Name: Das MPLEx-Protokoll für Multi-Omic Analysen von Bodenproben (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 12 s
Description: Erfahren Sie das MPLEx-Protokoll zur Multi-Omic-Analyse von Bodenproben. Diese Methode ermöglicht die gleichzeitige Extraktion von Metaboliten, Proteinen und Lipiden aus einer einzigen Probe und verbessert Präzision sowie Effizienz in der Umweltmikrobiologie.

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Die Autoren möchte Nathan Johnson für seine Hilfe bei der Vorbereitung der Figuren zu danken. Diese Forschung wurde durch das Pan-Omics-Programm unterstützt, die vom U.S. Department of Energy Office von biologischen und Umweltforschung (genomische Science Program), die Mikrobiome im Übergang (MinT) Labor leitete Forschung und Entwicklung gefördert wird Initiative des Pacific Northwest National Laboratory, als auch die nationalen Institute of Health nationalen Institut der Environmental Health Sciences (R01 ES022190) und NIH (P42 ES027704). KEBJ möchte R21 HD084788 für die finanzielle Unterstützung zur Entwicklung und Validierung neuartiger Multi-Omic Extraktionstechniken danken. Diese Arbeit wurde in die W. R. Wiley Umwelt molekularen Wissenschaften Labor (EMSL), eine DOE nationalen wissenschaftlichen Benutzer Anlage am Pacific Northwest National Laboratory (PNNL) durchgeführt. PNNL ist ein Multi-Programm-nationallabor für DOE unter Vertrag DE-AC06-76RL01830 von Battelle betrieben.

