Name: Duodeno-ilealer Bypass mit Sleeve-Gastrektomie-Modell bei Mäusen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-02-10T14:05:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Erfahren Sie das Duodeno-ileale Bypass-Verfahren mit Sleeve-Gastrektomie bei Mäusen zur Untersuchung metabolischer Mechanismen. Dieses Modell ermöglicht kontrollierte Studien zu bariatrischen Operationen mit verbesserten Überlebensraten.

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Wir danken Ethicon (Johnson and Johnson surgical technologies) für die freundliche Bereitstellung des Nahtstrangs und der chirurgischen Clips. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse des NExT Talent Project, Université de Nantes, CHU de Nantes unterstützt.

Dieses Protokoll wurde von der lokalen französischen Ethikkommission für Tierversuche (Comité d'éthique en expérimentation animale; Aktenzeichen CEEA-PdL Nr. 06) genehmigt.
1. Präoperative Vorbereitung
<ol><li>Fügen Sie der normalen Diät 3 Tage vor der Operation Gel-Diätnahrung hinzu. Fasten Sie die Mäuse 6 Stunden vor der Operation.</li>
	<li>Die Anästhesie wird mit 5 % Isofluran (1 l/min) in einer speziellen Kammer mit Sauerstoff (1 l/min) eingeleitet. Injizieren Sie den Mäusen subkutan Buprenorphin (0,1 mg/kg), Amoxicillin (15 mg/kg), Metoclopramid (1 mg/kg), Meloxicam (1 mg/kg) und Eisen (0,5 mg/kg).</li>
	<li>Rasieren Sie die ersten 2/3 Teile des Bauches der Maus, beginnend mit dem Xipoidfortsatz, mit einem elektrischen Rasierer. Desinfizieren Sie den Bauch der Maus in zwei Schritten mit einer Jod-Polyvidon-Lösung.</li>
	<li>Legen Sie die Maus in Rückenlage auf ein spezielles Wärmekissen, das mit einer sauberen Unterlage bedeckt ist. Halten Sie die Anästhesie mit einem Nasenkonus mit 2%-2,5% Isofluran (0,4 l/min) mit Sauerstoff (0,4 l/min) aufrecht. Verwenden Sie einen Zehenquetschtest, um die Tiefe der Anästhesie zu bestätigen.</li>
	<li>Decken Sie die Maus mit einer sterilisierten Plastikfolie ab. Um den Bauch der Maus zu überstrecken, fixieren Sie die untere Pfote und verwenden Sie eine 1-ml-Spritze oder eine gleichwertige Spritze, die hinter dem Rücken der Maus platziert wird. Schneiden Sie eine Öffnung in eine sterile Kompresse mit der Größe des zukünftigen Schnitts und verwenden Sie sie als Operationsfeld, um die Maus abzudecken. Die allgemeine Installation ist in Abbildung 2A dargestellt.</li>
	<li>Verwenden Sie vor der Operation eine Gesichtsmaske, eine Scheuerkappe und sterilisierte Handschuhe. Verwenden Sie sterilisierte Instrumente für die Operation.</li>
</ol>2. Das SADI-S-Protokoll
<ol><li>Mediane Laparotomie<ol><li>Führen Sie unter einem binokularen Mikroskop (8-fache Vergrößerung) eine mediane Laparotomie mit einer Schere oder einem Skalpell durch, indem Sie die Bauchhaut vom Processus xiphoideus bis zur Mitte des Bauches öffnen. Stellen Sie sicher, dass der Processus xiphoideus und die muskuloaponeurotische Schicht sichtbar sind (Abbildung 2B). HINWEIS: Verabreichen Sie Bupivacain (3 mg/kg) 5 Minuten vor dem Hautschnitt subkutan an der Operationsstelle.</li>
		<li>Öffnen Sie die Bauchdecke entlang der Linea alba mit einer Schere zwischen den Bauchmuskeln. Achten Sie darauf, die Brusthöhle nicht zu betreten (Abbildung 2C).</li>
	</ol></li>
