Name: Feldsammlung und Laborwartung von Kronendachbildendem Riesentang zur Erleichterung der Wiederherstellung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-06-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 44 s
Description: Erfahren Sie die Green-Gravel-Technik zur Kultivierung von Riesentang Macrocystis pyrifera für marine Ökosystemrestaurierung. Dieses Protokoll zeigt optimale Temperatur- und Lichtbedingungen für erfolgreiche Wiederherstellung von Tangwäldern.

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Diese Arbeit wurde durch das California Sea Grant Kelp Recovery Research Program R/HCE-17 an JBL und MESB, einen National Science Foundation Research Traineeship Award DGE-1735040 an PDD, The Nature Conservancy, Schmidt Marine Technology Partners, Sustainable Ocean Alliance, Tinker Foundation an AP-L und The Climate Science Alliance Baja Working Group an RBL und JL finanziert. Wir danken Steven Allison, Cascade Sorte, Samantha Cunningham, Sam Weber und Caitlin Yee von der University of California, Irvine; Mark Carr, Peter Raimondi, Sarah Eminhizer, Anne Kapuscinski an der University of California, Santa Cruz; Walter Heady und Norah Eddy von The Nature Conservancy; Filipe Alberto und Gabriel Montecinos an der University of Wisconsin, Milwaukee; Jose Antonio Zertuche-González, Alejandra Ferreira-Arrieta und Liliana Ferreira-Arrieta an der Universidad Autónoma de Baja California; Luis Malpica-Cruz, Alicia Abadía-Cardoso und Daniel Díaz-Guzmán von MexCal; die MexCalitos-Taucher Alejandra Reyes, Monica Peralta, Teresa Tavera, Julia Navarrete, Ainoa Vilalta, Jeremie Bauer und Alfonso Ferreira; und Nancy Caruso für technische Beratung. Wir danken dem Instituto de Investigaciones Oceanológicas, Universidad Autónoma de Baja California für die Bereitstellung von Einrichtungen, die für die Entwicklung des Wasserbadsystems verwendet wurden. Wir danken Ira Spitzer für Unterwasser- und Drohnen-Videoinhalte.

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Der anthropogene Klimawandel ist eine wachsende Bedrohung für die Gesundheit der Weltmeere 44,45,46,47,48 und führt zu großen Störungen und zum Verlust der biologischen Vielfalt 49,50,51,52. Um die Wiederherstellung geschädigter Ökosysteme zu beschleunigen, haben die Vereinten Nationen die Jahre 2021 bis 2030 zur "UN-Dekade zur Wiederherstellung von Ökosystemen" erklärt, die mit der "UN-Dekade der Ozeanforschung für nachhaltige Entwicklung" zusammenfällt, die darauf abzielt, die Verschlechterung der Meeresgesundheit umzukehren53. Im Einklang mit diesem globalen Aufruf zum Handeln hat die Kelp Forest Alliance die Kelp Forest Challenge ins Leben gerufen, um bis zum Jahr 2040 1 Million Hektar Kelpwald wiederherzustellen und 3 Millionen Hektar Kelpwald zu schützen54. Die Wiederherstellung von Meeren wird unterschätzt55, und Seetang-Ökosysteme erhalten deutlich weniger Aufmerksamkeit als Lebensräume wie Korallenriffe, Mangrovenwälder und Seegraswiesen56. Die Wiederherstellung geschädigter Ökosysteme hat sich beim Wiederaufbau mariner Ökosysteme als wirksam erwiesen, kann aber im Durchschnitt zwischen 80.000 und 1.600.000 US-Dollar pro Hektar kosten, wobei die durchschnittlichen Gesamtkosten wahrscheinlich zwei- bis viermal höher sind57. Aktuelle und prognostizierte Verluste erfordern die Entwicklung skalierbarer, praktikabler und kostengünstiger Methoden zur Wiederherstellung von Seetang als dringende Schutzmaßnahmen.
Aktuelle Bemühungen zur Wiederherstellung von Seetang verwenden eine Kombination von Methoden, um standortspezifische Treiber des Seetangverlusts anzugehen, einschließlich der Transplantation von erwachsenem Seetang, der direkten Aussaat von Zoosporen und/oder Gametophyten, der Kontrolle von Weidetieren und der Installation künstlicher Riffe11. Diese Methoden erfordern jedoch erhebliche Ressourcen und sind nur begrenzt skalierbar. Die typische Transplantation von erwachsenem Seetang erfordert den mühsamen Einsatz künstlicher Materialien oder Strukturen auf dem Benthos durch Taucher. Bottom-up-Eingriffe zur Wiederherstellung von felsigen Küstenriffen, wie z. B. die Kontrolle von Konkurrenten und Weidetieren, werden ebenfalls durch die Arbeitskosten eingeschränkt, da sie auf der manuellen Entfernung oder dem Ausschluss dieser biotischen Stressoren unter Wasser beruhen11. Die " Green Gravel"- Technik überwindet diese Einschränkungen durch eine einfache Bereitstellung von der Oberfläche aus, erfordert keine Unterwasserinstallation oder technisches Wissen und Skalierbarkeit zu relativ geringen Kosten28. Dieser innovative Ansatz bietet ein vielversprechendes Wiederherstellungswerkzeug, das umfangreiche Versuche an verschiedenen Orten und Umgebungen erfordert, um sein volles Potenzial auszuschöpfen32.
Während erfolgreiche Wiederherstellungsbemühungen mit "grünem Kies" in geschützten Fjorden in Norwegen mit dem Zuckertang Saccharina latissima26 dokumentiert wurden, befindet sich diese Technik für Macrocystis pyrifera im Ostpazifik noch in der Pilotphase. Zusätzliche Studien sind erforderlich, um die erwartete Überlebensrate von M. pyrifera-Auspflanzungen innerhalb seines Verbreitungsgebiets zu untersuchen. Unter wellenexponierten Bedingungen, die für das Wachstum von M. pyrifera typisch sind, kann kleinerer Kies anfälliger für Bewegung und Abrieb sein, was zu beschädigten Außenpflanzen führt. Darüber hinaus kann ein positiver Auftrieb durch gasgefüllte Pneumatozysten von M. pyrifera dazu führen, dass "Grünkies"-Außengewächse effektiv von der Renaturierungsstelle weggetragen werden, und daher sind Kiesgröße und -gewicht wichtige Faktoren, die es für diese Art zu erforschen gilt. In einer kürzlich durchgeführten Pilotstudie (Mai 2022; Ensenada, Baja California, Mexiko) wurde ein vorläufiger Erfolg im Feld mit M. pyrifera beobachtet, der durch die Anheftung der Haptera an das umgebende Substrat und das Wachstum von Jungtieren angezeigt wird, die nach zwei Monaten im Feld eine Länge von 1,2 m erreichen (Abbildung 4). Dies zeigt eine klare Chance, die noch erforscht werden muss, um "grünen Kies" für M. pyrifera im Ostpazifik zu verwenden. Dieses Video zeigt die Technik des "grünen Kieses" mit M. pyrifera und ist eine wertvolle Ressource, die bestehende Praktiken in der Kultivierungsphase der Wiederherstellung vereinfacht und zentralisiert, um Studien zu unterstützen, die sich mit Erfolgen und Einschränkungen in verschiedenen Feldumgebungen befassen.
Mit der "Grünkies"-Technik können viele kleinere, einzelne Kieseinheiten in einem Umfang ausgesät werden, der die Erfolgswahrscheinlichkeit im Vergleich zu gängigeren Transplantationsansätzen mit erwachsenen Pflanzen erhöhen kann. Der wichtigste skalierbare Aspekt dieser Technik ist jedoch der einfache Einsatz von der Oberfläche aus, der die Wiederherstellung großer Flächen mit dem Boot erleichtern kann. Für Feldumgebungen, in denen der Einsatz von kleinem Kies nicht geeignet ist, kann dieses Protokoll angepasst werden, um M. pyrifera auf einer Vielzahl von Substraten zu verpflanzen, einschließlich größerem Kies oder sogar kleinen Felsbrocken, Schnüren, die an natürlichen oder ausgebrachten Unterwasserankern gebunden werden können, oder Ziegeln, die unter exponierteren Bedingungen mit Meeresepoxidharz auf den Meeresboden geschraubt oder geklebt werden können. Diese Anpassungen des Einsatzes werden die für die Kultivierung von M. pyrifera erforderlichen Einrichtungen nicht ändern, aber in der Folge die Kosten für den Einsatz erhöhen.
Anthropogene Störungen und der Klimawandel überwinden derzeit die Anpassungsfähigkeit natürlicher Populationen. Dies stellt die traditionellen Naturschutzbemühungen, die Ökosysteme wieder in ihren historischen Zustand zurückversetzen, vor erhebliche Herausforderungen 58,59,60,61,62,63. Daher haben sich die Naturschutzrahmen um ein vorausschauendes Management unter Berücksichtigung von Resilienz und Anpassungsfähigkeit erweitert64. Ein vorausschauendes Management zur Bekämpfung des Klimawandels wird für Baumarten in Waldökosystemen implementiert65 und wurde für weitere Wiederherstellungsbemühungen vorgeschlagen, um das evolutionäre Potenzial von Außenpflanzen zu verbessern66,67. Obwohl diese Strategien in terrestrischen Umgebungen von Natur aus leichter zu handhaben sind, beginnen mehrere Studien, ihre Anwendung in marinen Umgebungen zu untersuchen 62,68,69,70. Zum Beispiel sind Korallenriffe durch zahlreiche anthropogene Stressoren bedroht, die zu einem beispiellosen Rückgang geführt haben 71,72. Als Reaktion auf den Verlust dieser wichtigen Grundarten werden zunehmend aktive Wiederherstellungs- und Anpassungstechniken befürwortet, um die verbleibenden Korallenriffe und die damit verbundenen Funktionen zu erhalten 62,73,74. Eine Technik besteht darin, Individuen innerhalb ihres aktuellen Verbreitungsgebiets umzusiedeln, um die Toleranz gegenüber Hitzestress zu erhöhen75. In Bezug auf die Wiederherstellung von Kronendach-bildenden Seetang verfügt "grüner Kies" über einen anpassbaren Rahmen, um unterstützte Anpassungstechniken wie die Translokation widerstandsfähiger Genotypen in gefährdete Gebiete, nicht-genetische Manipulation wie Hybridisierung oder Akklimatisierung von Individuen an Umweltstresszu erforschen 62 mit Ergebnissen, die darauf abzielen, widerstandsfähigere Stämme für Wiederherstellungsprogramme zu erhalten76,77.
Die Nutzung lokaler Unterstützung zur Verbesserung der Wiederherstellungsbemühungen ist entscheidend für den nachhaltigen Erfolg des Kelp-Ökosystems. Die Einbeziehung lokaler Interessengruppen kann die lokale Akzeptanz für den Wiederherstellungsbedarferhöhen 6,50 und die Küstenverwaltung fördern, was in der Folge zu einer erhöhten Finanzierung und Langlebigkeit des Schutzes des Seetang-Ökosystems führen könnte. Wie bei allen anderen Methoden zur Wiederherstellung von Seetang werden strukturierte Entscheidungsrahmen, die verschiedene ökologische, sozioökonomische und Naturschutzziele integrieren, dazu beitragen, optimale Ergebnisse für Seetang-Ökosysteme und die von ihnen unterstützten Gemeinschaften zu erzielen11.

