Name: Schichtmikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern zur biaxialen mechanischen Charakterisierung und mikrostrukturellen Quantifizierung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 34 s
Description: Erfahren Sie die Schichtmikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern für biaxiale mechanische Charakterisierung und Kollagenquantifizierung. Diese Methode isoliert Gewebeschichtbeiträge für kardiovaskuläre Forschung.

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Diese Arbeit wurde durch den American Heart Association Scientist Development Grant (16SDG27760143) und die Presbyterian Health Foundation unterstützt. KMC wurde zum Teil vom Undergraduate Research Opportunity Program der University of Oklahoma (OU) und dem Honors Research Apprenticeship Program unterstützt. DWL wurde zum Teil durch das National Science Foundation Graduate Research Fellowship (GRF 2019254233) und das American Heart Association/Children's Heart Foundation Predoctoral Fellowship (Award #821298) unterstützt. All diese Unterstützung wird dankbar anerkannt.

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Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Zu den kritischen Schritten für das Protokoll gehören: (i) die Schichtmikrodissektion, (ii) die Gewebemontage, (iii) die treuhänderische Markerplatzierung und (iv) der pSFDI-Aufbau. Eine geeignete Schichtmikrodissektion ist der wichtigste und schwierigste Aspekt des hierin beschriebenen Verfahrens. Bevor eine Untersuchung mit dieser Technik eingeleitet wird, sollten die Dissektoren langfristige Praxis mit der Mikrodissektionstechnik und allen drei TV-Broschüren haben. Der Dissektor sollte sicherstellen, dass die Verbunds...

