Name: Biomechanische Prüfung von Murine tendons (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-10-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 9 s
Description: Lernen Sie die biomechanische Prüfung von Maussehnen mit wiederverwendbaren, maßgefertigten 3D-gedruckten Vorrichtungen. Diese effiziente Methode reduziert die Testzeit von Stunden auf Minuten und eliminiert Greifartefakte.

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Die Studie wurde vom NIH / NIAMS (R01 AR055580, R01 AR057836) unterstützt.

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<li>Wang, V. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+tendon+function+is+adversely+affected+by+aggrecan+accumulation+due+to+the+knockout+of+ADAMTS5%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Murine tendon function is adversely affected by aggrecan accumulation due to the knockout of ADAMTS5.</a> Journal of Orthopaedic Research. 30, 620-626 (2011).</li>
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<li>Razmjou, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disability+and+satisfaction+after+Rotator+Cuff+decompression+or+repair%3A+A+sex+and+gender+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Musculoskeletal+Disorders%22%5BJournal%5D)">Disability and satisfaction after Rotator Cuff decompression or repair: A sex and gender analysis.</a> BMC Musculoskeletal Disorders. 12, 66(2011).</li>
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Die Autoren haben nichts zu verraten.

Murine Tiermodelle werden häufig verwendet, um Sehnenstörungen zu studieren, aber die Charakterisierung ihrer mechanischen Eigenschaften ist eine Herausforderung und in der Literatur ungewöhnlich. Der Zweck dieses Protokolls ist es, eine zeiteffiziente und reproduzierbare Methode zur Zugprüfung von murinen Sehnen zu beschreiben. Die neuen Methoden reduzierten die Zeit, die zum Testen einer Probe erforderlich war, von Stunden auf Minuten und eliminierten ein wichtiges Greifartefakt, das in früheren Methoden ein häufiges P...

