Name: Herstellung von Chemikalien durch Klebsiella pneumoniae Bambushydrolysat als Ausgangsmaterial verwenden (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 24 s
Description: Erfahren Sie die mikrobielle Produktion von 2,3-Butandiol, Acetoin und organischen Säuren mit Klebsiella pneumoniae unter Verwendung von Bambushydrolysat als nachhaltigen Rohstoff.

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Diese Arbeit wurde von der Nationalen Naturwissenschaftlichen Stiftung von China (Grant Nr. 21576279, 20906076) und dem KRIBB-Forschungsinitiative-Programm (KGM2211531) unterstützt.

1. Vorbereitung von Bambushydrolysat <ol><li> Füge 5 g Bambuspulver zu 40 ml einer NaOH-Lösung hinzu, um eine 10% ige (g / g) Endkonzentration in einem 250 ml-Kolben zu erreichen. Verwenden Sie eine Reihe von NaOH-Lösungen im Bereich von 0,05 M bis 0,50 M in Schritten von 0,05 M. <ol><li> Inkubieren Sie die Mischung für 60 min bei 60 ° C oder 100 ° C in einem Wasserbad. Inkubieren bei 121 ° C in einem Autoklaven. </li></ol></li><li> Nach der Inkubation die Mischung 4 h bei Raumtemperatur stehen lassen. Dann entfernen Sie den Überstand. 100 ml Frischwasser zugeben und mischen. <ol><li> Wiederholen Sie dieses Waschen 5-6 mal, bis der pH-Wert des Überstandes 6,8 erreicht hat. Verwenden Sie den erhaltenen Feststoff für den nächsten Schritt der enzymatischen Hydrolyse. </li></ol></li><li> Zur Hydrolyse 50 ml der obigen Mischung auf pH 5,0 unter Verwendung von 98% H 2 SO 4 einstellen. Dann fügen Sie 0,5 ml 200 Filterpapieraktivität (FPU) / ml Cellulase hinzu. HINWEIS: Das endgültige Verhältnis von Cellulase zu Bambus shSollte 20 FPU pro 1 g Bambus sein. </li><li> Inkubieren Sie die Mischung bei 50 ° C für 36 h in einem Shaker. HINWEIS: Nach der Hydrolyse bleibt ein Feststoff in der Mischung. </li><li> Man empfängt ein klares Hydrolysat durch Zentrifugieren bei 7,690 xg für 5 min. </li><li> Quantifizieren Sie die Glukose, Xylose und andere Chemikalien mit einem Hochdruck-Flüssigkeitschromatographen-System, das mit einem Brechungsindex-Detektor und einem Photodioden-Array-Detektor ausgestattet ist. Verwenden Sie eine HPX-87H-Säule (300 mm x 7,8 mm) und eine mobile Phase von 5 mM H 2 SO 4 -Lösung mit einer Durchflussrate von 0,8 mL / min. </li><li> Für ein großes Volumen an Hydrolysatzubereitung werden 2 kg Bambuspulver und 18 l 0,25 M NaOH in einem 30-l-Edelstahlbehälter gemischt. <ol><li> Den Tank bei 121 ° C in einem Autoklaven für 60 min inkubieren. Nach der Inkubation die Mischung mit 40 l Wasser in einem 60 l Plastikbehälter waschen. Wiederholen Sie diese Reinigung 5 mal. </li><li> Verwenden Sie Wasser, um den gesamten gewaschenen Bambus auf ein Volumen von 20 L einzustellen.Den pH-Wert des Gemisches mit 98% H 2 SO 4 auf 5,0 einstellen. </li><li> Enzymatische Hydrolyse der Mischung in einem modifizierten Schüttelwasserbad, ausgestattet mit einem mechanischen Rührwerk, um sicherzustellen, dass die Mischung gut verteilt ist. Füge 200 ml von 200 FPU / ml Cellulase hinzu und inkubiere die Mischung bei 50 ° C für 36 h. </li><li> Nach der Hydrolyse wird die Mischung bei 4,700 xg für 10 min zentrifugiert. </li></ol></li></ol> 2. 2,3-Butandiol-Produktion von Wildtype K. pneumoniae <ol><li> Verwenden Sie 3 l Bambushydrolysat als Lösungsmittel für die mittlere Zubereitung. </li><li> Es wird ein Fermentationsmedium mit 4 g / l Maisquellwasser, 2 g / l (NH 4 ) 2 SO 4 , 6 g / lK 2 HPO 4 , 3 g / l KH 2 PO 4 und 0,2 g / l MgSO 4 hergestellt . Den pH-Wert des Mediums mit 2,5 M NaOH neutralisieren. Verwenden Sie einen 5-L-Bioreaktor mit 3 l autoklaviertem Fermentationsmedium zur Fermentation. </li><li> Verwenden Sie K. pneumoniaeZellen, die in einem -80 ° C-Tiefkühlschrank gespeichert sind. </li><li> Für die