Name: Trennung von Rattenepidermis und Dermis mit Thermolysin zum Nachweis ortsspezifischer entzündlicher mRNA und Proteine (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-09-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 45 s
Description: Erfahren Sie die enzymatische Trennung von Rattenepidermis und Dermis mit Thermolysin bei 4 °C zur Analyse entzündlicher mRNA und Proteine. Diese Methode ermöglicht ortsspezifische Untersuchungen zur Entwicklung neuer Therapien.

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Die Finanzierung dieser Forschung wurde von den National Institutes of Health NIH-AR047410 (KEM) bereitgestellt.

Dieses Protokoll folgt den Tierpflegerichtlinien des Oklahoma State University Center for Health Sciences IACUC (#2016-03).
1. Carrageen-induzierte Entzündung (C-II)
<ol><li>Männliche und/oder weibliche Sprague Dawley-Ratten (200–250 g; 8–9 Wochen alt) mit Isofluran (oder injizierbarem Anästhetikum) betäuben.</li>
<li>Überprüfen Sie die Tiefe der Anästhesie, indem Sie die Hornhaut berühren und die linke Hinterpfote leicht einklemmen. Wenn das Tier angemessen betäubt wird, wird keine Hornhaut- oder Pfotenreaktion beobachtet.</li>
<li>Subkutan injizieren Sie die rechte glabrous, hintere Pfote mit 100 μL 1% (w/v) λ-Carrageen, verdünnt in phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS)20.<ol><li>Stellen Sie sicher, dass geeignete Kontrollen verwendet werden, z. B. naive Ratten ohne Isofluran in diesem Bericht. Vorläufige Studien deuten darauf hin, dass naive Ratten mit oder ohne Isofluran die gleiche basale Expression von epidermalem IL-6 und NGF aufweisen. HINWEIS: Naive Ratten sind bevorzugte Kontrollen für Entzündungsstudien, da subkutane Kochsalzlösung oder PBS eine lokale Entzündung verursachen23,37.</li></ol>
</li>
<li>Bewerten Sie das Ödem von C-II-Ratten, um die Wirksamkeit des Carrageens zu gewährleisten (Abbildung 1)20. Bestimmen Sie die Menge des Ödems, indem Sie die Mittelfußdicke der Hinterpfote mit Bremssätteln messen.</li>
<li>Bei 6-12 h Ratten mit CO2 (oder injizierbarer Anästhesieüberdosis) einschläfern und 1 mm x 2 mm Stücke glabrous Hinterpfotenhaut mit scharfem Skalpell schneiden. Wenn behaarte Haut verwendet wird, rasieren Sie sie, bevor Sie die 1 mm x 2 mm Hautstücke schneiden. HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass die entsprechenden Zeitpunkte entsprechend den spezifischen Studien ausgewählt werden.</li>
<li>Mit einer Mikrodissektionszette die Haut in 1 ml kaltes Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) in einem Mikrozentrifugenröhrchen auf Eis übertragen und 15-60 Minuten kalt halten.</li></ol>2. Thermolysinabscheidung von Epidermis und Dermis
<ol><li>Thermolysin vorbereiten und aktivieren.<ol>
<li>Bereiten Sie eine Lösung von Thermolysin vor, indem Sie 5 mg Geobacillus stearothermophilus zu 10 ml PBS bei pH = 8 (Konzentration 500 μg / ml) hinzufügen.</li>
<li>Eine 1 M Lösung von Calciumchlorid(CaCl2 wasserfrei) wird durch Zugabe von 1,11 g in 10 mL destilliertesH2Ohergestellt.</li>
<li>Um die Autolyse von Thermolysin zu verhindern, fügen Sie 10 μL Calciumchlorid zu 10 ml Thermolysinlösung hinzu. Die Calciumchlorid-Endkonzentration beträgt 1 mM.</li>
<li>Aliquot 1 ml aktiviertes Thermolysin in 10 Vertiefungen einer 24-Well-Zellkulturplatte auf Eis.</li>
</ol></li>
<li>Verwenden Sie Thermolysin-Enzymverdauung, um die Epidermis von der Dermis zu trennen.<ol>
<li>Mit einer Mikrodissektionszette wird eine Hautprobe in jede Vertiefung des aktivierten Thermolysins übertragen. Achten Sie darauf, die Haut nicht in die Thermolysinlösung einzutauchen.</li>
<li>Klopfen Sie vorsichtig auf die Haut an der Seite des Brunnens, um die Hautprobe aus der Zözette zu lösen, um auf der Thermolysinlösung zu schweben.</li>