Kronenbildende Seetange (braune Makroalgen in der Ordnung Laminariales) sind weltweit wichtige Grundarten, die küstennahe Felsenriffe in gemäßigten und arktischen Meeren dominieren1. Diese Seetange bilden strukturell komplexe und hochproduktive biogene Lebensräume, die als Seetangwälder bekannt sind und taxonomisch vielfältige Meeresgemeinschaften unterstützen2. Seetangwälder weltweit erbringen viele Ökosystemdienstleistungen für den Menschen, darunter die kommerzielle Fischereiproduktion, den Kohlenstoff- und Nährstoffkreislauf sowie Erholungsmöglichkeiten mit einem geschätzten Gesamtwert von 500 Milliarden US-Dollar pro Jahr3.
Trotz ihres erheblichen Wertes sind Seetangwälder in vielen Regionen einem wachsenden anthropogenen Druck ausgesetzt3. Der Klimawandel stellt aufgrund der langfristigen Erwärmung der Ozeane in Verbindung mit der zunehmenden Häufigkeit von Temperaturanomalien eine der größten Bedrohungen für Seetangdar 3,4,5,6,7. Erhöhte Meerestemperaturen sind mit Nährstoffbeschränkungen verbunden8, während die Exposition gegenüber Hitzestress über physiologischen Schwellenwerten zur Sterblichkeit führen kann9. In Kombination mit variablen regionalen lokalen Stressoren7 gehen die Seetangpopulationen weltweit um etwa 2 % pro Jahrzurück 10 mit erheblichen Verlusten und anhaltenden Verschiebungen in alternative Gemeinschaftsstaaten in bestimmten Regionen 6,11,12,13,14. Die natürliche Erholung der Seetangpopulationen allein reicht möglicherweise nicht aus, um das Ausmaß der aktuellen und prognostizierten Verluste umzukehren 15,16,17,18, was die Bedeutung einer aktiven Wiederherstellung unterstreicht.
Aktuelle Bemühungen zur Wiederherstellung von Seetang können eine Kombination von Methoden verwenden, um diese wichtigen Grundarten an küstennahen Felsriffen wieder anzusiedeln 3,19. Die gewählten Methoden zur Bewältigung standortspezifischer Probleme hängen vom geografischen Kontext, den spezifischen Hindernissen für die Kelp-Erholung und dem sozial-ökologischen Kontextab 11. Das Verständnis der Verbindungen und der Interdependenz sozial-ökologischer Systeme ist der Schlüssel, und Interventionen, die lokale Institutionen einbeziehen und die Unterstützung lokaler Gemeinschaften gewinnen, erhöhen die Wahrscheinlichkeit erfolgreicher Wiederherstellungsbemühungen20.
Zusätzlich zum Klimawandel treibt, verringert oder unterdrückt der Druck von Pflanzenfressern oder interspezifischer Wettbewerb die Erholung (z. B. durch Seeigel13, pflanzenfressende Fische 21,22, Rasenalgen 9,23 oder invasive Algen24). Die Wiederherstellung kann sich auf die Entfernung dieser biotischen Stressoren konzentrieren25, obwohl diese Methoden erhebliche Ressourcen und kontinuierliche Wartung erfordern11. Um die Erholung der Seetangarten zu katalysieren, gab es Bemühungen um einen direkten Aussaatansatz, z. B. das Wiegen von Netzbeuteln, die mit fruchtbaren Seetangblättern gefüllt sind, in das Benthos, das Zoosporen in die Umwelt freisetzt26. Diese Methode ist jedoch zeitintensiv und erfordert einen technischen Ein- und Ausbau unter Wasser. Andere Fälle konzentrieren sich auf die Transplantation großer Mengen ganzer erwachsener Spenderpflanzen, die eng verwandte und gefährdete Spenderpopulationen gefährden können und aufgrund der Abhängigkeit von kontinuierlichen Transplantationen oft auf kleine Maßstäbe beschränkt sind27.
Für Regionen, in denen die Begrenzung der Seetangsporen die Erholung des Seetangwaldes aufgrund der Fragmentierung des Lebensraums behindern kann, wurde ein relativ neuer Ansatz zur Wiederherstellung des Seetangs eingeführt, der als "grüner Kies" bezeichnet wird. Die Technik wurde erfolgreich an der Forschungsstation Flødevigen in Südnorwegen28 getestet und stellte aufgrund ihrer Kosteneffizienz und Skalierbarkeit eine vielversprechende Option für die Wiederherstellung dar. Der Arbeitsablauf dieser Technik ist wie folgt: (1) Eine Sporenlösung wird aus fruchtbarem Gewebe hergestellt, das von reproduktiven erwachsenen Seetangen auf dem Feld gesammelt und dann auf kleine Substrate wie Kies gesät wird; (2) Kelps im Frühstadium werden unter laborkontrollierten abiotischen Bedingungen auf Substraten aufgezogen; (3) Substrate mit sichtbaren Sporophyten werden im Feld an bestimmten Riffen als "grüner Kies" eingesetzt, wo Sporophyten weiter wachsen. Beachten Sie, dass typische Transplantationsbemühungen erwachsener Individuen eine mühsame und kostenhemmende Unterwasserinstallation durch Taucher erfordern und die Technik des "grünen Kieses" eine einfache Entfaltung von der Oberfläche aus verwendet28.
Die Technik des "grünen Kieses" wird derzeit von Mitgliedern zahlreicher internationaler Arbeitsgruppen29 in verschiedenen Umgebungen und mehreren laminarischen Seetangarten erprobt. Dieses Protokoll beschreibt die erforderlichen Einrichtungen, Materialien und Methoden für die Gewebeentnahme, Sporulation, Aussaat, Aufzuchtbedingungen, regelmäßige Wartung und Überwachung von Seetang im Frühstadium vor dem Einsatz dieser Wiederherstellungstechnik im Feld mit dem Riesentang Macrocystis pyrifera. Dieses Protokoll ist eine wertvolle Ressource für Forscher, Manager und Interessengruppen, die einen Einblick in die Erfolge und Grenzen dieser Methode mit M. pyrifera in verschiedenen Feldumgebungen geben möchten.