Saatkultur inkubieren Sie einen 250 ml-Kolben, der 50 ml Luria-Bertani (LB) -Medium über Nacht bei 37 ° C enthält, unter Schütteln bei 200 U / min. Verwenden Sie LB-Medium, das 10 g / l Trypton, 5 g / l Hefeextrakt und 10 g / l NaCl enthält. HINWEIS: Die Zelldichte der Saatkultur sollte OD 2 erreichen (optische Dichte bei 600 nm). </li><li> Inokulieren Sie einen Kolben von 50 ml der Impfkultur im Bioreaktor. Die Kultur bei pH 6,0 und 37 ° C pflegen. Verwenden Sie eine Luftzufuhrrate von 2 L / min und eine Rührgeschwindigkeit von 250 U / min, wodurch eine mikroaerobe Bedingung entsteht. </li><li> Sammeln Sie 5 mL Proben alle 2 h während der Fermentation und analysieren sie mit Hochdruck-Flüssigkeitschromatographie, um die chemischen Konzentrationen in der Brühe zu bestimmen 4 . <ol><li> Überwachen Sie das Alkali, das dem Bioreaktor online unter Verwendung von MFCS / DA hinzugefügt wird. HINWEIS: Organische Säuren werden im Fermentationsverfahren hergestelltNd NaOH wird zugegeben, um die Kultur pH stabil zu halten. Das Volumen des zugegebenen Alkalis stellt die Menge der erzeugten Säure dar. Wenn die Alkali-Zuglinie Plateaus, der Prozess abgeschlossen ist, entweder wegen der Kohlenstoff-Quelle Erschöpfung oder Zelltod. </li></ol></li></ol> 3. R- Acetoin-Produktion durch die BudC- Mutante von K. pneumoniae <ol><li> Bereiten Sie ein Medium für die Acetinproduktion vor, das 4 g / l Maisquellwasser, 2 g / l (NH 4 ) 2 SO 4 , 3 g / l Natriumacetat, 0,4 g / l KCl und 0,1 g / l MgSO 4 enthält . </li><li> Verwenden Sie K. pneumoniae-ΔbudC für die R -Acetoin- Produktion. Wiederholen Sie die Schritte 2.4-2.5. ANMERKUNG : budC kodiert 2,3-Butandiol-Dehydrogenase. K. pneumoniae-ΔbudC verliert die 2,3-Butandiol-Dehydrogenase-Aktivität und produziert R- Acetoin anstelle von 2,3-Butandiol. </li><li> Die Kultur bei pH 6,0 und 37 ° C pflegen. Verwenden Sie eine Luftzufuhrrate von 4 L / min und eine AgitatioN Rate von 450 U / min, ein aerobe Zustand. HINWEIS: Die Sauerstoffergänzung ist höher als die der 2,3-Butandiol-Produktion. </li><li> Assay die Proben wie in Schritt 2.6. </li></ol> 4. 2-Ketogluconsäure-Herstellung durch die budA- Mutante von K. pneumoniae <ol><li> Für die Herstellung von 2-Ketogluconsäure verwenden Sie dasselbe Medium wie für die R- Acetoin-Herstellung. </li><li> Verwenden Sie K. pneumoniae-ΔbudA für die Herstellung von 2-Ketogluconsäure. Wiederholen Sie die Schritte 2.4-2.5. HINWEIS : budA kodiert α-Acetolactat-Decarboxylase. K. pneumoniae-ΔbudA verliert die α-Acetolactat-Decarboxylase-Aktivität und produziert 2-Ketoglorkonsäure unter Verwendung von Glucose als Substrat. HINWEIS: Die 2-Ketoglasonsäure-Synthese ist ein saurer bedingungsabhängiger Prozess. Für die 2-Ketogluconinsäure-Produktion wurde eine zweistufige Fermentation entwickelt; In der ersten Stufe wird die Saatkultur im Bioreaktor geimpft. </li><lI&gt; Die Kultur bei pH 7,0 und 37 ° C pflegen. Verwenden Sie eine Luftzufuhrrate von 4 L / min und eine Rührgeschwindigkeit von 500 U / min. HINWEIS: Unter diesen Bedingungen wachsen die Zellen sehr schnell (die Zelldichte erreicht OD 7 in ca. 4 h). Dann geht die Fermentation zur zweiten Stufe über, während der der Kultur-pH-Wert auf 5,0 abfällt. Es wird keine Säure zugegeben; Die in der Kultur produzierten organischen Säuren führen natürlich zum pH-Abfall. Bei diesen sauren Bedingungen stoppt das Zellwachstum, aber 2-Ketogluconsäure wird synthetisiert und sammelt sich in der Brühe an. </li><li> Assay die Proben wie in Schritt 2.6. Mit dem Hydrolysat von Bambus als Kohlenstoffquelle. HINWEIS: Die Glukose im Medium wird in 2-Ketoglorkonsäure umgewandelt und die Xylose wird in Xylonsäure umgewandelt. So erhält man eine Mischung aus 2-Ketogluconsäure und Xylonsäure. </li></ol>