<li>Schweben Sie die Haut mit der Seite stratum corneum (äußere Epidermis) nach oben und der Dermis nach unten in die Thermolysinlösung. Es ist wichtig, dass die Dermis nach unten zeigt, sonst findet die effektive Trennung nicht statt. HINWEIS: Die Zeit für die Thermolysin-Inkubation muss vom Endbenutzer empirisch bestimmt werden. Glabrous, Hinterpfotenhaut von Sprague Dawley Ratten (200–250 g; 8–9 Wochen alt) benötigt oft 2,0–2,5 h zur Trennung. Es wird erwartet, dass die Inkubationszeit je nach Art und Alter variiert.</li>
<li>Nach der entsprechenden Inkubationszeit in Thermolysin verwenden Sie eine Mikrodissektionszette, um eine Hautprobe in eine Vertiefung einer 6-Well-Zellkulturplatte mit 7-8 ml kaltem (4 °C) DMEM zu übertragen. Dies ermöglicht mehr Raum für die Trennung der Epidermis von der Dermis.</li>
<li>Tauchen Sie die Haut in das DMEM ein.</li>
<li>Bürsten Sie die Epidermis vorsichtig mit der Pinzette um den Umfang der Haut, bis die nahezu durchscheinende Epidermis an den Grenzen beobachtet wird. Wenn dies nicht erreicht werden kann, geben Sie die Hautprobe für weitere 15-30 Minuten in die Thermolysinlösung zurück.</li>
<li>Sobald sich die Epidermis merklich von der Dermis trennt, halten Sie sowohl die Epidermis als auch die Dermis vorsichtig mit einer Mikrodissektionszette und ziehen Sie die Epidermis sehr langsam aus der Dermis.</li>
<li>Bewerten Sie die Transluzenz der isolierten Epidermis und stellen Sie sicher, dass sie optisch konsistent ist. Siehe Abbildung 2 für ein Beispiel einer 1 mm x 2 mm großen Probe der Rattenepidermis. Wenn es eine Variation in der Transluzenz gibt, dann ist keine richtige Trennung aufgetreten.</li>
</ol></li>
<li>Inaktivierung von Thermolysin mit Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA) in den getrennten Teilen von Epidermis und Dermis. ACHTUNG: Das Thermolysin, das in der Epidermis und Dermis verbleibt, ist immer noch aktiv und kann die Schichten schädigen, wenn es nicht inaktiviert wird.<ol>
<li>Bereiten Sie eine 0,5 M EDTA-Stammlösung vor. Fügen Sie dazu langsam 0,93 g EDTA in 5 ml doppelt destilliertes Wasser hinzu. Fügen Sie der Lösung Natriumhydroxid hinzu, bis sie sich verklart. Stellen Sie sicher, dass der pH-Wert der Lösung ~ 8,0 beträgt.</li>
<li>Erstellen Sie eine 5 mM EDTA-Lösung in DMEM. 0,25 ml 0,5 M EDTA-Stammlösung werden zu 25 ml DMEM hinzugefügt.</li>
<li>Legen Sie die getrennte Epidermis und Dermis für 30 minuten in die 5 mM EDTA/DMEM-Lösung bei 4 °C, um die Aktivität des Thermolysins zu deaktivieren.</li>
</ol></li>
<li>Bewerten Sie die Epidermis mit tinctorial histology8,9,10.<ol>
<li>Fixieren Sie einen Teil der Epidermis in einem 10% neutralen Formalin, 4% Paraformaldehyd oder 0,25% Paraformaldehyd mit 0,8% Pikturansäurelösung für 1 h bei Raumtemperatur (RT) unter Rührung.</li>
<li>Legen Sie die fixierte Epidermis in 10% Saccharose in PBS für 1 h bei RT mit Rührung.</li>
<li>Gefrieren Sie die Epidermis in einer Gewebeeinbettungsmatrix zum Abschnittieren. Schneiden Sie 14 μm Querschnitte mit einem Kryostaten und tauen Sie auf gelatinebeschichtete Glasmikroskopobjektträger.</li>
<li>Trocknen Sie Die Abschnitte auf einem Objektträgerwärmer und flecken Sie sie mit einer Arbeitslösung aus Toluidinblau (TB; 10% TB in 1% Natriumchlorid) für 90 s. Appose Abdeckslips mit wässrigem Montagemedium.</li>
<li>Beobachten Sie die Epidermis mit Hellfeldmikroskopie bei 50x–250x. HINWEIS: Wenn eine ordnungsgemäße Trennung stattgefunden hat, wird die Epidermis sauber von der Dermis getrennt und die fünf Schichten werden erkannt: Stratum basale, Stratum spinosum, Stratum granulosum, Stratum lucidum und Stratum corneum. Ein Beispiel für eine getrennte Hautepidermis von Ratten ist in Abbildung 3 zu sehen.</li>