Hinweis: Sehr nasse Böden können vor der Extraktion ohne Nachteil für die Wirksamkeit der Extraktion lyophilisiert. Nasser Erde kann auch verwendet werden, sondern sollte in Betracht gezogen, beim Hinzufügen von Reagenzien in bestimmten Verhältnissen.
Hinweis: Es wird empfohlen, 20 g der trockenen Boden Gewicht pro Extraktion, zu verwenden, die zwischen zwei 50 mL Röhrchen (maximal 10 g Erde pro 50 mL-Tube) aufgeteilt werden muss. Extraktionen können nach oben oder unten je nach verfügbare Beispiel skaliert werden.
Hinweis: Trocken Bodenproben können durch einen 3 mm-Bildschirm um zu homogenisieren und entfernen kleine Wurzeln und Felsen gesiebt werden. Nicht nass Bodenproben, Sieb, wie die Probe in den Bildschirm stecken wird.
1. Boden Sie Zelle Lysis und Extraktion von Metaboliten, Proteinen und Lipiden (Timing ~ 1 d)
<ol><li>Pro 20 g Bodenprobe wiegen Sie 10 g in zwei separaten 50 mL-Tuben, die Methanol/Chloroform kompatibel sind. Extrem vorsichtig sein mit den Rohren gewählt, wie Chloroform die meisten Kunststoffe, Kontamination der Proben Lauge wird. Verwenden Sie Glas, wann immer möglich oder Kunststoff Rohre aus Polypropylen oder Polytetrafluorethylen (PTFE) gefertigt. Hinweis: Halten Sie den Boden auf dem Eis und so kühl wie möglich während der anfänglichen wiegen und Homogenisierung Schritte.</li>
	<li>Jede Röhre 10 mL Chloroform gewaschen Edelstahl und Granat Perlen hinzufügen. Auf dem Eis hinzufügen 4 mL kalten ultrapure Wasser (siehe Tabelle der Materialien für Reinigungssystem), um jedes Rohr (eine Probe Split zwischen zwei Rohren) und übertragen Sie die Proben in einem Eiskübel in einer Dampfhaube.</li>
	<li>Fügen Sie mit Hilfe einer serologischen 25 mL Glaspipette hinzu, schnell 20 mL eiskaltes 2:1 Chloroform: Methanol (V/V). Achtung: Chloroform: Methanol hat akute mögliche gesundheitliche Auswirkungen: Hautreizungen, mögliche chemische Verbrennungen, und Reizung der Atemwege. Es kann die Nieren, Leber und Herz beeinflussen. Geeignete Schutzbrille, Kleidung und Handschuhe zu tragen, und immer unter einem Abzug arbeiten.</li>
	<li>Ziehen Sie den Deckel und Wirbel in Lösung. 2:1 Choloroform:methanol hilft die Zellwand von Prokaryoten brechen und auch inaktiviert enzymatische Aktivitäten.</li>
	<li>Legen Sie wenn möglich die Rohre auf 50 mL Tube Wirbel Anhänge und horizontal Wirbel für 10 min bei 4 ° C in einem Kühlschrank. Legen Sie dann die Proben in einem-80 ° C Gefrierschrank ~ 15 min. um sie vollständig abkühlen.</li>
	<li>Mit einer Sonde sonikator in einer Dampfhaube beschallen jede Probe mit einer 6 mm (1/4")-Sonde bei Amplitude 60 % für 30 s auf dem Eis. Achtung: Es wird empfohlen, einen Ton abflauen Gehäuse und Ohr Schutz beim beschallen zu verwenden. Hohe Spannung liegt das Netzkabel Lieferung und hoher Frequenz an. Berühren Sie den Boden oder auf Seiten das Probengefäß mit einer aktiven Sonde; Es kann zu knacken oder das Plastik schmelzen.</li>
	<li>Legen Sie die Proben im-80 ° C Gefrierschrank ~ 15 min, wie beschallen viel Wärme erzeugen kann.</li>
	<li>Wiederholen Sie die Schritte 1,5-1,7. Hinweis: Stellen Sie sicher, dass die Proben während des Verfahrens Lyse kalt bleiben.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die Proben bei 4.000 x g für 5 min, 4 ° C. An dieser Stelle wird die Probe in der oberen Metabolit Schicht, die Protein-Zwischenschicht und die unteren Lipidschicht (und restlichen Trümmer Pellet) getrennt werden. Siehe Abbildung 1.</li>
	<li>Legen Sie die Proben auf Eis in einem Eiskübel und innerhalb einer Abzugshaube und mit einer 10 mL Glas serologische Pipette, entfernen Sie die obere Metabolit Schichten aus zwei 50 mL Röhrchen in eine große Glasflasche. Hinweis: Vermeiden Sie Absaugen eines Protein-Schicht in die Pipette; eine kleine Schicht von Metaboliten zu verlassen, falls erforderlich.</li>
	<li>Kippen Sie leicht die 50 mL-Tube um die Protein-Zwischenschicht zu lösen, so dass es frei schwebend auf die unteren Lipidschicht. Mit einem sauberen Edelstahl Schlitz-Lab Spatel, sorgfältig scoop beider Protein Zwischenschichten und legen Sie sie zusammen in ein neues 50 mL-Tube.</li>
	<li>Mit einer serologischen 25 mL Glaspipette, entfernen Sie die unteren Schichten der Lipid in ein großes Glas-Fläschchen. Hinweis: Versuchen Sie, angehende Bodenpartikel zu vermeiden; jedoch einige Boden Schmutz und Partikel zusammen mit strebte die Lipide werden zu einem späteren Zeitpunkt entfernt werden.</li>
	<li>Ort, atmungsaktive Membranen über den oberen Teil der Metaboliten und Lipid Glas Vials und Trocknen in einem Vakuum Konzentrator bis Trockenheit (Lipide ~ 4-5 h, Metaboliten über Nacht).</li>
	<li>Das Protein Probenröhrchen und die restlichen Trümmer Pellet Rohre fügen Sie 20 mL eiskaltes Methanol zueinander und Wirbel hinzu. Dies ist die Trümmer Pellets Chloroform abspülen, bevor Sie versuchen, jede mögliche verbleibende Protein aus den Trümmern solubilisieren bevor es werfen.</li>
	<li>Zentrifuge, die Trümmer Pellets und Protein bei 4.000 x g für 5 min, 4 ° C füllharz, dann das Methanol in ein gefährlicher Abfälle Gefäß in einer Dampfhaube Dekantieren.</li>
	<li>Die Protein- und Schutt Pellets in flüssigem Stickstoff Einfrieren und Trocknen in einem Gefriertrockner (mit einer Kollektortemperatur fähig-105 ° C durch Methanol haben einen sehr niedrigen Gefrierpunkt-98 ° c) für etwa 2 Stunden. Hinweis: Nicht übermäßig trocknen Sie die Pellets, da sie schwieriger zu lösen sein werden.</li>
	<li>Am Protein Zwischenschicht Rohr und 20 mL zu jedem der Trümmer Pellets 10 mL Protein Solubilisierung Puffer (4 % SDS, 100mM DTT (DL-Dithiothreitol) in 50mM Tris-Puffer, pH 8.0; siehe Ergänzende Reagenz Setup) hinzufügen. Achtung: SDS verursacht akute Toxizität und ist brennbar. Es ist eine Haut, Augen und Atemwege reizend. Tragen Sie Handschuhe und Schutzbrille.</li>
	<li>In der Dunstabzugshaube Sonde beschallen die Proben bei 20 % Amplitude für 30 s in Lösung zu bringen. Vortex 2 min. lang.</li>
	<li>Legen Sie die Protein-Zwischenschicht-Probe in ein Labor-Rohr-Rotator für 30 min bei 300 u/min, 50 ° C, um das Protein zu solubilisieren.</li>
	<li>Horizontal Wirbel die Trümmer Proben für eine zusätzliche 10 min bis alle verbleibenden intakten Zellen lysiert drehen Sie dann mit der Zwischenschicht Proteinproben für die restlichen 20 min.</li>
	<li>Alle Beispiele bei 4.500 x g für 10 min, Raumtemperatur (RT), Zentrifugieren und sammeln des Überstands jede Röhre pro Probe in zwei 50 mL Röhrchen.</li>
	<li>Fügen Sie 10 mL der Solubilisierung Puffer zum Protein Zwischenschicht Pellet, dann beschallen und Wirbel zurück in die Lösung und Zentrifuge wie zuvor.</li>
	<li>Kombinieren Sie die Überstände in die zwei 50 mL Röhrchen gleichermaßen und Zentrifugieren bei 8.000 x g für 10 min, 4 ° C, in einem festen Winkel-Eimer-Rotor. Hinweis: Eine endgültige Zentrifugation ist notwendig, um übermäßige kontaminierenden Huminstoffe entfernen.</li>
	<li>Dekantieren Sie die Überstände in zwei 50 mL Röhrchen, damit in jedem gibt es 30 mL. Dann fügen Sie mithilfe einer serologischen 10 mL Glaspipette 7,5 mL TCA (Trichloressigsäure Säure) um jedes Rohr. Wirbel in Lösung. Das macht 20 % TCA in jeder Probe 30 mL (entsprechend anpassen), Achtung: TCA ist ätzend, giftig und Mai Hautverbrennungen verursachen. Tragen Sie Handschuhe und Schutzbrille.</li>
	<li>Legen Sie die Proben in einem Gefrierschrank-20 ° C für 2 h über Nacht. Hinweis: Proteine werden in der Regel innerhalb von 1 h Niederschlag können jedoch Links über Nacht (bis zu 18 h). Hinweis: Lassen Sie nicht die TCA-Extraktion länger als 18 Uhr wegen möglich saure Hydrolyse des Proteins zu gehen. Wenn die Probe eingefroren ist, tauen sie auf Eis; lassen Sie sich nicht die Probe vorbei Tauwetter Aufwärmen.</li>
	<li>Um das ausgefällte Eiweiß zu Pellets, die Probe bei 4.500 x g für 10 min, 4 ° C Zentrifugieren und Dekantieren des Überstands in das Abwasser.</li>
	<li>Fügen Sie 10 mL eiskaltem Aceton 100 % jedes Protein Pellet, Wirbel und kombinieren wie Pellets in einem Rohr.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie das Röhrchen mit der kombinierten Pellet (mit einer Waage), und dann Dekantieren des Überstands in das Abwasser. Achtung: Aceton Atemwege und Haut- und Augenreizungen verursachen kann, und ist eine brennbare Flüssigkeit und Dampf. Tragen Sie Schutzbrillen Handschuhe und einen Laborkittel, arbeiten in einer Dampfhaube.</li>
	<li>Waschen Sie das Pellet zweimal mit 1,5 mL Aceton und schließlich auf eine 2 mL-Tube für die endgültige Spin bei 10.000 x g für 5 min zu übertragen.</li>
