Name: Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis der Schulter (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 46 s
Description: Erfahren Sie ein Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis der Schulter mit interner Fixation des Glenohumeralgelenks. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Bewegungseinschränkungen und Gelenksteifigkeit.

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Die Autoren möchten Mr und Mrs Tom und Phyllis Froeschle bestätigen für die finanzielle Unterstützung dieses Projektes.

Die Studie wurde von der institutionellen Animal Care und Einsatz-Ausschuss am Beth Israel Deaconess Medical Center genehmigt. Darauf wurde geachtet, um unnötige längere Narkose zu vermeiden und auch um Unterkühlung zu vermeiden. Tiere waren bei jeder Sitzung ROM Messung gewichtet und überwacht für die Gewichtsabnahme.
1. die Studienteilnehmer
<ol><li>Verwenden Sie 10 Sprague-Dawley Ratten, die sind 13 Wochen alt zu der Zeit der Chirurgie und diesen Bereich zwischen 250 – 300 g Körpergewicht.</li>
</ol>2. chirurgische Verfahren
<ol><li>Narkose und vor chirurgischen Immobilisierung, messen die Grundlinie Drehmoment als Funktion der Drehwinkel zwischen 60° der Außenrotation und 80° Innenrotation (siehe Schritt 5).</li>
	<li>
Anästhesie mit 5 % Isofluran durch Inhalation in einer Induktion Kammer zu induzieren, und dann mit 2 % Isofluran durch eine Nase Kegel während der Operation aufrecht zu erhalten.
	<ol>
<li>Verwenden Sie eine wässrige Heizelement unter das Tier, um Körpertemperatur während der Narkose.</li>
		<li>Zum Zwecke der Schmerzkontrolle retard-Buprenorphin subkutan in einer Dosis von 1,2 mg/kg je nach Körpergewicht die Ratte zu verwalten.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Bewegungsunfähigkeit des linken Schultergelenk Gelenke in einem Winkel von 60° Abduktion (der Winkel zwischen der humerale Welle und das Skapulier Wirbelsäule)10 , 11.
	<ol>
<li>Starten Sie den chirurgischen Eingriff mit einem hinteren längs-Schnitt parallel zu der humerale Welle. Der Hautschnitt unterhalb der Glenohumeral gemeinsame zu machen und um ca. 3 cm zu verlängern.</li>
		<li>Verwenden Sie 2 Fäden (geflochtene Polyester), um das glenohumerale Gelenk zu immobilisieren, durch piercing durch den seitlichen Rand des Schulterblattes und um die distale zwei Drittel der humerale Welle und anschließend ziehen Sie an, wie in Figur 1Adargestellt. Nehmen Sie zusätzliche Anstrengungen, um zu vermeiden, einengenden kritischen Strukturen wie die brachial Arterie. Hinweis: Die chirurgische Technik hat einen Vorteil davon, das glenohumerale Gelenk bei 60 ° Abduktion (Z) zu begrenzen, ohne Auswirkungen auf andere Pläne (X & Y). Durch die Platzierung Nähte um den Humerus und durch den seitlichen Rand des Schulterblattes, ist eine Annäherung der beiden Strukturen erreicht und auf das Skapulier Klinge Flugzeug gehalten. Nach dem Festziehen der Nähte, ist der Arm fixiert in der Ruheposition bei X & Y Flugzeuge und bei 60° Abduktion, Z-Ebene gilt. Dies ist gedacht, um Variabilität zwischen den Tieren zu beschränken, die durch Ausfall des fine-tuning des gemeinsamen Standpunkts in den drei Plänen generiert werden kann.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. schließen die Inzision
<ol><li>Schließen Sie nach richtigen Blutstillung der Hautschnitt mit Haut-Clips.</li>
	<li>Einstellen der Narkose und lassen Sie das Tier unter Aufsicht in einer warmen Umgebung zu erholen. Nachdem das Tier ausreichend zur Aufrechterhaltung der sternalen liegen wieder zu sich kommt, bringen Sie es zurück in seinen Käfig.</li>
	<li>Unmittelbar nach dem Eingriff können Sie die Tiere zur normalen Aktivität zurückkehren. Lassen Sie die Tiere zu bewegen, ohne Einschränkung, vor allem auf interne Nahtmaterial, das glenohumerale Gelenk zu beheben.</li>
	<li>Um mögliche Infektionen zu überwachen, überprüfen Sie die Schnitt-Sites täglich während der ersten postoperativen Woche.</li>