	<li>Duodenaler Ausschluss<ol><li>Mobilisieren Sie den Zwölffingerdarm vorsichtig aus der Bauchhöhle mit einem angefeuchteten Wattestäbchen, um die vordere und hintere Seite zu sehen. Lokalisieren Sie den Hauptgallengang, der unter dem binokularen Mikroskop sofort sichtbar ist, auf der hinteren Seite des Omentums minor und des Zwölffingerdarms (Abbildung 3A, schwarze Pfeile).</li>
		<li>Visualisieren Sie proximal vom Hauptgallengang aus einen Bereich zwischen den Zwölffingerdarmarterien unter dem binokularen Mikroskop (Abbildung 3A,B, blau gepunktete Kreise). Dringen Sie mit einer gekrümmten Mikrozange von einer Seite des Zwölffingerdarms zur anderen in diesen Bereich ein und führen Sie eine Duodenalligatur zwischen den Arterien mit einer nicht resorbierbaren 6-0-Naht durch (Abbildung 3C-E). Achten Sie darauf, die Äste der Zwölffingerdarmarterien nicht zu ligieren.</li>
	</ol></li>
	<li>Sleeve-Gastrektomie<ol><li>Mobilisieren Sie den Magen aus der Bauchhöhle mit einem angefeuchteten Wattestäbchen und einer nicht-traumatischen Klemme. Trennen Sie den Magen mit einer Mikroschere von den umgebenden Organen: Trennen Sie das Omentum major, durchtrennen Sie die kurzen Magenarterien (Zweig der Milzarterie) zwischen Magen und Milz und das Lipom, das den Magen mit dem unteren Teil der Speiseröhre verbindet (Abbildung 4A,B).</li>
		<li>Führen Sie mit einer Mikroschere eine 5-mm-Gastrotomie durch, indem Sie den Fundus öffnen und die Speisereste mit einem Wattestäbchen entfernen (Abbildung 4C, Pfeil). Spülen Sie die Gastrotomiestelle mit steriler Kochsalzlösung (37 °C), um eine Kontamination durch den entfernten Mageninhalt zu vermeiden.</li>
		<li>Bringen Sie chirurgische Clips (mittlere Größe, 5,6 mm) entlang der größeren Krümmung des Magens an, um etwa 80 % des Magens auszuschließen. Zwei Clips sind ausreichend. Entfernen Sie den ausgeschlossenen Magen, indem Sie ihn mit einer Mikroschere abschneiden (Abbildung 4D-G).</li>
		<li>Verankern Sie die chirurgischen Clips, um die Undurchlässigkeit festzustellen, indem Sie eine laufende Naht (8-0) vom Anfang bis zum Ende der Magenresektion durchführen (Abbildung 4H).</li>
	</ol></li>
	<li>Duodeno-ileale Anastomose<ol><li>Stellen Sie sich unter dem binokularen Mikroskop die letzte ileale Schlinge vor, die sich kurz vor dem Blinddarm befindet (Abbildung 5A). Mobilisieren Sie den Dünndarm sanft außerhalb der Bauchhöhle von der letzten Ileumschlaufe. Legen Sie den Dünndarm wie in Abbildung 5B dargestellt so aus, dass sich die letzte ileale Schlinge auf der linken Seite befindet. Messen Sie mit einem zuvor dimensionierten Nahtstrang 10 cm (ca. 1/3 der Gesamtlänge des Dünndarms) von der letzten Ileumschlaufe; Dies wird der Ort der zukünftigen Anastomose sein.</li>
		<li>Um sicherzustellen, dass die zukünftige Gallengliedmaße von der linken Seite zur Anastomosenstelle kommt, machen Sie eine große Schleife des Dünndarms um die Stelle der zukünftigen Anastomose. Führen Sie mit einer Mikroschere eine 4-mm-Enterotomie durch, indem Sie den Dünndarm an dieser Stelle öffnen (Abbildung 5C-E). Spülen Sie die Enterotomiestelle mit steriler Kochsalzlösung (37 °C), um eine Kontamination zu vermeiden.</li>
		<li>Eine 4-mm-Enterotomie am ausgeschlossenen Teil des Zwölffingerdarms, unmittelbar nach dem Pylorus, zwischen dem Magen und der in Schritt 2.2.2 durchgeführten Ligatur durchführen (Abbildung 5F). Platzieren Sie eine resorbierbare 5 mm x 5 mm große hämostatische Kollagenkompresse, um die Homöostase zu fördern.</li>
