Komplette und partielle Aorten Okklusion für die Behandlung von hämorrhagischen Schock bei Schweinen

Diese Methode kann helfen, wichtige Fragen im Bereich der Traumaversorgung zu beantworten, einschließlich Strategien zur Behandlung von nicht-kompressiblen Rumpfblutungen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie dazu beitragen kann, relevante endovaskuläre Wiederbelebungsstrategien in einem klinisch realistischen Großtiermodell mit einer Physiologie zu testen, die der des Menschen nachahmt. Die Auswirkungen dieser Technik erstrecken sich auf die Behandlung des hämorrhagischen Schocks, der eine der Hauptursachen für vermeidbare Todesfälle bei Traumata ist.

Im Allgemeinen werden Menschen, die mit dieser Methode noch nicht vertraut sind, Schwierigkeiten haben, da sie chirurgisches Fachwissen und Kenntnisse der Physiologie der Intensivmedizin erfordert. Nachdem Sie ein angemessenes Maß an Sedierung durch ein Einklemmen der Hintergliedmaßen bestätigt haben, verwenden Sie ein konventionelles Laryngoskop, das mit einer 12-Zoll-beleuchteten Miller-Klinge ausgestattet ist, um die Spitze der Klinge durch den Oropharynx des anästhesierten Schweins zu führen. Achten Sie darauf, die Mundschleimhaut oder die Zähne nicht zu beschädigen, schieben Sie die Klingenspitze langsam bis zur Epiglottis vor, heben Sie die Epiglottis mit der Klinge an und fahren Sie am Kehlkopfeingang vorbei, bis Sie eine klare Sicht auf den Kehlkopf erhalten.

Legen Sie einen französischen Endotrachealtubus 6,5 oder 7 mit einem Stilett zwischen den Stimmlippen in die Luftröhre und blasen Sie die Ballonmanschette mit 10 bis 15 Kubikzentimetern Luft auf, um ein Auslaufen um die Manschette oder das Absaugen des Mageninhalts zu verhindern. Verbinden Sie dann den Endotrachealtubus über einen Atemfilter mit dem Beatmungsgerät und befestigen Sie den Schlauch mit Baumwollband um den Oberkiefer. Für eine Kanülierung der Oberschenkelarterie und der Venen schrubben Sie die Operationsstellen fünf Minuten lang mit einer großen Menge Povidon-Jod und legen Sie die sterilen OP-Handtücher um die Operationsstellen, um die Sterilität der Operationsfelder zu erhalten.

Identifizieren Sie mit einem Skalpell, das mit einer sterilen chirurgischen Klinge der Nummer 10 ausgestattet ist, die Leistenfalte und machen Sie einen vertikalen Schnitt von acht Zentimetern in der rechten Leiste, vier Zentimeter über und vier Zentimeter unterhalb der rechten Leistenfalte. Präparieren Sie das Unterhautgewebe und platzieren Sie zwei Weitlaner-Retraktoren in den Schnitt. Präparieren Sie mit einer rechtwinkligen Mixter-Pinzette und einem Elektrokauter das Bindegewebe und die Muskeln, bis das neurovaskuläre Bündel deutlich freiliegt, und präparieren Sie die Arterie vorsichtig, wobei Sie darauf achten, dass der Nervus lateralis erhalten bleibt.

Verwenden Sie eine abgewinkelte Einführnadel mit 20 Gauge, um die Arterie zu punktieren, und schieben Sie einen 0,35 Zoll langen Führungsdraht mit runder Spitze durch das Lumen der abgewinkelten Nadel. Wenn der Führungsdraht an Ort und Stelle ist, ziehen Sie die Nadel über den Führungsdraht und üben Sie leichten Druck auf den Arteriotomie aus, um Blutungen zu vermeiden, und führen Sie eine 14 französische Einführschleuse über den Führungsdraht ein. Kanülieren Sie dann die linke Oberschenkelarterie und -vene, wie gerade gezeigt.

Verwenden Sie für die Kanülierung der Halsschlagader und der Vena jugularis externa ein Skalpell mit der Nummer 10, um einen sechs Zentimeter langen vertikalen Schnitt etwa zwei Zentimeter lateral der Mittellinie auf der linken Seite des Halses vorzunehmen. Verwenden Sie einen Elektrokauter, um das Unterhautgewebe zu durchtrennen, bis der M. sternocleidomastoideus freigelegt ist, und präparieren Sie entlang des lateralen Randes des Muskels, um die linke äußere Halsvene freizulegen. Kanülieren Sie dann das Gefäß mit einem 8-französischen Katheter, wie gerade gezeigt.

Bei einer Exposition der linken Arteria carotis communis präparieren Sie den medialen Rand des Musculus sternocleidomastoideus, bis das Karotisdreieck, das die Halsschlagader, den Vagusnerv und die Vena jugularis interna enthält, beobachtet wird. Kanülieren Sie die Halsschlagader, wie zuvor gezeigt, mit einem 5-französischen Katheter. Für die kontralaterale Dissektion isolieren Sie die rechte Vena jugularis externa und die rechte Arteria carotis communis, wie für ihre lateralen Gegenstücke gezeigt.