	<li>Wunde Clips aufdem 10 Tag nach der Operation zu entfernen. Hinweis: Es gab keine Manipulation der Muskeln während des Verfahrens und die Technik beinhaltete keine intraartikuläre Trauma, so Kapsel und artikuläre Kontinuität und anatomische Integrität bewahren. Unser Protokoll folgte weder externe Restrain noch Aktivität Einschränkung.</li>
	<li>Bieten Sie Analgesie mit retard-Buprenorphin, subkutan injiziert, bei einer Dosis von 1,2 mg/kg ab Induktion der Anästhesie und wiederholt alle 72 Std. bei Bedarf.</li>
</ol>4. Die Nahtentfernung 8 Wochen nach Immobilisierung
<ol><li>Anästhesie mit 5 % Isofluran durch Inhalation in einer Induktion Kammer zu induzieren, dann mit 2 % Isofluran durch eine Nase Kegel während der Operation erlitt. Zum Zwecke der Schmerzkontrolle retard-Buprenorphin subkutan in einer Dosis von 1,2 mg/kg je nach Körpergewicht die Ratte zu verwalten.</li>
	<li>Machen Sie einen Schnitt auf die Narbe von der vorherigen Prozedur.</li>
	<li>Schneiden Sie die Fäden und entfernen Sie aus der Oberarmknochen und Schulterblatt.</li>
	<li>Schließen Sie den Schnitt mit Wunde Clips.</li>
	<li>Prüfen Sie die Schnitt-Website täglich während der ersten Woche, Anzeichen einer Infektion zu erkennen. Schmerz und Leid sowie zu überwachen.</li>
	<li>Wunde Clips aufdem 10 Tag nach der Operation zu entfernen.</li>
</ol>(5) Bewegungsradius und Gelenksteife Messungen
<ol><li>
Messen Sie die ROM und passive Schulter-Mechanik, vor und nach Immobilisierung mit einem maßgeschneiderten Gerät, bestehend aus einem Arm Klemme, eine Sensoranordnung und eine schwenkbare Achse11. Dies erfolgt präoperativ (Baseline) und kontinuierlich nach der Nahtentfernung.
	<ol>
<li>Maßnahme ROM unmittelbar nach Nahtentfernung (Follow-up-Tag 0) und anschließend zweimal in der Woche.</li>
		<li>Reduzieren Sie Messungen einmal wöchentlich bei der Aufnahme von weniger als 10 % von der früheren Zeitpunkt ändern. Hinweis: Nach dem Test ROM für Wochen, die ROM jedes Tieres änderte sich nicht drastisch zwischen Zeitpunkten testen (weniger als 10 % ändern). Das ROM schien zu diesem Zeitpunkt plateau, daher, wir fühlten, dass sinkende Prüffrequenz von zweimal in der Woche, einmal pro Woche ausreichend.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Führen Sie Messungen unter Narkose mit Isofluran über Präzision Vaporizer für Induktion 5 % und 2 % für die Wartung für die gesamte Länge des Verfahrens (ca. 5 Minuten), um Messungen effizient zu erleichtern. Verwenden Sie eine wässrige Heizelement unter das Tier, um Körpertemperatur während der Narkose.</li>
	<li>Positionieren Sie das Tier richtig für ROM Messung mit Hilfe eines Laser-Guide. Position der vordergliedmaße auf den Arm Klemme in 90° vorwärts Beugung, mit der Fernerkundung Achse ausgerichtet mit der Längsachse des Humerus. Sichern Sie die vordergliedmaße durch das Handgelenk und Ellenbogen, wie in Abbildung 1 bdargestellt.</li>
	<li>Steuern Sie passive vordergliedmaße Drehung von einem Schrittmotor, ROM und Drehmoment in konsistenter Weise zu beurteilen. Kontrolle der Schrittmotor mit einem Mikrocontroller. Verwendung Inputs Neigungsmesser, in Verbindung mit den von einem Drehmomentsensor an den Start und das Ende der Messungen.</li>
	<li>Verbinden Sie den Mikrocontroller zu einem Computer und Steuerung über eine Inhouse entwickelten MATLAB-Code.</li>
	<li>Für die Baseline-Messungen nur, der Sensoranordnung 3 mal zwischen 60 ° der Außenrotation und 80 ° Innenrotation anfangsdrehmoment Messungen Zyklus (externe: tExt und interne: tInt) für einen späteren Vergleich.</li>
	<li>Verwenden Sie für ROM Messungen die Drehmomente der einzelnen Tiere am eigenen Baseline-Messungen (tExt und tInt) als voreingestellte Eingabe-Variablen im Programm, Änderungen im Drehung Rom verwenden die Baseline-Messungen als eine vergleichende stoppen erkennen Punkt für ROM Messungen. Mit einer Auflösung von 0,2 ° wurden Änderungen festgestellt.</li>
	<li>Verwenden Sie für Steifigkeit Messungen original Drehwinkel von 60° Außenrotation und Innenrotation 80° als voreingestellte Eingabe in das Programm um Veränderungen in Drehmoment zu erkennen. Mit einer Auflösung von 0,01 Nmm wurden Änderungen festgestellt.</li>
