Name: Partielle Hepatektomie bei erwachsenen Zebrafischen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 6 s
Description: Lernen Sie die partielle Hepatektomie bei erwachsenen Zebrafischen zur Untersuchung der Leberregeneration. Diese Methode ermöglicht präzise Studien zu molekularen und zellulären Mechanismen mit klinischer Relevanz für menschliche Lebererkrankungen.

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I.M.O. wird von der NIAAA (F32AA027135) unterstützt. W.G. wird von R01DK090311, R01DK105198, R24OD017870 und dem Claudia Adams Barr Program for Excellence in Cancer Research unterstützt. W.G. ist Pew Scholar in Biomedical Sciences.

Zebrafische wurden nach Standardverfahren gezüchtet und gezüchtet. Die Experimente wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee des Brigham and Women's Hospital genehmigt (2016N000405). Erwachsene Zebrafische wurden vor Beginn des Protokolls 24 Stunden lang gefastet. Systemwasser bezieht sich auf das Wasser in Zebrafisch-Haltungsbecken in der Wasseranlage.
1. Vorbereitung und Betäubung
<ol><li>Bereiten Sie 0,016% ige Tricainlösung in Systemwasser vor. VORSICHT: Tricain ist ein Reizstoff, wenn es mit den Augen, der Haut oder den Atemwegen in Kontakt kommt.</li>
	<li>Bereiten Sie einen Schwamm vor, um betäubte Zebrafische während des Sezierprotokolls zu halten. Einen vollen Schwamm in Viertel schneiden. Entfernen Sie mit einer Rasierklinge einen dünnen Schwammkeil, der parallel zur langen Achse des Schwammviertels verläuft.<ol>
<li>Der Schlitz sollte lang genug sein, um einen erwachsenen Fisch aufzunehmen (dies variiert zwischen verschiedenen Fischgrößen). Zum Beispiel sollte für einen erwachsenen Fisch mit einer Länge von 35 mm die Länge des Schlitzes 20 mm beträgen. Kopf und Körper werden eng im Schwamm gehalten, der Schwanz verläuft jedoch am Rand des Schwammes vorbei (Abbildung 1B).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Den Schwamm in 0,016% igen Tricainlösung einweichen.</li>
	<li>Erwachsene Zebrafische (entweder männlich oder weiblich) in 625 ml 0,016% Tricainlösung geben.</li>
	<li>Inkubieren Sie für 6 Minuten oder bis der Fisch nicht mehr ansprechbar ist.</li>
	<li>Entfernen Sie den Fisch vorsichtig mit einer Zette aus dem Tricainbecken und legen Sie die Ventralseite des Fisches nach oben in die Rille des Schwamms (Abbildung 1A - B).</li>
	<li>Legen Sie den Schwamm unter ein Seziermikroskop mit Top-Down-Beleuchtung.</li>
</ol>2. Chirurgie
<ol><li>Mit einer feinen Zette die Haut einklemmen und medial skalieren, nur hinter dem Herzen (Abbildung 1B).</li>
	<li>Machen Sie mit einer federbelasteten Schere einen Schnitt unter der Zette, um ein Loch in der Körperhöhle zu erzeugen (Abbildung 1C - D). Achten Sie darauf, das Herz oder ein großes Blutgefäß nicht zu verletzen, da dies zu einer erhöhten Mortalität führt.</li>
	<li>Machen Sie mit einer federbelasteten Schere einen 3-4 mm-Schnitt entlang des Bauches, der nachträglich bearbeitet wird, bis der Schnitt an den Beckenflossen ankommt (Abbildung 1D - E). Zu diesem Zeitpunkt kann der Bauchlappen der Leber durch den Schnitt sichtbar sein.</li>
	<li>Drücken Sie die Seiten des Schwammes mit einer Hand zusammen, um die viszeralen Organe aus der Körperhöhle zu drücken. Der Bauchlappen der Leber ist oben im Darm sichtbar (Abbildungen 1F, 2A-B). Die Leber erscheint als rosa oder orange Struktur, die über den goldbraunen Darm verteilt ist. Tiere, die als Scheinkontrollen bezeichnet werden, werden an dieser Stelle geborgen.</li>
	<li>Drücken Sie die feine Zette so zusammen, dass sich die beiden Zinken berühren. Während Sie den Druck auf den Schwamm halten, schieben Sie die Zinken der feinen Zette zwischen Leber und Darm (Abbildung 1G). Achten Sie darauf, den Darm nicht zu punktieren, da dies zu einer erhöhten Mortalität führt.</li>