Sehnenerkrankungen sind häufig und weit verbreitet unter den alternden, athletischen und aktiven Populationen1,2,3. In den Vereinigten Staaten werden jährlich 16,4 Millionen Bindegewebsverletzungen gemeldet4 und machen 30 % aller verletzungsbedingten Arztbesuche3,5,6,7, 8. Die am häufigsten betroffenen Stellen sind die Rotatormanschette, Achillessehne und Patellasehne9. Obwohl eine Vielzahl von nicht-operativen und operativen Behandlungen erforscht wurden, einschließlich entzündungshemmender Medikamente, Rehabilitation und chirurgische Reparatur, die Ergebnisse bleiben schlecht, mit begrenzter Rückkehr zur Funktion und hohe Ausfallraten5, 6. Diese schlechten klinischen Ergebnisse haben grundlegende und translationale Studien motiviert, die darauf abzielen, die Teninopathie zu verstehen und neue Behandlungsansätze zu entwickeln.
Zug-biomechanische Eigenschaften sind die primären quantitativen Ergebnisse, die die Sehnenfunktion definieren. Daher muss die Laborcharakterisierung der Tendinopathie und die Wirksamkeit der Behandlung eine strenge Prüfung der Sehnenzugeigenschaften umfassen. Zahlreiche Studien haben Methoden beschrieben, um die biomechanischen Eigenschaften von Sehnen von Tiermodellen wie Ratten, Schafe, Hunde und Kaninchen10,11,12zu bestimmen. Jedoch, wenige Studien haben die biomechanischen Eigenschaften der murinen Sehnen getestet, vor allem aufgrund der Schwierigkeiten beim Greifen der kleinen Gewebe für Zugtests. Da murine Modelle zahlreiche Vorteile für die mechanistische Untersuchung der Tendinopathie haben, einschließlich genetischer Manipulation, umfangreiche Reagenzoptionen und kostengünstiger Kosten, ist die Entwicklung präziser und effizienter Methoden zur biomechanischen Prüfung von murinen Geweben erforderlich.
Um die mechanischen Eigenschaften von Sehnen richtig zu testen, muss das Gewebe effektiv gegriffen werden, ohne zu rutschen oder Artefakt an der Griffschnittstelle zu reißen oder die Wachstumsplatte zu zerbrechen. In vielen Fällen, insbesondere bei kurzen Sehnen, wird der Knochen an einem Ende und die Sehne am anderen Ende gegriffen. Knochen werden in der Regel durch Einbettung in Materialien wie Epoxidharz13 und Polymethylmethacrylat14,15gesichert. Sehnen werden oft zwischen zwei Schichten Schleifpapier platziert, mit Cyanoacrylat geklebt und mit Kompressionsklemmen gesichert (wenn der Querschnitt flach ist) oder in einem gefrorenen Medium (wenn der Querschnitt groß ist)15,16,17 . Diese Methoden wurden auf biomechanisch getestetmurine Sehnen angewendet, aber Herausforderungen entstehen aufgrund der geringen Größe der Proben und der Übereinstimmung der Wachstumsplatte, die nie ossifies18. Zum Beispiel beträgt der Durchmesser des murinen Humeralkopfes nur wenige Millimeter, was das Greifen des Knochens erschwert. Insbesondere führt die Zugprüfung von murinen supraspinatus Sehnen-Knochen-Proben oft zu einem Versagen an der Wachstumsplatte und nicht an der Sehne oder an der Sehnenenenthese. Ebenso ist die biomechanische Prüfung der Achillessehne eine Herausforderung. Obwohl die Achillessehne größer ist als andere murine Sehnen, ist der Calcaneus klein, was das Greifen dieses Knochens erschwert. Der Knochen kann entfernt werden, gefolgt von Greifer der beiden Sehnenenden; Dies schließt jedoch die Prüfung der Sehnen-Knochen-Befestigung aus. Andere Gruppen berichten, dass der Kalkknochen mit maßgefertigten Vorrichtungen19,20, Verankerung durch Klemmen21, Fixierung in selbsthärtenden Kunststoffzement22 oder mit einem konischen Formschlitz22, aber diese Frühere Methoden bleiben durch geringe Reproduzierbarkeit, hohe Greiffehlerraten und mühsame Vorbereitungsanforderungen begrenzt.
Ziel der aktuellen Studie war es, eine genaue und effiziente Methode zur zugfesten biomechanischen Prüfung von murinen Sehnen zu entwickeln, wobei der Schwerpunkt auf den Supraspinatus- und Achillessehnen als Beispiel lag. Mit einer Kombination aus 3D-Rekonstruktionen aus nativer Knochenanatomie, Solid-Modellierung und additiver Fertigung wurde eine neuartige Methode entwickelt, um die Knochen zu greifen. Diese Vorrichtungen sicherten effektiv die Knochen, verhinderten Wachstumsplattenversagen, verkürzten die Probenvorbereitungszeit und erhöhten die Reproduzierbarkeit der Tests. Die neue Methode ist leicht anpassbar, um andere murine Sehnen sowie Sehnen bei Ratten und anderen Tieren zu testen.