<table><tbody><tr><td>0,22 &Mikro; m Filter</td><td>Milipore</td><td>SCGPS05RE</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>1 L Glasflaschen</td><td>Amazon</td><td>B07J6JP4D1</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>1 &micro; m Filter (Wasser + Luft)</td><td>Amazon</td><td>B01M1VWUWL</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>1'' PVC 90-Grad-Winkel</td><td>Home Depot</td><td>203812125</td><td>Option 2 - Mittlere Skala - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>10 & Mikro; m Filter</td><td>Amazon</td><td>B00D04BG56</td><td>Natürliche Meerwasser-Sterilisation</td></tr><tr><td>20 & Mikro; m Filter</td><td>Amazon</td><td>B082WS9NPH</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>3x5mm Schlauch</td><td>Amazon</td><td>B0852HXPN6</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>4x4'' Sterile Gaze</td><td>Amazon</td><td>B07NDK8XM3</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>4x6mm Schlauch</td><td>Amazon</td><td>B08BCRV1FY</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>5 &Mikro; m Filter</td><td>Amazon</td><td>B082WS9NPH</td><td>Sterilisation von natürlichem Meerwasser</td></tr><tr><td>50 mL Falcon Tubing</td><td>Amazon</td><td>B01M04HGPJ</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>8x10mm Schlauch</td><td>Amazon</td><td>B01MSM3LLZ</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Luftfilter</td><td>Thermo Fisher</td><td>MTGR85010</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Alkohollampe</td><td>Amazon</td><td>B07XWD9WWC</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>Ammoniumeisen(II)-sulfat-Hexahydrat ACS-Reagenz, 99%</td><td>Sigma</td><td>215406-100G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Aquarium Grade Kies</td><td>Amazon</td><td>B07XRCKFBJ</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Biotin Pulver, BioReagenz, geeignet für Zellkultur, geeignet für Insektenzellkultur, geeignet für pflanzliche Zellkultur, 99%</td> <td>Sigma</td><td>B4639-100MG</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Borsäure, 99,8%, 10043-35-3, MFCD00011337, BH3O3, 61,83, 500g</td><td>Thermo Fisher</td><td>5090113707</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Calcium-D-Pantothenat, ge98,0% (T),C9H17NO5,137-08-6,25g,D-Pantothensäure-Calciumsalz, P0012-25G 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>P001225G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Rückschlagventile</td><td>Amazon</td><td>B08HRZR4MM</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Klarsichtschlauch 3/8'' - 10 Fuß</td><td>Amazon</td><td>B07MTYMW13</td><td>Option 2 - Mittelgroß - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>COBALT(II) SULFAT HEPTAH-100G, WARNUNG - Kalifornien - Krebsgefahr, 93-2749-100G 1/EA</td><td>Thermo Fisher 5090114752</td><td></td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Verbindungsmikroskop mit Kamera</td><td>OMAX</td><td>M83EZ-C50S</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Kulturflasche</td><td>Thermo Fisher</td><td>07-250-080</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Kulturleuchte</td><td>Amazon</td><td>B07RRRPJ63</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Brutkasten</td></tr><tr><td>Kulturverschlüsse</td><td>Amazon</td><td>B07DX6J7QD</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Entwässerungsverbinder</td><td>Amazon</td><td>B00GUZ6CV0</td><td>Option 2 - Mittelgroß - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>EDTA CAS-Nummer: 6381-92-6 Summenformel: C10H14N2O8Na2- 2H2O Molekulargewicht: 372,2</td><td>Thermo Fisher</td><td>50213299</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Eisco Safety Pack Messzylinder-Sets Klasse A, ASTM, Kapazität: 10 mL, 25 mL, 50 mL, Graduierungen: 0,2 mL, 0,5 mL, 1,0 mL, Borosilikatglas 3,3 Glas, Autoklavierbar: Ja, Klasse: Klasse A, Graduiert: Ja, Toleranz: 0,10 mL, 0,17 mL, 0,25 mL</td><td>Thermo Fisher</td><td>S81273</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Eisco Safety Pack Messzylinder-Sets Klasse A, ASTM, Kapazität: 50 mL, 100 mL, 250 mL, Graduierungen: 1,0 mL, 1,0 mL, 2,0 mL, Borosilikatglas 3,3 Glas, autoklavierbar: Ja, Klasse: Klasse A, graduiert: Ja, Toleranz: 0,25 mL, 0,50 mL, 1,0 mL</td><td>Thermo Fisher</td><td>S81275</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Eisco Safety Pack Messkolben-Sets - Klasse A, ASTM, Kapazität: 10 mL, 25 mL, 50 mL, Borosilikatglas 3.3 Glas, Autoklavierbar: Ja, Klasse: Klasse A, Verschlussmaterial: Glas, Verschlussgröße: Stopfen Anzahl: 9, 9, 13, Verschlusstyp: Penny Stopper, Graduiert: Ye</td><td>Thermo Fisher</td><td>S81271</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Filterhalter</td><td>Amazon</td><td>B07LCKBKCT</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>Fisherbrand Messzylinder, Kapazität: 500 mL, Graduierungen: 5 mL, Borosilikatglas, autoklavierbar: ja, Fehlergrenze: +/-4,0 mL, Empfohlene Anwendungen: Bildung, Unterteilung: 5 mL, S63460 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>S63460</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli s angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>FLEXACAM C1 Kamera</td><td>Leica</td><td>FLEXACAM C1</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Folsäure, C19H19N7O6, CAS-Nummer59303, Vitamin M, Pteroylglutaminsäure, Vitamin B9, Folvit, Folacin, Folacid, Pteroyllglutaminsäure, Pteglu, Folsäure, Folsäure, 25 g, 100781, CHEBI:27470, Gelb bis Orange, 2004190, 441.41, OVBPIULPVIDEAOLBPRGKRZSAN</td><td>Thermo Fisher AAJ6083314</td><td></td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Freistehende 20-Gallonen-Spüle</td><td>Amazon</td><td>B094TLH19L</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>GERMANIUM DIOXIDE 99.99 10GR</td><td>Thermo Fisher</td><td>AC190000100</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Messzylinder aus Glas, Klasse A mit rundem Boden, Eisco, Zur Verwendung mit: Messflüssigkeiten, Kapazität: 1000 ml, Graduierung: 10 mL Weiß, CH0344OWT 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>S88442</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Objektträger</td><td>Amazon</td><td>B00L1S93PS</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Glycerinphosphat, Dinatriumsalzhydrat, isomere Mischung</td><td>Sigma</td><td>G6501-100G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli" s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Wachstumsbehälter -3,4 Qt- 3,25 Lt transparente Behälter mit transparentem Deckel</td><td>Containerlager</td><td>#10014828</td><td>Option 2 - Mittelmaßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Wachstumslicht</td><td>Amazon</td><td>B086R14MFW</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Hämozytometer</td><td>Amazon</td><td>B07TJQDKLJ</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>Aufklappbare Plastikdosen</td><td>SKS Flasche & Flasche Verpackung</td><td>40280125.01S</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Inositol in Forschungsqualität, USP/NF Für die Bakteriologie. Optisch inaktiv. Getestet auf seine Eignung in Gewebekulturen. Größe - 100G Lagerbedingungen - +15 °C BIS +30 °C Katalognummer - 26310.01 CAS 87-89-8</td><td>Thermo Fisher</td><td>50247745</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Instant Ocean - 50 g</td><td>Amazon</td><td>B000255NKA</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Inverses Mikroskop Leica DMi1</td><td>Leica</td><td>DMi1</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Eisen(III)-chlorid-hexahydrat ACS-Reagenz, 97%</td><td>Sigma</td><td>236489-100G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Licor Lichtmessgerät Datenlogger</td><td>Licor</td><td>LI-250A</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Licht/Temperatur HOBO Datenlogger</td><td>Amazon</td><td>B075X2SWKN</td><td>Überwachungsleuchten</td></tr><tr><td>150W</td><td>Amazon</td><td>B0799DQM9V</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Mangansulfat-Monohydrat erfüllt die USP-Prüfspezifikationen</td><td>Sigma</td><td>M8179-100G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Mittelgroße Steine 2-3 Zoll, 20 Pfund</td><td>Home Depot</td><td>206823930</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Nikotinsäure, 99%, C6H5NO2, CAS-Nummer 59676, Daskil, Apelagrin, Acidum nicotinicum, Akotin, 3carboxypyridin, Niacin, 3Pyridincarbonsäure, Nikotinsäure, Pellagrin, Wampocap, 250 g, 109591, CHEBI:15940, 1,4, 2004410, 293 Grad. C (559 Grad. F), 123.11,Thermo</td> <td>Fisher</td><td>AAA1268330</td><td>Chemicals zur Herstellung von Provasoli" s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>p-Aminobenzoesäure 99,82% 4-Aminobenzoesäure, C7H7NO2, CAS-Nummer: 150-13-0, 25 g, 0210256925 1/EA</td><td>Thermo Fisher ICN10256925</td><td></td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>PCV-Zement</td><td>Amazon</td><td>B001D9WRWG</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Kunststoff-Wasserventil</td><td>Amazon</td><td>B0006JLVE4</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbad-Systeme</td></tr><tr><td>Kunststoff-Wasserventil</td><td>Amazon</td><td>B07G5FY7X1</td><td>Option 2 - Mittelmaßstab - Wasserbad-Systeme</td></tr><tr><td>Präzisions-Skala 1mg</td><td>Amazon</td><td>B08DTH95FN</td><td>Materialien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Pumpe für gefilterte Luft</td><td>Amazon</td><td>B0BG2BT9RX</td><td>Option 1 Kleiner Maßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>PVC-Schlauch 1x24'' Home</td> <td>Depot</td><td>202300505</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Quantum Light Meter</td><td>Apogee Instruments MQ-510</td><td></td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Kühlbrutschrank</td><td>Thermo Fisher</td><td>15-103-1566</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Gummitüllen</td><td>Amazon</td><td>B07YZD22ZP</td><td>Option 1 Kleinmaßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Salzgehalt Refraktometer</td><td>ATC</td><td>B018LRO1SU</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Schattennetz 6x50 ft</td><td>Home Depot</td><td>316308418</td><td>Option 2 - Mittelmaßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Natriumnitrat ge 99,0% Salpetersäure, Natriumsalz, NNaO3, CAS-Nummer: 7631-99-4, 500g, 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>BP360500</td><td>Chemikalien, um Provasoli' zu entwickeln s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Löten für die Belüftungsöffnung</td><td>Amazon</td><td>B08R3515SF</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Sprühen Sie Isporopylalkohol</td><td>Amazon</td><td>&lrm; B08LW5P844</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>Scheren aus Edelstahl</td><td>Amazon</td><td>B07BT4YLHT</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>Tablett aus Edelstahl</td><td>Amazon</td><td>B08CV33YXG</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>Twizzers</td><td>aus Edelstahl Amazon</td><td>B01JTZTAJS</td><td>Sporulation</td></tr><tr><td>Rührstäbchen</td><td>Amazon</td><td>B07C4TNKXB</td><td>Materialien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Tauchumwälzpumpe 400 GPH</td><td>Amazon</td><td>B07RZKRM13</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Tauchfähiger sphärischer Quantensensor</td><td>Waltz</td><td>US-SQS/L</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Temperaturpistole</td><td>Infrarot-Thermometer 749</td><td>B07VTPJXH9</td><td>Überwachung</td></tr><tr><td>Thiaminhydrochlorid BioReagenz, geeignet für Zellkulturen, geeignet für Insektenzellkulturen, geeignet für pflanzliche Zellkulturen</td><td>Sigma</td><td>T1270-25G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Thymin 99% 2, 4-Dihydroxy-5-methylpyrimidin, C5H6N2O2, CAS-Nummer: 65-71-4, 25g, 157850250 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>AC157850250</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Transparente Acrylplatte 24x48 Zoll</td><td>Home Depot</td><td>202038048</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Schlauchwasserzirkulation 1'' x10 ft</td><td>Amazon</td><td>B07ZC1PSF3</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>UV-Licht für die natürliche Meerwassersterilisation</td><td>Amazon</td><td>B018OI7PYS</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>Vakuumpumpe</td><td>Amazon</td><td>B087XBTPVW</td><td>Natürliche Meerwassersterilisation</td></tr><tr><td>Vitamin B12 BioReagenz, geeignet für Zellkulturen, geeignet für Insektenzellkulturen, geeignet für pflanzliche Zellkulturen, 98%</td> <td>Sigma</td><td>V6629-100MG</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Messkolben, Glas der Klasse A, Eisco, mit Polypropylen-Stopfen, graduiert, weiß gedruckte Markierungen, Kapazität: 1000 ml, CH0446IWT 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>S89446</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Messkolben, Glas der Klasse A, Eisco, mit Polypropylen-Stopfen, graduiert, weiß gedruckte Markierungen, Kapazität: 500 ml, CH0446HWT 1/EA</td><td>Thermo Fisher</td><td>S89445</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli' s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine für die Medienanreicherung</td></tr><tr><td>Wasserkühler 200-600GPM</td><td>Amazon</td><td>B07BHHP71C</td><td>Option 2 - Mittlerer Maßstab - Wasserbadsysteme</td></tr><tr><td>Y-Splitter für 4x6mm Schläuche</td><td>Amazon</td><td>B08XTJKFCH</td><td>Option 1 Kleiner Maßstab - Inkubator</td></tr><tr><td>Zinksulfat-Heptahydrat BioReagenz, geeignet für Zellkultur</td><td>Sigma</td><td>Z0251-100G</td><td>Chemikalien zur Herstellung von Provasoli s Angereichertes Meerwasser (PES) und Vitamine zur Medienanreicherung</td></tr></tbody></table>