	<li>Den Druck auf die Zette langsam lockern, so dass sich die Zinken voneinander entfernen (Abbildung 1H). Diese Gleitwirkung durchtrennt die zahlreichen Pfortaderbefestigungen zwischen Bauchlappen und Darm (Abbildung 2B) und ist notwendig, um den Ventrallappen sauber zu entfernen. Wiederholen Sie diesen Vorgang, bis alle Portalverbindungen zwischen Leber und Darm getrennt wurden.</li>
	<li>Schälen Sie den Bauchlappen mit einer feinen Zette aus dem Darm zurück und schneiden Sie den Bauchlappen frei vom Rest der Leber (Abbildung 1I).</li>
	<li>Dieses Verfahren führt zu einer drittelpartiellen Hepatektomie (Abbildung 1J).</li>
</ol>3. Wiederherstellung
<ol><li>Entfernen Sie den Fisch vorsichtig aus dem Schwamm und legen Sie ihn in einen Tank mit Systemwasser.</li>
	<li>Pipetten Sie das Wasser für einige Minuten über die Kiemen, bis der Fisch von selbst schwimmt (Abbildung 1K).</li>
	<li>Überwachen Sie Fische für 2-4 Stunden, bevor Sie sie wieder auf das System legen. Füttern Sie den Fisch nicht für volle 24 Stunden nach der Operation.</li>
	<li>Überwachen Sie Fische täglich für die Dauer des Experiments.</li>
	<li>Mit der Zeit heilt der Schnitt in der Körperwand auf natürliche Weise, ohne dass Nähte erforderlich sind (Abbildung 1L, 2C).</li>
</ol>4. Analyse der Bauchlappenlänge im Darm
<ol><li>Euthanasieren Sie alle Tiere, die für die Analyse bestimmt sind, für 10 Minuten in Eiswasser, bis alle operkulären Bewegungen aufhören.</li>
	<li>Entfernen Sie den Fisch aus dem Eiswasser und legen Sie ihn mit der ventralen Seite nach oben in die Rille eines Schwammes.</li>
	<li>Machen Sie mit einer federbelasteten Schere einen Schnitt in die ventrale Körperwand an der vorderen-hinteren Position des Herzens. Machen Sie dann zwei weitere Schnitte, die entlang der vorderen hinteren Achse vom ersten Schnitt bis zu den Beckenflossen verlaufen. (Abbildung 2A).</li>
	<li>Schälen Sie die Haut und den Muskel zurück, um die viszeralen Organe freizulegen (Abbildung 2A).</li>
	<li>Erfassen Sie Hellfeld- und Fluoreszenzbilder der viszeralen Organe mit einem Epifluoreszenzmikroskop. Dieses Sichtfeld umfasst den Bereich, in dem der Bauchlappen reseziert wurde. Da Tiere vor der Analyse eingeschläfert werden, schließt diese Art der Analyse eine langfristige Bildgebung desselben Fisches aus.</li>
</ol>5. Analyse des Leber-Körpergewichts-Verhältnisses
<ol><li>Euthanasieren Sie alle Tiere, die für die Analyse bestimmt sind, für 10 Minuten in Eiswasser, bis alle operkulären Bewegungen aufhören.</li>
	<li>Fisch in ein 50 ml konisches Rohr geben.</li>
	<li>25 ml 4% Paraformaldehyd in 1x PBS und 0,3% Tween in das Röhrchen geben. ACHTUNG: Formaldehyd ist giftig, und formaldehydhaltige Lösungen sollten immer in einer chemischen Haube verarbeitet werden.</li>
	<li>48 h bei 4 °C nutatetieren.</li>
	<li>Führen Sie vier 10-minütige Wäschen in 1x PBS und 0,3% Tween durch.</li>
	<li>Holen Sie Fische mit einer Zette und trocknen Sie sie auf einem Papiertuch ab.</li>
	<li>Notieren Sie das Gewicht des gesamten Fisches.</li>
	<li>Machen Sie mit einer federbelasteten Schere einen Schnitt in die ventrale Körperwand an der vorderen-hinteren Position des Herzens. Machen Sie dann zwei weitere Schnitte, die entlang der vorderen hinteren Achse vom ersten Schnitt bis zu den Beckenflossen verlaufen. (Abbildung 2A).</li>
	<li>Schälen Sie die Haut und den Muskel zurück, um die viszeralen Organe freizulegen (Abbildung 2A).</li>
	<li>Erfassen Sie Hellfeldbilder der Leber mit einem Epifluoreszenzmikroskop.</li>
	<li>Sezieren Sie die Leber und legen Sie die Leberstücke auf ein Wiegeboot.</li>
	<li>Notieren Sie das Gewicht der Leber.</li>
</ol>