<table><tbody><tr><td>Agarose</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP160-100</td><td>Dissovle 1g in 100 ml Reinstwasser zur Herstellung von 1% Agarose&nbsp;</td></tr><tr><td>Bruker microCT&nbsp;</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td>Skyscan 1272&nbsp;</td><td>Von Autoren verwendet</td></tr><tr><td>ElectroForce&nbsp;</td><td>TA Instruments</td><td>3200</td><td>Prüfplattform</td></tr><tr><td>Ethanol 200 Proof</td><td>Fisher Scientific</td><td>A4094</td> Auf <td>70% verdünnen und wie im Protokoll empfohlen</td></tr><tr><td>verwenden Halterung zum Anbringen von Griffen</td><td>Sonderanfertigung</td><td></td><td>Verwendet von den Autoren</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark</td><td>&nbsp; S-8115</td><td>Wie im Protokoll</td></tr><tr><td>vorgeschlagen MicroCT CT-Analyser (Ctan)</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Wird von Autoren zur Visualisierung und Analyse von Mikro-CT-Scans verwendet&nbsp;</td></tr><tr><td>MilliQ Wasser (Reinstwasser)</td><td>Millipore Sigma</td><td>QGARD00R1 (oder verwandter Reiniger)</td><td>100 ml&nbsp;</td></tr><tr><td>Meshmixer</td><td>Autodesk</td> http://www.meshmixer.com/ <td>Kostenlose Engineering-Software, die von Autoren zur Verfeinerung des Netzes verwendet</td><td></td></tr> wird <tr><td>Objet EDEN 260VS&nbsp;</td><td>Stratasys LTD</td><td></td><td>Precision Prototyping</td></tr><tr><td>Objet Studio</td><td>Stratasys LTD</td><td></td><td>Wird von Autoren mit dem 3D-Drucker</td></tr><tr><td>PBS - Phosphatgepufferte Kochsalzlösung</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10010031</td><td>2,5 l von 10% PBS verwendet;</td></tr><tr><td>S& T Forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>00108-11</td><td>Von Autoren verwendet</td></tr><tr><td>Skalpellklinge - #11</td><td>Fine Science Tools</td><td>10011-00</td><td>Von Autoren verwendet</td></tr><tr><td>Scalpel Handle - #3</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td>Von Autoren verwendet SkyScan</td></tr><tr><td>1272</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Wird von Autoren zur Visualisierung und Analyse von Mikro-CT-Scans verwendet&nbsp;</td></tr><tr><td>Skyscan CT-Vox</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Wird von Autoren zur Visualisierung und Analyse von Mikro-CT-Scans verwendet&nbsp;</td></tr><tr><td>SkyScan NRecon</td><td>Bruker BioSpin Corp</td><td></td><td>Wird von Autoren zur Visualisierung und Analyse von Mikro-CT-Scans verwendet&nbsp;</td></tr><tr><td>SolidWorks CAD</td><td>Dassault Syst&egrave; mes</td><td>SolidWorks Research Subsription</td><td>Festkörpermodellierung computergestützte Konstruktion, die von Autoren verwendet wird</td></tr><tr><td>SuperGlue</td><td>Loctite</td><td>234790</td><td>Wie im Protokoll vorgeschlagen</td></tr><tr><td>Prüfbad</td><td>Sonderanfertigung</td><td></td><td>Von Autoren verwendet</td></tr><tr><td>Dünnschichtgriffe&nbsp;</td><td>Sonderanfertigung</td><td></td><td>Verwendet von Autoren</td></tr><tr><td>VeroWhitePlus</td><td>Stratasys LTD NA</td><td></td><td>3D-Druckmaterial verwendet von Autoren</td></tr><tr><td>WinTest&nbsp;</td><td>WinTest-Software</td><td></td><td>Wird von Autoren verwendet, um Daten zu sammeln</td></tr></tbody></table>

biomechanische prüfung von murine tendons

Biomechanical Testing of Murine Tendons

Sehnenerkrankungen sind häufig, betreffen Menschen jeden Alters und sind oft schwächend. Standardbehandlungen, wie entzündungshemmende Medikamente, Rehabilitation und chirurgische Reparatur, scheitern oft. Um die Sehnenfunktion zu definieren und die Wirksamkeit neuer Behandlungen nachzuweisen, müssen die mechanischen Eigenschaften von Sehnen aus Tiermodellen genau bestimmt werden. Murine Tiermodelle sind heute weit verbreitet, um Sehnenerkrankungen zu studieren und neuartige Behandlungen für Tendinopathien zu bewerten; Die Bestimmung der mechanischen Eigenschaften von Maussehnen war jedoch eine Herausforderung. In dieser Studie wurde ein neues System für die mechanische Nehneprüfung entwickelt, das 3D-gedruckte Vorrichtungen enthält, die genau mit den Anatomien des Humerus und calcaneus übereinstimmen, um supraspinatus Sehnen bzw. Achillessehnen mechanisch zu testen. Diese Vorrichtungen wurden mit 3D-Rekonstruktionen der nativen Knochenanatomie, Feststoffmodellierung und additiver Fertigung entwickelt. Der neue Ansatz eliminierte artefaktische Greiffehler (z. B. Versagen am Ausfall der Wachstumsplatte anstelle der Sehne), verringerte die Gesamttestzeit und erhöhte Reproduzierbarkeit. Darüber hinaus ist diese neue Methode leicht anpassbar, um andere murine Sehnen und Sehnen von anderen Tieren zu testen.

