14. Mai 2020
Hier wird ein Protokoll zur Primärklärung der CHO-Zellkultur mittels eines akustischen Separators vorgestellt. Dieses Protokoll kann für die primäre Klärung von Schüttelkolbenkulturen oder Bioreaktorernten verwendet werden und hat die potenzielle Anwendung für die kontinuierliche Klärung des Zellentlüftungsmaterials während des Perfusionsbioreaktorbetriebs.
Unser Protokoll zeigt, wie ein akustischer Wellenseparator im Labormaßstab für die primäre Trennung von CHO-Zellen aus geernteter Kulturflüssigkeit verwendet wird, die einen monoklonalen Modellantikörper enthält. Die akustische Wellenabscheidung bietet einige Vorteile im Vergleich zu herkömmlichen Primärklärungsmethoden wie Zentrifugation und Filtration, wie z. B. einen geringen Platzbedarf, ein geringes Kontaminationsrisiko und ein geringeres Risiko von Filterverschmutzungen. Da die akustische Wellentrennung einen kontinuierlichen Fluss von zellfreiem Material für nachfolgende Filtrations- und Chromatographieprozesse ermöglicht, besteht ein Potenzial für ihre Anwendung in der kontinuierlichen Bioprozesstechnik.
Um den Schallwellenabscheider vorzubereiten, schließen Sie die Trübungskabel an die entsprechenden Anschlüsse an und schließen Sie die BNC-Kabel für die Kammerleistung an die Rückseite des Schallwellenabscheidersystems an. Setzen Sie die Trübungssonden in das Trübungsmessgerät und das Thermometergehäuse ein und ziehen Sie die Schrauben fest. Verbinden Sie den Zulaufschlauch über die Förderpumpe mit dem Eingang der Zulauftrübung.
Verbinden Sie den Y-Schlauch vom Ausgang der Zufuhrtrübungsöffnung mit der Einlassöffnung der akustophoretischen Kammer. Verbinden Sie den Schlauch der Stufe 1 von der Abfallöffnung der akustophoretischen Kammer über die Pumpe der Stufe 1 mit einem Zellsammelgefäß und verbinden Sie den Schlauch von der Permeatöffnung der akustophoretischen Kammer mit dem Eingang der Trübungsöffnung von Sonde 1. Verbinden Sie dann den Entnahmeschlauch aus der Trübungsöffnung von Sonde 1 mit einem Produktauffangbehälter.
Um das System mit geernteter Zellkulturflüssigkeit zu grundieren, schalten Sie den akustischen Wellenseparator ein und öffnen Sie das zugehörige Softwareprogramm. Klicken Sie im Bereich "Messwerte" auf "Test starten", um die Datenaufzeichnung zu starten. Und verbinden Sie das Ende des Zuführschlauchs mit dem gerührten Gefäß für die geerntete Zellkulturflüssigkeit.
Um die Förderpumpe zu starten, geben Sie die Pumprate ein und drücken Sie die Eingabetaste. Vergewissern Sie sich, dass der Pumpenrichtungspfeil korrekt ausgerichtet ist, um sicherzustellen, dass die Zellflüssigkeit aus dem Gefäß in die akustophoretische Kammer gepumpt wird, und klicken Sie zum Starten auf das Dreiecksymbol. Überwachen Sie die Fütterungstrübungsmessungen im Percent Reduction Panel während der Befüllung der akustophoretischen Kammer.
Wenn die geerntete Zellkulturflüssigkeit ausreichend innerhalb des Zellflüssigkeitsgefäßes gemischt wird, sind die Trübungswerte während der Beladung der Kammer konstant. Sobald sich die Flüssigkeit über dem Piezo-Wandler an der Rückseite der akustophoretischen Kammer befindet, klicken Sie auf Ausschalten, um die Pumpe zu stoppen. Verbinden Sie das andere Ende des BNC-Stromkabels mit der akustophoretischen Kammer.
Sobald die akustophoretische Kammer gefüllt und eingeschaltet ist, ändern Sie die Förderpumpenrate auf die gewünschte Betriebsrate. Um die Piezoleistung der Stufe 1 einzuschalten, schieben Sie die Leiste im Leistungsmodul auf 10 Watt und klicken Sie auf Einschalten.Sobald sich die Zellen am Boden der akustophoretischen Kammer abzusetzen beginnen, starten Sie die Pumpe der Stufe 1 mit einer geeigneten Rate, die auf der Zelldichte und der Förderpumpenrate basiert, während Sie die Schallwellentrennkammern genau beobachten und die Pumpraten nach Bedarf anpassen. Um die gepackte Zellmasse zu berechnen, tarieren Sie eine Waage mit einem leeren 15-Milliliter-Röhrchen und füllen Sie das Röhrchen mit Aufgabematerial.