feldsammlung und laborwartung von kronendachbildendem riesentang zur erleichterung der wiederherstellung

Field Collection and Laboratory Maintenance of Canopy-Forming Giant Kelp to Facilitate Restoration

Kronenbildende Seetange sind wichtige Grundarten, die die biologische Vielfalt unterstützen und Ökosystemdienstleistungen im Wert von mehr als 500 Milliarden US-Dollar pro Jahr erbringen. Der weltweite Rückgang von Riesentangwäldern aufgrund klimabedingter ökologischer Stressoren unterstreicht die Notwendigkeit innovativer Wiederherstellungsstrategien. Eine aufkommende Renaturierungstechnik, die als "grüner Kies" bekannt ist, zielt darauf ab, junge Seetange großflächig ohne umfangreiche Unterwasserarbeit zu säen, und stellt aufgrund ihrer Kosteneffizienz und Skalierbarkeit ein vielversprechendes Wiederherstellungswerkzeug dar. Dieser Videoartikel veranschaulicht ein Protokoll und Werkzeuge zur Kultivierung von Riesentang, Macrocystis pyrifera. Es bietet auch eine Ressource für weitere Studien, um die Erfolge und Grenzen dieser Methode im Feld zu untersuchen. Wir skizzieren Feld- und Labormethoden zum Sammeln von Fortpflanzungsgewebe, Sporulieren, Impfen, Aufziehen, Pflegen und Überwachen von Substraten, die mit frühen Lebensstadien besät wurden, unter Verwendung der "Grünkies"-Technik. Das Protokoll vereinfacht und zentralisiert die aktuellen Wiederherstellungspraktiken in diesem Bereich, um Forscher, Manager und Interessengruppen bei der Erreichung der Ziele zum Schutz von Seetang zu unterstützen.