		<li>Verwendung eines nicht resorbierbaren 8-0 Naht, führen Sie eine Side-to-Side-Duodeno-Ileala-Anastomose durch. Beginnen Sie mit der posterioren Anastomose, gefolgt von der anterioren Anastomose (Abbildung 5G-I).</li>
	</ol></li>
	<li>Verschluss des Bauches<ol><li>Zeigen Sie den Dünndarm in der Bauchhöhle so an, dass die Gallengliedmaße von der oberen linken Seite des Bauches zur Anastomose kommt und die gemeinsame Extremität in den unteren Teil des Bauches fällt. Anmerkungen: Spülen Sie den Bauch dreimal mit ca. 5 ml steriler 0,9%iger Kochsalzlösung (37 °C) ab. Saugen Sie dann die Flüssigkeit aus dem Bauch ab, um die restliche Magen-Darm-Flüssigkeit und die verdaute Nahrung zu entfernen, um eine bakterielle Infektion und eine anschließende Bauchentzündung zu vermeiden.</li>
		<li>Rehydrieren Sie die Maus mit 500 μl 37 °C Kochsalzlösung, indem Sie sie mit einer 1-ml-Spritze direkt in die Bauchhöhle auftragen.</li>
		<li>Schließen Sie die muskuloaponeurotische Schicht mit einer einzigen 6-0 nicht resorbierbaren Laufnaht. Verschließen Sie die Bauchhaut mit 6-0 nicht resorbierbaren getrennten Nähten (Abbildung 5J,K).</li>
	</ol></li>
</ol>3. Allgemeine postoperative Versorgung
<ol><li>Lassen Sie die Maus nach dem Absetzen des Isoflurans auf dem mit der Nasenmaske insulflatierten Heizkissen unter 0,4 l/minO2 aufwachen. Wenn die Maus vollständig erwacht ist, was durch eine vollständige motorische Rekuperation sichergestellt werden kann, setzen Sie die Maus allein in einen Käfig in einem 30 °C heißen Inkubator. Lassen Sie die Maus 5 Tage lang im 30 °C heißen Inkubator (keine besonderen Bedingungen für Gas oder Feuchtigkeit). Anmerkungen: Der Käfig sollte vorher erwärmt werden.</li>
	<li>Gewähren Sie unmittelbar nach der Operation freien Zugang zu Wasser. Fügen Sie Vitaminpräparate, einschließlich der Vitamine B1, B9, B12 und fettlöslicher Vitamine (A, D, E, K), dem Wasser (800 mg/180 ml Wasser) bis zum Ende des Protokolls hinzu.</li>
	<li>Aufrechterhaltung der Analgesie durch subkutane Buprenorphin-Injektionen (0,1 mg/kg) zweimal täglich von Tag 1 bis Tag 3, danach einmal täglich bis Tag 5. Setzen Sie die subkutanen Injektionen von Amoxicillin (15 mg/kg), Meloxicam (1 mg/kg) und Metoclopramid (1 mg/kg) einmal täglich bis zum 3. Tag fort. Subkutane Injektionen von Eisen (0,5 mg/kg) einmal täglich bis zum Ende des Protokolls.</li>
</ol>4. Allgemeine Messungen und Euthanasie
<ol><li>Wiegen Sie die Mäuse täglich bis zum 5. postoperativen Tag. Wiegen Sie dann am 7. Tag und dann wöchentlich.</li>
	<li>Um die tägliche Nahrungsaufnahme zu messen, platzieren Sie eine Maus pro Käfig. Geben Sie ein bekanntes Gewicht einer festen Diät ein und messen Sie das Gewicht der festen Diät, die nach 24 Stunden verbleibt. Messen Sie die Nahrungsaufnahme an Tag 3, 4, 5, 7 und dann wöchentlich.</li>
	<li>Euthanasieren der Mäuse durch Zervixluxation unter Vollnarkose (5 % Isofluran (1 l/min) mit Sauerstoff (1 l/min)) mit subkutaner Injektion von Buprenorphin (0,1 mg/kg) nach Herzschnitt im linken Vorhof zur Blutentnahme (500 bis 600 μl Blut).</li>
	<li>Messen Sie die Hämoglobinkonzentration im Blut mit einem automatischen Hämatologie-Analysegerät, für das 20 μl Blut benötigt werden.</li>
</ol>