<ol><li>Michalopoulos, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+liver+regeneration+and+growth+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Comprehensive+Physiology%22%5BJournal%5D)">Principles of liver regeneration and growth homeostasis.</a> Comprehensive Physiology. 3, 485-513 (2013).</li>
<li>Wang, S., Miller, S. R., Ober, E. A., Sadler, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+it+new+again%3A+insight+into+liver+development%2C+regeneration%2C+and+disease+from+zebrafish+research%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Topics+in+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Making it new again: insight into liver development, regeneration, and disease from zebrafish research.</a> Current Topics in Developmental Biology. 124, (2017).</li>
<li>Michalopoulos, G. K., Bhushan, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+regeneration%3A+biological+and+pathological+mechanisms+and+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Gastroenterology+and+Hepatology%22%5BJournal%5D)">Liver regeneration: biological and pathological mechanisms and implications.</a> Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. , (2020).</li>
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<li>Sadler, K. C., Krahn, K. N., Gaur, N. A., Ukomadu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+growth+in+the+embryo+and+during+liver+regeneration+in+zebrafish+requires+the+cell+cycle+regulator+uhrf1%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Liver growth in the embryo and during liver regeneration in zebrafish requires the cell cycle regulator uhrf1.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 1570-1575 (2007).</li>
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<li>Dovey, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topoisomerase+II+is+required+for+embryonic+development+and+liver+regeneration+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">Topoisomerase II is required for embryonic development and liver regeneration in zebrafish.</a> Molecular and Cellular Biology. 29, 3746-3753 (2009).</li>
<li>Kan, N. G., Junghans, D., Belmonte, J. C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compensatory+growth+mechanisms+regulated+by+BMP+and+FGF+signaling+mediate+liver+regeneration+in+zebrafish+after+partial+hepatectomy%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Compensatory growth mechanisms regulated by BMP and FGF signaling mediate liver regeneration in zebrafish after partial hepatectomy.</a> The FASEB Journal. 23, 3516-3525 (2009).</li>
<li>Zhu, Z., Chen, J., Xiong, J. W., Peng, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haploinsufficiency+of+Def+activates+p53-dependent+TGF%CE%B2+signalling+and+causes+scar+formation+after+partial+hepatectomy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Haploinsufficiency of Def activates p53-dependent TGFβ signalling and causes scar formation after partial hepatectomy.</a> PLoS One. 9, (2014).</li>
<li>Feng, G., Long, Y., Peng, J., Li, Q., Cui, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptomic+characterization+of+the+dorsal+lobes+after+hepatectomy+of+the+ventral+lobe+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genomics%22%5BJournal%5D)">Transcriptomic characterization of the dorsal lobes after hepatectomy of the ventral lobe in zebrafish.</a> BMC Genomics. 16, 979(2015).</li>
<li>Michalopoulos, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+Physiology%22%5BJournal%5D)">Liver regeneration.</a> Journal of Cellular Physiology. 213, 286-300 (2007).</li>
<li>Grisham, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organizational+principles+of+the+liver%5BTitle%5D)+AND+%22The+Liver%3A+Biology+and+Pathobiology%3A+Fifth+Edition%22%5BJournal%5D)">Organizational principles of the liver.</a> The Liver: Biology and Pathobiology: Fifth Edition. , 1-15 (2009).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Die anatomischen Unterschiede zwischen Zebrafisch- und Säugetiermodellen für die Leberregeneration stellen einzigartige Herausforderungen für die Leberresektion dar. Die Leber beim Zebrafisch befindet sich in unmittelbarer Nähe zum Herzen und zum Darm; Die versehentliche Schädigung beider Organe führt zu einer erhöhten Mortalität. Die Zebrafischleber ist nicht eingekapselt, was es schwieriger macht, sich vom Darm zu trennen. Die Leber erhält nährstoffreiches Blut aus dem Darm durch Pfortadern. Bei Säugetieren konvergiere...