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<li>Pienkos, P. T., Zhang, M. <a target="_blank" href="http://link.springer.com/article/10.1007/s10570-009-9309-x">Role of pretreatment and conditioning processes on toxicity of lignocellulosic biomass hydrolysates.</a> Cellulose. 16 (4), 743-762 (2009).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

K. pneumoniae gehört zur Gattung Klebsiella in der Familie Enterobacteriaceae . K. pneumoniae ist weit verbreitet in natürlichen Umgebungen wie Boden, Vegetation und Wasser 14 . Der in dieser Forschung verwendete Wildtyp- K. pneumoniae- Stamm wurde aus dem Boden isoliert und wird für die 1,3-Propandiol-Produktion verwendet 15 . K. pneumoniae und Mutanten dieser Art produzieren viele Chemikalien unter verschiedenen Bedin...

Klebsiella pneumoniae ist ein Bakterium, das unter aeroben und anaeroben Bedingungen gut wächst. K. pneumoniae ist ein wichtiger industrieller Mikroorganismus, der verwendet wird, um viele Chemikalien herzustellen. 1,3-propandiol ist eine wertvolle Chemikalie, die hauptsächlich als Monomer zur Synthese von Polytrimethylenterephthalat verwendet wird. Polytrimethylenterephthalat ist ein biologisch abbaubarer Polyester, der bessere Eigenschaften aufweist als die von 1,2-Propandiol, Butandiol oder Ethylenglykol 1 . 1,3-propandiol wird von K. pneumoniae unter Verwendung von Glycerin als Substrat in sauerstoffbeschränkten Bedingungen hergestellt 2 . 2,3-Butandiol und seine Derivate haben Anwendungen auf dem Gebiet der Kunststoffe, der Lösemittelherstellung und des synthetischen Kautschuks und haben das Potential, als Biokraftstoff verwendet zu werden 3 . Mit Glucose als Substrat ist 2,3-Butandiol der Hauptmetabolit des Wildtyp-Stammes 4 . 2,3-Butandiol ist SyntheseEd von pyruvate Zuerst kondensieren zwei Moleküle Pyruvat, um α-Acetolactat zu ergeben; Diese Reaktion wird durch α-Acetolactatsynthase katalysiert. Α-Acetolactat wird dann durch α-Acetolactat-Decarboxylase in Acetoin umgewandelt. R- Acetoin kann bei der Katalyse von Butandiol-Dehydrogenase weiter zu 2,3-Butandiol reduziert werden. Ein effizientes Gen-Ersatzverfahren, das für K. pneumoniae geeignet ist, wurde untersucht und viele Mutanten wurden 5 , 6 , 7 konstruiert. Eine budC- Mutante, die ihre 2,3-Butandiol-Dehydrogenase-Aktivität verloren hat, akkumuliert ein hohes Maß an Acetoin in Kulturbrühe. Acetoin wird als Additiv verwendet, um den Geschmack der Nahrung zu verbessern 8 . Wenn budA , das für α-Acetolactat-Decarboxylase kodiert, mutiert ist, sammelt sich 2-Ketoglorkonsäure in der Brühe an. 2-Ketoglasonsäure wird für die Synthese von Erythorbinsäure (Isoascorbinsäure), Ein Antioxidans in der Lebensmittelindustrie verwendet 9 . 