Name: Herstellung von Zinkoxid-Nanopartikeln und die Bewertung ihrer antibakteriellen Wirkung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-09-27T13:05:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: Erfahren Sie die Fällungssynthese von Zinkoxid-Nanopartikeln zur Bewertung ihrer antibakteriellen Wirkung gegen MRSA und Pseudomonas aeruginosa. Diese einfache Methode ermöglicht die effiziente Massenproduktion biokompatibler Nanopartikel für klinische Anwendungen.

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Die in dieser Studie verwendeten Reagenzien und Geräte sind in der Materialtabelle aufgeführt.
1. Herstellung von Zinkoxid-Nanopartikeln
<ol><li>Messen Sie 200 ml absoluten Ethylalkohol ab und gießen Sie ihn in einen Glaskolben mit rundem Boden.</li>
	<li>Den Rundkolben auf eine Heizhaube stellen und bei 25-40 °C weiterrühren.</li>
	<li>Messen Sie 500 mg CTAB in einer 50-ml-Durchstechflasche und fügen Sie es dem Ethylalkohol im Kolben hinzu. Rühren, bis sich das CTAB vollständig aufgelöst hat.</li>
	<li>Geben Sie 1,4 g Zinkacetat in die Lösung und rühren Sie, bis es sich vollständig aufgelöst hat.</li>
	<li>Erhöhen Sie die Temperatur der Lösung, indem Sie die Temperatur der Heizhaube auf 70 °C einstellen.</li>
	<li>Geben Sie 25 ml 0,5 M NaOH-Lösung zu der Mischung und lassen Sie sie 1 h lang reagieren, bis die klare Lösung eine weiße Farbe annimmt.</li>
	<li>Aliquotieren Sie die Lösung in konische 50-ml-Röhrchen, zentrifugieren Sie sie 15 Minuten lang bei Raumtemperatur bei 15000 × g und verwerfen Sie dann den Überstand.</li>
	<li>Geben Sie 10 ml destilliertes Wasser in eines der konischen Röhrchen und resuspendieren Sie die Nanopartikel durch Beschallung der Lösung. Übertragen Sie die suspendierte Lösung in ein anderes konisches Röhrchen, das das ZnO-Pellet enthält, und wiederholen Sie den Vorgang, bis alle ZnO-Lösungen in einem konischen Röhrchen gesammelt sind.</li>
	<li>Waschen Sie die Nanopartikel 15 Minuten lang bei 15000 × g durch Zentrifugation, entfernen Sie den Überstand und suspendieren Sie sie wieder in destilliertem Wasser. Überprüfen Sie den pH-Wert der überstehenden Lösung mit pH-Testpapier und wiederholen Sie den Vorgang, bis der pH-Wert der Lösung neutral wird. HINWEIS: Wenn der pH-Wert der überstehenden Lösung neutral wird (pH = 7), verwerfen Sie die überstehende Lösung und resuspendieren Sie sie nicht mit destilliertem Wasser.</li>
	<li>Die Probenpalette wird 24 h lang bei 60 °C vakuumgetrocknet und das ZnO NP-Pulver erhalten.</li>
</ol>2. Antibakterielle Tests mit MRSA und P. aeruginosa
<ol><li>Bakterienkultur HINWEIS: Klinische MDR-Bakterienstämme wurden aus dem Chung-Ang University Hospital, Seoul, Südkorea, bezogen.<ol><li>Nehmen Sie MRSA- und P. aeruginosa-Bakterienstämme , die in Tryptischer Sojabrühe (TSB) gelagert sind, aus dem Tiefkühlschrank.</li>
		<li>Nachdem Sie die bakteriellen Lösungen aufgetaut haben, streichen Sie die Lösung mit einer Einweg-Impfschlaufe auf eine Tryptische Soja-Agar (TSA)-Platte. Legen Sie die gestreiften Agarplatten in den Inkubator und inkubieren Sie sie 24 h lang. HINWEIS: Eine einzelne Kolonie, die aus der TSA-Platte entnommen wurde, wurde mit einer bakteriellen Impfschlaufe zu 10 ml TSB-Medium in einem konischen 50-ml-Röhrchen gegeben. Die Bakterien wurden 24 Stunden lang kultiviert. Die Bakterien wurden unter aeroben Kulturbedingungen bei 37 °C kultiviert.</li>
		<li>Um die Konzentration der Bakterienlösung zu messen, verdünnen Sie die kultivierte Lösung mit 10-facher Serienverdünnung auf 10-6 mit destilliertem Wasser. Geben Sie anschließend 50 μl der verdünnten Lösung auf TSA-Platten und verteilen Sie die Lösung mit einem L-förmigen Spreizer.</li>