Unter den festen Organen beim Menschen ist die Leber das einzige Regenerationsorgan1. Dies ist von entscheidender Bedeutung, da die Leber ein essentielles Organ ist, das für wichtige Stoffwechselfunktionen, Energiespeicherung, Blutentgiftung, Sekretion von Plasmaproteinen und Gallenproduktion verantwortlich ist2. Hepatozyten, die durch toxische oder entzündliche Schäden verloren gehen, werden in erster Linie durch Teilung der verbleibenden Hepatozyten ersetzt1. Ein klassisches experimentelles Modell zur Untersuchung der Leberregeneration ist die partielle Hepatektomie, bei der einzelne Leberlappen entfernt werden, wobei die verbleibenden Lappen intaktbleiben 3. Dieses Verfahren wurde ursprünglich bei Ratten entwickelt, bei denen etwa zwei Drittel der Lebermasse entfernt werden. Nach partieller Hepatektomie bei Säugetieren erfolgt eine kompensatorische Regeneration in den verbleibenden Lappen, bis die Leber ihre Ursprüngliche Masse wiedererlangt hat. Bemerkenswerterweise ersetzt die Säugetierleber nicht die fehlenden Lappen.
Zebrafische (Danio rerio) stellen ein handhabbares Modell zur Untersuchung der Erwachsenenorganregenerationdar 4. Die Zebrafischleber unterscheidet sich zwar strukturell von der Säugetierleber, besteht jedoch aus den gleichen Zelltypen und erfüllt die gleiche Funktion wie bei Säugetieren2. Es besteht aus drei Lappen mit zwei Rückenlappen und einem einzigen Bauchlappen, die entlang des Darms abgeflacht sind. Eine partielle Häpatektomie wurde zuvor bei Zebrafischen durchgeführt, mit widersprüchlichen Berichten über die genaue Art der Regeneration. Typischerweise wird eine ein Drittel partielle Häpatektomie durch Entfernung des gesamten Ventrallappens durchgeführt. Erste Berichte deuteten darauf hin, dass der Ventrallappen nach Entfernung innerhalb einer Woche vollständig regeneriert wurde5,6,7, was darauf hindeutet, dass die Zebrafischleber im Gegensatz zur Säugetierleber zu einer epimorphen Regeneration fähig ist. Nachfolgende Studien zeigten, dass die Entfernung des Bauchlappens zu einer kompensatorischen Regeneration in den Rückenlappen führte, anstatt zur Regeneration des fehlenden Bauchlappens und schließlich zur Wiederherstellung der Lebermasse innerhalb einer Woche8,9. Die transkriptomische Profilierung der Rückenlappen nach der Resektion des Bauchlappens ergab signifikante Veränderungen im Zusammenhang mit der kompensatorischen Regeneration10. Angesichts der Tatsache, dass die Art der Leberregeneration mit dem Ausmaß der Verletzung variieren kann8, spekulierten wir, dass die Diskrepanzen in den Ergebnissen auf technische Unterschiede im partiellen Hepatektomie-Protokoll zwischen forschungsgruppen zurückzuführen sein könnten.
Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren zur Durchführung einer partiellen Hepatektomie bei erwachsenen Zebrafischen durch Entfernen des Bauchlappens. Diese Technik wird für die Beurteilung der Mechanismen der Leberregeneration wertvoll sein.

<table><tbody><tr><td>16 % wässrige Paraformaldehyd-Lösung, EM-Qualität</td><td>Elektronenmikroskopie Sciences</td><td>15700</td><td></td></tr><tr><td>50 mL Falcon-Zentrifugenröhrchen, Polypropylen, steril</td><td>Corning</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>AS 82/220.R2 PLUS Analysenwaage</td><td>Bay State Scale & Systems, INC.</td><td>WL-104-1051</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #55 Pinzetten</td><td>Fine Science Tools</td><td>11295-51</td><td></td></tr><tr><td>EMS Kühne Deckglas/Probenzange</td><td>Elektronenmikroskopie Sciences</td><td>72997-07</td><td></td></tr><tr><td>Epifluoreszenzmikroskop</td><td>Zeiss</td><td>Discovery.V8</td><td></td></tr><tr><td>Mastertop Zellulose Reinigungsschwamm</td><td>Amazon</td><td>B07CBSM53Z</td><td></td></tr><tr><td>PBS10X Flüssigkeit Conc 4L</td><td>EMD Millipore</td><td>6505-4L</td><td></td></tr><tr><td>Superfeine Mikroschere, 3 1/4" gerade</td><td>Biomedizinische Forschungsinstrumente</td><td>11-1020</td><td></td></tr><tr><td>Tricain-Methansulfonat</td><td>Syndel</td><td>TRIC-M-GR-0010</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20, Fisher BioReagents</td><td>Fischer Scientific</td><td>BP337-500</td><td></td></tr></tbody></table>