	<li>Dekantieren des Überstands in das Abwasser und erlauben das Pellet Trocknen invertiert auf ein Papier wischen unter einem Abzug für ~ 20 min oder unter einer Stickstoff-Stream, bis das Pellet leicht beginnt zu knacken.</li>
	<li>Fügen Sie 100-200 µL des Puffers Protein Solubilisierung, abhängig von der Größe der Pellets. Hinweis: Stellen Sie die Lautstärke der Solubilisierung Puffer hinzugefügt, um die Probe so gering wie möglich. Nachfolgenden Filter Aided Probe Vorbereitung (FASP) können nur bis zu 50 μL solubilisiert Probe pro Spalte verwenden; Jeder muss mehr sein, mehrere FASP Spalten aufgeteilt.</li>
	<li>Beschallen und Vortex das Pellet in Lösung. Beachten Sie, dass die Probe kann zähflüssig durch Huminstoffe Fällung zusammen mit Protein, die mit einer anschließenden Zentrifugation entfernt werden.</li>
	<li>Schütteln der Probenmaterials in einem Inkubator/Shaker für 30 min bei 300 u/min, 40 ° C, um anderweitig das Protein in Lösung und fahren mit Proteinverdauung.</li>
	<li>Snap Einfrieren die Probe in flüssigem Stickstoff und Shop in einem-80 ° C Gefrierschrank bis zum Proteinverdauung bereit.</li>
</ol>(2) Lipid-Vorbereitung (Timing ~ 20 min)
<ol><li>Sobald die Lipid-Proben trocken sind, fügen 200 μL der 2:1 Chloroform: Methanol, das Fläschchen, Vortex in Lösung und Transfer in ein 1,5 mL Polypropylen-Rohr, eine zusätzliche 200 μL auf das Glas Fläschchen, Wirbel und pipette die restlichen Lipide und übertragen auf das Rohr.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die Trümmer aus der Probe bei 12.000 x g für 5 min bei 4 ° C.</li>
	<li>Den überstand in eine Glasflasche Lipid und speichern bei-20 ° C bis zur LC-MS/MS-Analyse (Weitere Details für LC-MS/MS in Ergänzungsmethoden) übertragen.</li>
	<li>Wenn die Proben sofort nach der Zubereitung analysiert werden können, müssen die Lipide in Lösungsmittel bei-20 ° C zu verhindern Oxidation und Abbau gespeichert werden.</li>
</ol>(3) Metabolit Vorbereitung und Derivatisierung (Timing ~ 5 h)
<ol><li>Am Tag nach der Extraktion die Speed-Vac entnehmen Sie Metabolit Proben und Lagern Sie bei-20 ° C trocken, bis bereit für Derivatisierung und Analyse auf der GC. Ansonsten läuft die Metaboliten auf ein GC, dann bereiten sie mit dem entsprechenden Protokoll für das Instrument.</li>
	<li>Unmittelbar vor der derivatizing der Metaboliten zur Analyse auf der GC, übertragen Sie durch Zugabe von 200 μl von Methanol, aufschütteln und hinzufügen ein 1,5 mL Polypropylen-Rohr aus die große Glasfläschchen. Einmal wiederholen.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie das Rohr auf 12.000 x g für 10 min, 4 ° C. Übertragen Sie den überstand in kleinen Glasfläschchen, fügen Sie eine atmungsaktive Membrane nach oben, und völlig trocken in einer Speed-Vac.</li>
	<li>Derivatize die Metaboliten durch Zugabe von 20 µL der Methoxyamine Lösung der Probenfläschchen und Wirbel für 30 s auf einem Vortexer bei mittlerer Geschwindigkeit. Achtung: Methoxyamine Hydrochlorid verursacht schwere Verbrennungen und schwere Schäden an Augen, Sensibilisierung durch Hautkontakt hervorrufen kann. Schutzbrille, Handschuhe und Kittel tragen und arbeiten unter einem Abzug.</li>
	<li>Verwenden Sie ein Bad sonikator, um sicherzustellen, dass die Probe vollständig gelöst ist.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Probe in einem Inkubator mit Kondensation Prävention Deckel mit 1.000 u/min schütteln bei 37 ° C für 1 h 30 min gehalten.</li>
	<li>Invertieren Sie das Fläschchen einmal Proben mit kondensierten Tropfen an der Kappe-Oberfläche zu mischen. Spin-down der Probenmaterials bei 1.000 x g für 1 min, RT</li>
	<li>Führen Sie Silylation durch Zugabe von 80 µL (mit einer Spritze) von N-Methyl - N-(Trimethylsilyl) Trifluoroacetamide mit 1 % Trimethylchlorosilane. Für 10 s Wirbel. Achtung: MSTFA + 1 % TMCS Haut Korrosion, schwere Augenschäden und zielgruppenspezifische Orgel Toxizität verursachen können, und ist eine brennbare Flüssigkeit und Dampf. Schutzbrille, Handschuhe und Kittel tragen und arbeiten unter einem Abzug.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Probe in einem Inkubator mit Kondensation Prävention Deckel mit 1.000 u/min schütteln bei 37 ° C für 30 min gehalten.</li>
	<li>Invertieren Sie das Fläschchen einmal Proben mit kondensierten Tropfen an der Kappe-Oberfläche zu mischen.</li>
	<li>Spin-down der Probenmaterials für 5 min bei 2.000 x g, RT</li>
	<li>Übertragen Sie die umgesetzten Lösung in Ampullen für die GC-MS-Analyse geeignet.</li>
</ol>4. die Proteinverdauung (Timing ~ 1 d)
<ol><li>Zentrifugieren Sie die Probe bei 15.000 x g für 5 min, RT, um jeglichen Schmutz pellet.</li>
	<li>Filter-Aided--Probenvorbereitung (FASP) durchführen, für die Verdauung mit FASP kits (siehe Tabelle der Materialien) folgende Änderung des Herstellers Anweisungen31,32:<ol>
<li>Fügen Sie 400 μl des Puffers 8 M Harnstoff in einer FASP Spalte (500 μL 30K MWCO Spin Filter).</li>
		<li>Sobald die Probe Zentrifugieren beendet, pipette aus der Überstand (verwerfen das Pellet) und bis zu 50 μL der Probe 400 μl von 8 M Harnstoff in der Spalte hinzufügen. Hinweis: Fügen Sie nur bis zu 50 μL der Proben pro Spalte. Wenn es mehr als 50 μL der Probe, mehrere Spalten verwenden und kombinieren die Peptide nach der Verdauung. Es empfiehlt sich, dieses Volumen so gering wie möglich zu verlassen (30 µL ist ideal) zur Sicherstellung der FASP Spalte wird entfernen Sie alle der SDS die Masse Spec Analyse erheblich stören kann.</li>
		<li>Setzen Sie die Säule in der mitgelieferten 1,5 mL Tube und Zentrifugieren der Probe bei 14.000 x g für 30 min, RT</li>
		<li>Entfernen Sie den Durchfluss in das Abwasser und die Spalte 400 μl von 8 M Harnstoff hinzu und Zentrifugieren Sie wieder.</li>
		<li>Wiederholen Sie die vorherigen Schritt noch einmal für eine Gesamtmenge von 3 Harnstoff-Spülungen. Hinweis: Sicherstellen die Probe geht in der Nähe von Trockenheit auf die Spalte, wenn es irgendeine mehr als ~ 30 µL noch auf den Filter nach jedem Dreh weiter Zentrifugieren.</li>
		<li>Fügen Sie 400 μl 50 mM NH4HCO3 und Zentrifuge bei 14.000 x g für 20 min hinzu, entsorgen Sie die Abfälle und einmal wiederholen.</li>
		<li>Übertragen Sie die Spalten auf eine saubere 1,5 mL Zentrifugenröhrchen.</li>
		<li>75 μl Trypsin-Verdauung-Puffers zu Spalten hinzufügen und mit einer Kondensation Prävention Deckel bei 750 u/min bei 37 ° C für 3 h in einem Inkubator inkubieren.</li>
		<li>40 µL 50 mM NH4HCO3 zu Spalten hinzufügen.</li>
		<li>Zentrifugieren Sie die Probe bei 14.000 x g für 15 min, die Peptide in das Rohr zu sammeln, unter Beibehaltung der hochmolekularen Schadstoffe auf die Stütze.</li>
		<li>Hinzu kommen 40 μl 50mM NH4HCO3 die Spalte und Zentrifuge wieder.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Entsorgen Sie die Spalte, trocken Sie hinunter die Peptide in das Rohr in eine Speed-Vac ~ 30 µL und BCA-Assay (Bicinchoninic Acid Protein Assay Kit; siehe Tabelle of Materials) Peptide.</li>
	<li>Führen Sie optional einen Bereinigung Schritt, wenn SDS Kontamination (sichtbare Bläschen)33vermutet wird. Eine Festphasenextraktion muss danach erfolgen, wenn diese Option zu wählen. Detaillierte Informationen zu dieser Methode gibt es in den Ergänzenden Methoden.</li>
	<li>Die Probe für MS-Analyse verdünnen oder fahren Sie wahlweise mit HPLC Fraktionierung (zwei Stufen).
</li>
	<li>Um fraktionieren, verdünnen Sie Proben mit einem Volumen von 400 µL mit 10 mM Ammonium-Formiat Puffer (pH 10,0).</li>
	<li>Beschlussfassung über eine C18-Säule (siehe Tabelle der Materialien) durch die Trennung mit 0,5 mL/min mit einer HPLC-Anlage mit mobilen Phasen (A) 10 mM Ammonium-Formiat, pH 10,0 und (B) 10 mM Ammonium-Formiat, pH 10,0/Acetonitril (10: 90).<ol>
<li>Einstellen Sie den Verlauf von 100 % A zu 95 % A über die ersten 10 min, 95 % A, 65 % A über min. 10, 70, 65 % A bis 30 % A über min 70 bis 85, bei 30 % A über min 85 bis 95 pflegen.</li>
		<li>Neu mit 100 % A über min 95 bis 105 equilibrate und halten in 100 % A bis 120 min.</li>
		<li>Fraktionen alle 1,25 min (96 Fraktionen über den gesamten Verlauf) zu sammeln und schließlich verbinden jede Zeile für eine Gesamtmenge von 12 Proben oder jede zweite Zeile für 24 Proben (jeweils mit n = 8 und n = 4 Fraktionen gebündelt).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Trocknen Sie alle Fraktionen unter Vakuum und fügen Sie 15 µL Reinstwasser jeweils für die Lagerung bei-20 ° C bis LC-MS/MS-Analyse hinzu.</li>
</ol>