2-Ketoglasonsäure ist ein Zwischenprodukt des Glucose-Oxidationswegs; In diesem Weg, der sich im periplasmatischen Raum befindet, wird Glukose zu Gluconsäure oxidiert und dann weiter zu 2-Ketogluonsäure oxidiert. Glukonsäure und 2-Ketoglorkonsäure, die im Periplasma produziert werden, können zum weiteren Metabolismus zum Cytoplasma transportiert werden. Die Anhäufung von 2-Ketoglorkonsäure hängt von sauren Bedingungen ab, und eine höhere Luftzufuhr begünstigt die 2-Ketogluconinsäure-Produktion 10 . Gluconat-Dehydrogenase, kodiert durch Gad , Katalysiert die Umwandlung von Gluconsäure in 2-Ketolguconinsäure. Die Gad- Mutante von K. pneumoniae produzierte ein hohes Maß an Glukonsäure anstelle von 2-Ketogluonsäure, und dieser Prozeß hängt auch von sauren Bedingungen ab. Glukonsäure ist eine organische Grundsäure und wird als Additiv zur Erhöhung der Eigenschaften von Zement 1 verwendet1 Glucose-Oxidation zu Gluconsäure wird durch Glucose-Dehydrogenase katalysiert. Xylose ist auch ein geeignetes Substrat der Glukose-Dehydrogenase. Wenn Xylose als Substrat verwendet wird, erzeugt K. pneumoniae Xylonsäure 12 . Die chemische Produktion mit Biomasse als Rohstoff ist ein heißes Thema in der Biotechnologie 13 . Die Hauptkomponenten der Biomasse sind Cellulose, Hemicellulose und Lignin. Allerdings können diese makromolekularen Verbindungen nicht direkt von den meisten Mikroorganismen (einschließlich K. pneumoniae ) katabolisiert werden. Cellulose und Hemicellulosen in der Biomasse müssen zu Glucose und Xylose hydrolysiert werden und können dann von Mikroorganismen verwendet werden. Die Anwesenheit von Lignin in Lignocellulosen schafft eine Schutzbarriere, die die Biomasse-Hydrolyse durch Enzyme verhindert. So wird ein Vorbehandlungsprozess, der Lignin und Hemicellulosen entfernt und die Kristallinität von Cellulose reduziert, immer während der Biomasseverwendung durch Mic durchgeführtRoorganismen Es wurden viele Vorbehandlungsmethoden entwickelt: Säure-, Alkali-, Ammoniak- und Dampfvorbehandlungen sind üblich. Bambus ist reich an tropischen und subtropischen Regionen und ist eine wichtige Biomasse-Ressource. Hier werden die Herstellung von Bambushydrolysat und die chemische Produktion mit Bambushydrolysat vorgestellt