Die Wiederherstellungstechnik des "grünen Kieses" befindet sich noch in der Pilotphase, mit begrenzten Daten zum Überleben von Außenpflanzen für andere Arten28 und noch keine veröffentlichten Daten für Macrocystis pyrifera. Unter Verwendung der Feldsammlung und der Laborwartung, die in diesem Protokoll beschrieben sind, testeten wir die Bedeutung der standortspezifischen Aufzuchtbedingungen für zwei verschiedene Donor-Kelp-Populationen vor dem hypothetischen Einsatz von "grünem Kies" (Abbildung 5). Reproduktives Seetanggewebe wurde in Kalifornien (USA) aus kühleren K1 (Santa Cruz 36,60167°N, 121,88508°W) und wärmeren K4 (San Diego, 32,85036°N, -117,27600°W) Populationen gesammelt und bei zwei Temperaturen aufgezogen: (1) 12 °C (die Standardkultivierungstemperatur für Algenaquakulturen und die mittlere Winter-SST für K1) und (2) 20 °C (die mittlere Sommer-SST für K4, und eine Hitzewelle von 4 °C für K1). Alle Glasobjektträger, die zur Überwachung der Entwicklung des Seetang-Lebenszyklus verwendet wurden, wurden mit einem standardisierten Gitter markiert, und mit diesem Gitter wurden hochauflösende Bilder aufgenommen, um die Beobachtung fester Felder im Laufe der Zeit mit einem inversen Mikroskop und einer Kamera zu ermöglichen (N = 5 Bilder pro Probe, 2,479 mm x 1,859 mm).
Nach 24 Tagen nach der Sporulation wurden Gametophyten anhand von Mikroskopbildern gezählt (N = 300 Bilder aus 60 Proben). Um Unterschiede in der Gametophytenzahl zu testen, wurden verallgemeinerte lineare Mixed-Effects-Modelle mit Poisson-Verteilung unter Verwendung der Funktion glmmTMB() im Paket glmmTMB41 verwendet, und paarweise Vergleiche wurden mit emtrends() aus dem Paket emmeans42in R durchgeführt. Unsere Ergebnisse zeigen, dass die Reaktion der Gametophyten auf die thermische Variabilität zwischen K1- und K4-Populationen unterschiedlich war (t = 2,7, p = 0,007), wobei die Temperatur keinen Effekt für die wärmere K4-Population hatte (Schätzung = -0,01, Standardfehler [SE] = 0,01, Konfidenzintervall [CI] = [-0,03, 0,01]), aber einen Effekt für die kühlere K1-Population (Schätzung = -0,06, SE = 0,02, CI = [-0,10, -0,03]) (Abbildung 6A), was auf eine mögliche adaptive Divergenz der thermischen Toleranzmerkmale hindeutet. Kelp-Gametophyten werden oft als Resistenzstadium43 dargestellt, was bedeutet, dass sie einen Allzweck-Phänotyp produzieren, der stresstolerant und relativ unempfindlich gegenüber Umweltschwankungen ist. Diese Ergebnisse deuten jedoch darauf hin, dass die thermische Variabilität in diesem frühen Stadium einen erheblichen Druck ausübt.
Nach 32 Tagen nach der Sporulation wurden sichtbare Sporophyten mit einer Länge von mehr als ca. 1 mm auf der Gesamtheit jedes 2,5 cm x 7,5 cm großen Objektträgers gezählt (N = 72 Gesamtproben). Um Unterschiede in der Anzahl der sichtbaren Sporophyten zu testen, wurden verallgemeinerte lineare Mixed-Effects-Modelle mit Poisson-Verteilung unter Verwendung der Funktion glmmTMB() im Paket glmmTMB und paarweise Vergleiche mit emtrends() aus Paketemmeans in R durchgeführt. Unsere Ergebnisse zeigen, dass die Reaktion von Sporophyten auf thermische Variabilität zwischen K1- und K4-differenzierten Populationen (z = 0,92, p = 0,36) ähnlich ist, wobei die Temperatur einen Einfluss auf die wärmere K4-Population (Schätzung = -0,66, SE = 0,04, CI = [-0,74, - 0,57]) sowie die kühlere K1-Population (Schätzung = -0,85, SE = 0,13, CI = [-1,10, -0,60]) hatte (Abbildung 6B). Proben, die bei 20 °C aufgezogen wurden, wuchsen nur wenige sichtbare Sporophyten (Mittelwert ± SE = 0,4 ± 0,2) im Vergleich zu Proben, die bei 12 °C aufgezogen wurden (Mittelwert ± SE = 82,4 ± 9,8). Dieses Ergebnis deutet darauf hin, dass die Sporophytenproduktion temperaturempfindlicher ist als das Gametophytenstadium und dass die standortspezifischen Kultivierungstemperaturen 15 °C nicht überschreiten dürfen, um die Sporophytenentwicklung wie im Protokoll beschrieben zu erreichen.
<img alt="Aufbau eines Pflanzenwachstumsversuchs in der Wachstumskammer; Enthält Behälter mit kontrollierter Atmosphäre, Schläuche und Sensoren." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66092/66092fig01.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> Abbildung 1: Diagramm des Inkubatorsystems "grüner Kies". (A) Rotlichtquelle für vegetativ aufblähende Gametophytenkulturen. (B) Zugangsöffnung für elektrische Leitungen und Schläuche, die zu einer externen Steckdose führt. (C) Struktur, um Vollspektrumlicht aus dem Rotlichtbereich zu blockieren. (D) Ein "Grünkies"-Anbauabschnitt. (E) Vollspektrum-Lichtquellen. (F) Schlauchleitungen, die an eine externe gefilterte Luftquelle angeschlossen sind. (G) Rückschlagventile zur Reduzierung der Kontamination in der Luft. (H) Einzelne Kulturbehälter, die die Kontamination minimieren. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/66092fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Prozessdiagramm der solaren Entsalzung mit mehreren Tanks, das die Einrichtung der Wasseraufbereitung hervorhebt." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66092/66092fig02.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> Abbildung 2: Diagramm des Wasserbadsystems "Grünkies". (A) Kühler mit Tauchpumpe (in I). (B) 20-Gallonen-Wanne für Wasserbäder. (C) Abtropfen lassen, um das Wasserbad umzuwälzen. (D) Ventil zur Umwälzung des Wasserbads. (E) Lichtquelle. (F) 2,5-Liter-Behälter "grüner Kies" mit transparentem Deckel und Belüftungsöffnung. (G) Belüftungsquelle. (H) Rohre, die Wasser mit Hilfe von Tauchpumpen umwälzen. (I) Wasserbadabscheider von/zu Kühler von/zu Wannen mit Tauchpumpen. (J) Acrylabdeckung zur Minimierung der Verdunstung im Wasserbad. (K) Netzschirm zur Einstellung der Lichtintensität. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/66092fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Diagramm zur Identifizierung des Lebensstadiums: Ansiedlung von Zoosporen, Keimung, Gametophyt, Sporophytenentwicklung." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66092/66092fig03v2.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> Abbildung 3: Entwicklung von Macrocystis pyrifera . Entwicklungsstadien der Lebensgeschichte von Macrocystis pyrifera aus Laborwachstumsversuchen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/66092fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Wachstumsphasen des Seetangs über 120 Tage; Laborkultivierung für das Feldwachstum; Sequenzielle Bildanalyse." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66092/66092fig04.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 4"> Abbildung 4: "Grüner Kies" mit Macrocystis pyrifera. Grüner Kies, der mit Macrocystis pyrifera gesät wird, wird im Labor kultiviert, bis die Sporophyten 1-2 cm erreichen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/66092fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Vergleich des Algenwachstums bei 12°C und 20°C über 40 Tage; Mikroskopieren Sie Bilder in Intervallen." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66092/66092fig05.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 5"> Abbildung 5: Experimentelle Zeitreihen. Beispielbilder aus einer Zeitreihe, die das experimentelle Wachstum und die Entwicklung von Macrocystis pyrifera Gametophyten und Sporophyten verfolgt, die aus zwei Populationen stammen, die in Kalifornien (USA) gesammelt und bei zwei verschiedenen Temperaturen kultiviert wurden. K1 = Santa Cruz, K4 = San Diego. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/66092fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Temperatureinfluss auf Gametophyten und Sporophyten; Balkendiagramm zum Vergleich des Wachstums der Arten K4, K1." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66092/66092fig06.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 6"> Abbildung 6: Repräsentative Ergebnisse. Macrocystis pyrifera-Lebensstadien beobachtet für K1 Santa Cruz San Diego K4 Santa Cruz Ursprungspopulationen, kultiviert unter konstanten thermischen Bedingungen von 12 und 20 °C. Fehlerbalken, Mittelwert ± 1 SE. Sternchen (*) kennzeichnet statistisch signifikante Unterschiede (p &lt; 0,05). (A) Gametophyten am Tag 24 (N = 300 Gesamtbilder von 60 Proben). (B) Sichtbare Sporophyten am Tag 32 (N = 72 Proben, innerhalb einer standardisierten Fläche von 2,5 cm x 7,5 cm). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/66092fig06large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
Ergänzende Akte 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66092/Supplemental%20File_Calendar%20R2.zip" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.</a>

Dieses Protokoll beschreibt die Feldsammlung und die regelmäßige Laborpflege von Substraten, die mit kronenbildendem Riesentang besät sind, um sie in Wiederherstellungsversuchen zu verwenden, um den Erfolg und die Grenzen der "Grünkies"-Technik im Feld zu untersuchen.