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Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

Es ist wichtig zu beachten, dass nicht alle Laboratorien die gleiche Ausstattung haben werden, so dass bestimmte Methoden, zum Beispiel die Lyse Schritt, angepasst werden können. Hier verwenden wir aufschütteln und beschallen, aber die Verwendung eines großen 50 mL Wulst Beater funktionieren würde. Wenn ein Gefriertrockner mit einer in der Lage,-105 ° C Kollektortemperatur nicht verfügbar ist, können Proben unter einer Stickstoff-Stream getrocknet werden. Auch Bodenarten sind sehr unterschiedlich und können einschließen,...

Bewertung von Boden mikrobiellen Gemeinschaften hat wichtige Implikationen für Kohlenstoff Radfahren und Klima Wandel verstehen. Neuere Studien haben jedoch Schwierigkeiten, wie das Fehlen von sequenzierten Genome für Mikrobiota in verschiedenen Bodenarten und die unbekannte Funktion vieler Proteine erkannt hervorgehoben. Diese Herausforderungen ergeben sich aufgrund der Boden der komplexesten mikrobiellen Gemeinschaft bekannt,1,2,3bis heute. Multi-Omic Analysen, die Ergebnisse von metagenomischen, Metatranscriptomic, metaproteom, Metabolomic und Lipidomic Studien zu verbinden, wurden in zahlreichen Studien der Erde zu einem besseren Verständnis in die Mikroben vorhanden, während vor kurzem umgesetzt erhalten umfassende Informationen über die molekulare Veränderungen aufgrund von ökologischen Störungen1,4,5. Eine Herausforderung mit Multi-Omic Studien ist, dass der Massenspektrometrie (MS)-auf der Grundlage metaproteom, Metabolomic und Lipidomic Messungen erfordern in der Regel eine spezielle Extraktionsverfahren für jedes Omic MS kompatibel6,7 , 8 , 9. präzise Gestaltung dieser Verfahren deren Umsetzung äußerst schwierig oder unmöglich wenn nur eine begrenzte Menge der Probe zur Verfügung steht. Diese Herausforderungen haben uns eine gleichzeitige Metabolit, Protein- und Lipid-Extraktion (MPLEx) Methode in der Lage, mit Hilfe kleiner Probenmengen oder Massen, Verbesserung der Genauigkeit und Bereitstellung schnellere Probe Vorbereitungen für alle drei Analysen untersuchen veranlasst 10. bislang gibt es keine alternativen Boden Extraktionsverfahren, die alle diese Ziele erreichen können.
Um globale Multi-Omic Analysen von einer einzigen Bodenprobe zu ermöglichen, war ein Bio solvent-Extraktion-Protokoll basierend auf Chloroform, Methanol und Wasser Trennungen eingesetzten10. Diese Methode wurde ursprünglich für den gesamten Lipid Extraktionen9,11 und wurde vor kurzem geändert, für die gleichzeitige Gewinnung von Metaboliten, Proteine und Lipide aus einer einzigen Probe12,13 ,14,15,16,17,18,19,20,21,22, 23,24,25,26,27,28,29,30, so dass weniger Probenmenge und experimentelle Variabilität10. Im Protokoll von MPLEx ist Chloroform nicht mischbar mit Wasser, das die Grundlage für die triphasische chemische Trennung der Probe Bestandteile in verschiedene Fraktionen bildet. Die obere wässrige Phase enthält daher die hydrophilen Metaboliten, gefolgt von einem Protein-Datenträger und dann eine Lipidschicht in der unteren Chloroform Phase (Abbildung 1). Wenn MPLEx auf den meisten Böden angewendet wird, partikulären Schmutz sammelt sich ganz unten der Probenahme Röhren und kann weggeworfen werden, nachdem alle Schichten gesammelt werden. Jede Bodenart kann abweichen, jedoch und in höchst organischen Böden wie Torf, der Boden Schmutz bleibt in der Mittelschicht und fällt nicht auf den Grund der Messgasleitung. MPLEx bietet mehrere Vorteile, wenn mehrere Molekül isolieren aus derselben Probe eingibt, wie (1) kleinere Probenmengen können verwendet werden, für Multi-Omic Analysen, 2) Multi-Omic Extraktionen aus der gleichen Probe Rückgang insgesamt experimentelle Variabilität und (3) größere Zahl von Proben können viel schneller für höheren Durchsatz Studien10vorbereitet werden. Zusammen sind diese Vorteile für eine bessere Messmöglichkeiten zur Bewertung von Bodenproben und deren komplexen mikrobiellen Gemeinschaften von entscheidender Bedeutung.

