abstumpfte Pinzette</td></tr><tr><td>4/0 schwarze Seide&nbsp;</td><td>Woori Medical</td><td>S431</td><td>4.0 schwarz Seide</td></tr><tr><td>Naht 3-WAY STOCK</td><td>Seonwon Medcal</td><td>D-98-01</td><td>3-Wege Absperrhahn</td></tr><tr><td>Patientenmonitor</td><td>PHILIPS</td><td>MP20</td><td>Das arterielle Drucküberwachungsgerät.</td></tr><tr><td>Heizdecke</td><td>Eigenproduktion</td><td></td><td>Heizdecke</td></tr><tr><td>Mikroröhrchen und externes Reservoir</td><td>Eigenproduktion</td><td></td><td>Mikroröhrchen und externes Reservoir</td></tr><tr><td>Heparin</td><td>JW Pharmaceutical</td><td></td><td>Heparin</td></tr><tr><td>0,9% NS 1000ml</td><td>JW Pharmaceutical</td><td></td><td>Normale Kochsalzlösung</td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>Hana Med</td><td></td><td>Isofluran</td></tr></tbody></table>

reproduzierbare motorische defizit nach aortengelenk in einem rattenmodell der rückenmark ischämie

Reproducible Motor Deficit Following Aortic Occlusion in a Rat Model Of Spinal Cord Ischemia

<html> Rückenmark Ischämie ist eine tödliche Komplikation nach thorakoabdominalen Aortenaneurysma Chirurgie. Forscher können die Strategien zur Verhütung und Behandlung dieser Komplikation mit experimentellen Modellen der Rückenmark Ischämie zu untersuchen. Das hier beschriebene Modell zeigt unterschiedliche Grade der Paraplegie, die sich auf die Länge der Okklusion nach der Thorax-Aorten-Okklusion in einem Ratten-Rückenmark-Ischämie-Modell beziehen. A 2-Fr. Ballon-Kippkatheter wurde durch die Oberschenkelarterie in die absteigende Thorax-Aorta vorgerückt, bis die Katheterspitze an der linken Subclavia-Arterie in anästhesierten männlichen Sprague-Dawley-Ratten platziert wurde. Die Rückenmarks-Ischämie wurde durch Aufblasen des Katheterballons induziert. Nach einer festgelegten Okklusion (9, 10 oder 11 min) wurde der Ballon entleert. Die neurologische Beurteilung wurde mit dem motorischen Defizitindex nach 24 Stunden nach der Operation durchgeführt und das Rückenmark wurde zur histopathologischen Untersuchung geerntet. Jads_content &quot;&gt; Ratten, die 9 min Aortenklappe unterzogen wurden, zeigten eine leichte und reversible motorische Beeinträchtigung im Hinterglied. Ratten, die 10 min Aortenklappen unterworfen wurden, wurden mit moderaten, aber reversiblen motorischen Beeinträchtigungen präsentiert. Ratten, die 11 min Aortenklappen unterzogen wurden, wurden vollständig und anhaltend angezeigt Lähmung Die motorischen Neuronen in den Rückenmarksabschnitten wurden bei Ratten, die einer kürzeren Dauer der Aortenklappen ausgesetzt waren, mehr konserviert. Forscher können ein reproduzierbares Hinterbein-Motor-Defizit nach thorakalen Aorten-Okklusion mit diesem Rückenmark Ischämie-Modell zu erreichen.

Während einer Periode der Rückenmarks-Ischämie wurde eine Aorten-Okklusion für 9 min (n = 3), 10 min (n = 3) oder 11 min (n = 3) durchgeführt. Der Motor-Defizit-Index bei Ratten ist in Tabelle 2 dargestellt. Ratten, die 9 Min. Aorten-Okklusion unterzogen wurden, zeigten eine leichte und reversible motorische Beeinträchtigung im Hinterglied. Ratten, die 10 min Aortenklappen unterworfen wurden, zeigten ein moderates motorisches Defizit, aber keine vollständige Lähmung. Ratten, die 11 Min. Verschlusszeit unterzogen wurden,...

Diese Studie zeigt die Technik, um ein minimal-invasives und leicht reproduzierbares Modell der Rückenmark-Ischämie bei Ratten zu machen. Verschiedene Grade des Hinterbein-Motor-Defizits können durch die Kontrolle der Aorten-Okklusionszeit erzeugt werden.