Der Fernseher befindet sich zwischen dem rechten Vorhof und dem rechten Ventrikel des Herzens. Während des gesamten Herzzyklus reguliert der Fernseher den unidirektionalen Blutfluss durch zyklisches Öffnen und Schließen des TV Anterior Leaflet (TVAL), des TV posterior Leaflet (TVPL) und des TV septal leaflet (TVSL). Diese Blättchen sind komplex und haben vier verschiedene anatomische Schichten - die Atrialis (A), die Spongiosa (S), die Fibrosa (F) und die Ventricularis (V) - mit einzigartigen mikrostrukturellen Bestandteilen. Die Elastinfasern in der Atrialis und im Ventrikelbereich tragen dazu bei, das Gewebe nach mechanischer Belastung wieder in seine unverformte Geometrie zu versetzen1. Im Gegensatz dazu enthält die Fibrose ein dichtes Netzwerk von wellenförmigen Kollagenfasern, die zur Tragfähigkeit der Blättchenbeitragen 2. Die Spongiosa, die hauptsächlich aus Glykosaminoglykanen besteht, wurde hypothetisch angenommen, dass sie während der Herzklappenfunktion3 das Scheren zwischen den Blattschichten ermöglicht. Während alle drei Blatttypen die gleichen anatomischen Schichten haben, gibt es Variationen in den Dicken der Schichten und den Verhältnissen der Bestandteile, die Auswirkungen auf das spezifische mechanische Verhalten von Flugblättern haben.
Forscher haben die Eigenschaften der TV-Flugblätter mit planaren mechanischen Charakterisierungen, histomorphologischen Bewertungen und optischen Charakterisierungen der Kollagenfaserarchitektur untersucht. Zum Beispiel versuchen planare biaxiale mechanische Charakterisierungen, die physiologische Belastung nachzuahmen, indem sie senkrechte Verschiebungen auf das Gewebe anwenden und die damit verbundenen Kräfte aufzeichnen. Die daraus resultierenden Kraftverschiebungs- (oder Spannungsdehnungs-) Beobachtungen haben gezeigt, dass alle drei TV-Flugblätter nichtlineares, richtungsspezifisches mechanisches Verhalten mit offensichtlicheren blattspezifischen Reaktionen in der radialen Geweberichtung 4,5,6 aufweisen. Es wird angenommen, dass diese blattspezifischen Verhaltensweisen auf Unterschiede in den mikrostrukturellen Eigenschaften zurückzuführen sind, die mit histologischen Standardtechniken beobachtet wurden 6,7. Darüber hinaus zielen die Bildgebung der zweiten harmonischen Generation 6, die Kleinwinkellichtstreuung8 und die polarisierte räumliche Frequenzbereichsabbildung 7 (pSFDI) darauf ab, diese mikrostrukturellen Eigenschaften zu verstehen und haben blattspezifische Unterschiede in der Kollagenfaserorientierung undder Fasercrimp gezeigt, die Auswirkungen auf das beobachtete mechanische Verhalten auf Gewebeebene haben. Diese Studien haben unser Verständnis der Gewebemikrostruktur und ihrer Rolle im Verhalten auf Gewebeebene erheblich verbessert. Bei der experimentellen Verbindung der Gewebemechanik und der zugrunde liegenden Mikrostruktur bleibt jedoch noch viel zu tun.
Vor kurzem führte dieses Labor mechanische Charakterisierungen der TV-Flugblattschichten durch, die in zwei Verbundschichten (A / S und F / V) unter Verwendung einer Mikrodissektionstechnikgetrennt waren 9. Diese früheren Arbeiten hoben Unterschiede in den mechanischen Eigenschaften der Schichten hervor und halfen, einen Einblick zu geben, wie die geschichtete Mikrostruktur zum mechanischen Verhalten des Gewebes beiträgt. Obwohl diese Untersuchung unser Verständnis der Mikrostruktur des TV-Flugblatts verbesserte, hatte die Technik mehrere Einschränkungen. Erstens wurden die Eigenschaften der Kompositschichten nicht direkt mit dem intakten Gewebe verglichen, was zu einem Mangel an vollständigem Verständnis der Mechanik-Mikrostruktur-Beziehung führte. Zweitens wurde die Kollagenfaserarchitektur der Verbundschichten nicht untersucht. Drittens wurden nur die Schichten des TVAL untersucht, da Schwierigkeiten beim Sammeln der zusammengesetzten Schichten aus den beiden anderen TV-Flugblättern bestanden. Die hierin beschriebene Methode bietet einen ganzheitlichen Charakterisierungsrahmen, der diese Einschränkungen überwindet und vollständige Charakterisierungen der TV-Broschüren und ihrer zusammengesetzten Schichten liefert.
Dieses Papier beschreibt die Mikrodissektionstechnik, die die drei TV-Flugblätter in ihre zusammengesetzten Schichten (A / S und F / V) für biaxiale mechanische und mikrostrukturelle Charakterisierungen 10,11,12 trennt. Dieses iterative Protokoll umfasst (i) biaxiale mechanische Tests und pSFDI-Charakterisierung der intakten Broschüre, (ii) eine neuartige und reproduzierbare Mikrodissektionstechnik zur zuverlässigen Gewinnung der zusammengesetzten TV-Schichten und (iii) biaxiale mechanische Tests und pSFDI-Charakterisierung der zusammengesetzten TV-Schichten. Das Gewebe wurde einer biaxialen Zugbelastung mit verschiedenen Kraftverhältnissen für mechanische Tests ausgesetzt. Dann wurde pSFDI verwendet, um die Kollagenfaserorientierung und -ausrichtung bei verschiedenen belasteten Konfigurationen zu bestimmen. pSFDI bewahrt die native Kollagenfaserarchitektur, ermöglicht eine lastabhängige Analyse und umgeht die typische Notwendigkeit, Gewebe für die Kollagenfaserarchitekturanalyse zu fixieren oder zu löschen, z. B. bei der Bildgebung der zweiten harmonischen Generation oder der Kleinwinkel-Lichtstreuung. Schließlich wurden die Gewebe mit Hilfe von Standard-Histologie-Techniken vorbereitet, um die Gewebemikrostruktur zu visualisieren. Dieser iterative und ganzheitliche Rahmen ermöglicht den direkten Vergleich der mechanischen und mikrostrukturellen Eigenschaften der TV-Broschüre mit ihren zusammengesetzten Schichten.