<table><tbody><tr><td>Chloroform</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>650498</td><td>gelagert bei -20°; C ! Achtung Chloroform hat akute potenzielle gesundheitliche Auswirkungen, Hautreizungen und mögliche Verätzungen, Reizungen der Atemwege, kann die Nieren, die Leber und das Herz betreffen. Tragen Sie eine geeignete Schutzbrille, Kleidung und Handschuhe, arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34860</td><td>Gelagert bei -20°; C ! Achtung Methanol kann Reizungen der Atemwege, der Haut und der Augen verursachen sowie Nerven, Nieren und Leber schädigen. Tragen Sie eine geeignete Schutzbrille, Kleidung und Handschuhe, arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>Gereinigtes Wasser aus dem Millipore</td><td>Milli-Q</td><td></td><td>Wasseraufbereitungssystem.</td></tr><tr><td>Natriumdodecylsulfat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L6026</td><td>! Achtung SDS verursacht akute Toxizität und ist brennbar. Es ist ein Reizmittel für Haut, Augen und Atemwege. Tragen Sie Handschuhe und eine Schutzbrille.</td></tr><tr><td>Bodenprotein-Extraktionskit</td><td>MoBio, NoviPure Bodenprotein-Extraktionskit, Qiagen</td><td>30000-20</td><td></td></tr><tr><td>DL-Dithiothreitol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>43815</td><td></td></tr><tr><td>1M Trizma HCL</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T2694</td><td></td></tr><tr><td>Trichloressigsäure</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T0699</td><td>! Achtung TCA ist ätzend, giftig und kann Hautverbrennungen verursachen. Tragen Sie Handschuhe und eine Schutzbrille.</td></tr><tr><td>Aceton</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>650501</td><td>gelagert bei -20°; C ! Achtung Aceton kann Reizungen der Atemwege sowie Haut- und Augenreizungen verursachen. Entflammbare Flüssigkeit und Dämpfe. Tragen Sie eine Schutzbrille, Handschuhe und einen Laborkittel, arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>Harnstoff</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>208884</td><td>! Achtung Harnstoff ist augen- und hautreizend, verwenden Sie Handschuhe und Schutzbrille</td></tr><tr><td>Ammoniumbicarbonat</td><td>Fluka</td><td>09830</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Promega</td><td>V528A</td><td>20&micro; g Fläschchen</td></tr><tr><td>Bicinchoninsäure Protein Assay Kit</td><td>Pierce</td><td>23227</td><td></td></tr><tr><td>Ammoniumformiat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>09735</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitril</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>34998</td><td>! Achtung Acetonitril reizt die Haut und die Augen. Leichtentzündlich. Tragen Sie Handschuhe und eine Schutzbrille. Arbeiten Sie in einem Abzug.</td></tr><tr><td>Trifluoressigsäure</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6508</td><td>! Achtung TFA ist bei Hautkontakt, Augenkontakt, Verschlucken und Einatmen äußerst gefährlich. Kann Gewebeschäden verursachen, insbesondere an den Schleimhäuten von Augen, Mund und Atemwegen. Hautkontakt kann zu Verbrennungen führen. Tragen Sie Handschuhe, einen Laborkittel, eine Schutzbrille und arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>Methoxyaminhydrochlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>226904</td><td>! Achtung Methoxyaminhydrochlorid verursacht schwere Verbrennungen und schwere Schäden an den Augen, kann bei Hautkontakt zu einer Sensibilisierung führen. Tragen Sie eine Schutzbrille, Handschuhe und einen Laborkittel, arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>Pyridin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>270970</td><td>! Achtung Pyridin kann Haut- und Augenreizungen sowie Depressionen des Zentralnervensystems verursachen. Dampf kann Stichflammen verursachen. Tragen Sie eine Schutzbrille, Handschuhe und einen Laborkittel, arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>N-Methyl-N-(trimethylsilyl)trifluoracetamid mit 1% Trimethylchlorsilan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>69478</td><td>! Achtung MSTFA + 1% TMCS kann Ätzwirkung auf die Haut, schwere Augenschäden und eine spezifische Toxizität des Zielorgans verursachen. Entflammbare Flüssigkeit und Dämpfe. Tragen Sie eine Schutzbrille, Handschuhe und einen Laborkittel, arbeiten Sie im Abzug.</td></tr><tr><td>Kaliumchlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>Milli-Q Wasseraufbereitungssystem</td><td>Millipore</td><td></td><td>Modell MPGP04001</td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Scientific Industries</td><td>SI-0236</td><td>Vortex Genie 2</td></tr><tr><td>Sonde Ultraschallgerät</td><td>FisherBrand</td><td></td><td>Modell FB505</td></tr><tr><td>Kühlzentrifuge</td><td>Eppendorf</td><td></td><td>Modell 5810R</td></tr><tr><td>50 ml Röhrchen Ausschwingrotor</td><td>Eppendorf</td><td>A-4-44</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Festwinkelrotor</td><td>Eppendorf</td><td>FA-45-6-30</td><td></td></tr><tr><td>Balance</td><td>OHAUS</td><td></td><td>Modell V22PWE150IT</td></tr><tr><td>Serologische Pipettiersteuerung</td><td>Eppendorf</td><td>12-654-100</td><td></td></tr><tr><td>10 ml, 25 ml serologische Glaspipetten</td><td>FisherBrand</td><td>13-678-27F, 13-678-36D</td><td></td></tr><tr><td>Thermomixer mit Thermotop</td><td>Eppendorf</td><td>5382000015, 5308000003</td><td></td></tr><tr><td>0,9 &ndash; 2,0 mm Blend Edelstahlperlen</td><td>NextAdvance</td><td>SSB14B</td><td></td></tr><tr><td>0,15 mm Granatperlen</td><td>MoBio</td><td>13122-500</td><td></td></tr><tr><td>Magnetrührplatte</td><td>FisherBrand</td><td>11-100-16SH</td><td></td></tr><tr><td>Magnetrührstäbchen</td><td>FisherBrand</td><td>14512130</td><td></td></tr><tr><td>pH Papierstreifen, pH Bereich 0&ndash; 14</td><td>FisherBrand</td><td>M95903</td><td></td></tr><tr><td>15 ml, 50 ml konisches Zentrifugenröhrchen aus Polypropylen</td><td>Genesee Scientific</td><td>21-103 21-108</td><td>Chloroform-kompatibel</td></tr><tr><td>50 mL Vortex-Aufsatz</td><td>MoBio</td><td>13000-V1-50</td><td></td></tr><tr><td>Eiskübel</td><td>FisherBrand</td><td>02-591-44</td><td></td></tr><tr><td>27,25 x 70 mm Glasfläschchen</td><td>FisherBrand</td><td>03-339-22K</td><td></td></tr><tr><td>Breathe Einfachere Plattenmembranen</td><td>Midwest Scientific</td><td>BERM-2000</td><td></td></tr><tr><td>Alkoholtücher</td><td>Diversified Biotech</td><td>BPWP-1000</td><td></td></tr><tr><td>Heater Shaker Inkubator</td><td>Benchmark, Incu-Shaker Mini</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Analog Rotator für Rotisserie Tube</td><td>SoCal BioMed, LLC</td><td>82422001</td><td></td></tr><tr><td>Filter-Aided-Sample-Prep Kit</td><td>FASP; Expedeon</td><td>44250</td><td></td></tr><tr><td>Mikroplatten-Reader</td><td>Biotek, EPOCH-20</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Grad Celsius Gefrierschrank</td><td>Fisher</td><td>13986149-80</td><td></td></tr> <tr><td>Grad Celsius Gefrierschrank</td><td>Stirling Ultracold</td><td>SU78OUE</td><td></td></tr><tr><td>Q-Exactive Ion Trap Massenspektrometer</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agilent 7890A Gaschromatograph gekoppelt mit einem einzelnen Quadrupol 5975C Massenspektrometer</td><td>Agilent Technologies, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LTQ-Orbitrap Velo</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Waters NanoEquityTM UPLC System</td><td>Millford, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>250mL Medienflasche</td><td>FisherBrand</td><td>1395-250</td><td></td></tr><tr><td>Waters Fläschchen</td><td>Waters</td><td>186002805</td><td></td></tr><tr><td>Glass MS-Probenfläschchen und -einsätze</td><td>MicroSolv</td><td>9502S-WCV, 9502S-02ND</td><td></td></tr><tr><td>Glas HPLC-Fläschchen und Schnappverschlüsse</td><td>MicroSolv</td><td>9512C-0DCV, 9502C-10C-B</td><td></td></tr><tr><td>HPLC 96-Well-Platte</td><td>Agilent</td><td>5042-6454</td><td></td></tr><tr><td>Großes Glasfläschchen 27,25 x 70 mm</td><td>FisherBrand</td><td>03-339-22K</td><td></td></tr><tr><td>Lyophilisator</td><td>Labconco</td><td>7934021</td><td></td></tr><tr><td>Flachkopfspatel aus poliertem Edelstahl</td><td>Spoonula; FisherBrand</td><td>14-375-10</td><td></td></tr><tr><td>Kim Tücher</td><td>Kimberly-Clark</td><td>34721</td><td></td></tr><tr><td>XBridge C18, 250x4.6 mm, 5 &mu; M mit 4,6x20 mm Vorsäule</td><td>Waters</td><td>186003117, 186003064</td><td></td></tr><tr><td>Agilent 1100 Serie HPLC-System</td><td>Agilent Technologies</td><td>G1380-90000</td><td></td></tr><tr><td>1,7 mL Zentrifugenröhrchen</td><td>Sorenson</td><td>11700</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton Glass Spritzen, 5 mL, 50 μm; L und 250&micro; L</td><td>Hamilton</td><td>81517, 80975, 81175</td><td></td></tr><tr><td>Pasteurpipetten</td><td>FisherBrand</td><td>13-678-20A</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur Pipettenbirnen</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z111597</td><td></td></tr><tr><td>Bath Sonicator</td><td>Branson 1800 Ultraschallreiniger</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vakuumzentrifuge</td><td>Labconco Centrivap Säurebeständiges Konzentratorsystem</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MicroSpin Säulen, C18 Kieselsäure</td><td>The Nest Group</td><td>SEM SS18V</td><td></td></tr></tbody></table>