</ol></li></ol>3. Proteinextraktion und Western-Blot-Analyse
<ol><li>Führen Sie Western Blotting an den getrennten Gewebeproben mit zuvor veröffentlichtem Protokoll21 durch.</li>
<li>Homogenisieren Sie die Epidermis in 50 μL Lysepuffer (25mM Tris HCl, pH = 7,4, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 5% Glycerin und 1% Triton X-100), die einen Phosphatase- und Proteaseinhibitorcocktail enthalten.</li>
<li>Zentrifugenproben mit einer maximalen Geschwindigkeit für 15 min bei 4 °C und bewerten Sie den Überstand für die Proteinkonzentration mit einem Protein-Assay-Kit.</li>
<li>Laden Sie gleiche Proteinkonzentrationen (30 μg) auf SDS-Gele, führen Sie eine Elektrophorese durch und übertragen Sie dann Proteine auf Nitrocellulose- oder PVDF-Membranen.</li>
<li>Blockieren Sie die Membranen mit 5% Milch für 2 h und inkubieren Sie sie über Nacht in primären Antikörpern (Maus-Anti-NGF, E12, 1:1000).</li>
<li>3x mit PBS mit 0,3% Tween für jeweils 10 min waschen und mit einem markierten sekundären Antikörper (z.B. alkalische Phosphatase markiert Kaninchen Anti-Maus IgG) inkubieren.</li>
<li>Verwenden Sie ein Scansystem, um das Western-Blot-Signal auszuwerten (z. B. ECF-Substrat und eine Bildgebungsplattform).</li></ol>4. Immunhistochemie
<ol><li>Gewebeproben werden in ein Fixiermittel für eine optimale Immunreaktivität geben: 0,96% (w/v) Piktrinsäure und 0,2% (w/v) Formaldehyd in 0,1 M Natriumphosphatpuffer, pH =7,3 21,22,23 für 4 h bei RT. Transfer auf 10% Saccharose in PBS über Nacht bei 4 °C.</li>
<li>Führen Sie eine Standardimmunhistochemie an den Gewebeabschnitten21,22,23 durch.</li>
<li>Betten Sie die Epidermis von Tieren in einen einzigen gefrorenen Block in der Einbettungsmatrix ein und schneiden Sie 10-30 μm-Abschnitte auf einem Kryostaten. Montieren Sie die Schnitte auf gelatinebeschichteten, glasmikroskopisch kleinen Objektträgern und trocknen Sie sie bei 37 °C für 2 h.</li>
<li>Waschen Sie die Abschnitte für drei, 10 minuten Spülungen in PBS und inkubieren Sie für 24-96 h in primären Antiseren, [z. B. Maus-Anti-NGF (E12, 1:2000)] und Kaninchen-Antiprotein-Genprodukt 9,9 (PGP 9,5, 1:2000) verdünnt in PBS mit 0,3% (w / v) Triton X-100 (PBS-T) PBS-T mit 0,5% Rinderserumalbumin (BSA) und 0,5% Polyvinylpyrrolidon (PVP).</li>
<li>Nach der primären Antiseruminkubation die Abschnitte dreimal für 10 minuten in PBS ausspülen und 1 h bei RT in Alexa Fluor 488 Esel Anti-Kaninchen IgG (1:1000) und Alexa Fluor 555 Esel Antimaus IgG (1:1000) verdünnt in PBS-T inkubieren.</li>
<li>Spülen Sie die Abschnitte dreimal in PBS für 10 min ab und befestigen Sie Abdeckungen mit nicht verblassenden Montagemedium, um das Ausbleichen der Immunfluoreszenz zu verzücken.</li></ol>5. RNA-Isolierung und cDNA-Synthese
<ol><li>Führen Sie eine Standard-Reverse-Transkriptase-Polymerase-Kettenreaktion (RT-PCR) an den Hautprobendurch 21. Isolieren Sie die Gesamt-RNA mit einer Phenol-, Guanidin-Isothiocyanat-Lösung.</li>
<li>Führen Sie eine komplementäre DNA-Synthese durch Moloney murine Leukämievirus Reverse Transkriptase durch.</li>
<li>Verwenden Sie die folgenden Primersequenzen für die NGF- und IL-6-Verstärkung: NGF (Sense) - GTGGACCCCAAACTGTTTAAGAAACGG NGF (Antisense) – GTGAGTCCTGTTGAAGGAGATTGTACCATG IL-6 (Sense) - GCAATTCTGATTGTATGAACAGCGATGATGC; IL-6 (Antisense) – GTAGAAACGGAACTCCAGAAGACCAGAG</li>
<li>Vergleichen Sie die Spiegel von NGF und IL-6 mRNA mit β-Aktin-Housekeeping-Gen: β-ACTIN (Sinn) - TGCGTGACATTAAAGAGAAGCTGTGCTATG β-ACTIN (Antisense) – GAACCGCTCATTGCCGATAGTGATGA</li>
<li>Auswertung mit qualitativer RT-PCR mittels Thermocycler und quantitativer Real-Time PCR (qRT-PCR) mittels qRT-PCR System.</li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben keine Angaben.