<table><tbody><tr><td>10% Formalinlösung, neutral gepuffert</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128-4L</td><td></td></tr><tr><td>Alconox Reinigungsmittel</td><td>Alconox</td><td></td><td>Reinigungsmasse</td></tr><tr><td>BioTester - Biaxial Tester</td><td>CellScale Biomaterials Testing</td><td></td><td>1,5 N Wägezelle Kapazität</td></tr><tr><td>Schneidematte</td><td>Dahle</td><td>B0027RS8DU</td><td></td></tr><tr><td>deionisiertes Wasser</td><td>N/A</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Werkzeug mit feiner Spitze</td><td>HTI INSTRUMENTS</td><td>NSPLS-12</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette - Gebogene</td><td>wissenschaftliche Laborartikel</td><td>16122</td><td></td></tr><tr><td>Pinzetten - Dicke</td><td>wissenschaftliche Laborartikel</td><td>161001078</td><td></td></tr><tr><td>Pinzetten - dünne</td><td>wissenschaftliche Laborartikel</td><td>16127</td><td></td></tr><tr><td>LabJoy</td><td>CellScale Biomaterialien Test</td><td>Version 10.66</td><td></td></tr><tr><td>Laserverschiebung Sensor</td><td>Keyence</td><td>IL-030</td><td></td></tr><tr><td>Flüssiges Cyanacrylat-Kleber</td><td>Loctite</td><td>2436365</td><td></td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>MathWorks</td><td>Version 2020a</td><td></td></tr><tr><td>Mikroschere</td><td>HTI Instruments</td><td>CAS55C</td><td></td></tr><tr><td>Pipette</td><td>Belmaks</td><td>360758081051Y4</td><td></td></tr><tr><td>Polarisiertes Bildgebungsgerät im Ortsfrequenzbereich</td><td>N/A</td><td></td><td>Hergestellt im eigenen Haus mit einem digitalen Lichtprojektor, einem linearen Polarisator, einer rotierenden Polarisatorhalterung und einer Kamera mit ladungsgekoppeltem Gerät. Weitere Informationen finden Sie in doi.org/10.1016/j.actbio.2019.11.028 (PMCID: PMC8101699).</td></tr><tr><td>Skalpell</td><td>THINKPRICE</td><td>TP-SCALPEL-3010</td><td></td></tr><tr><td>Einschneidige Industrie-Rasierklingen (Chirurgischer Kohlenstoffstahl)</td><td>VWR International</td><td>H3515541105024</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgischer Stift</td><td>LabAider</td><td>LAB-Skin-6</td><td></td></tr><tr><td>T-Pins</td><td>Business Source</td><td>BSN32351</td><td></td></tr><tr><td>Wax Board</td><td>N/A</td><td></td><td>Im eigenen Haus unter Verwendung von Modellierwachs und Backblech hergestellt</td></tr><tr><td>Wiegen Boot</td><td>Pure Ponta</td><td>mdo-azoc-1030</td><td></td></tr></tbody></table>

schichtmikrodissektion von trikuspidalklappenblättern zur biaxialen mechanischen charakterisierung und mikrostrukturellen quantifizierung

Layer Microdissection of Tricuspid Valve Leaflets for Biaxial Mechanical Characterization and Microstructural Quantification

Die Trikuspidalklappe (TV) reguliert den unidirektionalen Fluss von sauerstofffreiem Blut vom rechten Vorhof zum rechten Ventrikel. Der Fernseher besteht aus drei Flugblättern mit jeweils einzigartigem mechanischem Verhalten. Diese Variationen zwischen den drei TV-Flugblättern können besser verstanden werden, indem ihre vier anatomischen Schichten untersucht werden, nämlich die Atrialis (Atrialis (A), Spongiosa (S), Fibrosa (F) und Ventricularis (V). Während diese Schichten in allen drei TV-Flugblättern vorhanden sind, gibt es Unterschiede in ihren Dicken und mikrostrukturellen Bestandteilen, die ihr jeweiliges mechanisches Verhalten weiter beeinflussen. 
Dieses Protokoll umfasst vier Schritte zur Erläuterung der schichtspezifischen Unterschiede: (i) Charakterisierung des mechanischen und kollagenfaserarchitektonischen Verhaltens des intakten TV-Merkblatts, (ii) Trennung der zusammengesetzten Schichten (A / S und F / V) des TV-Broschüres, (iii) Durchführung der gleichen Charakterisierungen für die zusammengesetzten Schichten und (iv) Durchführung von Post-hoc-Schichten histologische Beurteilung. Dieses experimentelle Framework ermöglicht auf einzigartige Weise den direkten Vergleich des intakten TV-Gewebes mit jeder seiner zusammengesetzten Schichten. Dadurch können mit diesem Protokoll detaillierte Informationen über die Mikrostruktur und biomechanische Funktion der TV-Prospekte gesammelt werden. Solche Informationen können möglicherweise verwendet werden, um TV-Computermodelle zu entwickeln, die Leitlinien für die klinische Behandlung von TV-Erkrankungen liefern sollen.