das mplex-protokoll für multi-omic analysen von bodenproben

The MPLEx Protocol for Multi-omic Analyses of Soil Samples

Massenspektrometrie (MS)-auf der Grundlage integrierter metaproteom, Metabolomic und Lipidomic (Multi-Omic) Studien verändern unsere Fähigkeit zu verstehen und mikrobielle Gemeinschaften in ökologische und biologische Systeme zu charakterisieren. Diese Messungen ermöglichen erweiterte Analysen komplexer Boden mikrobieller Gemeinschaften, die die meisten sind sogar komplexe mikrobielle Systeme bisher bekannt. Multi-Omic Analysen haben jedoch Probe Vorbereitung Herausforderungen, da separate Extraktionen für jede Omic Studie, dadurch erheblich verstärken die Zubereitungszeit und Probenmenge benötigt in der Regel benötigt werden. Um diese Einschränkung zu beheben, wurde eine 3-in-1-Methode für die gleichzeitige Gewinnung von Metaboliten, Proteinen und Lipiden (MPLEx) aus der gleichen Bodenprobe durch Anpassung einen Lösungsmittel basierender Ansatz geschaffen. Dieses Protokoll MPLEx erweist sich als einfach und robust für viele Probentypen sein, auch wenn für begrenzte Mengen von komplexen Bodenproben genutzt. Die MPLEx-Methode aktiviert auch die schnelle Multi-Omic Messungen erforderlich, um ein besseres Verständnis der Mitglieder der einzelnen mikrobiellen Gemeinschaft bei der Auswertung der Veränderungen auf biologische und ökologische Störungen.

Als das MPLEx-Protokoll verwendet wurde, um Moleküle aus Kansas native Prairie Boden (ein Mollisol Boden) zu extrahieren, vorgesehenen dreifacher Analysen Ergebnisse 3376 Peptide, 105 Lipide und 102 polaren Metaboliten (alle eindeutigen Kennungen). Während das MPLEx-Protokoll für die allgemeine Extraktion von Lipiden und Metaboliten12,13,14,15,<sup cl...

Ein Protokoll ist für gleichzeitig Extrahieren von Metaboliten, Proteine und Lipide aus einer einzigen Bodenprobe, ermöglicht reduzierte Probe Zubereitungszeiten und ermöglicht Multi-Omic Massenspektrometrie Analysen von Proben mit begrenzten Mengen vorgestellt.

Das MPLEx-Protokoll für Multi-Omic Analysen von Bodenproben

Mass spectrometry (MS)-based integrated metaproteomic, metabolomic, and lipidomic (multi-omic) studies are transforming our ability to understand and ...