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<li>Wu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+outcomes+of+single+anastomosis+duodeno-ileostomy+with+sleeve+gastrectomy+%28SADI-S%29%2C+single+anastomosis+sleeve+ileal+%28SASI%29+bypass+with+sleeve+gastrectomy%2C+and+sleeve+gastrectomy+using+a+rodent+model+with+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Obesity+Surgery%22%5BJournal%5D)">Comparison of the outcomes of single anastomosis duodeno-ileostomy with sleeve gastrectomy (SADI-S), single anastomosis sleeve ileal (SASI) bypass with sleeve gastrectomy, and sleeve gastrectomy using a rodent model with diabetes.</a> Obesity Surgery. 32 (4), 1209-1215 (2022).</li>
<li>Laura, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishing+a+reproducible+murine+animal+model+of+single+anastomosis+duodenoileal+bypass+with+sleeve+gastrectomy+%28SADl-S%29%5BTitle%5D)+AND+%22Obesity+Surgery%22%5BJournal%5D)">Establishing a reproducible murine animal model of single anastomosis duodenoileal bypass with sleeve gastrectomy (SADl-S).</a> Obesity Surgery. 28 (7), 2122-2125 (2018).</li>
<li>Meoli, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestine-specific+overexpression+of+LDLR+enhances+cholesterol+excretion+and+induces+metabolic+changes+in+male+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Intestine-specific overexpression of LDLR enhances cholesterol excretion and induces metabolic changes in male mice.</a> Endocrinology. 160 (4), 744-758 (2019).</li>
<li>Abu El Haija, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toll-like+receptor+4+and+myeloid+differentiation+factor+88+are+required+for+gastric+bypass-induced+metabolic+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery+for+Obesity+and+Related+Diseases%22%5BJournal%5D)">Toll-like receptor 4 and myeloid differentiation factor 88 are required for gastric bypass-induced metabolic effects.</a> Surgery for Obesity and Related Diseases. 17 (12), 1996-2006 (2021).</li>
<li>Kumar, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipocalin-type+prostaglandin+D2+synthase+%28L-PGDS%29+modulates+beneficial+metabolic+effects+of+vertical+sleeve+gastrectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery+for+Obesity+and+Related+Diseases%22%5BJournal%5D)">Lipocalin-type prostaglandin D2 synthase (L-PGDS) modulates beneficial metabolic effects of vertical sleeve gastrectomy.</a> Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (8), 1523-1531 (2016).</li>
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<li>Uysal, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caecum+location+in+laboratory+rats+and+mice%3A+an+anatomical+and+radiological+study%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Caecum location in laboratory rats and mice: an anatomical and radiological study.</a> Laboratory Animals. 51 (3), 245-255 (2017).</li>
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</ol>