Die Mikrodissektion ergibt A/S- und F/V-Proben mit relativ gleichmäßigen Dicken, die an einem (kommerziellen) biaxialen Prüfgerät montiert werden können. Eine histologische Analyse des intakten Blättchens und der beiden sezierten Schichten wird überprüfen, ob das Gewebe entlang der Grenze zwischen Sppongiosa und Fibrosa korrekt getrennt wurde (Abbildung 7). Zusätzlich können die histologischen Mikroaufnahmen verwendet werden, um die Dicken der Gewebeschichten und die Massenanteile mit der Im...

Dieses Protokoll beschreibt die biaxiale mechanische Charakterisierung, die polarisierte Lokalfrequenzbereichs-Imaging-basierte Kollagenquantifizierung und die Mikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern. Die bereitgestellte Methode erläutert, wie die Prospektschichten zum ganzheitlichen Verhalten der Broschüre beitragen.

Schichtmikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern zur biaxialen mechanischen Charakterisierung und mikrostrukturellen Quantifizierung

The tricuspid valve (TV) regulates the unidirectional flow of unoxygenated blood from the right atrium to the right ventricle. The TV consists of three ...

Diese Methode kann die Beiträge von Gewebeschichten zum gesamten Gewebeverhalten isolieren und neue Einblicke in die Gewebemikrostruktur liefern. Unser Mikrodissektions- und Testrahmen ermöglicht es uns, die mechanischen und mikrostrukturellen Eigenschaften von Herzklappenblättern direkt mit ihren eigenen Verbundschichten zu vergleichen. Die Mikrodissektion kann schwierig zu meistern sein, daher wird dringend empfohlen, so viel wie möglich zu üben, bevor Sie mit der Studie beginnen.Sammeln Sie zuerst die erforderlichen Materialien, Wachsbrett, DI-Wasser, Pipette, Skalpell, Mikroschere, dünne Pinzette, gebogene Pinzette, dicke Pinzette und Stifte. Demontieren Sie das Gewebe vom biaxialen Tester und messen Sie seine Dicke mit dem Laser-Wegsensor. Legen Sie das Gewebe auf das Wachsbrett.Untersuchen Sie die ventrikuläre Seite des Gewebes auf große Chorda-Insertionen. Machen Sie ein Foto als Referenz. Verteilen Sie das Gewebe flach auf dem Wachsbrett mit dem Vorhof nach oben.Um das Gewebe an der Platte zu befestigen, platzieren Sie in jeder Ecke einen vom Gewebe abgewinkelten Stift, so dass er das Gewebe leicht strafft. Stellen Sie sicher, dass sich die Stifte bei der Montage des Gewebes außerhalb der von den Zinken erzeugten Löcher befinden und das Gewebe quadratisch ist und sich während der Schichtmikrodissektion nicht verschiebt. Platzieren Sie bei Bedarf während der Dissektion Stifte entlang der Seite des Gewebes, um das Gewebe mehr zu dehnen.Entfernen Sie die Glasperlenmarkierungen. Legen Sie DI-Wasser mit einer Pipette auf die Oberfläche des Gewebes, so dass es das Gewebe vollständig blasenartig bedeckt. Um die erste Ecke zu machen, wählen Sie eine Ecke des gepinnten Exemplars aus und vermeiden Sie große Chorda-Einfügungen in zerbrechlichen Bereichen.Schneiden Sie dann die A / S-Schicht ab, indem Sie das Skalpell für mechanische Tests leicht über die Gewebeoberfläche entlang der Montagelöcher ziehen. Die Kanten des Schnitts beginnen sich auseinander zu ziehen und enthüllen die darunter liegende F / V-Schicht. Mit stumpfen, dünnen Pinzetten fest entlang des Schnitts reiben, um seine Kanten weiter zu trennen.Wenn sich der Schnitt in der A/S-Schicht nicht auseinander zieht, ziehen Sie mit einem Skalpell noch einmal leicht über den gleichen Schnitt. Machen Sie einen zweiten Schnitt senkrecht zum ersten Schnitt. Wenn die beiden Schnitte nicht miteinander verbunden sind, führen Sie die dünne Pinzette unter den kleinen Gewebebereich, der die beiden Schnitte trennt.Verwenden Sie dann vorsichtig die Schere, um das Gewebe zu schneiden. Reiben Sie die Schnitte der Ecke mit einer dünnen Pinzette entlang, bis sich das Gewebe von der F / V-Schicht trennt. Sobald ein kleines Stück Gewebe getrennt ist, greifen Sie es mit der großen Pinzette und ziehen Sie es vorsichtig an, um die Verbundschichten weiter zu trennen.Schälen Sie das Gewebe weiter, während Sie es mit einer größeren