<table><tbody><tr><td>Autoklav</td><td>SANYO</td><td>3780</td><td></td></tr><tr><td>Bioreaktor</td><td>Sartorius Stedim Biotech</td><td>Bostat Aplus</td><td></td></tr><tr><td>Rührwerk</td><td>IKA</td><td>RW 20</td><td></td></tr><tr><td>Wasserbadschüttler</td><td>Zhicheng</td><td>ZWY-110X50</td><td></td></tr><tr><td>Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographensystem</td><td>Shimadzu Corp</td><td>20AVP</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge</td><td>Hitachi</td><td>CR22G III</td><td></td></tr><tr><td>Bambuspulver</td><td>, gekauft in der Provinz Zhejiang, China</td><td></td><td>, Maschenzahl, 50</td></tr><tr><td>Celluase</td><td>Youtell Biochemical, Shandong, China</td><td></td><td>200 PFU/ml</td></tr></tbody></table>

herstellung von chemikalien durch<em&gt; klebsiella pneumoniae</em&gt; bambushydrolysat als ausgangsmaterial verwenden

Production of Chemicals by Klebsiella pneumoniae Using Bamboo Hydrolysate as Feedstock

Bambus ist eine wichtige Biomasse, und Bambushydrolysat wird von Klebsiella pneumoniae als Ausgangsmaterial für die chemische Produktion verwendet. Hier wurde Bambuspulver mit NaOH vorbehandelt und auf einen neutralen pH-Wert gewaschen. Cellulase wurde dem vorbehandelten Bambuspulver zugesetzt, um das Hydrolysat zu erzeugen, das 30 g / l Glucose und 15 g / l Xylose enthielt und als Kohlenstoffquelle verwendet wurde, um ein Medium für die chemische Produktion herzustellen. Bei kultivierten mikroaerobischen Bedingungen wurden 12,7 g / l 2,3-Butandiol durch Wildtyp- K. pneumoniae hergestellt . In aeroben Bedingungen wurden 13,0 g / l R- Acetoin durch die budC- Mutante von K. pneumoniae produziert . Eine Mischung aus 25,5 g / l 2-Ketoglorkonsäure und 13,6 g / l Xylonsäure wurde durch die budA- Mutante von K. pneumoniae in einer zweistufigen, pH-kontrollierten Fermentation mit hoher Luftzufuhr hergestellt. In der ersten Stufe der Fermentation wurde die Kultur bei einem neutralen pH-Wert gehalten; Nach Zelle Wachstum, die FermentatioN ging in die zweite Stufe über, in der die Kultur sauer werden durfte.

In diesem Protokoll wurde der Bambus unter Verwendung von Alkali vorbehandelt. Die optimalen Inkubationsparameter - eine Temperatur von 121 ° C und 0,25 M NaOH - wurden in den Fig. 1 und 2 bestimmt . Der vorbehandelte Bambus wurde enzymatisch hydrolysiert und die im Hydrolysat erhaltenen Glucose- und Xylose-Konzentrationen wurden gemessen. Höhere Temperaturen begünstigten die Zuckerproduktion, so dass 121 ° C als optimale Temperatur gewählt wurde. Die im...

Bambuspulver wurde mit NaOH vorbehandelt und enzymatisch hydrolysiert. Das Hydrolysat von Bambus wurde als Ausgangsmaterial für 2,3-Butandiol, R- Acetoin, 2-Ketogluonsäure und Xylonsäure-Produktion von Klebsiella pneumoniae verwendet .

Herstellung von Chemikalien durch<em&gt; Klebsiella pneumoniae</em&gt; Bambushydrolysat als Ausgangsmaterial verwenden

Bamboo is an important biomass, and bamboo hydrolysate is used by Klebsiella pneumoniae as a feedstock for chemical production. Here, bamboo powder was ...