partielle hepatektomie bei erwachsenen zebrafischen

Partial Hepatectomy in Adult Zebrafish

Leberversagen ist eine der weltweit führenden Todesursachen, und die Sterblichkeit durch chronische Lebererkrankungen steigt in den Vereinigten Staaten stark an. Gesunde Lebern sind in der Lage, sich von toxischen Schäden zu regenerieren, aber bei fortgeschrittenen Lebererkrankungen ist die natürliche Regenerationsfähigkeit der Leber beeinträchtigt. Zebrafische haben sich als leistungsfähiges experimentelles System zur Untersuchung der Regeneration herausgestellt. Sie sind ein ideales Modell für die Untersuchung der Leberregeneration aus der partiellen Hepatektomie, einem Verfahren mit direkter klinischer Relevanz, bei dem ein Teil der Leber operativ entfernt wird, wobei der Rest intakt bleibt. Es gibt kein Standardprotokoll für die partielle Hepatektomie; Frühere Studien, die dieses Modell verwendeten, verwendeten leicht unterschiedliche Protokolle und berichteten über unterschiedliche Ergebnisse. Hier wird ein effizientes, reproduzierbares Protokoll zur Durchführung einer partiellen Hepatektomie bei erwachsenen Zebrafischen beschrieben. Mit dieser Technik zeigen wir, dass Zebrafische in der Lage sind, den resezierten Lappen epimorph zu regenerieren. Dieses Protokoll kann verwendet werden, um die Mechanismen, die für die Leberregeneration bei Zebrafischen erforderlich sind, weiter zu untersuchen.

Um das regenerative Potenzial der erwachsenen Zebrafischleber zu untersuchen, haben wir eine partielle Hepatektomie (PHX) bei erwachsenen Zebrafischen durchgeführt. Im Allgemeinen wurden große Erwachsene (30-40 mm Länge) ausgewählt, die zwischen 1,5 und 2,5 Jahre alt waren. In einzelnen Experimenten wurden Tiere aus demselben Tank ausgewählt und auf Alter und Größe abgestimmt. Als angemessene Kontrolle verwendeten wir Scheinoperationen, bei denen das Tier sowohl betäubt wurde als auch einen großen Schnitt in der ventrale...

Dieses Protokoll beschreibt das Verfahren zur Entfernung des Bauchlappens der Leber bei erwachsenen Zebrafischen, um die Untersuchung der Leberregeneration zu ermöglichen.

Partielle Hepatektomie bei erwachsenen Zebrafischen

Liver failure is one of the leading causes of death worldwide, and mortality from chronic liver disease is rising sharply in the United States. Healthy ...