3D-gedruckte Vorrichtungen wurden verwendet, um 8 Wochen alte murine supraspinatus und Achillessehnen zu testen. Alle mechanisch getesteten Proben scheiterten an der Enthese, die durch MikroCT-Scans, visuelle Inspektion und Videoanalyse nach Zugversuchen gekennzeichnet ist. Abbildung 3zeigt einen 1:1-Vergleich der bisherigen und aktuellen Methoden zur supraspinatus-Sehnenprüfung in unserem Labor . Bei der vorherigen Methode28,29...

Das Protokoll beschreibt effiziente und reproduzierbare zahnfeste biomechanische Prüfverfahren für murine Sehnen durch die Verwendung von kundenspezifischen 3D-gedruckten Vorrichtungen.

Biomechanische Prüfung von Murine tendons

Tendon disorders are common, affect people of all ages, and are often debilitating. Standard treatments, such as anti-inflammatory drugs, rehabilitation, ...

Das Protokoll beschreibt ein effizientes und reproduzierbares Verfahren zur biomechanischen Prüfung von Maussehnen durch wiederverwendbare, kundenspezifische 3D-gedruckte Vorrichtungen. Die neuen Methoden reduzieren die Zeit, die erforderlich ist, um die Probe von Stunden auf Minuten zu testen, und eliminieren ein wichtiges Greifartefakt, das in früheren Methoden ein häufiges Problem war. Diese Methode ist nicht auf die Supraspinatus- und Achillessehnen beschränkt.Es kann leicht angepasst werden, um andere Maussehnen und Sehnen von größeren Tieren zu testen. Um die Reproduzierbarkeit und Effizienz des Ansatzes zu gewährleisten, können mehrere Zyklen des Design-Prototypings und der Validierung für Vorrichtungen erforderlich sein, die hier nicht beschrieben sind. Führen Sie zunächst einen mikrocomputed Tomographie-Scan des gesamten Knochens im Agarose-Gel durch.Wählen Sie nach der Rekonstruktion in Querschnittsbilder den Befehl Datei öffnen aus, um das Datei-Dataset zu öffnen. Öffnen Sie die Dialogdateieinstellungen, und wählen Sie die Registerkarte Erweitert aus. Verwenden Sie den adaptiven Renderingalgorithmus, um die 3D-Modelle zu erstellen, die glattere Oberflächendetails bieten.Verwenden Sie 10 als Lokalitätsparameter, der den Abstand in Pixeln zum benachbarten Punkt definiert, der zum Suchen des Objektrahmens verwendet wird. Minimieren Sie die Toleranz auf 0,1, um die Dateigröße zu verringern. Um das Volumen des Interesses anzugeben, wählen Sie manuell zwei Bilder aus, die als Ober- und Unterseite des ausgewählten VOI-Bereichs festgelegt werden sollen, und wechseln Sie dann zur zweiten Seite, Region of Interest.Wählen Sie den Interessenbereich manuell für ein einzelnes Querschnittsbild aus. Wiederholen Sie die Auswahl des ROI für alle 10 bis 15 Querschnittsbilder. Wechseln Sie als Nächstes zur dritten Seite, Binärauswahl.Klicken Sie im Menü Histogramm auf Von Dataset, um die Histogrammverteilung der Helligkeit aus allen Bildern des Datasets anzuzeigen. Klicken Sie auch im Menü Histogramm auf das Menü 3D-Modelldatei erstellen. Speichern Sie ein 3D-Modell des Bones im STL-Dateiformat.Importieren Sie in der Meshmixer-Software Mesh und wählen Sie Alle zum Bearbeiten aus. Wählen Sie Aus dem Werkzeugsatz bearbeiten produzieren aus, und wählen Sie dann Triangle Budget aus dem Werkzeugsatz Ziel reduzieren aus. Reduzieren Sie die Tricount- und akzeptieren Sie Änderungen.Speichern Sie die neu reduzierte Datei im STL-Format, indem Sie Export As.To entwerfen Sie einen supraspinatus Sehnenhumeralknochen, verwenden Sie ein computergestütztes Designprogramm mit Solid-Modellierung, um ein maßgeschneidertes Modell für Humerus-Greifvorrichtungen zu