Das übergeordnete Ziel dieses Experiments besteht darin, die Produktion der Chemikalien 2,3-Butandiol, Acetoin, 2-Ketogluconsäure und Xylonsäure durch Klebsiella pneumoniae unter Verwendung des Hydrolysats von Bambus als Ausgangsmaterial zu beobachten. Zunächst werden in einer Reihe von Natriumhydroxidlösungen in 250-Milliliter-Flaschen fünf Gramm Bambuspulver zu 40 Millilitern Natriumhydroxid gegeben, um eine 10%-ige Lösung herzustellen. Die Lösungen werden 60 Minuten lang entweder in einem Wasserbad bei 60 Grad Celsius oder bei 100 Grad Celsius inkubiert oder 60 Minuten lang in einem Autoklaven bei 121 Grad Celsius. Nach der Inkubation die Ansätze fünf Minuten zentrifugieren, den Überstand abnehmen, 100 Milliliter frisches Wasser hinzufügen und mischen. Den Waschvorgang fünf- bis sechsmal wiederholen, bis der pH-Wert des Überstands 6,8 erreicht hat. Anschließend zur Durchführung der enzymatischen Hydrolyse 98 % Schwefelsäure verwenden, um 50 Milliliter jeder Lösung auf pH 5,0 einzustellen. Danach 0,5 Milliliter 200 Filterpapieraktivität (FPU) pro Milliliter Cellulase zugeben.Das endgültige Verhältnis von Cellulase zu Bambus sollte 20 FPU pro ein Gramm Bambus betragen. Inkubieren

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Forschung

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Biotechnik

Quelle: Augimeri, R. V. et. al., Verwendung der Ethylen-freisetzenden Verbindung 2-Chlorethylphosphonsäure als Werkzeug zur Untersuchung der Ethylenreaktion in Bakterien. J. Vis. Exp. (2016)Dieses Video zeigt die Wirkung von Ethylen, das von 2-Chlorethylphosphonsäure (CEPA) erzeugt wird, auf das Bakterienwachstum und die Zelluloseproduktion. Ethylen aktiviert Signalwege, die die Zellulosesynthese stimulieren, was zu einer verstärkten Pellikelbildung führt. Diese Ergebnisse unterstreichen die...

Untersuchung der bakteriellen Reaktion auf Ethylen mit einer Ethylen-freisetzenden Verbindung

Beginnen Sie mit einem Stamm von Pseudomonas aeruginosa-Bakterien , isoliert aus ölkontaminiertem Boden, in einem Medium, das eine Stickstoffquelle und einen Überschuss an Speiseöl als Kohlenstoffquelle enthält.Dieser Stamm synthetisiert Polyhydroxyalkanoat (PHA), ein langkettiges Polymer, das bei der Herstellung von Biokunststoffen nützlich ist.Unter Rühren inkubieren, um die Belüftung zu erleichtern und das Bakterienwachstum zu fördern.Zunächst liefert das Medium sowohl Kohlenstoff- als auch...

Biosynthese von Polyhydroxyalkanoaten durch Pseudomonas aeruginosa in einem kohlenstoffreichen Medium

Quelle: Wei, D., et al., Produktion von Chemikalien durch Klebsiella pneumoniae mit Bambushydrolysat als Rohstoff. J. Vis. Exp. (2017)Dieses Video demonstriert die mikrobielle Umwandlung von bambusbasierten Zuckern in 2,3-Butanediol durch die Kultivierung von Klebsiella pneumoniae in einem hydrolysatbasierten Medium unter mikroaeroben und leicht sauren Bedingungen.

Mikroaerobe Fermentation von Bambushydrolysat durch Klebsiella pneumoniae

Industrieabfälle können gesammelt und modifiziert werden, um das mikrobielle Wachstum zu analysieren. Lignocellulose-Extraktionstechniken liefern Komponenten zur Analyse der spezifischen biologischen Abbaufähigkeit. Die Gaschromatographie-Massenspektrometrie identifiziert Fermentationsprodukte von Mikroorganismen, die auf Zellstoffabfällen gezüchtet wurden. Mit diesen Methoden wird die metabolische Fähigkeit von Mikroorganismen zum Abbau von Zellstoffabfällen bestimmt.