Claire Blanchard wurde von Medtronic für die Durchführung von Kursen zum klinischen Eintauchen bezahlt.

Bariatrische Operationen, deren Techniken sich ständig weiterentwickeln, scheinen derzeit die wirksamste Behandlung für Adipositas und damit verbundene metabolische Komorbiditäten zu sein 3,19,20. Das SADI-S-Verfahren, das erstmals 2007 beschrieben wurde4, ist ein vielversprechendes Verfahren, das mit größeren metabolischen Effekten verbunden ist als andere malabsorptive Operationen. Tiermodelle, insbeson...

Adipositas ist eine neu auftretende und endemische Situation mit zunehmender Prävalenz, von der weltweit etwa 1 von 20 Erwachsenen betroffenist 1. Die bariatrische Chirurgie hat sich in den letzten Jahren zur effektivsten Behandlungsoption für die betroffenen Erwachsenen entwickelt und sowohl die Gewichtsabnahme als auch die Stoffwechselstörungenverbessert 2,3, wobei die Ergebnisse je nach Art des verwendeten chirurgischen Eingriffs variieren.
Es gibt zwei Hauptmechanismen, die an den Auswirkungen der bariatrischen Verfahren beteiligt sind: Restriktion, die darauf abzielt, das Sättigungsgefühl zu erhöhen (wie bei der Schlauchmagenentfernung (SG), bei der 80 % des Magens entfernt werden), und Malabsorption. Unter den Verfahren, die sowohl eine Restriktion als auch eine Malabsorption beinhalten, wurde der Duodeno-ileale Bypass mit Sleeve-Gastrektomie (SADI-S) als Alternative zum Roux-en-Y-Magenbypass (RYGB) vorgeschlagen, bei dem bei etwa 20 % der Patienten eine Gewichtszunahme beobachtet wird 4,5. Bei dieser Technik ist eine Sleeve-Gastrektomie mit einer Dünndarmumlagerung verbunden, die in eine Gallentiefe und ein kurzes gemeinsames Glied (ein Drittel der gesamten Dünndarmlänge) unterteilt wird (Abbildung 1A). Technisch hat der SADI-S gegenüber dem RYGB den Vorteil, dass er nur eine einzige Anastomose benötigt, wodurch die Operationszeit um ca. 30% reduziert wird. Darüber hinaus wird bei dieser Methode der Pylorus geschont, was dazu beiträgt, das Risiko einer Magengeschwürerkrankung zu verringern und das Auslaufen von Anastomosen zu begrenzen. Der SADI-S wird auch mit einer hohen Stoffwechselverbesserungsrate in Verbindung gebracht, was seine Verwendung in den letzten Jahren stark begünstigthat 6,7.
Da metabolische Effekte zunehmend grundlegend für bariatrische Verfahren geworden sind, scheint die Aufklärung ihrer Mechanismen von entscheidender Bedeutung zu sein. Daher ist die Verwendung von Tiermodellen für bariatrische Eingriffe von größter Bedeutung, um deren metabolische Auswirkungen und die beteiligten zellulären und molekularen Signalwege besser zu verstehen8. Diese Modelle trugen beispielsweise zu einem besseren Verständnis der Veränderung der Nahrungsaufnahme nach SG oder RYGB in einer kontrollierten Umgebung bei9 und zur Untersuchung von Glukose- oder Cholesterinflüssen durch die Darmbarriere10,11; Diese Informationen sind in klinischen Studien nur selten verfügbar. Dieses Wissen könnte helfen, ihre optimalen chirurgischen Indikationen zu definieren. Wir haben bereits Mausmodelle von SG und RYGB12 beschrieben. Trotz seiner vielversprechenden Ergebnisse in der klinischen Praxis wurde der SADI-S jedoch nur an Ratten entwickelt und beschrieben13,14,15. Aufgrund seiner genetischen Formbarkeit hat sich das Mausmodell jedoch in der Vergangenheit als nützlich erwiesen, um die verschiedenen metabolischen Effekte solcher Verfahren zu untersuchen16,17,18, und ein SADI-S-Mausmodell könnte nützlich sein, um die Auswirkungen von SADI-S trotz der technischen Schwierigkeiten zu bewerten.
In diesem Artikel beschreiben wir die Adaption des SADI-S-Verfahrens bei Mäusen (Abbildung 1B) auf reproduzierbare Weise. Besonderes Augenmerk wird auf die Beschreibung der perioperativen Versorgung gelegt.