		<li>Inkubieren Sie die Platten 24 h lang im Inkubator. HINWEIS: Die Kolonien wurden optisch gezählt, und die Konzentration der kultivierten Lösung wurde berechnet, indem die Verdünnungsfaktoren mit der Anzahl der gezählten Kolonien multipliziert wurden.</li>
	</ol></li>
	<li>Probenahme von Bakterien<ol><li>Um einen breiten Bereich von ZnO-Konzentrationen zu testen, bereiten Sie eine 2 mg/ml-ZnO-NPs-Lösung unter Verwendung von Dulbeccos phosphatgepufferter Kochsalzlösung (DPBS) vor und führen Sie eine 2-fache serielle Verdünnung durch, um unterschiedliche Konzentrationen zu erhalten. HINWEIS: Getestet wurden 1000 μg/ml, 500 μg/ml, 250 μg/ml, 125 μg/ml und 62,5 μg/ml.</li>
		<li>Geben Sie 100 μl für jede der getesteten Konzentrationen von ZnO-NPs in eine 96-Well-Platte. HINWEIS: Verwenden Sie das Doppelte (2x) der gewünschten Endkonzentration an ZnO-NPs, da jede Probe in der Vertiefung unter Zugabe von 100 μl Bakterienkultur verdünnt wird. Verwenden Sie eine 2%ige Antibiotikum-Antimykotikum-Lösung (A/A) als Positivkontrolle und DPBS als Negativkontrolle. A/A ist ein Penicillin- und Streptomycin-Antibiotika-Komplex, der gegen grampositive bzw. gramnegative Bakterien wirksam ist.</li>
		<li>Verdünnen Sie die Bakterienkultur mit TSB-Medien auf 1 × 106 KBE/ml und geben Sie 100 μl in jede Vertiefung, die unterschiedliche Konzentrationen von ZnO-NPs enthält. HINWEIS: Die anfänglichen Konzentrationen der MRSA- und P. aeruginosa-Kulturlösung betrugen 3 x 109 KBE/ml. Die Bakterienkulturkonzentration 1 x 106 KBE/ml wurde durch Verdünnung der Kulturlösung von 1/20 und 1/150 hergestellt. Nach dem Mischen mit 100 μl ZnO-NP beträgt die Endkonzentration der Bakterien 5 × 105 KBE/ml.</li>
		<li>Stellen Sie die 96-Well-Platte in einen 37 °C heißen Inkubator und inkubieren Sie sie 24 Stunden lang.</li>
	</ol></li>
	<li>Ausbreitung von Bakterien<ol><li>Pipettieren Sie 100 μl aus jeder Vertiefung und bereiten Sie verschiedene 10-fache Serienverdünnungen bis 10-6 vor. HINWEIS: Geben Sie 100 μl ZnO NPs, die eine bakterielle Lösung enthalten, in 900 μl sterilisiertes destilliertes Wasser und wiederholen Sie den Vorgang 6 Mal.</li>
		<li>50 μl aus vier verdünnten Lösungen pipettieren und auf TSA-Medienplatten geben. Verwenden Sie einen L-förmigen Zellspreizer, um die Bakteriensuspension auf der Agarplatte zu verteilen. HINWEIS: Verwenden Sie die Verdünnungen 100, 10-2, 10-4 und 10-6 . Führen Sie alle Experimente in dreifacher Ausfertigung durch. Verteilen, bis die gesamte bakterielle Lösung auf der Agarplatte absorbiert ist.</li>
		<li>Legen Sie die Agarplatten in einen 37 °C heißen Inkubator und inkubieren Sie sie 24 Stunden lang.</li>
	</ol></li>
	<li>Zählung von bakteriellen KBE<ol><li>Wählen Sie einen Verdünnungsfaktor aus, der für jede Gruppe zählbar ist. Markieren Sie alle Kolonien in der zählbaren Verdünnungsplatte und berechnen Sie neu, so dass die Konzentration # von KBE/ml beträgt. HINWEIS: Der zählbare Verdünnungsfaktor gibt Platten an, die 20-100 KBE auf einer einzelnen Platte haben. Die anfänglich gezählte Konzentration ergibt # von gezählter KBE/50 μl. Bestimmen Sie unter Verwendung der Spreizplatte mit der unverdünnten Bakterienlösung die potenzielle minimale bakterizide Konzentration.</li>
		<li>Verwenden Sie die erhaltenen Daten, um den prozentualen Anteil lebender Bakterien im Verhältnis zu denen in der Negativkontrolle darzustellen. HINWEIS: Anteil lebender Bakterien (%) =<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/66725/66725eq01.jpg" style="margin: auto;"></li>
	</ol></li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body> Synthese von Zinkoxid-Nanopartikeln und Analyse ihrer antibakteriellen Wirkung