Verwenden Sie dann eine 9 französische Einführschleuse, um die rechte äußere Jugularvene zu kanülieren, und platzieren Sie eine vier Millimeter lange Flusssonde der Halsschlagader um die rechte Arteria carotis communis. Führen Sie anschließend den Pulmonalarterienkatheter durch die 9 französische Einführschleuse 15 bis 18 Zentimeter in die rechte äußere Halsvene ein. Sobald der Katheter an Ort und Stelle ist, blasen Sie den Ballon mit nicht mehr als 1,5 Kubikzentimetern Luft auf.

Schieben Sie den Katheter vor und beobachten Sie den Monitor, um den Übergang des Drucks vom rechten Vorhof zum rechten Ventrikel, zur Lungenarterie und zum Keildruck der Lungenarterie zu beurteilen. Lassen Sie dann die Luft aus dem Ballon entleeren und vergewissern Sie sich, dass eine Lungenarterienspur zum Monitor zurückkehrt. Verwenden Sie für die Platzierung der Zystostomiekanüle ein Skalpell mit der Nummer 10, um einen Mittellinienschnitt von fünf Zentimetern im unteren Bauchbereich vorzunehmen und die Harnblase extrakorporal zu gestalten.

Machen Sie mit Elektrokauter eine kleine Öffnung in die Blase und saugen Sie den Urin ab, und verwenden Sie eine 4-0-Polypropylen-Naht, um einen vorübergehenden Verschluss der Blase durchzuführen. Legen Sie einen 18-French-Foley-Katheter in das Blasenlumen und verwenden Sie eine 10-Kubikzentimeter-Spritze, um den Ballon aufzublasen. Binden Sie dann die Naht, um den Katheter im Blasenlumen zu sichern.

Führen Sie für das Einführen eines Aortenballonkatheters einen 0,035 Zoll, 260 Zentimeter großen Amplatz-Führungsdraht durch die 14 französische Einführschleuse ein. Bestätigen Sie die Lage in der suprazöliakiefarbenen Aorta mit Hilfe der Ultraschalluntersuchung. Führen Sie dann den Ballonverschlusskatheter über den Führungsdraht in die suprazöliakiefarbene Aorta ein.

Nachdem Sie das Gesamtblutvolumen berechnet haben, verwenden Sie eine automatische Pumpe, um 35 % des gesamten Blutvolumens über 20 Minuten in Standard-Blutentnahmebeutel zu bluten, die bei vier Grad Celsius gelagert werden. Wenn das gesamte Blut eingelagert ist, blasen Sie den Aortenballon-Okklusionskatheter mit 9 bis 12 Kubikzentimetern Luft auf oder bis nach einer zusätzlichen Ballonaufblasung kein weiterer Abfall des distalen mittleren arteriellen Drucks festgestellt wird. Nach 40 Minuten Okklusion wird das Tier mit der automatischen Pumpe wiederbelebt, wobei das Vollblut über einen Zeitraum von 20 Minuten über den Katheter der linken Oberschenkelvene einem Volumen von 20 % des Gesamtblutvolumens entspricht.

Lassen Sie dann den Ballon schrittweise über einen Zeitraum von fünf Minuten entleeren. Während der Ballonaufblasphase erfahren Tiere in der Gruppe mit vollständigem Verschluss einen höheren proximalen mittleren arteriellen Druck im Vergleich zu Tieren in der Gruppe mit partiellen Okklusionen, während der durchschnittliche distale mittlere arterielle Druck während der Ballonaufblasung in der Gruppe mit teilweisem Verschluss höher ist als in der Gruppe mit vollständigem Verschluss, was den partiellen distalen Aortenfluss widerspiegelt. Nach der Wiederbelebung steigt der proximale und distale mittlere arterielle Druck in beiden Gruppen an und kehrt nach der Ballonentleerung für den Rest der Intensivpflegephase zum Ausgangswert zurück.

Bei allen Tieren tritt unmittelbar nach der Blutung eine Reflextachykardie auf, die während der Ballonaufblasphase in beiden Gruppen schrittweise zunimmt. Nach einer Blutung sinkt der zentralvenöse Druck in beiden Gruppen, steigt nach einer Ballondeflation an und kehrt nach der Wiederbelebung zum Ausgangswert zurück. In ähnlicher Weise nimmt das Herzzeitvolumen nach einer Blutung ab, steigt während des Aufblasens des Ballons an und kehrt nach der Ballonentleerung bei der Wiederbelebung in beiden Gruppen zum Ausgangswert zurück.

Der Carotisfluss nimmt in beiden Gruppen unmittelbar nach der Blutung ab, wobei die Gruppe mit vollständigem Verschluss im Vergleich zur Gruppe mit partiellem Verschluss eine höhere Carotisflussrate aufweist. Nach Wiederbelebung und Ballondeflation erholt sich die Karotisflussrate in beiden Gruppen in Richtung Ausgangswert, in der vollständigen Okklusionsgruppe jedoch auf einem niedrigeren Niveau. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein viel besseres Verständnis dafür haben, wie Sie große Tiermodelle verwenden können, um den Aortenverschluss mit endovaskulären Strategien zu testen.

Wie bei jedem anderen chirurgischen Eingriff müssen Sie auch beim Umgang mit den Instrumenten vorsichtig sein, um ihn sicher durchführen zu können.