Feldsammlung und Laborwartung von Kronendachbildendem Riesentang zur Erleichterung der Wiederherstellung

Canopy-forming kelps are essential foundation species, supporting biodiversity and providing ecosystem services valued at more than USD$500 billion ...

Seetangwälder sind aufgrund klimabedingter Umweltstressoren und Verschiebungen in der trophischen Dynamik mit beispiellosen Verlusten konfrontiert. Dieses Video veranschaulicht ein Protokoll und Werkzeuge für die Kultivierung von Riesentang, Macrocystis pyrifera, unter Verwendung der Grünkiestechnik und bietet eine wertvolle Ressource für weitere Versuche, um die Erfolge und Grenzen dieser Methode in verschiedenen Umgebungen zu untersuchen. Kelp-Zuchtanlagen müssen in der Lage sein, Temperaturen zwischen 10 und 15 Grad Celsius zu kontrollieren, Vollspektrumlicht zwischen null und 180 Mikromol-Photonen pro Quadratmeter pro Quadratsekunde und gefilterte Belüftung bereitzustellen.Inkubatorsysteme mit eingebautem Auslass oder einer Zugangsöffnung für Drähte und Schläuche können mit Leuchten und einer Luftquelle angepasst werden. Wenn ein Inkubatorsystem nicht innerhalb des Umfangs, des Budgets oder des beabsichtigten Umfangs des Projekts liegt, können Wasserbäder verwendet werden, die entweder mit kühlem natürlichem Meerwasser temperiert werden, oder ein Kühler. Die Aufzuchttemperaturen sind standort- und jahreszeitabhängig.Stellen Sie ein Thermometer in Wachstumsmedien oder verwenden Sie eine Temperaturpistole, um sicherzustellen, dass die Temperatur zwischen 10 und 18 Grad Celsius liegt. Stellen Sie Vollspektrumlichter auf eine 12-Stunden-Licht- und 12-Stunden-Dunkelfotoperiode ein, indem Sie die Timing-Einstellungen an der Lichtquelle verwenden oder die Lichtquelle an einen Timer mit programmierbarem Zyklus anschließen. Messen Sie die Lichtintensität mit einem PAR-Quantenmessgerät unter der Oberfläche in der Nähe des Kieses und stellen Sie sie mit einer dimmbaren Lichtquelle oder durch Schichten eines Netzes über der Lichtquelle ein.Die Belüftung wird den Kulturen mit Hilfe von Luftpumpen zugesetzt. Verwenden Sie Filter mit einer Porengröße von 02 Mikrometern, um die bakterielle Kontamination in der Luft zu reduzieren. Materialien und Stationen sollten im Voraus sterilisiert und vorbereitet werden.Siehe Text für Details. Kies, der für die Aussaat verwendet wird, sollte eine strukturierte oder leicht entkernte Oberfläche haben, da Gametophyten eher auf Substraten mit hoher Rauheit zurückgehalten werden. Schrubben und spülen Sie Kies, bis das Wasser klar ist, um Staub oder Schmutz zu entfernen.Kies mindestens 24 Stunden in einer 10% verdünnten Bleichlösung einweichen und mit filtersterilisiertem Meerwasser abspülen. Berechnen Sie die Menge an filtersterilisiertem Meerwasser, die jede Woche zur Auffrischung von Kulturbehältern benötigt wird, und planen Sie diese Filtrations- und Sterilisationsaufgabe entsprechend. Große Mengen filtersterilisiertem Meerwasser können in dunklen Behältern bis zu sechs Monate bei acht bis 10 Grad Celsius gelagert werden.Wenn keine Kühlung verfügbar ist, lagern Sie es an einem dunklen, kühlen Ort. Filtern Sie Wasser mit einem Vakuumfiltrationssystem mit einer Porengröße von 55 bis zu einem Mikrometer. Schalten Sie die Vakuumquelle aus, bevor das gesamte Wasser durchgezogen ist, um eine Beschädigung des Filters zu vermeiden, und gießen Sie das gefilterte Wasser in einen speziellen sterilen Behälter.Bei größeren Volumina kann ein Durchflussfiltrationssystem verwendet werden. Lassen Sie beispielsweise Meerwasser durch eine Reihe von drei Faltenfiltern, 10 Mikrometer, fünf Mikrometer und einen Mikrometer, angeordnet von der größten bis zur kleinsten Porengröße. Dieses Durchflusssystem ist mit einem UV-Licht im Aquarium verbunden.Sterilisieren Sie gefiltertes Meerwasser mit UV- und/oder Autoklaviermethoden. Die Anreicherung von filtersterilisiertem Meerwasser mit Nährstoffen und Vitaminen ist entscheidend für das Wachstum von Seetang. Zu den gängigen Anreicherungsoptionen gehören mit Provasoli angereicherte Meerwassermedien und F/2-Medien.Siehe Text für Details. Holen Sie die erforderlichen Genehmigungen für die Entnahme von Seetanggewebe ein, die den örtlichen Gesetzen und Vorschriften entsprechen. Wählen Sie beim Tauchen drei bis fünf Sporophyllklingen von 10 bis 15 fruchtbaren Macrocystis pyrifera-Individuen mit sichtbaren Sori im Abstand von zwei bis fünf Metern aus.Wählen Sie nach Möglichkeit saubere und intakte Sporophylle mit wenig bis gar keiner Verschmutzung oder Degradation. Lagern Sie Sporophyllklingen ab diesem Zeitpunkt getrennt nach dem Elternindividuum. Sporophylle wachsen in einem dichten Mantel an der Basis über dem Halt des erwachsenen Seetangs und sind an ihrem Fehlen gasgefüllter Pneumatozysten zu erkennen.Transportieren Sie Sporophyllklingen in dunklen Auffangbeuteln, um eine übermäßige Sonneneinstrahlung zu vermeiden, die nur minimal mit Meerwasser vom Standort gefüllt ist, um die Klingen feucht zu halten, und lagern Sie sie in Kühlboxen bei ca. 12 Grad Celsius bis zur Ankunft im Zuchtraum. Stellen Sie sicher, dass die Proben nicht in direktem Kontakt mit Eis stehen. Sporophylle können an oder von anderen Orten aus versendet werden.Sporophylle mit gefiltertem, sterilisiertem Meerwasser abspülen. Wickeln Sie die von einem einzelnen Macrocystis pyrifera-Individuum gesammelten Klingen in feuchte Papiertücher, die in gefiltertem, sterilisiertem Meerwasser getränkt sind, und erneut in Aluminiumfolie, um das Eindringen von Licht und zusätzliche Austrocknung zu vermeiden. Diese Art der Lagerung ist allgemein als Burrito-Methode bekannt.Legen Sie diese Verpackungen in eine Kühlbox mit Eis mit einer Schutzbarriere, z. B. recycelter Luftpolsterfolie oder Pappe. Bereiten Sie die Kühlbox für den Versand über Nacht vor und stellen Sie sicher, dass jemand verfügbar ist, um die Sendung entgegenzunehmen und die Pakete gekühlt aufzubewahren. Lagern Sie Sporophylle optional 12 bis 48 Stunden lang unter gekühlten Bedingungen, was die Sporenfreisetzung aus Sorusgewebe fördert.Verwenden Sie zum Aufbewahren die Burrito-Methode. Bei optionaler Lagerung finden Sie auf den Papiertüchern Anzeichen einer teilweisen Sporulation, die auf das Vorhandensein von fruchtbarem Sorusgewebe hinweisen. Sorusgewebe ist oft leicht erhaben und dunkler gefärbt als das umgebende Gewebe.Wählen Sie reifes Sorusgewebe aus und schneiden Sie es mit einer sterilen Schere in 25 Zentimeter große quadratische Abschnitte. Wählen Sie ein bis zwei saubere Sori-Abschnitte von 10 bis 15 einzelnen Seetangeltern aus, um die genetische Vielfalt zu fördern. Schrubben Sie zum Reinigen beide Seiten des Sorusgewebes vorsichtig nur in eine Richtung mit einer sterilen Gaze, die mit filtersterilisiertem Meerwasser angefeuchtet ist.Kratzen Sie das Sorusgewebe bei Bedarf vorsichtig mit einer sterilen Rasierklinge ab. Tauchen Sie den Sori-Abschnitt 30 Sekunden bis eine Minute lang in ein Süßwasserbad und spülen Sie ihn mit filtersterilisiertem Meerwasser ab. Tauchen Sie jeden Sori-Abschnitt in filtersterilisiertes Meerwasser, das in einem sterilen 50-Milliliter-Falcon-Röhrchen auf 10 bis 15 Grad Celsius temperiert ist.Alternativ können Sori-Abschnitte in einem einzigen sterilen Behälter sporulieren. Legen Sie die Röhrchen bei vier bis 12 Grad Celsius in die Dunkelheit, um maximal vier Stunden lang zu sporulieren. Wenn kein Kühlschrank verfügbar ist, lagern Sie es an einem kühlen, lichtschwachen Ort.Beobachten Sie mit einem Verbundmikroskop und einem Hämozytometer die Sporendichte von drei bis vier Proben alle 30 Minuten bis zu vier Stunden. Wechseln Sie die Pipettenspitzen zwischen