Die Studie ergab, dass die Epidermis der glabrousen Hinterpfote der Ratte leicht von der Dermis mit Thermolysin (0,5 mG / ml) in PBS mit 1 mM Calciumchlorid bei 4 °C für 2,5 h getrennt werden konnte. Die histologische Auswertung ergab, dass die Epidermis an der Basalmembran von der Dermis getrennt war und dass die epidermalen Rete-Grate intakt waren. Thermolysin ist eine extrazelluläre Metalloendopeptidase, die von Gram-positivem (Geo)Bacillus thermoproteolyticus24produziert wird...

Die Beurteilung von Entzündungsmediatoren und neurotrophen Faktoren aus der Haut kann aufgrund der Heterogenität der Zelltypen in der entzündeten Dermis und Epidermis eingeschränkt sein1,2,3. Mehrere Enzyme, chemische, thermische oder mechanische Techniken, die die Trennung der beiden Schichten oder die Durchführung der Zelldissoziation zur Bewertung beinhalten, wurden kürzlich überprüft4. Säure, Alkali, neutrales Salz und Hitze können die Epidermis schnell von der Dermis trennen, aber zelluläre und extrazelluläre Schwellungen treten häufig auf5,6. Trypsin, Pankreatin, Elastase, Keratinase, Kollagenase, Pronase, Dispase und Thermolysin sind Enzyme, die zur epidermal-dermalen Trennung verwendet wurden4,7. Trypsin und andere breit angelegte proteolytische Enzyme sind bei 37–40 °C aktiv, müssen aber sorgfältig überwacht werden, um eine Dissoziation der epidermalen Schichten zu verhindern. Dispase spaltet die Epidermis an der Lamina densa, benötigt aber 24 h zur Trennung in den kalten4,8 oder kürzeren Zeitpunkten bei 37 °C4,9. Ein limitierendes Merkmal all dieser Techniken ist die mögliche Störung der Gewebemorphologie und der Verlust der Integrität von mRNA und Protein.
Um die Integrität von mRNA und Protein zu erhalten, sollte für kurze Zeit eine Hauttrennmethode in der Kälte durchgeführt werden. Bei der Bewertung von Hauttrenntechniken für Entzündungsstudien ist Thermolysin ein wirksames Enzym, um die Epidermis von der Dermis bei kalten Temperaturen zu trennen4. Thermolysin ist bei 4 °C aktiv, spaltet epidermale Hämidenmosomen aus der Lamina lucida und trennt die Epidermis innerhalb von 1–3 h4,8,10. Ziel dieses Berichts ist es, die Verwendung von Thermolysin zur Trennung der entzündeten Rattenepidermis von der Dermis zu optimieren, um mRNA- und Proteinspiegel für Entzündungsmediatoren und neurotrophe Faktoren nachzuweisen. Mehrere vorläufige Berichte wurden vorgelegt11,12,13,14,15. Das Ziel dieses Manuskripts ist es, eine optimale Hauttrenntechnik mit Thermolysin zu beschreiben und den Nachweis von 1) Entzündungsmarkern, 2) Interleukin-6 (IL-6) mRNA und 3) Nervenwachstumsfaktor (NGF) mRNA und Protein in der Epidermis von Ratten mit Carrageen-induzierter Entzündung (C-II)16,17zu demonstrieren. Ein vorläufiger Bericht unter Verwendung des vollständigen Freund-Adjuvansmodells zeigt, dass der NGF-mRNA- und Proteinspiegel während der Entzündung früh ansteigen15. Bei Mäusen führt die Hautsensibilisierung mit der topischen Anwendung von Oxazolon zu einem frühen Anstieg der IL-6 mRNA unter Verwendung der In-situ-Hybridisierung36. Sowohl IL-6 als auch NGF wurden in C-II18,19in Frage gestellt, aber es gab keine Berichte, die mRNA- oder Proteinspiegel für IL-6 oder NGF speziell aus der Epidermis während der akuten Stadien von C-II beschreiben.
Die Thermolysin-Technik ist kostengünstig und unkompliziert durchzuführen. Darüber hinaus ermöglicht die Thermolysintrennung der Epidermis von der Dermis die mRNA-, Western-Blot- und immunhistochemische Analyse von Entzündungsmediatoren und neurotrophen Faktoren während des Entzündungsprozesses15. Forscher sollten in der Lage sein, diese Technik sowohl in präklinischen als auch in klinischen Studien zu Hautentzündungen problemlos anzuwenden.