Methoden zur Erleichterung des mikrobiellen Wachstums in Abfallströmen von Zellstofffabriken und Charakterisierung des biologischen Abbaupotenzials von kultivierten Mikroben

Dargestellt ist das Protokoll für die Co-immobilisierenden Ganzzellbiokatalysatoren für Cofactorregenerierung und eine verbesserte Wiederverwertbarkeit, mit der Produktion von L-Xylulose als Beispiel. Die Cofactorregenerierung wird durch Kopplung von zwei Escherichia coli - Stämme exprimieren funktionell komplementären Enzymen erreicht; die Ganzzellbiokatalysator Immobilisierung durch Zellverkapselung in Calciumalginatperlen erreicht.

Immobilisierung von Multi-Biokatalysatoren in Alginatbeads für Kofaktorregenerierung und verbesserte Reusability

Adaptive Evolution und Isolationstechniken sind beschrieben und gezeigt , Derivate von Scheffersomyces stipitis - Stamm NRRL Y-7124 zu erhalten , die der Lage sind, schnell Hexose und Pentose - Zuckern in gemischten Enzym verbrauchen verzuckert undetoxified Hydrolysate und über 40 g / l Ethanol zu akkumulieren.

Techniken für die Entwicklung von robusten Pentose-gärenden Hefe für Biokonversion von Lignocellulose zu Ethanol

Die hierin beschriebenen Protokolle erleichtern die bequeme Untersuchung bakterieller Ethylenreaktionen durch die Verwendung von 2-Chlorethylphosphonsäure (CEPA).  Ethylen wird in situ durch die Zersetzung von CEPA in einem wässrigen bakteriellen Wachstumsmedium hergestellt, wodurch der Bedarf an reinem Ethylengas umgangen wird.

Unter Verwendung der Ethylen-freisetzenden Verbindung, 2-Chlorethylphosphonsäure, als Werkzeug Ethylen-Antwort in Bakterien zu studieren

Wir präsentieren ein Protokoll für die Synthese von C5-Zuckern (Xylose und Arabinose) aus einer erneuerbaren nicht essbare Lignocellulose Biomasse (z.B. Jute) mit der Anwesenheit von Brønsted sauren Ionische Flüssigkeiten (BAILs) als Katalysator im Wasser. Der BAILs Katalysator ausgestellt bessere katalytische Leistung als herkömmliche mineralische Säure Katalysatoren (H2SO4 und HCl).

Eine neue Methode für die Analyse von Pentosan in Jute Biomasse und deren Umwandlung in Zucker Monomere mit sauren ionischen Flüssigkeit

Luftverschmutzung wirkt sich auf die Lebensqualität aller Organismen aus. Hier beschreiben wir den Einsatz der Mikroalgen-Biotechnologie zur Aufbereitung von Biogas (gleichzeitige Entfernung von Kohlendioxid und Schwefelwasserstoff) und die Produktion von Biomethan durch semi-industrielle offene Hochraten-Algenteiche und die anschließende Analyse der Aufbereitungseffizienz, des pH-Werts, des gelösten Sauerstoffs und des Mikroalgenwachstums.

Biogasreinigung durch den Einsatz eines Mikroalgen-Bakterien-Systems in semi-industriellen Hochstrom-Algenteichen

Dieses Protokoll stellt eine skalierbare Methode zur Umwandlung von Lebensmittelabfällen in biologisch abbaubare Polyhydroxyalkanoat (PHA)-Biokunststoffe dar. Es nutzt die gestoppte anaerobe Vergärung für die Vorbehandlung von Lebensmittelabfällen, die halophile mikrobielle Fermentation für die PHA-Biosynthese und ein chemikalienfreies Downstream-Verfahren für die PHA-Rückgewinnung.

Skalierbarer Schritt-für-Schritt-Ansatz für eine nachhaltige Biokunststoffproduktion aus Lebensmittelabfällen

Erfahren Sie die mikrobielle Produktion von 2,3-Butandiol, Acetoin und organischen Säuren mit Klebsiella pneumoniae unter Verwendung von Bambushydrolysat als nachhaltigen Rohstoff.

Herstellung von Chemikalien durch

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