erstellen. Öffnen Sie die STL-Formatdatei des Humerusknochens in einem Solid-Model-Programm und speichern Sie sie als Teiledatei im SLDPRT-Format. Öffnen Sie dann die Bauteildatei, um manuell drei anatomisch relevante Ebenen zu erstellen, z. B. sagittal, koronal und quer.Klicken Sie auf Datei Neu, um das Volumenblockkomponententeil zu erstellen. Klicken Sie auf Datei neu, um ein Baugruppenmodell mit zwei Komponenten zu erstellen, dem Volumenkörperblock und dem rechten oder linken Humerusknochen. Definieren Sie die Ausrichtung des Knochens innerhalb des Blocks, um sicherzustellen, dass der Winkel zwischen Sehne und Knochen 180 Grad beträgt.Stellen Sie sicher, dass das gesamte Knochenvolumen in den Block passt. Wählen Sie im Fenster Baugruppe den Block aus, und klicken Sie auf der Symbolleiste Baugruppe auf Komponente bearbeiten. Klicken Sie auf Einfügen, Features, Hohlraum.Wählen Sie Uniform Scaling aus, und geben Sie 0% als Wert ein, der in alle Richtungen skaliert werden soll. Unterdrücken Sie das Bone-Teil, und speichern Sie die Baugruppe als Teil. Öffnen Sie den Zylinder mit einem Hohlraumteil.Erstellen Sie eine Skizze, stellen Sie sicher, dass sie nur 0,5 Millimeter über dem Humeralkopf bleibt. Wählen Sie unter Features Extrudierter Schnitt aus. Schneiden Sie die Baugruppe entlang der sagittalen Ebene, um zwei symmetrische Komponenten zu erstellen, die anterior und nachträvoll in den Knochen passen.Schneiden Sie das Baugruppenteil entlang der sagittalen Ebene, um zwei symmetrische Komponenten zu erstellen, die anterior und nachträvoll in den Knochen passen. Es ist wichtig, den Humeralkopf sicherzustellen, um wachstumsplattenversagen zu verhindern und einen engen Abstand zu definieren, der verhindert, dass der Humerus während des Tests vom Modell abweicht. Gehen Sie wie im Manuskript beschrieben, um die hintere Komponente und die vordere Komponente zu beenden.Speichern Sie beide Komponenten als separate Teiledateien. Drücken Sie nun Muster einfügen, Spiegeln, und wählen Sie Spiegeln aus, um 3D-Spiegelmodelle für jede Komponente der Halterung für die gegenüberliegende Extremität zu erstellen. Wählen Sie die Vorderseite als Spiegelfläche glatt aus.Wählen Sie das Teil als zu spiegelnden Körper aus. Wählen Sie die Spiegelebene aus, und erstellen Sie eine Skizze, die das gesamte Material enthält. Wählen Sie unter Features Extrudierte Steile aus, um das Originalteil zu entfernen und nur gespiegeltes Teil beizubehalten.Klicken Sie auf die Unterseite des Teils und verwenden Sie als Ebene, um eine Skizze zu erstellen. Klicken Sie auf Skizzentext und fügen Sie L oder R hinzu. Dies fügt eine Ätze auf der Unterseite der Vorrichtungen hinzu, um zwischen der linken und rechten Seite zu unterscheiden. Speichern Sie alle Befestigungsteile im STL-Standarddateiformat zur Vorbereitung auf den 3D-Druck.Um die supraspinatus Muskel-Tendon, Humerus Knochen Probe zu dissektieren, positionieren Sie zuerst die eingeschläferte Maus in einer anfälligen Position und machen einen Schnitt in der Haut von oben der Ellbogen der Vorderpfote in Richtung der Schulter. Verwenden Sie Zangen, um die Haut mit stumpfer Sektion vorsichtig zu entfernen, so dass die Muskulatur der Schulter sichtbar ist. Entfernen Sie das Gewebe, das den Humerus umgibt, bis der Knochen freigelegt ist.Halten Sie den Humerus mit Derpalle und entfernen Sie vorsichtig die Deltoid- und Trapezmuskeln, um den korakokomromialen Bogen freizulegen. Identifizieren Sie das AC-Gelenk und trennen Sie vorsichtig das