<table><tbody><tr><td>&lambda;-Carrageen</td><td>Millipore Sigma</td><td>22049</td><td>Subkutane Injektion von Carrageen induziert Entzündungen</td></tr><tr><td>7500 Schnelles Echtzeit-PCR-System</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>4351107</td><td>Für die RT-PCR-Analyse</td></tr><tr><td>Calciumchlorid (CaCl2), wasserfreies</td><td>Millipore Sigma</td><td>499609</td><td>Verhindert die Autolyse von Thermolysin</td></tr><tr><td>Kristalleinbett wässriges Einbettmedium</td><td>Millipore Sigma</td><td>C0612</td><td>Wässriges Eindeckmedium nach Toluidinblau-Färbung</td></tr><tr><td>Esel Anti-Maus Alexa Fluor 555</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A-31570</td><td>Sekundärantikörper für Immunhistochemie</td></tr><tr><td>Esel Anti-Kaninchen IgG, Alexa Fluor 488</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A-21206</td><td>Sekundärantikörper für Immunhistochemie</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11966-025</td><td>Zur Aufrechterhaltung der Gewebeintegrität</td></tr><tr><td>Ethylendiamintetraessigsäure</td><td>Millipore Sigma</td><td>E6758</td><td>Stoppt die Thermolysin-Reaktion</td></tr><tr><td>Moloney Maus-Leukämievirus (M-MLV) Reverse Transkriptase</td><td>Promega</td><td>M1701</td><td>Für die komplementäre DNA-Synthese</td></tr> Maus <tr><td>Anti-NGF-Antikörper (E-12)</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-365944</td><td>Für Neurotrophin Immunhistochemie</td></tr><tr><td>ProLong Gold Antifade Eindeckmittel</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>P36930</td><td>Zur Verzögerung der Immunfluoreszenzlöschung</td></tr><tr><td>Kaninchen Anti-PGP 9.5</td><td>Cedarlane Labs</td><td>CL7756AP</td><td>Für die intraepidermale Nervenfärbung</td></tr><tr><td>SAS Sprague Dawley Ratte</td><td>Charles River</td><td>Stamm Code 400</td><td>Tier für Entzündungsstudien verwendet</td></tr><tr><td>Shandon M-1 Einbettungsmatrix</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>1310TS</td><td>Gewebeeinbettungsmatrix für die Tinktorial- und Immunhistochemie</td></tr><tr><td>SimpliAmp Thermocycler</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A24811</td><td>Für die RT-PCR-Analyse</td></tr><tr><td>SYBR Select Master</td><td>Mix Thermo Fisher Scientific</td><td>4472908</td><td>Für die RT-PCR-Analyse</td></tr><tr><td>Thermolysin</td><td>Millipore Sigma</td><td>T7902</td><td>Aus Geobacillus stearothermophilus</td></tr><tr><td>Toluidine Blue</td><td>Millipore Sigma</td><td>89640</td><td>Für die Tinktorialfärbung für die Hellfeldmikroskopie</td></tr><tr><td>TRIzol Reagenz</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15596026</td><td>Für die Gesamt-RNA-Extraktion für RTPCR</td></tr></tbody></table>

trennung von rattenepidermis und dermis mit thermolysin zum nachweis ortsspezifischer entzündlicher mrna und proteine

Separation of Rat Epidermis and Dermis with Thermolysin to Detect Site-Specific Inflammatory mRNA and Protein