<ol><li>Catalano, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multidrug+resistance+%28MDR%29%3A+A+widespread+phenomenon+in+pharmacological+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules%22%5BJournal%5D)">Multidrug resistance (MDR): A widespread phenomenon in pharmacological therapies.</a> Molecules. 27 (3), 616(2022).</li>
<li>Bazaid, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+infections+among+patients+with+chronic+diseases+at+a+tertiary+care+hospital+in+Saudi+Arabia%5BTitle%5D)+AND+%22Microorganisms%22%5BJournal%5D)">Bacterial infections among patients with chronic diseases at a tertiary care hospital in Saudi Arabia.</a> Microorganisms. 10 (10), 1907(2022).</li>
<li>Miller, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+penicillins%3A+A+review+and+update%5BTitle%5D)+AND+%22J+Midwifery+Women%27s+Health%22%5BJournal%5D)">The penicillins: A review and update.</a> J Midwifery Women's Health. 47 (6), 426-434 (2002).</li>
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<li>Lee, H. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+lateral+flow+assay+for+nucleic+acid+detection+based+on+rolling+circle+amplification+using+capture+ligand-modified+oligonucleotides%5BTitle%5D)+AND+%22BioChip+J%22%5BJournal%5D)">A lateral flow assay for nucleic acid detection based on rolling circle amplification using capture ligand-modified oligonucleotides.</a> BioChip J. 16 (4), 441-450 (2022).</li>
<li>Craft, K. M., Nguyen, J. M., Berg, L. J., Townsend, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methicillin-resistant+staphylococcus+aureus+%28MRSA%29%3A+Antibiotic-resistance+and+the+biofilm+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Chem+Comm%22%5BJournal%5D)">Methicillin-resistant staphylococcus aureus (MRSA): Antibiotic-resistance and the biofilm phenotype.</a> Med Chem Comm. 10 (8), 1231-1241 (2019).</li>
<li>Tieu, M. -V., Pham, D. T., Le, H. T. N., Hoang, T. X., Cho, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+and+ultrasensitive+detection+of+Staphylococcus+aureus+using+a+gold-interdigitated+single-wave-shaped+electrode+%28AU-ISWE%29+electrochemical+biosensor%5BTitle%5D)+AND+%22BioChip+J%22%5BJournal%5D)">Rapid and ultrasensitive detection of Staphylococcus aureus using a gold-interdigitated single-wave-shaped electrode (AU-ISWE) electrochemical biosensor.</a> BioChip J. 17, 1-10 (2023).</li>
<li>Turner, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methicillin-resistant+Staphylococcus+aureus%3A+An+overview+of+basic+and+clinical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: An overview of basic and clinical research.</a> Nat Rev Microbiol. 17 (4), 203-218 (2019).</li>
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<li>Sarabhai, S., Sharma, P., Capalash, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ellagic+acid+derivatives+from+terminalia+chebula+retz.+Downregulate+the+expression+of+quorum+sensing+genes+to+attenuate+pseudomonas+aeruginosa+pao1+virulence%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Ellagic acid derivatives from terminalia chebula retz. Downregulate the expression of quorum sensing genes to attenuate pseudomonas aeruginosa pao1 virulence.</a> PLoS One. 8 (1), e53441(2013).</li>
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<li>Balouiri, M., Sadiki, M., Ibnsouda, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+in+vitro+evaluating+antimicrobial+activity%3A+A+review%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharm+Anal%22%5BJournal%5D)">Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review.</a> J Pharm Anal. 6 (2), 71-79 (2016).</li>