<table><tbody><tr><td>Agagani Nadel 26 G</td><td>Terumo</td><td>050101B</td><td>26 G Nadel</td></tr><tr><td>Betadine dermique&nbsp;</td><td>Pharma-gdd</td><td>3300931499787</td><td>Povidon-Lösung</td></tr><tr><td>Betadin-Peeling</td><td>Pharma-gdd</td><td>&nbsp; 3400931499787</td><td>Povidon-Lösung</td></tr><tr><td>Binokulares Mikroskop</td><td>Optika Microscopes Italy</td><td>SZN-9</td><td>Binokulares Stereomikroskop</td></tr><tr><td>Buprecare</td><td>Animalcare</td><td>3760087151244</td><td>Buprenorphin</td></tr><tr><td>Castroviejo, gerade 9 cm</td><td>F.S.T</td><td>12060-02</td><td>Mikroschere</td></tr><tr><td>Castroviejo, gerade 9 cm</td><td>F.S.T</td><td>12060-02</td><td>Nadelhalter</td></tr><tr><td>Chlorure de Sodium Fresenius 0.9%</td><td>Fresenius Kabi&nbsp;</td><td>BE182743</td><td>NaCl 0,9</td></tr>%<tr><td>Clamoxyl</td><td>Med'vet</td><td>5414736007496</td><td>Amoxicillin</td></tr><tr><td>Wattestäbchen</td><td>Comed</td><td>2510805</td><td>Wattestäbchen</td></tr><tr><td>Element HT5</td><td>Scilvet</td><td>Element HT5</td><td>Automatisierter Hämatologie-Analysator</td></tr><tr><td>Emeprid</td><td>CEVA</td><td>3411111914365</td><td>Metoclopramid</td></tr><tr><td>Extra feine Graefe Pinzette, gebogen (Spitzenbreite: 0,5 mm)</td><td>F.S.T</td><td>11152-10</td><td>Chirurgische Zange</td></tr><tr><td>Extra feine Graefe Pinzette, gerade (Spitzenbreite: 0,5 mm)</td><td>F.S.T</td><td>11150-10</td><td>Chirurgische Zange</td></tr><tr><td>Fercobsang</td><td>Vetoprice</td><td>QB03AE04</td><td>Eisen, Multivitamine und Mineralstoffe&nbsp;</td></tr><tr><td>Forane</td><td>Baxter</td><td>1001936060</td><td>Isofluran</td></tr><tr><td>Graefe Pinzette, gerade (Spitzenbreite: 0,8 mm)</td><td>F.S.T</td><td>11050-10</td><td>Pinzette</td></tr><tr><td>Graphpad Prism Version 8.0</td><td>GraphPad Software, Inc.</td><td>Version 8.0</td><td>Software für statistische Analysen</td></tr><tr><td>Wärmekissen</td><td>Intellibio innovation</td><td>A-2101-00300</td> Wärmekissen-Inkubator <td></td></tr><tr><td></td><td>Bioconcept Technologies</td><td>Manufactured on demand</td><td>Inkubator&nbsp;</td></tr><tr><td>Beleuchtung</td><td>Optika Mikroskope Italien</td><td>CL-30</td><td>Beleuchtung für die Mikroskopie</td></tr><tr><td>Ocrygel</td><td>Med'vet</td><td>3700454505621</td><td>Carboptol 980 NF</td></tr><tr><td>Pangen 2,5 cm x 3,5 cm</td><td>Urgovet</td><td>A02978</td><td>hämostatischer Kollagenkompress</td></tr><tr><td>Prolene 6/0</td><td>B.Braun</td><td>3097915</td><td>Optilene 6/0 (0,7 metrisch) 75 cm 2XDR13 CV2 RCP, Nahtstrang</td></tr><tr><td>Prolene 8/0</td><td>Ethicon</td><td>8732</td><td>2 x BV175-6 MP, 3/8 Kreis, 8 mm,&nbsp; Nahtstrangschere</td></tr><tr><td></td><td>F.S.T</td><td>146168-09</td><td>OP-Schere</td></tr><tr><td>Sterile Kompressen&nbsp;</td><td>Laboartoire Sylamed</td><td>211S05-50</td><td>Vliesstoff steril komprimierte</td></tr><tr><td>Terumo Spritze</td><td>Terumo</td><td>50828</td><td>1 mL</td></tr><tr><td>Spritze Titan hämostatischer Clip</td><td>P&eacute; ters Surgical</td><td>B2180-1</td><td>Chirurgischer Clip</td></tr><tr><td>Vannas Wolff</td><td>F.S.T</td><td>15009-08</td><td>Mikroschere</td></tr><tr><td>Vita Rongeur</td><td>Virbac</td><td>3597133087611</td><td>Vitaminergänzung</td></tr><tr><td>Vitaltec Edelstahl</td><td>P&eacute; ters Surgical</td><td>PB 220-EB Medium</td><td>Chirurgischer Clip-Applizator</td></tr></tbody></table>