Einfach anzuwendende und kostengünstige Techniken sind erforderlich, um die ortsspezifische Produktion von Entzündungsmediatoren und Neurotrophinen bei Hautverletzungen, Entzündungen und / oder Sensibilisierungen zu bestimmen. Ziel dieser Studie ist es, ein epidermal-dermales Trennungsprotokoll mit Thermolysin, einer Proteinase, die bei 4 °C aktiv ist, zu beschreiben. Um dieses Verfahren zu veranschaulichen, werden Sprague Dawley-Ratten betäubt und rechte Hinterpfoten mit Carrageen injiziert. Sechs und zwölf Stunden nach der Injektion werden Ratten mit Entzündungen und naive Ratten eingeschläfert, und ein Stück Hinterpfote, glabrous Haut wird in kalte Dulbeccos Modified Eagle Medium gelegt. Die Epidermis wird dann an der Basalmembran durch Thermolysin in PBS mit Calciumchlorid von der Dermis getrennt. Als nächstes wird die Dermis durch eine Mikrodissektionszette gesichert und die Epidermis sanft weggeteist. Toluidinblaue Färbungen von Gewebeschnitten zeigen, dass die Epidermis sauber von der Dermis an der Basalmembran getrennt ist. Alle Keratinozytenzellschichten bleiben intakt, und die epidermalen Rete-Grate zusammen mit Vertiefungen von dermalen Papillen werden deutlich beobachtet. Qualitative und Echtzeit-RT-PCR wird verwendet, um den Nervenwachstumsfaktor und die Interleukin-6-Expressionsniveaus zu bestimmen. Western Blotting und Immunhistochemie werden schließlich durchgeführt, um Mengen an Nervenwachstumsfaktor zu erkennen. Dieser Bericht zeigt, dass die kalte Thermolysinverdauung eine wirksame Methode ist, um Epidermis von Dermis zu trennen, um mRNA- und Proteinveränderungen während einer Entzündung zu bewerten.

Carrageen-Injektion in die Hinterpfote der Ratte verursachte klassische Entzündungssymptome wie Rötung und Ödeme16,17. Die Schwellung der Hinterpfote wurde mit mechanischen Bremssättelngemessen 20. Ein Basiswert der Dicke der Pfote wurde für jede Ratte vor der Carrageenbehandlung erhalten und erneut nach 6 h und 12 h gemessen. Die Pfotendicke war im Vergleich zu den Ausgangswerten signifikant erhöht (Abbildung 1</stron...

Hier wird ein Protokoll zur Trennung von Epidermis und Dermis vorgestellt, um die Produktion von Entzündungsmediatoren zu bewerten. Nach einer Entzündung wird die Hinterpfotenepidermis der Ratte durch Thermolysin bei 4 °C von der Dermis getrennt. Die Epidermis wird dann für die mRNA-Analyse mittels RT-PCR und die Proteinbewertung durch Western Blot und Immunhistochemie verwendet.

Trennung von Rattenepidermis und Dermis mit Thermolysin zum Nachweis ortsspezifischer entzündlicher mRNA und Proteine

Easy-to-use and inexpensive techniques are needed to determine the site-specific production of inflammatory mediators and neurotrophins during skin ...