	<li>Wiegen Sie Tiere am selben Tag als jedes ROM Bewertung. Legen Sie die Tiere auf Waage und notieren Sie ihre Massen. Diese Daten wurden als eines der Instrumente zur Tiergesundheitsstatus während der Studie zu beurteilen.</li>
	<li>Nach Genesung wieder ihren Käfigen Ratten und auf Anzeichen von Schmerzen oder Ängste zu überwachen. Während dieses Tests, ist kein Tier unbeaufsichtigt gelassen, bis es ausreichend Bewusstsein zur Aufrechterhaltung der sternalen liegen wiedererlangt hat. Hinweis: ROM und Drehmoment-Messungen wurden mit einem maßgeschneiderten Gerät zuvor berichtet von unserer Fraktion {Villa Camacho 2015} erreicht. Das Gerät ist eine maßgeschneiderte Jig, die besteht aus einer Welle von Schrittmotor gedreht und durch ein benutzerdefiniertes MATLAB-Skript gesteuert. Ein Drehmomentsensor und inertialsensors dienen zur Erfassung von Drehmoment und Positionsdaten während der Artikulation der Probe.</li>
</ol>6. Post-Mortem Immunohistologic Analyse
<ol><li>Am Ende der 8-Wochen-ROM Messzeitraum einschläfern Sie Ratten mit CO2 Exposition.</li>
	<li>Beide Links zu sezieren (immobilisiert) und rechts (gesunde Kontrolle) Schultern, indem disarticulating der Oberarmknochen aus der Ulna und schneiden das Schulterblatt vom Schlüsselbein und Brusthöhle.</li>
	<li>Befestigen Sie die ausgeschnittenen Schultern in einer Lösung aus 10 % neutral gepuffertem Formalin für 3 Tage, gefolgt von Entkalkung in einer Lösung von Ethylenediaminetetraacetic Säure (EDTA) 10 % bei pH 7.4 für weitere 2 Monate.</li>
	<li>Während dieses Prozesses Proben auf einen Shaker in eine sanfte Erregung Zyklus und bei 4 ° c Lagern Entkalkung der Glenohumeral Verbindung mit wöchentlich Microcomputed Tomographie (uCT) Scans zu überwachen. Anmerkung: EDTA ist ein Chelatbildner, der bindet Calcium-Ionen von der Außenfläche des Apatit Kristall, Kristall Größe12,13,14schrittweise zu reduzieren. Dieser Prozess ist sehr langsam und sanft, und es wird verwendet, um spezifische Gewebe Elemente erkennen, die für Techniken wie Immunhistochemie (IHC) beibehalten werden müssen. Die Rate, an der die EDTA Probe entkalkt, ist der pH-Wert und die Konzentration der Lösung abhängig. In Bezug auf die pH kann es von 7 bis 7,4, mit alkalischer Lösungen beschleunigen die Entkalkung Geschwindigkeit reichen. Lösungen mit höheren pH-Werten können jedoch wichtige Gewebe Elemente beschädigt werden. Darüber hinaus die üblichen EDTA Konzentration für solche Experimente liegt zwischen 10 % bis 14 %, aber es ist sehr wichtig zu bedenken, dass der Wirkstoff aufgebraucht wird, sobald es an Kalzium, Anleihen, so dass hierfür Ersatz der Entkalkung Flüssigkeit mindestens 3 bis 4 mal pro Woche15.</li>
	<li>Nach der Entkalkung-Prozess abgeschlossen wurde, montieren Sie die Glenohumeral Gelenke in Paraffin-Stacks für histologischen Schnitt. Richten Sie die Proben an koronalen Scheiben ermöglichen. Scheiben auf 50 % Tiefe des Humeruskopfes gewonnen (in der Mitte, Mitte-koronal) sind in Abbildung 1dargestellt. Führen Sie immunhistochemische Färbung mit der Peroxidase-Anti-Peroxidase-Methode um zu bezeichnen, das Vorhandensein von fibrotische Gewebe im Gelenk. 4 , 9 , 10 , 16
</li>
	<li>Durchführen Sie Antigen-Retrieval durch Mikrowellenstrahlung durch Eintauchen der Folien in ein plastikglas Coplin in einer Pufferlösung Natriumcitrat (10 mM Natriumcitrat, 0,05 % Tween 20, pH 6.0, für 5 min bei 95-100 ° C vorgewärmt) und Unterbringung in eine normale Mikrowelle für 10 Minuten bei mittlerer Leistung. Lassen Sie Folien für 30 min bei Raumtemperatur abkühlen.</li>
	<li>Führen Sie blockieren mit ziegenserum für 30 min, und inkubieren die Exemplare mit einem primären Maus Mono-klonale Antikörper (1: 400 Verdünnung), Fibronektin über Nacht bei 4 ° c</li>
	<li>Nach der Inkubation mit dem primären Antikörper Proben zweimal mit PBS waschen (0,5 Ug/mL) für 10 Minuten; und inkubieren Sie mit einem sekundären Antikörper, Ziege antimouse IgG-Peroxidase-Konjugat (1: 400 Verdünnung) für 30 Minuten.</li>
	<li>Die Exemplare zweimal mit PBS waschen (2,5 µg/mL) auf einen Shaker für 10 Minuten und Expose zu 3,30-Diaminobenzidine Tetrahydro-Chlorid und 30 % Wasserstoffperoxid in der Dunkelheit für 10 min. Gegenfärbung mit Hämatoxylin Carazzi.</li>
</ol>