Dieses Protokoll wird es den Forschern ermöglichen, die verfügbaren chemischen und genetischen Werkzeuge zu nutzen, um die Mechanismen der Leberregeneration bei Zebrafischen zu untersuchen. Die partielle Häpatektomie ermöglicht die präzise Entfernung von Gewebe, um die Leberregeneration zu stimulieren, ohne dass die körperweiten Auswirkungen einer toxischen Leberschädigung erforderlich sind. Nur durch das Verständnis der molekularen und zellulären Mechanismen der Leberregeneration können wir neue Therapien zur Behandlung von Patienten mit fortgeschrittener Lebererkrankung entwickeln.Um zu beginnen, entfernen Sie die Fische aus dem Tricain-Tank mit einer Zette und betten Sie sie mit der ventralen Seite nach oben in die Rille eines mit Tricain getränkten Schwamms ein. Dann legen Sie den Schwamm unter ein Seziermikroskop mit Top-Down-Beleuchtung. Kneifen Sie die Haut und die Schuppen nur nach hinter dem Herzen mit einer feinen Zette und erzeugen Sie ein Loch in der Körperhöhle, indem Sie mit der federbelasteten Schere einen Schnitt unter der Ziffe machen.Drehen Sie den Schwamm und machen Sie einen Drei- bis Vier-Millimeter-Schnitt entlang des Bauches, indem Sie nachträglich in Richtung der Beckenflossen schneiden. Dann drehen Sie den Schwamm zurück. Drücken Sie die Seiten des Schwammes mit einer Hand zusammen, um die viszeralen Organe aus der Körperhöhle zu drücken.Der Bauchlappen der Leber ist oben im Darm vorhanden, und die Leber ist eine rosa oder orange Struktur, die über den goldbraunen Darm verteilt ist und mit CFP-Fluoreszenz deutlich visualisiert werden kann. Drücken Sie die feine Zette so zusammen, dass sich die Zinken berühren und schieben Sie die Zinken zwischen Leber und Darm. Dann trennen Sie langsam die Zinken, um die Pfortaderbefestigungen zwischen Leber und Darm zu brechen.Wiederholen Sie diesen Vorgang, bis alle Portalverbindungen zwischen Leber und Darm durchtrennt sind, und ziehen Sie den Bauchlappen mit einer feinen Zette aus dem Darm. Schneiden Sie den Bauchlappen frei vom Rest der Leber. Die Untersuchung des Tieres mit CFK-Fluoreszenz zeigt, dass der Bauchlappen entfernt wurde.Wenn Sie fertig sind, geben Sie den Fisch vorsichtig vom Schwamm in den Tank mit Systemwasser und strömen Sie das Systemwasser für einige Minuten über die Kiemen, bis sich der Fisch erholt und von selbst schwimmt. Nachdem Sie den Fisch eingeschläfert haben, entfernen Sie ihn aus dem Eiswasser. Legen Sie es in die Rille eines Schwamms mit der ventralen Seite nach oben und machen Sie einen Schnitt der ventralen Körperwand an der vorderen hinteren Position des Herzens.Machen Sie dann zwei weitere Einschnitte von den Rändern des ersten Schnitts, die entlang der vorderen hinteren Achse zu den Beckenflossen verlaufen, und schälen Sie die Haut und den Muskel zurück, um die viszeralen Organe freizulegen. Die viszeralen Organe können nun sowohl mit Hellfeld- als auch mit Fluoreszenzmikroskopie visualisiert werden. Die Lebererholung nach partieller Hepatektomie wurde durch Berechnung des Leber-Körpergewichts-Verhältnisses geschätzt, das bei Männern 1,8% und bei Frauen 3,3% betrug.Das Leber-Körpergewicht-Verhältnis beider Geschlechter wurde am Tag null nach der Operation und am siebten Tag bei partieller Hepatektomie und Scheinkontrollen bestimmt. Am Tag Null nach der Operation haben Scheintiere einen sichtbaren Ventrallappen, aber bei partiellen Hepatektomietieren fehlte der Ventrallappen vollständig, was zu einer 30% igen Verringerung bei Männern und einer 20% igen Verringerung bei Frauen des Lebergewichts führte. Am siebten Tag nach der Operation wurde bei partiellen Hepatektomietieren der Ventrallappen nicht regeneriert, und das Verhältnis von Leber zu Körpergewicht bei partieller Hepatektomie und Scheinkontrollen war vergleichbar, was auf eine wiedergewonnene Lebermasse nach partieller Hepatektomie hindeutet.Der Einfluss der Zeit auf die Regeneration des Ventrallappens wurde durch eine vollständige 1/3 partielle Hepatektomie und die Messung des Ventrallappens zum Darmlängenverhältnis bestimmt. Der Ventrallappen nahm bei Scheinkontrollen 50 bis 100% der Darmlänge ein, war aber bei 1/3 partiellen Hepatektomietieren stark reduziert. Partielle Hepatektomie-Tiere am 36. Tag nach der Operation hatten ein erhöhtes Verhältnis von Ventrallappen zu Darm im Vergleich zum ersten Tag nach der Operation.Eine statistisch signifikante vermehrte Größe des Ventrallappens wurde bei Tieren beobachtet, die sich am 36. Tag nach der Operation von einer partiellen Hepatektomie erholten, verglichen mit dem ersten Tag, jedoch nicht bei Scheinkontrollen. Einige Tiere regenerierten den Bauchlappen, andere jedoch nicht, was auf eine Variation der Operationsreaktion hindeutet. Der kritischste Teil dieses Protokolls besteht darin, Leber und Darm sauber zu trennen, damit der Bauchlappen vollständig entfernt werden kann.Eine partielle Häpatektomie bei Zebrafischen kann in mutierten oder transgenen Linien durchgeführt werden, um die genetischen Anforderungen für die Leberregeneration zu bestimmen.

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Forschung

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Biologie

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