Unser Protokoll ist eine einfach anzuwendende und kostengünstige epidermal-dermale Trenntechnik zur Bestimmung der ortsspezifischen Produktion von Entzündungsmediatoren und Neurotrophinen bei Hautentzündungen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass die enzymatische Trennung der Epidermis von der Dermis bei vier Grad Celsius durchgeführt wird, wodurch die Integrität von mRNA und Protein erhalten bleibt. Diese Methode gibt Aufschluss über die Arten von Mediatoren, die primäre afferenten Terminals bei akuten und chronischen Entzündungen für die Entwicklung neuartiger therapeutischer Interventionen sensibilisieren.Wundheilung, Hautkrankheiten, chronische Wunden und Verbrennungen könnten von dieser Forschung profitieren. Und diese Methode könnte auf andere epitheliale Oberflächen wie den GI-Trakt und die Hornhaut angewendet werden. Die optimale Trennzeit kann zwischen den Laboren leicht variieren.Ein vorversuchsvoller Vergleich verschiedener Zeitpunkte in Kombination mit einer 2D-Morphologieauswertung wird empfohlen, um die Qualität der Trennung zu bestimmen. Nachdem sie eine mangelnde Reaktion auf den Pedalreflex bei einer betäubten acht bis neun Wochen alten Sprague Dawley-Ratte bestätigt hat, injizieren Sie die rechte glabrous Hinterpfote subkutan mit 100 Mikrolitern 1X Lambda-Carrageen, verdünnt in PBS. Verwenden Sie Bremssättel, um die Mittelfußdicke der Hinterpfote unmittelbar vor und nach 6 und 12 Stunden nach der Injektion zu messen, um das Volumen des Ödems als Reaktion auf den Reiz zu bestimmen.Verwenden Sie am entsprechenden experimentellen Endpunkt ein scharfes Skalpell, um ein ein mal zwei Millimeter großes Stück glabrous Hinterpfotenhaut aus der injizierten Pfote zu entnehmen, und verwenden Sie eine Mikrodissektionszette, um die Haut in einem Milliliter kaltes DMEM in einem Mikrozentrifugenröhrchen auf Eis für 15 bis 60 Minuten zu übertragen. Während das Gewebe inkubiert, fügen Sie einen Milliliter frisch zubereitetes aktiviertes Thermolysin zu 10 Vertiefungen einer 24-Well-Zellkulturplatte auf Eis hinzu. Verwenden Sie am Ende der Inkubation die Mikrodissektionszette, um eine Hautprobe in jede Vertiefung des aktivierten Thermolysins, Stratum corneum Seite nach oben zu übertragen, ohne die Proben in die Lösung einzutauchen.Es ist wichtig, dass die Haut nicht in das Thermolysin eingetaucht ist und dass das Stratum corneum nach oben zeigt, um eine effektive Trennung zu erreichen. Verwenden Sie nach zwei bis drei Stunden die Mikrodissektionszette, um eine Hautprobe in sieben bis acht Milliliter von vier Grad Celsius DMEM in eine Petrischale zu tauchen, damit sich die Epidermis mehr Von der Dermis trennen kann. Verwenden Sie eine Pinzette, um die Epidermis sanft um den Umfang der Haut zu bürsten, bis die fast durchscheinende Epidermis an den Rändern der Probe beobachtet wird.Wenn sich die Epidermis merklich von der Dermis trennt, greifen Sie vorsichtig jede Hautschicht mit einer einzigen Zangenpaar und ziehen Sie die Epidermis langsam aus der Dermis, dann bewerten Sie die Transluzenz der isolierten Epidermis durch Lichtmikroskopie, um sicherzustellen, dass sie optisch konsistent ist. Wenn die Schichten richtig getrennt wurden, legen Sie das epidermale und dermale Gewebe für 30 Minuten in einzelne Behälter mit fünf Millimolar-EDTA in DMEM bei vier Grad Celsius. Nach der Thermolysin-Deaktivierung einen Teil der Epidermis in einem geeigneten Fixiermittel für eine Stunde bei Raumtemperatur mit Rühren fixieren.Am Ende der Inkubation das fixierte Gewebe für eine Stunde bei Raumtemperatur unter Rühren in 10% Saccharose in PBS legen, bevor die Probe in einer geeigneten Gewebeeinbettungsmatrix zum Schnitten eingefroren wird. Verwenden Sie einen Kryostaten, um 14 Mikrometer dicke Querschnitte zu erhalten, und montieren Sie die Abschnitte auf gelatinebeschichteten Glasmikroskopobjektträgern. Nach dem Trocknen auf einem Objektträgerwärmer die Proben 90 Sekunden lang mit einer Arbeitslösung aus Toluidinblau beflecken.Danach vorsichtig Toluidinblau von den Objektträgern mit PBS waschen und Den Abdecklippen mit einem wässrigen Montagemedium entgegentreten, dann die Epidermis mit Hellfeldmikroskopie bei einer 50- bis 250-fachen Vergrößerung beobachten. Carrageen-Injektion in die Hinterpfote der Ratte verursacht klassische Entzündungssymptome wie Rötung und Ödeme sowohl 6 als auch 12 Stunden nach der Injektion. Die Hellfeldmikroskopie kann verwendet werden, um die Wirksamkeit der Thermolysintrennung der Epidermis und Dermis der glabrous Hinterpfotenhaut der Ratte zu bewerten.Tatsächlich zeigt die toluidinblaue Färbung der epidermalen Querschnitte, dass die Epidermis an der Basismembran von der Dermis getrennt ist, die epidermalen Rete-Grate und die Vertiefungen aus der dermalen Papille jedoch intakt bleiben. Weiterhin werden alle Keratinozytenzellschichten beobachtet. Das western Blotting der thermolysinseistenten Epidermis führt zu konsistenten Ergebnissen, was auf stabile Proteinspiegel während der Technik bei vier Grad Celsius hinweist.In der naiven Rattenepidermis wird nur sehr wenig NGF-Protein nachgewiesen, aber die NGF-Proteinspiegel sind nach sechs Stunden Carrageen-induzierter Entzündung signifikant hochreguliert. 12 Stunden nach der Injektion sind die NGF-Spiegel im Vergleich zu denen, die nach sechs Stunden beobachtet wurden, reduziert, bleiben aber im Vergleich zu den Kontrollen erhöht. Wie von der Western-Blot-Analyse erwartet, wird die NGF-Immunreaktivität nicht bei naiven Kontroll-Epidermis-Gewebeproben nachgewiesen, aber sechs Stunden nach der Carrageen-induzierten Entzündung wird NGF-Immunreaktivität in den meisten Keratinozyten des Stratum granulosum und Stratum lucidum beobachtet.Einige Zellen im Stratum spinosum sind auch immunreaktiv mit NGF. Bei der Verwendung von Thermolysin zur Isolierung der intakten Epidermis ist es wichtig zu bedenken, dass die optimale Trennzeit vom Endbenutzer empirisch bestimmt werden muss. Verschiedene proteomische und molekulare Techniken können verwendet werden, um die Expression spezifischer Proteine und/oder primärer Gentranskripte zu validieren, um zu bestätigen, dass dieses Verfahren die Basalexpression nicht verändert.Diese Technik der epidermal-dermalen Trennung wird es den Forschern ermöglichen, zusätzliche Fragen zur ortsspezifischen Expression von Neurotrophinen und Entzündungsmediatoren in verschiedenen kutanen Entzündungsmodellen zu beantworten. Piktrinsäure und Paraformaldehyd sind gefährlich. Arbeiten Sie mit beiden Chemikalien in einem Abzug, verwenden Sie persönliche Schutzkleidung und Handschuhe und waschen Sie Gesicht und Hände nach der Handhabung.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieser Artikel beschreibt ein einfaches Modell für die Stimulierung der Angiogenese im Rattengekröse. Das Modell stellt eine dramatische Steigerung der Kapillare sprießen, vaskulären Bereich und vaskuläre Dichte über einen relativ kurzen Zeit natürlich in einem Gewebe, das en face Visualisierung der gesamten mikrovaskulären Netzwerken bis auf die Ebene einzelner Zellen ermöglicht.