<ol><li>Bunker, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time+for+a+new+name+for+%27frozen+shoulder%27%5BTitle%5D)+AND+%22British+medical+journal%22%5BJournal%5D)">Time for a new name for 'frozen shoulder'.</a> British medical journal. 290 (6477), 1233-1234 (1985).</li>
<li>Bunker, T. D., Anthony, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathology+of+frozen+shoulder.+A+Dupuytren-like+disease%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+bone+and+joint+surgery.+British+volume%22%5BJournal%5D)">The pathology of frozen shoulder. A Dupuytren-like disease.</a> The Journal of bone and joint surgery. British volume. 77 (5), 677-683 (1995).</li>
<li>Kilian, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+frozen+shoulder.+Arthroscopy%2C+histological+findings+and+transmission+electron+microscopy+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Chirurg%22%5BJournal%5D)">The frozen shoulder. Arthroscopy, histological findings and transmission electron microscopy imaging.</a> Chirurg. 72 (11), 1303-1308 (2001).</li>
<li>Wang, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+factors+in+idiopathic+adhesive+capsulitis%3A+a+case+control+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Shoulder+and+Elbow+Surgery%22%5BJournal%5D)">Risk factors in idiopathic adhesive capsulitis: a case control study.</a> Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 22 (7), e24-e29 (2013).</li>
<li>Milgrom, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Risk+factors+for+idiopathic+frozen+shoulder%5BTitle%5D)+AND+%22The+Israel+Medical+Association+Journal%22%5BJournal%5D)">Risk factors for idiopathic frozen shoulder.</a> The Israel Medical Association Journal. 10 (5), 361-364 (2008).</li>
<li>Huang, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperthyroidism+is+a+risk+factor+for+developing+adhesive+capsulitis+of+the+shoulder%3A+a+nationwide+longitudinal+population-based+study%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Hyperthyroidism is a risk factor for developing adhesive capsulitis of the shoulder: a nationwide longitudinal population-based study.</a> Scientific Reports. 4, 4183(2014).</li>
<li>Struyf, F., Meeus, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Current+evidence+on+physical+therapy+in+patients+with+adhesive+capsulitis%3A+what+are+we+missing%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Rheumatology%22%5BJournal%5D)">Current evidence on physical therapy in patients with adhesive capsulitis: what are we missing.</a> Clinical Rheumatology. 33 (5), 593-600 (2014).</li>
<li>Song, A., Higgins, L. D., Newman, J., Jain, N. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glenohumeral+corticosteroid+injections+in+adhesive+capsulitis%3A+a+systematic+search+and+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+Of+Physical+Medicine+And+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Glenohumeral corticosteroid injections in adhesive capsulitis: a systematic search and review.</a> Journal Of Physical Medicine And Rehabilitation. 6 (12), 1143-1156 (2014).</li>
<li>Schollmeier, G., Sarkar, K., Fukuhara, K., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+functional+changes+in+the+canine+shoulder+after+cessation+of+immobilization%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Orthopaedics+and+Related+Research%22%5BJournal%5D)">Structural and functional changes in the canine shoulder after cessation of immobilization.</a> Clinical Orthopaedics and Related Research. 323 (323), 310-315 (1996).</li>
<li>Kanno, A., Sano, H., Itoi, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+shoulder+contracture+model+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Shoulder+and+Elbow+Surgery%22%5BJournal%5D)">Development of a shoulder contracture model in rats.</a> Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 19 (5), 700-708 (2010).</li>
<li>Villa-Camacho, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+kinetic+evaluation+of+an+adhesive+capsulitis+model+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Shoulder+and+Elbow+Surgery%22%5BJournal%5D)">In vivo kinetic evaluation of an adhesive capsulitis model in rats.</a> Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 24 (11), 1809-1816 (2015).</li>
<li>Liu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+Decalcification+Techniques+for+Rat+Femurs+Using+HE+and+Immunohistochemical+Staining%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Evaluation of Decalcification Techniques for Rat Femurs Using HE and Immunohistochemical Staining.</a> BioMed Research International. 2017, 9050754(2017).</li>
<li>Gonzalez-Chavez, S. A., Pacheco-Tena, C., Macias-Vazquez, C. E., Luevano-Flores, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+different+decalcifying+protocols+on+Osteopontin+and+Osteocalcin+immunostaining+in+whole+bone+specimens+of+arthritis+rat+model+by+confocal+immunofluorescence%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Clinical+and+Experimental+Pathology%22%5BJournal%5D)">Assessment of different decalcifying protocols on Osteopontin and Osteocalcin immunostaining in whole bone specimens of arthritis rat model by confocal immunofluorescence.</a> International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 6 (10), 1972-1983 (2013).</li>
<li>Sanjai, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+and+comparison+of+decalcification+agents+on+the+human+teeth%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Oral+and+Maxillofacial+Pathology%22%5BJournal%5D)">Evaluation and comparison of decalcification agents on the human teeth.</a> Journal of Oral and Maxillofacial Pathology. 16 (2), 222-227 (2012).</li>
<li>Rolls, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRolls%2C+G+%22An+Introduction+to+Decalcification%22">An Introduction to Decalcification</a>. , (2013).</li>
<li>Burry, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controls+for+immunocytochemistry%3A+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+%26+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">Controls for immunocytochemistry: an update.</a> Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 59 (1), 6-12 (2011).</li>
<li>Sarver, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((After+rotator+cuff+repair%2C+stiffness--but+not+the+loss+in+range+of+motion--increased+transiently+for+immobilized+shoulders+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Shoulder+and+Elbow+Surgery%22%5BJournal%5D)">After rotator cuff repair, stiffness--but not the loss in range of motion--increased transiently for immobilized shoulders in a rat model.</a> Journal of Shoulder and Elbow Surgery. 17 (1 Suppl), 108S-113S (2008).</li>
<li>Macbride, M. Variations within Outbred Strains: Know Your Strains and Stocks | Taconic Biosciences. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.taconic.com/taconic-insights/quality/variations-within-outbred-strains-know-your-strains-and-stocks.html">https://www.taconic.com/taconic-insights/quality/variations-within-outbred-strains-know-your-strains-and-stocks.html</a> (2016).</li>
<li>Liu, Y. L., Ao, Y. F., Cui, G. Q., Zhu, J. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+of+histology+and+capsular+collagen+in+a+rat+shoulder+immobilization+model%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+Medical+Journal%22%5BJournal%5D)">Changes of histology and capsular collagen in a rat shoulder immobilization model.</a> Chinese Medical Journal. 124 (23), 3939-3944 (2011).</li>
</ol>