Schlüsselbein vom Akromion mit einer Skalpellklinge. Achten Sie darauf, die supraspinatus Sehne und ihre knöcherne Befestigung nicht zu beschädigen, entfernen Sie den Muskel aus seiner skapitulären Befestigung mit einem Skalpellklinge.Lösen Sie den Humeralkopf vom Glenoid und schnüren Sie die Gelenkkapsel und die Infraspinatus subscapularis und teres kleine Sehnen. Disarticulate das Ellenbogengelenk, um den Humerus von der Ulna und Radius zu trennen. Isolieren Sie die Humerus-Supraspinatus-Sehnenmuskelprobe und reinigen Sie überschüssiges Weichgewebe am Humerus und Humeralkopf.Um die Achillessehne, den Calcaneus-Knochen, zu sezieren, positionieren Sie eine eingeschläferte Maus in einer anfälligen Position. Achten Sie darauf, die Achillessehne und ihre knöcherne Anhaftung nicht zu beschädigen, entfernen Sie die Haut mit stumpfer Sektion, so dass die Muskulatur um die Knöchel- und Kniegelenke freigelegt wird. Mit einer Skalpellklinge, beginnend an der Achillessehnen-Calcaneus-Anhaftung, lösen Sie den Magen-Darm-Muskel vorsichtig von seinen proximalen Anhaftungen.Die Calcaneus vorsichtig von den verschiedenen angrenzenden Knochen zu entfernen und die Achillessehnen-Calcaneus-Probe zu isolieren und überschüssiges Weichgewebe zu reinigen. Um den Querschnittsbereich der Sehne zu bestimmen, legen Sie den Knochen kopfüber ein, um die Probe in das mit Agarose-Gel gefüllte Kryotube mit dem Knochen im Agarose-Gel und der Sehne und dem Muskel draußen zu suspendieren. Nach dem Scan mit Mikrocomputertomographie, entfernen Sie vorsichtig den Muskel von der Sehne mit einem Skalpellklinge.Legen Sie den Knochen in die 3D-gedruckte Leuchte ein und befestigen Sie sie an den Testrastern. Setzen und kleben Sie die Sehne zwischen ein gefaltetes dünnes Gewebepapier und klemmen Sie sie mit dünnen Foliengriffen. Legen Sie die Probe und die Griffe bei 37 Grad Celsius in ein PBS-Prüfbad ein und führen Sie einen mechanischen Test durch.In dieser Studie wurde die Probenvorbereitungszeit mit wiederverwendbaren 3D-gedruckten Vorrichtungen zum Greifen von Knochen von Stunden auf Minuten verkürzt. Repräsentative Lastverformungskurven für Zugversuche von Supraspinatussehne mit aktuellen Methoden eliminierten größere Greifartefakte wie Wachstumsplattenversagen. Die mechanischen Eigenschaften von Supraspinatus und Achillessehnen zeigen eine signifikante Wirkung des Geschlechts basierend auf ungepaarten T-Tests mit einem P-Wert von weniger als 0,05.Micro CT hat erfolgreich den Querschnittsbereich entlang der Länge der Supraspinatussehne entlang der Achillessehne länge gemessen. Es ist wichtig, sich daran zu erinnern, dass jede anatomische Stelle spezifische Designkriterien hat, die für ein effektives Greifen erforderlich sind. Daher sollte das Design für jede Leuchte entsprechend angepasst werden.Zusätzlich zu zugfesten Biszum-Fehler können diese Vorrichtungen auch für zyklische Belastungstests verwendet werden, die Informationen über Sehnenermüdung und viskoeleaste Eigenschaften liefern. Die Charakterisierung der mechanischen Eigenschaften von murinen Sehnen ist in der Literatur aus einer Reihe von Gründen ungewöhnlich, einschließlich der Schwierigkeit, diese kleinen Gewebe zu greifen, mühsame und zeitaufwändige Probenvorbereitungsmethoden und Wachstumsplattenfrakturen. Dieses Protokoll stellt eine zeiteffiziente und reproduzierbare Methode zum Testen von Maussehnen dar, die Artefaktgrifffehler eliminiert und die Anzahl der Proben verdreifacht hat, die an einem Tag getestet werden können.