Pinzette greifen, um ein unerwünschtes Reißen und Reißen der A / S-Verbundschicht zu verhindern, und reiben Sie die Naht, bis sie das Ende der beiden Schnitte für die Ecke erreicht. Wenn die erste Ecke größere Probleme mit der Trennung hat, versuchen Sie es mit einer anderen Ecke als Ausgangspunkt. Um dann eine zweite Ecke zu machen, verlängern Sie die beiden Schnitte für die erste Ecke, indem Sie die Skalpellspitze an der Unterseite jedes Schnitts platzieren und leicht entlang der Gewebeoberfläche ziehen, so dass die Schnittverlängerungen mit den ursprünglichen Schnitten verbunden sind und weiterhin den Zinken- oder Nahtlöchern folgen.Verlängern Sie die Schnitte weiter und schälen Sie die obere A/S-Verbundschicht zurück, während Sie die Naht reiben, bis eine Seite fertig ist. Beachten Sie, dass das Gewebe entlang eines Schnitts vollständig getrennt wird. Als nächstes erstellen Sie eine zweite Ecke senkrecht zum Ende der vollständig geschälten Seite.Verlängern Sie die verbleibenden Schnitte, während Sie große Chorda-Einfügungen vermeiden. Schließen Sie die Chorda-Insertionen nur dann aus dem A/S-Trennbereich aus, wenn dieser Ausschluss eine A/S-Probe zulässt, die groß genug für experimentelle Charakterisierungen ist. Setzen Sie die Trennung der A/S- und F/V-Schichten fort, indem Sie die für die erste Ecke verwendeten Reib- und Zugtechniken anwenden.Hören Sie sofort auf, das Gewebe zu trennen, wenn sich ein Riss oder ein Loch bildet. Um zu verhindern, dass sich eine Pinzette verfängt, legen Sie die Schere in ein sich bildendes Loch und schneiden Sie das Gewebe von der Mitte weg. Wenn sich der Defekt entlang der Trennnaht bildet, beginnen Sie, das Gewebe entlang einer anderen Kante zu trennen.Suchen Sie nach Verbindungen zwischen den Schichten, die bei der Trennung des Gewebes auftreten können, und verhindern Sie eine weitere Gewebetrennung. Beachten Sie, dass es sich um dünne, aber starke Stränge handelt, die sorgfältig mit einer Schere geschnitten werden müssen. Vermeiden Sie es, eine Bohrung in der A/S-Schicht zu erzeugen oder nach unten in die F/V-Schicht zu schneiden.Setzen Sie diesen Vorgang fort, bis die größtmögliche Probe der A/S-Schicht getrennt wurde. Markieren Sie die Ausrichtung der Probe mit dem OP-Pen. Zum Schluss mit der Schere entlang der Trennnaht für den restlichen Geweberand schneiden.Legen Sie die abgetrennte A/S-Verbundschicht flach auf die Schneidmatte. Verwenden Sie bei Bedarf das Skalpell, um die Kanten des Gewebes zu begradigen und eine quadratische Gewebeform zu schaffen, die für biaxiale mechanische Tests geeignet ist. Legen Sie die A / S-Schicht in DI-Wasser, bis sie zum Testen bereit ist.Markieren Sie die Ausrichtung der F/V-Schicht, die auf der Wachsplatte verbleibt. Schneiden Sie das größtmögliche Quadrat aus dem Bereich aus, in dem die A/S-Schicht entfernt wurde. Legen Sie es dann in DI-Wasser.Eine histologische Analyse des intakten Blättchens und der beiden sezierten Schichten bestätigte, ob das Gewebe entlang der Grenze zwischen Spongiosa und Fibrosa korrekt getrennt war. Die histologischen Mikroaufnahmen wurden verwendet, um die Dicke der Gewebeschicht und die Bestandteile der Masse mit der ImageJ-Software zu bestimmen. Die verdrängungskontrollierte mechanische Prüfung und Nachbearbeitung ergab Membranspannungs- versus Dehnungsdaten der vorderen Trikuspidalklappen-Broschüre, der Trikuspidalklappen-hinteren Packungsbeilage und der Trikuspidalklappen-Septum-Broschüre, die das nichtlineare mechanische Verhalten des Gewebes beschreiben.Die polarisierten Bildgebungsdaten des räumlichen Frequenzbereichs lieferten Farbkarten der Kollagenfaserorientierung und des Grades der optischen Anisotropie. Insbesondere lieferten diese Farbkarten ein umfassendes Verständnis der Kollagenfaserarchitektur über die gesamte Gewebeprobe hinweg. Es ist wichtig zu beachten, dass die zusammengesetzte Schicht schrumpft, sobald sie vom gepinnten Gewebe getrennt wird.Sammeln Sie die größtmögliche Probe, um sicherzustellen, dass genügend Gewebe für die anschließenden Tests vorhanden ist.