Diese Studie bietet einem Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis der Schulter durch interne Fixation der Glenohumeral Verbindung. Darüber hinaus zeigt es einen erweiterten Reduktion des gesamten ROM für mindestens 8 Wochen nach der Entfernung der Fixierung. Um die Veränderungen in ROM zu verschiedenen Zeitpunkten zu berechnen, wurden Messungen im Vergleich zu tierischen spezifische Basislinien. Im Gegensatz dazu Kanno Et al. 10 verwendet eine standardisierte Drehmoment für alle Tiere um ...

Anhaftenden Capsulitis der Schulter wird häufig als Schultersteife oder Schulter Kontraktur bezeichnet. Es zeichnet sich durch eingeschränkte glenohumerale Bewegung und Schmerzen, vermutlich als Folge der fortgeschrittene Fibrose und gemeinsamen Kontraktur1,2,3. Die Bedingung betrifft Fibroblasten und Myofibroblast Zelle Rekrutierung mit eine resultierende Dichte Kollagenmatrix (Typ I und III) in der gemeinsamen Kapsel2,3. Es gibt viele mögliche Risikofaktoren für die Entwicklung einer gemeinsamen Kontraktur, einschließlich Geschlecht, Diabetes Mellitus, Hyperthyreose, traumatischen Verletzungen und längerer Immobilisierung4,5,6.
Wirksame Behandlungsmöglichkeiten fehlen und vor allem beinhalten Physiotherapie, mit Eingriff in Form von chirurgischen Version in extremen Fällen, die nicht mit konservativen Behandlung verbessert haben. Die beste Behandlungsmethode bleibt unbestimmt und ist seit Jahren im medizinischen Bereich7,8ein Thema von großem Interesse. Entwicklung neuartiger therapeutischer Möglichkeiten erfordert eine reproduzierbare Tiermodell für die Bedingung, die nicht auf intraartikuläre induzierte Trauma angewiesen ist. Das optimale anhaftenden Capsulitis Modell sollten die zwei wichtigsten Merkmale der Krankheit einbeziehen: Verspannung der Schulter-Kapsel und einem anhaltenden Rückgang der Bewegungsumfang (ROM). Schollmeier Et al. 9 beschrieben eines der ersten gemeinsamen Kontraktur Modelle mithilfe einer Besetzung Schulter Kontraktur in Eckzähne zu entwickeln. Sie berichteten auch, dass Änderungen in ROM und intraartikulären Druck nach Beendigung der Ruhigstellung9normalisiert. Allerdings ist eine wichtige Einschränkung, die in der Studie erwähnt die Variation der Extremität Position zwischen den Tieren durch die Verwendung einer Cast-Technik. Erlangung einer mehr reproduzierbares Modell, Kanno Et al. 10 stellte später einen anhaftenden Capsulitis Rattenmodell mit starren interne Fixierung der Schulter. Jedoch obwohl sie eine signifikante Reduktion in ROM mit ihrem Modell erreicht, sie nicht angeben, ob diese Veränderungen vorübergehende oder dauerhafte waren. Das Ziel unserer Studie war die Schaffung einer Rattenmodell geeignet in Vivo Schulter Kontraktur durch Untersuchung der Wirkung von längeren extra artikuläre Glenohumeral gemeinsame Immobilisierung auf ROM und Gelenksteife.