duodeno-ilealer bypass mit sleeve-gastrektomie-modell bei mäusen

Single-Anastomosis Duodeno-Ileal Bypass with Sleeve Gastrectomy Model in Mice

Fettleibigkeit ist weltweit ein großes Gesundheitsproblem. Als Reaktion darauf sind bariatrische Operationen entstanden, um Adipositas und die damit verbundenen Komorbiditäten (z. B. Diabetes mellitus, Fettstoffwechselstörungen, nichtalkoholische Steatohepatitis, kardiovaskuläre Ereignisse und Krebs) durch restriktive und malabsorptive Mechanismen zu behandeln. Um die Mechanismen zu verstehen, durch die diese Verfahren solche Verbesserungen ermöglichen, ist es oft erforderlich, sie auf Tiere, insbesondere bei Mäusen, zu übertragen, da es so einfach ist, genetisch veränderte Tiere zu erzeugen. In jüngster Zeit hat sich der Duodeno-ileale Bypass mit Sleeve-Gastrektomie (SADI-S) als Verfahren herauskristallisiert, das sowohl restriktive als auch malabsorptive Effekte nutzt und als Alternative zum Magenbypass bei schwerer Adipositas eingesetzt wird. Bisher wurde dieses Verfahren mit starken metabolischen Verbesserungen in Verbindung gebracht, was zu einer deutlichen Zunahme des Einsatzes in der täglichen klinischen Praxis geführt hat. Die Mechanismen, die diesen Stoffwechseleffekten zugrunde liegen, sind jedoch mangels Tiermodellen nur unzureichend untersucht. In diesem Artikel stellen wir ein zuverlässiges und reproduzierbares Modell von SADI-S in Mäusen vor, mit besonderem Fokus auf das perioperative Management. Die Beschreibung und Verwendung dieses neuen Nagetiermodells wird für die wissenschaftliche Gemeinschaft hilfreich sein, um die durch SADI-S induzierten molekularen, metabolischen und strukturellen Veränderungen besser zu verstehen und die chirurgischen Indikationen für die klinische Praxis besser zu definieren.

Lernkurve Die Lernkurve für dieses Modell ist in Abbildung 6 dargestellt. Es wird eine fortschreitende Verkürzung der Operationszeit beobachtet, die nach 4 Wochen intensivem Training etwa 60 Minuten Operation erreicht (Abbildung 6A). Auch das postoperative 5-Tage-Überleben verbesserte sich mit der Zeit und erreichte bei regelmäßiger Praxis 77 % (Abbildung 6B). Die häufigsten Todesursachen waren Anastomosenlecks u...

Der Duodeno-ileale Bypass mit einfacher Anastomose (SADI-S) ist ein aufstrebendes bariatrisches Verfahren mit wichtigen metabolischen Auswirkungen. In diesem Artikel stellen wir ein zuverlässiges und reproduzierbares Modell von SADI-S in Mäusen vor.

Duodeno-ilealer Bypass mit Sleeve-Gastrektomie-Modell bei Mäusen

Obesity is a major health issue worldwide. As a response, bariatric surgeries have emerged to treat obesity and its related comorbidities (e.g., diabetes ...

Dieses Protokoll ist also die erste Beschreibung von CDS bei Mäusen, die es uns ermöglicht, die in der klinischen Praxis durchgeführte Operation nachzuahmen und die metabolischen, zellulären und molekularen Mechanismen auf vorhersagbarere Weise zu entschlüsseln. Dieses Verfahren erfordert weniger Anastomosen als der Magenbypass, wodurch die Operation verkürzt und die Überlebensrate verbessert wird, mit ähnlichen metabolischen Vorteilen wie beim Magenbypass. Beginnen Sie mit der subkutanen Verabreichung von Buprenorphin, Amoxicillin, Metoclopromid und Eisen.Rasieren Sie die ersten zwei Drittel des Bauches der Maus mit einem elektrischen Rasierer und desinfizieren Sie den Bauch der Maus zweimal mit einer Jod-Povidon-Lösung. Legen Sie dann die Maus in Rückenlage auf ein spezielles Wärmekissen, das mit einer sauberen Unterlage bedeckt ist. Überprüfen Sie die Narkosetiefe mit dem Zehenquetschtest und decken Sie die Maus mit sterilisierter Plastikfolie ab.Als nächstes dehnen Sie den Bauch der Maus übermäßig aus, indem Sie den unteren Kern fixieren und eine Ein-Milliliter-Spritze oder einen gleichwertigen Punkt hinter den Rücken der Maus legen. Schneiden Sie eine fenstergroße Öffnung als

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

In diesem Video wird eine vertikale Schlauchmagenoperation an einem experimentellen Mausmodell durchgeführt. Dieses Verfahren hilft, einen erheblichen Teil des Magens entlang seiner stärkeren Krümmung zu entfernen.

Maus Vertical Sleeve Gastrektomie: Ein chirurgischer Eingriff zur Verkleinerung des Magens in experimentellen Mausmodellen

Dieses Video beschreibt ein bariatrisches Chirurgie-Roux-en-Y-Verfahren. Dabei wird das Jejunum - der mittlere Teil des Darms - durchtrennt, um zwei Darmgliedmaßen zu erzeugen. Die Gallengliedmaße wird an die bestehende Darmschlinge und die Verdauungsgliedmaße an den Magen angehängt, wodurch ein Magenbypass entsteht. Der hier angelegte Magenbypass hilft, die Nährstoffaufnahme zu verringern und das Körpergewicht effizient zu reduzieren.