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Forschung

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Bioengineering

Biotechnik

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Dieses Protokoll bietet eine detaillierte Beschreibung des echokardiographischen Ansatzes für eine umfassende Phänotypisierung der Herz- und Herzklappenfunktion bei Mäusen.

Echokardiographische Ansätze und Protokolle für die umfassende phänotypischen Charakterisierung von Herzklappenerkrankungen bei Mäusen

Dieses Protokoll beinhaltet Charakterisierungen von ventrikulären Klappensegel mit Kraft gesteuert, Hubraum-kontrollierte, und Stress-Entspannung biaxialen mechanische Prüfverfahren. Ergebnisse mit diesem Protokoll erworben können für konstitutive Modellentwicklung verwendet werden, um das mechanische Verhalten von funktionierenden Ventilen in einem finite-Elemente-Simulation-Rahmen zu simulieren.

Biaxiale mechanische Charakterisierung von ventrikulären Herzklappen

Hier beschreiben wir einen korrelativen Workflow für die Exzision, Druckbeaufschlagung, Fixierung und Bildgebung der murinen Pulmonalklappe, um die grobe Konformation und lokale extrazelluläre Matrixstrukturen zu bestimmen.

Chirurgie und Probenverarbeitung zur korrelativen Bildgebung der murinen Pulmonalklappe

Dieses Protokoll präsentiert eine Sammlung von Sarkomer-, Kalzium- und makroskopischen geometrischen Daten aus einer aktiv kontrahierenden Herztrabekula ex vivo. Diese simultanen Messungen werden durch die Integration von drei Bildgebungsmodalitäten ermöglicht.

Simultane Hellfeld-, Fluoreszenz- und optische Kohärenztomographische Bildgebung kontrahierender Herztrabekel Ex Vivo

Eine schnelle myokardiale und kardiale Entspannung ist für die normale Physiologie unerlässlich. Mechanische Relaxationsmechanismen sind heute bekannt, dass sie von der Dehnrate abhängig sind. Dieses Protokoll bietet einen Überblick über die Erfassung und Analyse von Experimenten, um die mechanische Kontrolle der Relaxation weiter zu untersuchen.

Mechanische Kontrolle der Entspannung mit intakten Herztrabekeln

Dieses Protokoll demonstriert die mikroskopiegesteuerte Isolierung und Immunfluoreszenzfärbung von murinen Pulmonalvenen. Wir bereiten Gewebeproben vor, die den linken Vorhof, die Lungenvenen und die entsprechende Lunge enthalten, und färben sie für kardiales Troponin T und Connexin 43.

Mikrodissektion und Immunfluoreszenzfärbung von Myokardhülsen in murinen Pulmonalvenen

Die Methodik zur Herstellung von synthetischen Stimmlippen Modelle beschrieben. Die Modelle sind lebensgroße und imitieren die mehrschichtige Struktur des menschlichen Stimmlippen. Die Ergebnisse zeigen die Modelle bei einem Druck vergleichbar mit Lungenhochdruck selbst schwingen und zeigen, flussinduzierte Schwingungsreaktionen, die ähnlich denen der menschlichen Stimmlippen sind.

Synthetische Multi-Layer-, Selbst-Oszillierende Stimmlippen Modell Fabrication

Erfahren Sie die Schichtmikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern für biaxiale mechanische Charakterisierung und Kollagenquantifizierung. Diese Methode isoliert Gewebeschichtbeiträge für kardiovaskuläre Forschung.

Schichtmikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern zur biaxialen mechanischen Charakterisierung und mikrostrukturellen Quantifizierung (Video) | JoVE Journal

Schichtmikrodissektion von Trikuspidalklappenblättern zur biaxialen mechanischen Charakterisierung und mikrostrukturellen Quantifizierung

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