<table><tbody><tr><td>Sprague-Dawley Ratten</td><td>Charles River Laboratories, Wilmington, MA, USA</td><td></td><td>250-300 g</td></tr><tr><td><stark>Chirurgisches Werkzeug: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Injektionsnadel</td><td></td><td></td><td>BD 1' 30 Gauge</td></tr><tr><td>Nadelhalter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5% Isofluran</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2% Isofluran</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nasenkonus</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Skalpel und Skalpelhalter</td><td></td><td></td><td>Nr. 11 Skalpell Gebogene</td></tr><tr><td>Hämostatenzange</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Staright Hämostatenzange</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Geweberetraktor</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zahnzange</td><td></td><td></td><td></td></tr> Einfache <tr><td>Gewebezange</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Präparierschere</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nahtschere</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hautclip-Applikator</td><td></td><td></td><td>Alle Standardklammern für den Wundverschluss</td></tr><tr><td>Immobilisierungsmaterial</td><td>Ethicon</td><td></td><td>Nr. 2-0 geflochtenes Polyester-Ethibond-Nahtmaterial wurde für die Immobilisierung verwendet</td></tr><tr><td><stark>Andere Materialien:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Angepasste Vorrichtung für ROM: 1) Sensorbaugruppe, 2) Schwenkachse, 3) Armklemme</td><td></td><td></td><td>Baugruppe, die in Relaxin-Papier und selbstklebendem Kapsulitispapier beschrieben ist</td></tr><tr><td>Orientierungssensor (Teil der Sensorbaugruppe)</td><td>MicroStrain Inc., Williston, VT, USA</td><td></td><td>3DM-GX3-15</td></tr><tr><td>Reaktionsdrehmomentsensor (Teil der Sensorbaugruppe)</td><td>Futek Inc., Irvine, CA, USA</td><td></td><td>TFF400</td></tr><tr><td>Schrittmotor</td><td>SparkFun Electronics, Niwot, CO 80503</td><td></td><td>https://www.sparkfun.com/products/13656</td></tr><tr><td>Mikrocontroller</td><td>Turin, Italien).</td><td></td><td>Arduino UNO, R3</td></tr><tr><td>MATLAB code</td><td>MATLAB 7.13.0.564, Natick, Ma, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Waage</td><td></td><td></td><td>Ohaus</td></tr></tbody></table>