Reproduzierbare motorische Defizit nach Aortengelenk in einem Rattenmodell der Rückenmark Ischämie

Spinal cord ischemia is a fatal complication following thoracoabdominal aortic aneurysm surgery. Researchers can investigate the strategies for preventing ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Technik zur Erstellung eines Modells der spinalen Ischämie bei der Ratte vorzustellen. Die Demonstration des Verfahrens wird von Mi-Sun Lim durchgeführt. Der in der Schwanzarterie platzierte Katheter dient zur Überwachung des arteriellen Drucks.Nach Abschluss der Katheterisierung den Fogarty-Katheter über die Arteria femoralis in die absteigende Aorta thoracica vorrücken. Um eine Ischämie des Rückenmarks zu induzieren, den Fogarty-Katheter aufblasen und den Blutfluss aus der Arteria carotis in das externe Blutreservoir ableiten, um den proximalen arteriellen Druck zu kontrollieren. Nach der vorgesehenen Okklusionszeit den Ballon des Fogarty-Katheters entleeren, das abgeleitete Blut reinfundieren und den Femurkatheter entfernen.Nachdem die Ratte anästhesiert ist, platzieren Sie die Ratte in Bauchlage auf dem Operationstisch und erhalten Sie die Anästhesie mittels spontaner Atmung über eine Gesichtsmaske mit inhaliertem Isofluran aufrecht. Führen Sie einen horizontalen Hautschnitt im rechten Leistenbereich durch. Platzieren Sie mit einer 4,0 schwarzen Seidennaht eine lose Ligatur an beiden proximalen und distalen Enden der Arterie, um die Exposition zu maximieren. Überwachen Sie gleichzeitig den arteriellen Druck über die Schwanzarterie, entfernen Sie die Katheter aus der Femoral- und Karotisarterie und verschließen Sie die Wunde mit Seidennähten.Die motorische Funktion der Hintergliedmaßen kann mithilfe des motorischen Defizitindex beurteilt werden. Der motorische Defizitindex ist definiert als die Summe der Bewertungspunkte im Zusammenhang mit den unteren Extremitäten sowie des Platzierungs- und Schrittreflexes, wobei ein maximaler Defizitwert durch einen Score von sechs angegeben wird. Bei der Beurteilung der motorischen Funktion der Hintergliedmaßen 24 Stunden nach der Operation zeigten Ratten, die einer neunminütigen Aortenokklusion unterzogen wurden, eine leichte und reversible motorische Beeinträchtigung der Hintergliedmaßen.Ratten, die einer 10-minütigen Aortenokklusion unterzogen wurden, wiesen einen moderaten motorischen Defizit auf, jedoch keine vollständige Lähmung. Ratten, die einer Okklusionszeit von 11 Minuten ausgesetzt waren, zeigten eine vollständige und anhaltende Lähmung. Sie können verschiedene Grade motorischer Defizite der Hintergliedmaßen induzieren, indem Sie die Dauer der Aortenokklusion in diesem Modell der spinalen Ischämie steuern.Wenn die Technik einmal beherrscht ist, kann sie innerhalb von 40 Minuten durchgeführt werden. Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihrem Experiment.

reproducible-motor-deficit-following-aortic-occlusion-rat-model

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Chirurgische Induktion der ischämischen Hirnschädigung in der Ratte ist ein weit verbreitetes Modell für Schlaganfall-Forschung. Hier zeigen wir die Induktion fokaler zerebraler Ischämie durch Verschluss der mittleren Hirnarterie. Visualisierung der resultierenden Infarkt durch histologischer Färbung und Magnetresonanz-Tomographie wird ebenfalls angezeigt.

Fokaler zerebraler Ischämie-Modell von Endovascular Suture Verschluss der mittleren Hirnarterie im Rat

Bilaterale Carotisokklusion mit systemischer Hypotonie gekoppelt produziert globales Gehirn Ischämie bei der Ratte, was zu einer Beschädigung des Hippocampus mit reproduzierbaren Schwere. Tier Probanden mit vorhersagbaren Mustern der Hirnschädigung beeinträchtigt sind, erholen sie zweckmäßig und Mortalitätsraten sind vergleichsweise gering.