Diese Methode wird in den Bereichen Proteomik, Metabolomik und Lipidomik eingesetzt, indem sie dazu beiträgt, umfassende Informationen über die molekularen Veränderungen zu erhalten, die in bodenassoziierten mikrobiellen Gemeinschaften aufgrund von Umweltstörungen stattfinden. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass die Gewinnung mehrerer Analyten aus einer einzigen Bodenprobe die Präzision und Genauigkeit erhöht und gleichzeitig die Zeit und den Aufwand für die Probenvorbereitung verringert. Wiegen Sie zunächst für jede 20-Gramm-Bodenprobe 10 Gramm in zwei separate 50-Milliliter-Methanol/Chloroform-kompatible Röhrchen.Verwenden Sie Kunststoffschläuche aus PTFE, da Chloroform die meisten Kunststoffe auslaugt und die Proben verunreinigt. Geben Sie etwa 10 Milliliter chloroformgewaschenen Edelstahl und Granatperlen in jedes Röhrchen. Geben Sie dann auf Eis vier Milliliter kaltes Reinstwasser in jedes Röhrchen und geben Sie die Proben in einen Eiskübel in einen Abzug.Geben Sie mit einer serologischen 25-Milliliter-Glaspipette schnell 20 Milliliter eiskaltes Chloroform von zwei zu eins Chloroform zu Methanolvolumen/-volumen in die Röhrchen. Ziehen Sie die Deckel fest und wirbeln Sie die Erdmischung in Lösung. Das Chloroform-Methanol hilft dabei, die Zellwand von Prokaryoten aufzubrechen und inaktiviert auch enzymatische Aktivitäten.Befestigen Sie dann die Röhrchen an 50-Milliliter-Röhrchen-Wirbelaufsätzen und wirbeln Sie, wenn möglich, 10 Minuten lang bei vier Grad Celsius horizontal in einem Kühlschrank. Legen Sie die Proben dann für etwa 15 Minuten in einen Gefrierschrank mit minus 80 Grad Celsius, um sie vollständig abzukühlen. Anschließend wird jede Probe mit einem Sonden-Ultraschallgerät in einem Abzug 30 Sekunden lang auf Eis mit einer sechs Millimeter großen Sonde von 1/4 Zoll bei 60 % Amplitude beschallt.Legen Sie die Proben nach der Beschallung in einen Gefrierschrank mit minus 80 Grad Celsius, da die Beschallung viel Hitze erzeugen kann. Nach der Wiederholung der horizontalen Vortexing-, Ultraschall- und Gefrierschritte zentrifugieren Sie die Proben fünf Minuten lang bei der 4.000-fachen Schwerkraft und vier Grad Celsius. Zu diesem Zeitpunkt wird die Probe in die obere Metabolitenschicht, die Proteinzwischenschicht und die untere Lipidschicht getrennt.Legen Sie die Proben auf Eis. Verwenden Sie dann in einem Abzug eine serologische 10-Milliliter-Glaspipette, um die oberen Metabolitenschichten aus den beiden 50-Milliliter-Röhrchen in ein großes Glasfläschchen zu übertragen. Kippen Sie nun das 50-Milliliter-Röhrchen leicht, um die Proteinzwischenschicht freizugeben, so dass sie frei auf der unteren Lipidschicht schwebt.Schöpfen Sie dann mit einem sauberen Flachkopf-Laborspatel aus Edelstahl vorsichtig beide Proteinzwischenschichten ab und geben Sie sie zusammen in ein neues 50-Milliliter-Röhrchen. Übertragen Sie mit einer serologischen 25-Milliliter-Glaspipette die unteren Lipidschichten in ein großes Glasfläschchen. Geben Sie 20 Milliliter eiskaltes Methanol in die beiden Röhrchen mit dem Schmutz und in das eine Röhrchen mit der Proteinzwischenschicht.Drehen Sie die Röhrchen kurz vor und zentrifugieren Sie die Trümmerpellets und die Proteinzwischenschicht fünf Minuten lang bei der 4.000-fachen Schwerkraft und vier Grad Celsius. Anschließend wird das Methanol in einen Sondermüllbehälter in einem Abzug umgefüllt. Frieren Sie die Protein- und Schmutzpellets in flüssigem Stickstoff ein und trocknen Sie sie etwa zwei Stunden lang in einem Gefriertrockner.Geben Sie 20 Milliliter Proteinsolubilisierungspuffer in 50-Millimolar-Tris-Puffer mit einem pH-Wert von 8,0 zu jedem der Trümmerpellets und 10 Milliliter in das Proteinzwischenschichtröhrchen. Im Abzug beschallt die Sonde die Proben 30 Sekunden lang mit einer Amplitude von 20 %, um sie in Lösung zu bringen. Wirbeln Sie die Proben zwei Minuten lang.Legen Sie dann die Proteinzwischenschichtprobe 30 Minuten lang bei 50 Grad Celsius in einen Rotator des Laborröhrchens, um das Protein zu lösen. Wirbeln Sie die Trümmerproben weitere 10 Minuten lang horizontal, um alle verbleibenden intakten Zellen zu lysieren. Drehen Sie dann für die restlichen 20 Minuten mit den Proteinzwischenschichtproben.Zentrifugieren Sie alle Proben 10 Minuten lang bei 4.500-facher Schwerkraft bei Raumtemperatur und sammeln Sie den Überstand aus jedem Röhrchen pro Probe in zwei 50-Milliliter-Röhrchen. Geben Sie 10 Milliliter Solubilisierungspuffer in das Proteinzwischenschicht-Pellet. Dann beschallen Sie das Pellet und wirbeln es zurück in die Lösung.Nach dem Zentrifugieren werden die Überstände gleichmäßig in die beiden 50-Milliliter-Röhrchen mit den Überständen aus dem Schuttgranulat gemischt und die Röhrchen in einem Schaufelrotor mit festem Winkel bei der 8.000-fachen Schwerkraft und vier Grad Celsius für 10 Minuten zentrifugiert, um den verbleibenden Schmutz zu pelletieren. Teilen Sie die Überstände auf zwei 50-Milliliter-Röhrchen auf. Geben Sie dann mit einer serologischen 10-Milliliter-Glaspipette 7,5 Milliliter TCA in jedes Röhrchen.Die Proben werden in Lösung eingewirbelt. Legen Sie die Proben dann für zwei Stunden bis über Nacht in einen Gefrierschrank mit minus 20 Grad Celsius. Um das gefällte Protein zu pelletieren, zentrifugieren Sie die Probe 10 Minuten lang bei der 4.500-fachen Schwerkraft und vier Grad Celsius und dekantieren Sie den Überstand zu einem Abfall.Geben Sie 10 Milliliter 100% eiskaltes Aceton zu jedem Proteinpellet. Wirbeln Sie die Röhren und verbinden Sie sie wie Pellets in einem Rohr. Zentrifugieren Sie das Aceton und dekantieren Sie es dann.Waschen Sie das Pellet mit einem kleineren Volumen Aceton zweimal und geben Sie die Suspension für die letzte Drehung in ein 1,5- oder Zwei-Milliliter-Röhrchen. Den Überstand in den Abfall umfüllen und das Pellet auf einem Papiertuch in einem Abzug etwa 20 Minuten lang umgedreht trocknen lassen. Je nach Größe des Pellets fügen Sie 100 bis 200 Mikroliter des Proteinsolubilisierungspuffers hinzu.Beschallen und wirbeln Sie das Pellet in Lösung. Beachten Sie, dass die Probe viskos sein kann, da Huminstoffe zusammen mit dem Protein ausfallen, die bei einer anschließenden Zentrifugation entfernt werden. Schütteln Sie schließlich die Probe in einem Inkubator oder Shaker bei 300 U/min und 40 Grad Celsius für 30 Minuten, um das Protein in Lösung zu lösen, bevor Sie mit dem Proteinaufschluss oder dem Schockfrosten für die zukünftige Verarbeitung fortfahren.Unter Verwendung des MPLEx-Protokolls, das in diesem Video demonstriert wird, wurden 3.376 Peptide, 105 Lipide und 102 polare Metaboliten aus dem Prärieboden der Ureinwohner von Kansas extrahiert, und die Extraktion von Proteinen im Protokoll wird mit Proteinextraktionskits und SDS-Extraktionen unter Verwendung von Umkehrphasen-LC-MS/MS verglichen. Beim ersten Vergleich von drei Replikaten des kommerziellen Proteinextraktionskits und der SDS-Methoden überlappten sich nur 12 % der Peptide zwischen den beiden Techniken, was die Komplexität der mikrobiellen Gemeinschaft und die unterschiedlichen Extraktionseffekte zeigt. Beim Vergleich von MPLEx mit einem kommerziellen Proteinextraktionskit und SDS-Extrakten wurden etwa 38% der Peptide, die mit der MPLEx-Methode beobachtet wurden, auch bei der Verwendung der SDS- und/oder kommerziellen Kit-Extraktionen nachgewiesen.In Anbetracht der Anzahl der Arten in der Bodenbakteriengemeinschaft von Kansas und ihres Metagenoms ist die Überlappung der Peptididentifikationen vernünftig. Wie hier gezeigt, wurde die breite Anwendbarkeit des MPLEx-Ansatzes zuvor anhand des Archaeons S.acidocaldarius, eines unicyanobakteriellen Konsortiums, des Hirnrindengewebes der Maus, des menschlichen Urins und der Blätter von A. thaliana untersucht. In allen Fällen war die Anzahl der Proteine, die mit der MPLEx-Methode beobachtet wurden, ähnlich wie bei den Kontrollen, was auf ihren Nutzen für viele verschiedene Probentypen hinweist.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie Sie Proteine, Metaboliten und Lipide aus einer einzigen Bodenprobe gewinnen können. Bei diesem Verfahren ist es wichtig, flexibel zu sein, da alle Bodentypen unterschiedlich sind. Zum Beispiel variiert die Größe der Proteinzwischenschicht, abhängig von der Bodenbiomasse und den im Boden vorhandenen Huminstoffen.Vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit Chloroform äußerst gefährlich sein kann und Vorsichtsmaßnahmen wie das Arbeiten in einem Abzug immer getroffen werden sollten, wenn Sie dieses Verfahren versuchen.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Chemistry