rattenmodell des anhaftenden capsulitis der schulter

Rat Model of Adhesive Capsulitis of the Shoulder

Dieser Vorschlag soll eine in Vivo Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis für die Erforschung der möglichen Behandlungsmöglichkeiten für diese Bedingung und andere Ätiologie der vergleichbaren arthrofibrose zu erstellen. Das Modell enthält extra artikuläre Fixierung der Schulter in Ratten über Skapulier, humerale Nähen, was zu einer sekundären Kontraktur ohne Invasion des intraartikulären Raumes und daraus resultierende verminderte Rotations ROM und erhöhten Gelenk Steifigkeit.
Wir haben 10 Sprague-Dawley Ratten für die Zwecke dieser Studie. Grundlinie wurden ROM Messungen vor Glenohumeral Immobilisierung. Die Ratten wurden bis 8 Wochen der Ruhigstellung unterzogen, bevor die Fixierung Fäden gezogen wurden und Veränderungen in ROM und Gelenksteife wurden ausgewertet. Um festzustellen, ob Immobilisierung führte zu einem deutlichen Rückgang der ROM, wurden Veränderungen der Kinematik berechnet. ROM wurde in der Folgezeit zu jedem Zeitpunkt gemessen und war im Vergleich zu den internen und externen ROM Basisberechnungen. Für die Beurteilung der Steifigkeit, gemeinsame Kinetik wurden berechnet, indem die Unterschiede im Drehmoment (tExt und tInt ) benötigt, um die anfängliche externe Rotation von 60° und erste Innenrotation der 80 ° erreichen.
Nach dem Entfernen der extra artikuläre Nahtmaterial Fixierung auf Follow-up-Tag 0 fanden wir einen Rückgang um 63 % im gesamten ROM im Vergleich zum Ausgangswert. Wir beobachteten kontinuierlichen Verbesserung bis 5. Woche des Follow-up, mit dem Fortschritt verlangsamt sich um eine 19 %-Beschränkung. In Woche 8 des Follow-up gab es noch eine 18 % Einschränkung von Rom darüber hinaus Follow-up-Tag 0, fanden wir das Drehmoment erhöhte sich um 13,3 Nmm im Vergleich zum Ausgangswert. In Woche 8, wurde das gesamte Drehmoment gemessen, um sein 1,4 ± 0,2 Nmm höher als erste Messungen. Diese Arbeit stellt einem Rattenmodell der Schulter anhaftenden Capsulitis dauerhaft eingeschränkter ROM und höhere Steifigkeit.

Bewegungsbereich
Auf Follow-up-Tag 0, fanden wir einen Rückgang um 63 % im gesamten ROM im Vergleich zum Ausgangswert (P &lt;.001. Wir beobachteten eine schrittweise Verbesserung der ROM bis 5. Woche des Follow-up, beim Fortschreiten auf 19 % Einschränkung gestoppt (P &lt; 0,001). Die restlichen Einschränkung, 18 % der gesamten ROM zeigte sich noch 8 Wochen Follow-up (P &lt; 0,001).
<p class="jove_step" fo:keep-together.within-...

Dieses Protokoll stellt eine in Vivo Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis. Das Modell enthält eine interne Fixation des gemeinsamen Glenohumeral mit extra artikuläre Nahtmaterial Fixierung über einen längeren Zeitraum, was zu einer verminderten Rotations Reihe Bewegungsumfang (ROM) und erhöhte Gelenksteife.

Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis der Schulter

This proposal aims to create an in vivo rat model of adhesive capsulitis for researching potential treatment options for this condition and other ...

Diese Methode kann helfen, wichtige Fragen im Bereich der orthopädischen Chirurgie zu beantworten, wie, Würde entspannend, um den Bewegungsbereich bei Patienten mit Arthrofibrose zu verbessern? Der Hauptvorteil dieser Technik ist, dass sie den Abschnitt der Schultergürtelmuskulatur und jedes intraartikuläre Trauma vermeidet, wodurch die Kapsel- und Gelenkkontinuität und die anatomische Integrität erhalten bleiben. Bevor Sie mit dem Verfahren beginnen, schließen Sie den Mikrocontroller eines Stepper Motors an einen Computer an und richten Sie einen eigenentwickelten Matlab-Code ein, um den Mikrocontroller zu steuern.Als nächstes positionieren Sie eine 13 Wochen alte, 250 bis 300 Gramm große Sprague Dawley Ratte in einem kundenspezifischen Bewegungsbereich mit Hilfe eines Laserführers. Positionieren Sie dann das linke Vorderglied der Ratte auf der Armklemme in 90 Grad Vorwärtsbeugung mit der sensorischen Achse, die an der langen Achse des Humerus ausgerichtet ist, und sichern Sie das Vorderglied durch Handgelenk und Ellenbogen. Verwenden Sie dann den Mikrocontroller, um die passive Vorderglieddrehung zu steuern und die Sensorbaugruppe dreimal zwischen 60 Grad externer Drehung und 80

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Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

Rückwärts totale Schulterprothese ist für die Behandlung von Zuständen, die mit herkömmlichen Prothese oder anderen Verfahren behandelt werden können angezeigt. Dazu gehören vor allem degenerative und Fähigkeitsverlust mit irreparablen Rotatorenmanschette und Verlust der normalen biomechanischen Kopplung der Schulter.

Rückwärts totale Schulterprothese

Die Doppeldecker-Videoradiographie kann die Schulterkinematik mit hoher Genauigkeit quantifizieren. Das hierin beschriebene Protokoll wurde speziell entwickelt, um das Schulterblatt, den Humerus und die Rippen während der planaren Humeruserhöhung zu verfolgen, und skizziert die Verfahren zur Datenerfassung, -verarbeitung und -analyse. Einzigartige Überlegungen zur Datenerfassung werden ebenfalls beschrieben.