Rattengekröse Exteriorisation: Ein Modell für die Untersuchung der Zelluläre Dynamik an der Angiogenese beteiligt

Die Haut beherbergt ein komplexes Immunzellnetzwerk. Wir beschreiben eine effiziente Methodik für die Verdauung von Maushaut aus verschiedenen Körperteilen des Tieres, um eine Einzelzellsuspension zu erhalten und die verschiedenen Leukozytenpopulationen, die in der Haut leben, mittels Durchflusszytometrie zu analysieren.

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Dieses Protokoll beschreibt die enzymatische Verdauung von Maushaut in nährstoffreichem Medium, gefolgt von einer Gradiententrennung, um Leukozyten zu isolieren.  Die so abgeleiteten Zellen können für vielfältige nachgelagerte Anwendungen eingesetzt werden. Dies ist eine effektive, wirtschaftliche und verbesserte Alternative zu Gewebedissoziationsmaschinen und härteren Trypsin- und Dispase-basierten Gewebeverdauungsprotokollen.

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Wir beschreiben die Isolierung der kardialen extrazellulären Matrix von C57Bl/6J-Kontrollmäusen, Enghautmäusen und Engerhautmäusen, die mit dem IRF5-Hemmpeptid behandelt wurden. Wir beschreiben auch die Vasodilatationsstudien an den isolierten Gefäßen von C57Bl/6J, Engehautmäusen und Engerhautmäusen, die mit dem IRF5-inhibitorischen Peptid behandelt wurden.

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Dieses Protokoll stellt zwei Techniken vor, um die subzellulären Kompartimente von murinen Stäbchen-Photorezeptoren für die Proteinanalyse zu isolieren. Die erste Methode verwendet lebendes Netzhaut- und Zellulosefilterpapier, um die äußeren Segmente der Stäbchen zu trennen, während die zweite Methode lyophilisierte Netzhaut und Klebeband verwendet, um die inneren und äußeren Segmentschichten der Stäbchen abzuziehen.

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In dieser Arbeit wird ein Verfahren zur magnetischen Bead-basierten Isolierung von murinen Endothelzellen aus dermalen lymphatischen Kapillaren beschrieben. Die isolierten lymphatischen Endothelzellen können für nachgelagerte In-vitro-Experimente und Proteinexpressionsanalysen verwendet werden.

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Die Netzhaut weist eine komplexe räumliche Organisation über ihre laminare Struktur auf. Moderne räumliche Transkriptomik- und Sequenzierungstechniken erfordern Gewebeschnitte mit einer Dicke von &lt; 20 μm, was ihre Anwendbarkeit in der Netzhautforschung einschränkt. Diese frisch gefrorene Kryosektionsmethode erzeugt dünne Gesichtsabschnitte der Netzhaut von Mäusen unter Beibehaltung planarer räumlicher Beziehungen und ermöglicht so eine umfassende molekulare Kartierung über Laminae hinweg.

En face Kryosektion der Netzhaut der Maus für die hochdimensionale räumliche molekulare Analyse

Erfahren Sie die enzymatische Trennung von Rattenepidermis und Dermis mit Thermolysin bei 4 °C zur Analyse entzündlicher mRNA und Proteine. Diese Methode ermöglicht ortsspezifische Untersuchungen zur Entwicklung neuer Therapien.

Trennung von Rattenepidermis und Dermis mit Thermolysin zum Nachweis ortsspezifischer entzündlicher mRNA und Proteine

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