Nachdem das Gesamtgewicht des Röhrchens mit Zuschub erfasst wurde, zentrifugieren Sie das Röhrchen und dekotieren Sie den Überstand in einen neuen Behälter. Messen Sie das Gewicht des Rohrs mit dem Zellpellet. Überwachen Sie dann das Trübungsprofil der Trübung des Stadiums 1, während der Überlauf aus der akustophoretischen Kammer in die Trübungssonde 1 eintritt.
Wenn der Lauf beendet ist, stoppen Sie die Zulaufpumpen und die Pumpe der Stufe 1 und schalten Sie die Kammer aus. Trennen Sie das BNC-Netzkabel und sammeln Sie das Produkterntematerial für die nachgelagerte Analyse. Um die restliche Flüssigkeit aus der akustophoretischen Kammer abzulassen, legen Sie den Abfallschlauch in ein leeres Gefäß.
Trennen Sie den Schlauch von den Einlass- und Permeatanschlüssen der akustophoretischen Kammer und lösen Sie den Abfallschlauch vom Pumpenkopf. Wenn die Kammer leer ist, schließen Sie den Schlauch wieder an, setzen Sie den Abfallschlauch wieder in den Pumpenkopf ein und spülen Sie mit einer Förder- und Pumprate von Stufe 1 von 60 Millilitern pro Minute 15 bis 20 Minuten lang deionisiertes Wasser vom Ende des Zulaufschlauchs. Pumpen Sie am Ende der Wasserspülung 15 bis 20 Minuten lang 70 % Isopropylalkohol durch den Schlauch und die Kammer, gefolgt von einer weiteren 15- bis 20-minütigen Spülung mit deionisiertem Wasser.
In dieser repräsentativen Analyse blieben die Trübungsmessungen der Speisetrübungssonde beim Eintritt der geernteten Zellflüssigkeit in die Schallwellenabscheiderkammer konstant, etwa 1000 bis 1100 NTU. Und die Messungen der Trübungssonde von Sonde 1 blieben bei etwa 40 bis 50 NTU. Das Halten der geernteten Zellflüssigkeit über längere Zeiträume in der Kammer führt zu einem Temperaturanstieg, wie in diesem Beispiel eines Temperaturunterschieds von mehr als sechs Grad Celsius der geernteten Zellflüssigkeit vor dem Eintritt in die akustophoretische Kammer und nach der akustischen Trennung.
Ein weiterer wichtiger Aspekt bei der Durchführung von Ernten mit hoher Zelldichte ist die Sättigung der Trübungssonden, da die Trübungsmessungen für die Trübungssonde über 4600 NTU gesättigt werden, was wahrscheinlich zu einer Unterschätzung bei der Berechnung der Zellentfernungseffizienz führt. Darüber hinaus sinkt die Effizienz der Zellentfernung signifikant von etwa 100 % auf 57 %, da die Förderpumpenrate erhöht wird, wobei eine langsamere Förderpumpenrate in der Regel direkt mit einer besseren Zellklärung korreliert. Da sich die Hersteller von biotechnologischen Produkten in Richtung kontinuierlicher Fertigung bewegen, kann der Einsatz der Schallwellentechnologie zusätzliche Anwendungen für die kontinuierliche Bioprozessierung und den Betrieb von Profusion-Bioreaktoren bieten.
Dieses Protokoll beschreibt die Anwendung eines akustischen Wellenseparators zur primären Klärung von CHO-Zellkulturen. Es verdeutlicht die Vorteile dieser Methode im Vergleich zu herkömmlichen Techniken, einschließlich ihres Potenzials für kontinuierliche Bioprozessierung.
Die primäre Klärung stellt eine kritische Engstelle in der Bioproduktion dar, bei der herkömmliche Methoden wie Zentrifugation und Filtration Kontaminationsrisiken mit sich bringen, große Platzanforderungen haben und die kontinuierliche Verarbeitung behindern. Die akustische Wellentrennung bietet eine kompakte, kontaminationsarme Alternative, die einen kontinuierlichen Durchfluss geklärter Flüssigkeit ermöglicht und somit die Integration in kontinuierliche biotechnologische Verfahren unterstützt. Dieser Ansatz erhöht die Vorhersagbarkeit in frühen Reinigungsschritten, indem er eine reproduzierbare Zellentfernung gewährleistet und gleichzeitig die betriebliche Komplexität sowie das Risiko der Filterverunreinigung verringert.
Die akustische Wellentrennung ist in die frühe Reinigungsstufe integriert, die nach der Ernte und vor der Tiefenfiltration oder Chromatographie erfolgt, und ermöglicht eine nahtlose Einbindung in kontinuierliche Produktionslinien.