Messung der 3D-In-vivo-Schulterkinematik mittels biplanarer Videoradiographie

In dieser Studie werden Verfahren zur Feststellung einer chronisch ähnlichen Verletzung der Kaninchenrotatorenmanschette (RC) beschrieben. Konkret entsteht die Verletzung in der Muskel-Sehnen-/Myotendinus-Einheit des Subscapularis (SSC), um die menschliche RC-Anatomie und Pathophysiologie nachzuahmen, einschließlich schwerer Muskelfettdegeneration (FD). Dieses Protokoll kann angewendet werden, um RC-Verletzungen zu untersuchen und regenerative Therapien zu bewerten.

Entwicklung eines Kaninchen-Verletzungsmodells für chronisch ähnliche Rotatorenmanschetten zur Untersuchung von Fibrose und muskulärer Fettdegeneration

In dieser Studie wird ein effizientes und reproduzierbares Tuina-Protokoll zur Behandlung der Schultersteife entwickelt, das in einem Rattenmodell etabliert wurde. Dieser Ansatz wird dazu beitragen, die Tuina-Therapie-Behandlungsmethode für Schultersteife zu untersuchen.

Tuina in einem Frozen Shoulder Rattenmodell: Ein effizientes und reproduzierbares Protokoll

Wir stellen eine maßgeschneiderte experimentelle Plattform und ein Gewebekulturprotokoll vor, das fibroknorpelige Veränderungen nachbildet, die durch das Impingement der Achillessehneninsertion in murinen Hintergliedmaßenexplantaten mit anhaltender Zelllebensfähigkeit verursacht werden, und so ein Modell für die Erforschung der Mechanobiologie des Sehnenimpingements bietet.

Maus-Hintergliedmaßen-Explantatmodell zur Untersuchung der Mechanobiologie des Achillessehnen-Impingements

Wir schlagen eine technische Modifikation für die Kapsularrekonstruktion vor, die arthroskopische Umleitung und Fixierung des langen Kopfes der Bizepssehne nutzt, um die Reparatur massiver, irreparabler Rotatorenmanschettenrisse zu verbessern.

Modifizierte Umleitung und Fixierung des langen Bizeps-Kopfes als partielle Kapsularrekonstruktion bei massiven, irreparablen Rissen der Rotatorenmanschette

In diesem Artikel wird eine offene anteriore Kapselrekonstruktionstechnik unter Verwendung eines humanen dermalen Allotransplantats für irreparable Subscapularisrisse beschrieben, die strukturelle Unterstützung bietet und die funktionellen Ergebnisse durch präzise Transplantatfixierung und Rehabilitation verbessert.

Vordere Kapselrekonstruktion mit humanem dermalem Allotransplantat bei irreparablen Subscapularis-Rissen

Massive irreparable Risse der Rotatorenmanschette (MIRCTs) stellen aufgrund ihrer komplexen Pathologie und der begrenzten Behandlungsmöglichkeiten eine große klinische Herausforderung dar. In dieser Studie wird die Rekonstruktion des gesamten Rotatorenkabels (WRCR) unter Verwendung eines proximalen Bizepssehnen-Autotransplantats als neuartige Operationstechnik für MIRCTs vorgestellt.

Arthroskopisches Management von massiven irreparablen Rissen der Rotatorenmanschette: Rekonstruktion des gesamten Rotatorenkabels mittels proximalem Bizepssehnen-Autotransplantat

Dies ist eine technische Anmerkung, die eine kosteneffiziente, knotenlose, unabhängige, zweireihige Rotatorenmanschettenreparatur für mittel- bis große anterosuperiore Rotatorenmanschettenrisse beschreibt, mit gleichzeitiger Bizepsaugmentation und Subskapularis-Reparatur.

Knotenlose unabhängige Doppelreihreihe-Reparatur und Bizepsaugmentation bei anterosuperioren Rotatorenmanschettenrissen

Die Herstellung einer erfindungsgemäßen, flexiblen Dünnfilm chirurgischen Klebstoff aus FDA zugelassenen Inhaltsstoffen, Chitosan und Indocyaningrün beschrieben. Bonden dieser Klebstoff auf Kollagengewebe durch eine einfache Aktivierung mit einer Low-Power-Infrarotlaser nachgewiesen wird.

A Chitosan Based, Laser Activated Thin Film Surgical Adhesive &quot;SurgiLux &#39;: Vorbereitung und Demonstration

Erfahren Sie ein Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis der Schulter mit interner Fixation des Glenohumeralgelenks. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Bewegungseinschränkungen und Gelenksteifigkeit.

Rattenmodell des anhaftenden Capsulitis der Schulter

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