Roux-en-Y Magenbypass-Verfahren: Ein bariatrisches chirurgisches Verfahren zur Magenresektion im Mausmodell

Bariatrische Chirurgie ist der effizienteste Weg, um das Körpergewicht und die tödlichen metabolischen Komplikationen (Diabetes, Fettleibigkeit und Dyslipidämie) zu reduzieren, die häufig mit krankhafter Fettleibigkeit verbunden sind. Mausmodelle der bariatrischen Chirurgie stellen einen einzigartigen Vorteil dar, um die molekularen Mechanismen zu entschlüsseln, die hinter den positiven Auswirkungen dieser Operationen auf Diabetes, Bluthochdruck und Dyslipidämie stehen.

Techniken der Schlauchmagen-Operation und Modified Roux-en-Y-Magenbypass bei Mäusen

Das folgende beschreibt die Leistung der vertikalen Sleeve-Gastrektomie bei Mäusen. Dies ist eine Art von Gewichtsverlust Chirurgie, die etwa 70 % des Magens entfernt wird.

Ein Mausmodell der vertikalen Sleeve-Gastrektomie

Dieses Protokoll ist für die Erfüllung einer Anastomose Magenbypass (OAGB) auf Ratte. Der Operator führt einen langen, röhrenförmigen geheftet Magen Beutel gefolgt von handgenähter Anastomose. Für dieses Modell reproduziert der Betreiber das gleiche Verhältnis zwischen biliopankreatischen und gemeinsame Gliedmaßen beim Menschen; Daher misst die Biliopancreatic Limb 35 cm.

Eine Anastomose Magenbypass (OAGB) bei Ratten

Die Prävalenz von Diabetes und Adipositas nimmt weltweit kontinuierlich zu. Die Mechanismen zwischen Diabetes, Adipositas und der damit verbundenen Sterblichkeit und Komorbiditäten müssen weiter untersucht werden. Hier stellen wir ein Protokoll zur Hülsengastrektomie (SG) bei Tieren als unkompliziertes präklinisches Modell der bariatrischen Chirurgie vor.

Ärmel-Gastrektomie bei Mäusen mit chirurgischen Clips

Eine Duodenal-Jejunal-Bypass-Operation (DJB) kann den Glukosestoffwechsel verbessern und die Insulinresistenz reduzieren. Hier stellen wir ein Protokoll vor, um ein stabiles und zuverlässiges Mausmodell von DJB zu etablieren.

Duodenal-Jejunal-Bypass-Operation bei ernährungsinduzierten adipösen diabetischen Mäusen

Filamentous Verschluss der mittleren Hirnarterie ist ein gemeinsames Modell für die Untersuchung einen ischämischen Schlaganfall bei Mäusen.

Modeling Stroke in Mice - Middle Zerebralarterie mit dem Filament-Modell

Zahlreiche Studien über Magen-Bypass-Ratte Modelle wurden erst kürzlich durchgeführt, um die zugrunde liegenden physiologischen Mechanismen der Roux-en-Y-Magenbypass-Operationen aufzudecken. Dieser Artikel soll zeigen, und diskutieren die technische und experimentelle Details unserer veröffentlichten Magen-Bypass-Ratten-Modell, um Vorteile und Grenzen dieser experimentelles Werkzeug zu verstehen.

Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten

Diese Arbeit beschreibt einen neuartigen nicht-okklusiven koronaren Anastomosenkonnektor in einem porcinen Off-Pump Koronararterien-Bypassmodell (OPCAB). Dieser einfach zu bedienende Koronarkonnektor hat das Potenzial, die minimal-invasive OPCAB-Chirurgie zu erleichtern.

Evaluierung eines neuartigen Lasergestützte Koronare Anastomotische Steckverbinder - Dreifaltigkeit Clip - in einem Schweine Off-Pumpe Bypass-Modell

Erfahren Sie das Duodeno-ileale Bypass-Verfahren mit Sleeve-Gastrektomie bei Mäusen zur Untersuchung metabolischer Mechanismen. Dieses Modell ermöglicht kontrollierte Studien zu bariatrischen Operationen mit verbesserten Überlebensraten.

Duodeno-ilealer Bypass mit Sleeve-Gastrektomie-Modell bei Mäusen

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