den Proben. Wenn die Dichte mindestens 10.000 Sporen pro Milliliter beträgt, fahren Sie mit dem nächsten Schritt fort.Wenn ein Sori-Schnitt nach vier Stunden keine Sporen produziert, ist die Probe zu verwerfen. Sporen können sich innerhalb von Stunden nach der Freisetzung ansiedeln, können aber auch beim Schwimmen in kreisenden Bewegungen beobachtet werden. Entferne jeden der Sori-Abschnitte aus ihren Falcon-Röhren.Kombinieren Sie die resultierenden Sporenlösungen in einem einzigen sterilisierten Behälter und quantifizieren Sie die endgültige kombinierte Dichte. Berechnen Sie das endgültige Volumen der Sporenlösung, das für die Inokulation benötigt wird, für eine Endkonzentration von 500 bis 1.000 Sporen pro Milliliter in Kulturbehältern. Siehe Text für Details.Legen Sie sterile Glasobjektträger in Kulturbehälter, um die Seetangentwicklung zu überwachen. Fügen Sie mindestens 30 Objektträger hinzu, die nach dem Zufallsprinzip auf Kulturbehälter verteilt sind, um eine ausreichende Überwachung zu gewährleisten. Das berechnete Volumen der Sporenlösung wird mit einer sterilen Pipettenspitze, die in Wachstumsmedien getauchte Substrate enthält, in den Kulturbehälter inokuliert.Schließen Sie den Behälter und rühren Sie vorsichtig um, um die Sporen zu verteilen. Stellen Sie den Behälter in Ihr Kultursystem. Stellen Sie Ihre Temperatur zwischen 10 und 15 Grad Celsius ein, basierend auf der Temperatur an Ihrem Einsatzort.Vollspektrumlampen für Wasserpflanzen sind auf einen 12-Stunden-Licht- und 12-Stunden-Dunkelzyklus mit Lichtintensitäten zwischen null und 180 Mikromol-Photonen pro Quadratmeter pro Quadratsekunde eingestellt. Siehe Text für eine Zeitleiste mit bestimmten Lichtverhältnissen. Nach einem Tag mit einer gefilterten Luftquelle für eine leichte Belüftung sorgen.Überwachen Sie in den ersten zwei Wochen mindestens zwei zufällige Objektträger täglich oder jeden zweiten Tag, um die Entwicklung zu beurteilen. Überwachen Sie nach zwei Wochen mindestens zwei zufällige Objektträger ein- bis zweimal wöchentlich auf gesundes Wachstum und Kontamination, bis die Sporophyten ein bis zwei Zentimeter groß werden. Zur Überwachung den Objektträger mit einer sterilisierten Pinzette anfassen und in eine saubere Petrischale legen, die genügend sterilisiertes Meerwasser enthält, um den Objektträger einzutauchen.Geben Sie Glasobjektträger nach dem Entfernen nicht in Kulturen zurück, um Kreuzkontaminationen zu vermeiden. Verwenden Sie ein zusammengesetztes oder inverses Mikroskop mit einer 40- bis 400-fachen Vergrößerung, um Seetang im Frühstadium zu beobachten. Die Entwicklung wird voraussichtlich dem folgenden Zeitplan folgen.Angesiedelte Sporen werden bei null bis einem Tag beobachtet. Sporen können innerhalb weniger Stunden keimen, was sich in der Bildung eines Keimschlauchs zeigt. Die Keimung wird typischerweise nach ein bis zwei Tagen beobachtet.Frühe Gametophyten werden typischerweise nach ein bis vier Tagen beobachtet. Gametogenese, der Prozess, bei dem sich Zellen teilen und differenzieren, um männliche und weibliche Gameten zu bilden, wird typischerweise innerhalb der ersten zwei Wochen beobachtet. Weibliche Zellen sind fünf- bis siebenmal größer als männliche.Männliche Gametophyten wachsen dünne fadenförmige Äste, während Weibchen runder oder eiförmiger sind. Weibchen produzieren in der Regel innerhalb von zwei bis drei Wochen Eier. Die von den Männchen freigesetzten Spermien befruchten die Eier, die sich zu embryonalen Sporophyten entwickeln.Sporophyten werden typischerweise innerhalb von zwei bis vier Wochen beobachtet. Die Zygote durchläuft eine schnelle Zellteilung, was innerhalb von etwa sechs bis acht Wochen zum Wachstum von ein bis zwei Zentimetern großen Klingen führt. Wechseln Sie jede Woche das Wachstumsmedium, um die notwendigen Nährstoffe und Mineralien für das Wachstum von Macrocystis pyrifera wieder aufzufüllen.Kühlen Sie frische Wachstumsmedien auf die entsprechende Temperatur. Achten Sie darauf, dass das Nährmedium während dieses Prozesses 15 Grad Celsius nicht überschreitet. Saugen Sie Medien aus Ihren Kulturbehältern, um die Störung der ausgesäten Substrate zu vermeiden.Lassen Sie das Medium abtropfen, bis der Behälter fast leer ist. Aktualisieren Sie die Medien sofort, um das Austrocknen zu minimieren. Kippen Sie die Wachstumsbehälter beim Nachfüllen leicht, damit das Medium an der Seite des Kulturbehälters herunterläuft, um die Substrate so wenig wie möglich zu stören.Ordnen Sie die Positionen von Behältern oder Wannen während des wöchentlichen Medienwechsels nach dem Zufallsprinzip an, um Unterschiede in der Lichteinstrahlung zu berücksichtigen. Siehe den Text für einen Kalender, um Aktivitäten und Erwartungen für Macrocystis-Kulturen zu verfolgen. Es zeigt den Zeitpunkt der Anpassung von Licht und Belüftung sowie den wöchentlichen Medienwechsel an.Nach sechs bis acht Wochen Laborkultivierung sind die jungen Sporophyten ein bis zwei Zentimeter lang und bereit für den Einsatz. Aktualisieren Sie Wachstumsmedien in Kulturbehältern 24 Stunden vor der Bereitstellung. Holen Sie die erforderlichen Genehmigungen für den Kieseinsatz ein, die den örtlichen Gesetzen und Vorschriften entsprechen.Transportieren Sie grünen Kies bis zu sechs Stunden in einer schattigen Kühlbox. Der Einsatz sollte zeitlich so gewählt werden, dass die direkteste Sonneneinstrahlung vermieden wird. Verwenden Sie eine schattige Struktur auf dem Boot, um direkte Sonneneinstrahlung während des Einsatzes zu vermeiden.Streuen Sie vorsichtig grünen Kies von der Oberfläche auf das darunter liegende Riff oder durch Tauchen, wenn Sie an neuen Standorten und in kleinem Maßstab testen. Die Technik der Wiederherstellung von Grünkies befindet sich noch in der akademischen Phase, mit begrenzten Daten zum Überleben von Außenpflanzen für andere Arten und noch keine Daten für Macrocystis pyrifera. Nichtsdestotrotz wurde in einer kürzlich durchgeführten Pilotstudie ein Erfolg im Feld beobachtet, der durch die Anhaftung von Haptera an das umgebende Substrat und juvenilen Seetang angezeigt wurde, der nach zwei Monaten im Feld bis zu 1,2 Meter hoch wurde.Unter Verwendung der in diesem Protokoll beschriebenen Feldsammlung und Laborwartung kultivierten wir zwei verschiedene Donor-Kelp-Populationen bei 12 Grad Celsius und 20 Grad Celsius, um temperaturabhängige Auswirkungen auf die Entwicklung von Mikrostadien von Macrocystis pyrifera im Laufe der Zeit aufzuklären. Nach 24 Tagen wurden Gametophyten anhand von Mikroskopbildern gezählt. Die Temperatur hatte einen Effekt für die kühlere K1-Population, aber nicht für die K4-Population, was auf eine mögliche adaptive Divergenz in den thermischen Toleranzmerkmalen hindeutet.Dies unterstreicht die Bedeutung standortspezifischer Aufzuchttemperaturen. Nach 32 Tagen wurden sichtbare Sporophyten auf jedem Objektträger gezählt. Die Temperatur hatte einen ähnlichen Effekt sowohl für die K1- als auch für die K4-Population.Proben, die bei 20 Grad Celsius aufgezogen wurden, wuchsen nur wenige sichtbare Sporophyten im Vergleich zu denen, die bei 12 Grad Celsius aufgezogen wurden. Dieses Ergebnis deutet darauf hin, dass die Sporophytenproduktion temperaturempfindlicher ist als das Gametophytenstadium und dass die Kultivierungstemperaturen 15 Grad Celsius nicht überschreiten dürfen, um die Sporophytenentwicklung zu erreichen, wie im Protokoll beschrieben. Mit diesem visualisierten Protokoll hoffen wir, weitere Versuche mit der Grünkiesmethode zu fördern, um die Wiederherstellung wertvoller Unterwasser-Seetangwälder durch Forscher und Manager weltweit zu verbessern.Viel Glück auf Ihrer grünen Kiesreise mit Macrocystis pyrifera.