2-Gefäßverschluss / Hypotonie: Eine Ratte Modell der globalen Hirnischämie

Der Mangel an Verständnis der Mechanismen des Rückenmarks Ischämie-Reperfusion Verletzungen hat weitere Zusätze behindert eine Querschnittslähmung nach Aorten-Operationen mit hohem Risiko zu verhindern. Somit ist die Entwicklung von Tiermodellen zwingend. Dieses Manuskript zeigt, reproduzierbare Lähmung der unteren Extremitäten nach Thorax Aortenokklusionsvorrichtung in einem Mausmodell.

Reproduzierbare Paraplegie von thorakalen Aorta Occlusion in einem Mausmodell der Spinal Cord Ischämie-Reperfusion

Hier präsentieren wir ein Protokoll permanent distalen mittleren Hirnarterie bei älteren weiblichen Ratten bei gleichzeitiger Verschluss der Halsschlagadern zu produzieren große kortikale Infarkte und anhaltende Defizite zu erzeugen. Wir zeigen die Bestätigung der Größe der Läsion mit strukturellen MRT bei 24 Stunden und 8 Wochen nach dem Schlaganfall.

Darstellende Permanent Distal cerebri mit Arteria carotis communis Occlusion bei alten Ratten zu studieren kortikale Ischämie mit anhaltenden Behinderungs

Ein Maus-Modell der zerebralen Ischämie-Reperfusion wird gegründet, um die Pathophysiologie des Schlaganfalls zu untersuchen. Wir nach distal verbinden rechts mittlere zerebrale Arterie und rechts gemeinsame Halsschlagader und Blutfluss nach 10 oder 40 min der Ischämie wiederherstellen.

Zwei-Schiff Okklusion Mausmodell der zerebralen Ischämie-reperfusion

Der Zweck dieser Studie ist es, ein Tiermodell für die Forschung in der Erholung und Fortsetzung der Gehirn-Ischämie zu etablieren und zu validieren, indem Hirninfarkt und sensorimotorische Funktion nach mittlerer ZerebrierungSverschluss/Reperfusion (MCAO/R) nach 1-90 getestet werden. Tage in Ratten.

Ein präklinisches Modell zur Beurteilung der Gehirnerholung nach akutem Schlaganfall bei Ratten

Die Mikrozirkulation des Rückenmarks spielt eine zentrale Rolle bei Rückenmarksverletzungen. Die meisten Methoden erlauben keine Echtzeitbewertung der Mikrozirkulation des Rückenmarks, die für die Entwicklung von mikrozirkulationsorientierten Therapien unerlässlich ist. Hier schlagen wir ein Protokoll unter Verwendung von Laser-Doppler-Flow-Nadelsonden in einem großen Tiermodell der Ischämie / Reperfusion vor.

Echtzeit-Beurteilung der Rückenmarksmikroperfusion in einem Schweinemodell der Ischämie/Reperfusion

Das aktuelle Protokoll beschreibt ein Rattenmodell des Verschlusses/der Reperfusion der mittleren Hirnarterien, das die anatomische Struktur der Hirngefäße bewahrt, ohne Schäden zu verursachen.

Ein Rattenmodell für den Verschluss/die Reperfusion der mittleren Hirnarterie ohne Beschädigung der anatomischen Struktur der Hirngefäße

Dieses Protokoll beschreibt den Prozess der Vorbereitung auf die Reperfusion des Verschlusses der mittleren Hirnarterie über die Arteria carotis communis.

Eine modifizierte Modellpräparation für die Reperfusion des Verschlusses der mittleren Hirnarterie

Ziel dieser Studie war es, eine reproduzierbare Methode zur Durchführung einer Kraniektomie zu etablieren, gefolgt von permanenter, selektiver Okklusion der mittleren Hirnarterie bei Ratten zur Anwendung in experimentellen Studien zu motorischen und räumlichen Gedächtnisdefiziten.

Selektive und permanente Verschluss der mittleren Hirnarterie bei Ratten: Ein experimenteller Ansatz zur Untersuchung motorischer und räumlicher Gedächtnisdefizite

Erfahren Sie eine minimal-invasive Technik zur Erzeugung von Rückenmark-Ischämie bei Ratten mittels Fogarty-Katheter. Diese Methode ermöglicht kontrollierte motorische Defizite durch variable Aortenokklusionszeiten für Neurowissenschaften.

Reproduzierbare motorische Defizit nach Aortengelenk in einem Rattenmodell der Rückenmark Ischämie

Weitere Videos entdecken