Research

Forschung

JoVE Journal

Bioengineering

Biotechnik

Ein neues in vitro-System für die gleichzeitige Laden vier Sehnen in der Kultur beschrieben wird.

Ex vivo mechanische Belastung der Sehnen

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Wir stellen eine maßgeschneiderte experimentelle Plattform und ein Gewebekulturprotokoll vor, das fibroknorpelige Veränderungen nachbildet, die durch das Impingement der Achillessehneninsertion in murinen Hintergliedmaßenexplantaten mit anhaltender Zelllebensfähigkeit verursacht werden, und so ein Modell für die Erforschung der Mechanobiologie des Sehnenimpingements bietet.

Maus-Hintergliedmaßen-Explantatmodell zur Untersuchung der Mechanobiologie des Achillessehnen-Impingements

Dieses Protokoll stellt ein Testsystem vor, das zur Induktion quantifizierbarer und kontrollierter Ermüdungsverletzungen in einer Ratten-Achillessehne für ein In-vivo-Modell der überlastungsinduzierten Tendinopathie verwendet wird. Das Verfahren besteht darin, den Knöchel der Ratte an einem Gelenkaktuator zu befestigen, der mit einem speziell geschriebenen MATLAB-Skript eine passive Knöcheldorsalflexion durchführt.

Ein passives Sprunggelenk-Dorsalflexions-Testsystem für ein In-vivo-Modell der Überlastungsinduzierten Tendinopathie

Hier stellen wir ein assembloides Modellsystem vor, um die zelluläre Wechselwirkung zwischen dem tragenden Sehnenkerngewebe und einem extrinsischen Kompartiment mit Zellpopulationen nachzuahmen, die durch Krankheit und Verletzung aktiviert werden. Als wichtigen Anwendungsfall demonstrieren wir, wie das System eingesetzt werden kann, um die krankheitsrelevante Aktivierung von extrinsischen Endothelzellen zu untersuchen.

Entwicklung von Sehnen-Assembloiden zur Untersuchung zellulärer Wechselwirkungen bei Krankheit und Reparatur

Dieser Artikel beschreibt eine vielseitige Methode zur cell-derived Gewebe Ringe durch zelluläre self-assembly erstellen. Glatte Muskelzellen in ringförmige Agarose Brunnen sammeln und Vertrag robust dreidimensionale (3D-) Gewebe innerhalb von 7 Tagen bilden ausgesät. Millimeter-Skala Gewebe Ringe sind förderlich für die mechanische Prüfung und dienen als Bausteine ​​für Gewebe Montage.

Directed Cellular Self-Assembly to Cell-Derived Tissue Ringe für biomechanische Analyse und Tissue Engineering Fabricate

Lernen Sie die biomechanische Prüfung von Maussehnen mit wiederverwendbaren, maßgefertigten 3D-gedruckten Vorrichtungen. Diese effiziente Methode reduziert die Testzeit von Stunden auf Minuten und eliminiert Greifartefakte.

Biomechanische Prüfung von Murine tendons

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