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Dieses Protokoll beschreibt eine einfache, kostengünstige Baumpflanzung-Technik für die Wiederherstellung degradierter Everglades-Baum-Inseln, die Überschwemmung zu erleben. Das Design schafft eine Insel (Pop-up), die zunächst schwimmt und fügt Höhe Baum überleben und Wachstum überschwemmten Bedingungen zu fördern.

Eine einfache Bepflanzung Technik für Wiederherstellung des Bäume wo tritt häufig Überschwemmung

Die Nonnengänse (Amphibalanus) Balanus Improvisus ist ein Modell für die Untersuchung Muskeltätigkeit und Antifouling. Natürliche saisonale Laichen führt jedoch eine unvorhersehbare Versorgung mit Cyprid Larven. Hier ist ein Protokoll für die All-Year-Round Kultivierung von B. Improvisus beschrieben, einschließlich der Erstellung von Larven. Die Verwendung von kultivierten Seepocken in genexpressionsstudien wird dargestellt.

Die Barnacle Balanus Improvisus als Marine Modell - Kultivierung und Genexpression

Die meisten Pflanzen innerhalb der Gemeinschaften, die wahrscheinlich durch arbuskulären Mykorrhizapilze (AM) miteinander verbunden sind, sondern Vermittlung von Pflanze-Interaktionen von ihnen wurde vor allem durch wachsende Pflanzen mit vs. ohne Mykorrhizen untersucht. Wir präsentieren Ihnen eine Methode zur gemeinsamen Mykorrhiza Netze unter Mykorrhiza Pflanzen zu untersuchen, deren Folgen für die Pflanze-Interaktionen zu manipulieren.

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Doliolide, einschließlich der Art Dolioletta gegenbauri, sind kleine gelatinöse Marine Zooplankton von ökologischer Bedeutung auf produktiven subkontinentalen Regalsystemen weltweit gefunden. Die Schwierigkeit, diese empfindlichen Organismen zu kultivieren, schränkt ihre Untersuchung ein. In dieser Studie beschreiben wir Anbauansätze für das Sammeln, Aufzucht und die Pflege des Doliolid Dolioletta gegenbauri.

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Oikopleura dioica ist ein Tunika-Modellorganismus in verschiedenen Bereichen der Biologie. Wir beschreiben Probenahmemethoden, Artenidentifikation, Kultivierungsaufbau und Kultivierungsprotokolle für die Tiere und Algenfutter. Wir heben Schlüsselfaktoren hervor, die zur Stärkung des Kultursystems beigetragen haben, und diskutieren die möglichen Probleme und Lösungen.

Optimierte Probenahme und Kultivierung des pelagischen Kosmopolitischen Larvacean, Oikopleura dioica

Polypen-Bail-out ist ein Prozess, der durch akuten Stress induziert wird, bei dem Korallenpolypen das Gewebe verdauen, das sie mit ihrer Kolonie verbindet, und sich von ihr lösen, um als Individuen zu leben. Das vorliegende Protokoll beschreibt, wie die Mikrovermehrung von Korallen durch Bail-out mit hypersalinen oder kalziumfreien Meerwasserbehandlungen induziert werden kann.

Induktion der Polypenrettung in Korallenkolonien, um individualisierte Mikropropagate für den experimentellen Laboreinsatz zu erhalten

Festgemachte geodätische Strukturen in der Mitte des Wassers, die als Korallenarchen bezeichnet werden, bieten eine modulare, skalierbare und vertikal einstellbare Forschungsplattform, mit der Korallenriffgemeinschaften in zuvor nicht funktionierenden Gebieten, einschließlich Offshore, aufgebaut, überwacht und gestört werden können.

Korallenriff-Archen: Ein In-situ-Mesokosmos und ein Toolkit für den Aufbau von Riffgemeinschaften

Der Klimawandel wirkt sich weltweit auf die Ökosysteme der Korallenriffe aus. Korallen, die aus Ex-situ-Aquakultursystemen stammen, können dazu beitragen, Renaturierungs- und Forschungsbemühungen zu unterstützen. In dieser Arbeit werden Fütterungs- und Korallenkulturtechniken beschrieben, die zur langfristigen Erhaltung brütender Skleraktinenkorallen ex situ eingesetzt werden können.

Effektive Techniken für die Fütterung und Ex-situ-Kultivierung einer brütenden Skleractinien-Koralle, Pocillopora acuta

Hier beschreiben wir verschiedene Protokolle, die auf eine integrierte Aufwertung von Gracilaria gracilis abzielen: Ernte von Wildarten, Eigenzucht und Extraktion von bioaktiven Inhaltsstoffen. Die antioxidative, antimikrobielle und zytotoxische Wirkung der Extrakte wird ebenso bewertet wie die Nährwert- und Stabilitätsbewertung von Lebensmitteln, die mit ganzer Algenbiomasse und Pigmenten angereichert sind.

Aufwertung der Rotalge Gracilaria gracilis durch einen Bioraffinerieansatz

Dieses Protokoll umfasst eine vierstufige großflächige bildgebende Erhebungsmethode, die zur Extraktion von Metriken der strukturellen Komplexität, der Zusammensetzung der Gemeinschaft und der Populationsdemografie für Korallenriffgemeinschaften verwendet wird. Die Qualität der erfassten Bilder und der integrierte Zugriff auf die Quellbilder werden in jedem Schritt des Protokolls priorisiert.

Messung der Struktur, Zusammensetzung und Veränderung von Unterwasserumgebungen mit großflächiger Bildgebung

Erfahren Sie die Green-Gravel-Technik zur Kultivierung von Riesentang Macrocystis pyrifera für marine Ökosystemrestaurierung. Dieses Protokoll zeigt optimale Temperatur- und Lichtbedingungen für erfolgreiche Wiederherstellung von Tangwäldern.

Feldsammlung und Laborwartung von Kronendachbildendem Riesentang zur Erleichterung der Wiederherstellung

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