Chemie

Wir beschreiben ein Multiplex-Verfahren für den Nachweis von Mikroorganismen in einer Probe mit Oligonukleotid-gekoppelte fluoreszierende Kügelchen. Amplicon aus allen Organismen in einer Probe ist es, ein Gremium von Sonde-gekoppelten Beads hybridisiert. Ein Luminex oder Bio-Plex Gerät wird verwendet, um jede Perle für Perle Art und Hybridisierungssignal Abfrage.

Multiplex Nachweis von Bakterien in komplexen Clinical and Environmental Proben mit Oligonukleotid-gekoppelten Fluoreszenz-Mikrosphären

Phospholipid-Fettsäuren liefern Informationen über die Struktur des Bodens mikrobiellen Gemeinschaften. Wir stellen Verfahren zur Extraktion aus Bodenproben mit einem einphasigen Gemisch von Chloroform, Fraktionierung des extrahierten Lipiden Festphasenextraktionssäulen verwendet und Methanolyse Fettsäuremethylester zu erzeugen, die durch Kapillar-Gaschromatographie analysiert.

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Der Artikel beschreibt eine Methode, die den Durchsatz erhöht, während der Aufwand und die Genauigkeit für die Extraktion von Lipiden aus den Zellmembranen von Mikroorganismen zur Verwendung bei der Charakterisierung sowohl der Gesamtlipide als auch der relativen Häufigkeit von Indikatorlipiden zur Bestimmung der mikrobiellen Bodenstruktur in Studien mit vielen Proben ausgeglichen werden.

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Die Wurzel Mikrobiom zu erkunden: Extrahieren von Bakteriengemeinschaft Daten aus dem Boden, die Rhizosphäre und die Wurzel Endosphere

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Ausgrabung der Pflanzenwurzeln aus dem Bereich sowie Verarbeitung von Proben in Endosphere, Rhizosphäre und Boden sind im Detail beschrieben, einschließlich DNA-Extraktion und Analyse-Methoden. Dieses Papier soll anderen Labors, diese Techniken für die Untersuchung von Böden, Endosphere und Rhizosphäre mikrobiome zu ermöglichen.

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Dieses Protokoll beschreibt einen einzigen Durchsatz für ergänzende analytische und Omics Techniken, die ihren Höhepunkt in einer voll gepaart Charakterisierung von natürlichen organischen Stoffen und mikrobielle Proteomics in verschiedenen Ökosystemen. Dieser Ansatz ermöglicht die robuste Vergleiche zur Identifizierung von Stoffwechselwegen und Transformationen für Treibhausgasproduktion Beschreibung und Vorhersage Reaktionen auf Veränderungen der Umwelt wichtig.

Single-Durchsatz ergänzende hochauflösende Analysetechniken für die Charakterisierung von komplexen natürlichen organischen Substanz Mischungen

Dieses Protokoll ist eine effektive, schnelle Methode, um Hefen und den Schimmelpilz Aspergillus fumigatus aus großen Sätzen von Bodenproben in nur 7 Tagen zu kultivieren. Die Methoden können leicht modifiziert werden, um eine Reihe von Inkubationsmedien und Temperaturen aufzunehmen, die für Experimente benötigt werden.

Isolierung von kultivierbaren Hefen und Schimmelpilzen aus Böden zur Untersuchung der Pilzpopulationsstruktur

Erfahren Sie das MPLEx-Protokoll zur Multi-Omic-Analyse von Bodenproben. Diese Methode ermöglicht die gleichzeitige Extraktion von Metaboliten, Proteinen und Lipiden aus einer einzigen Probe und verbessert Präzision sowie Effizienz in der Umweltmikrobiologie.

Das MPLEx-Protokoll für Multi-Omic Analysen von Bodenproben

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