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<li>Choi, K. -C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modifying+hydrogen+bonding+interaction+in+solvent+and+dispersion+of+ZnO+nanoparticles%3A+Impact+on+the+photovoltaic+performance+of+inverted+organic+solar+cells%5BTitle%5D)+AND+%22RSC+Adv%22%5BJournal%5D)">Modifying hydrogen bonding interaction in solvent and dispersion of ZnO nanoparticles: Impact on the photovoltaic performance of inverted organic solar cells.</a> RSC Adv. 4 (14), 7160-7166 (2014).</li>
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<li>Roh, S., Jang, Y., Yoo, J., Seong, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+modification+strategies+for+biomedical+applications%3A+Enhancing+cell-biomaterial+interfaces+and+biochip+performances%5BTitle%5D)+AND+%22BioChip+J%22%5BJournal%5D)">Surface modification strategies for biomedical applications: Enhancing cell-biomaterial interfaces and biochip performances.</a> BioChip J. 17, 1-18 (2023).</li>
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<li>Hu, X. -L., Zhu, Y. -J., Wang, S. -W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonochemical+and+microwave-assisted+synthesis+of+linked+single-crystalline+ZnO+rods%5BTitle%5D)+AND+%22Mater+Chem+Phys%22%5BJournal%5D)">Sonochemical and microwave-assisted synthesis of linked single-crystalline ZnO rods.</a> Mater Chem Phys. 88 (2-3), 421-426 (2004).</li>
<li>Ahamad Khan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phytogenically+synthesized+zinc+oxide+nanoparticles+%28ZnO-NPs%29+potentially+inhibit+the+bacterial+pathogens%3A+In+vitro+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxics%22%5BJournal%5D)">Phytogenically synthesized zinc oxide nanoparticles (ZnO-NPs) potentially inhibit the bacterial pathogens: In vitro studies.</a> Toxics. 11 (5), 452(2023).</li>
<li>Xie, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+ZnO+nanomaterial-mediated+biological+applications+and+action+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomaterials%22%5BJournal%5D)">Recent advances in ZnO nanomaterial-mediated biological applications and action mechanisms.</a> Nanomaterials. 13 (9), 1500(2023).</li>
<li>Chawla, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+on+ZnO-based+targeted+drug+delivery+system%5BTitle%5D)+AND+%22Lett+Drug+Des+Discov%22%5BJournal%5D)">A review on ZnO-based targeted drug delivery system.</a> Lett Drug Des Discov. 21 (3), 397-420 (2024).</li>
<li>Alavi, M., Nokhodchi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+overview+on+antimicrobial+and+wound+healing+properties+of+ZnO+nanobiofilms%2C+hydrogels%2C+and+bionanocomposites+based+on+cellulose%2C+chitosan%2C+and+alginate+polymers%5BTitle%5D)+AND+%22Carbohydr+Polym%22%5BJournal%5D)">An overview on antimicrobial and wound healing properties of ZnO nanobiofilms, hydrogels, and bionanocomposites based on cellulose, chitosan, and alginate polymers.</a> Carbohydr Polym. 227, 115349(2020).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>DLS</td><td>Zetasizer Pro</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethylalkohol, absolut</td><td>DAEJUNG</td><td>4023-2304</td><td></td></tr><tr><td>Mikroplatten-Reader&nbsp;</td><td>BioTeck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Natriumhydroxid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>221465</td><td></td></tr><tr><td>TEM</td><td>JEOL JEM-F200</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TSA</td><td>DB difco</td><td>236950</td><td></td></tr><tr><td>TSB</td><td>DB difco</td><td>211825</td><td></td></tr><tr><td>XRD</td><td>NEU D8-Advance</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinkacetat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>383317</td><td></td></tr></tbody></table>

herstellung von zinkoxid-nanopartikeln und die bewertung ihrer antibakteriellen wirkung

Preparation of Zinc Oxide Nanoparticles and the Evaluation of their Antibacterial Effects

Die erfolgreiche Synthese von ZnO-NPs wurde mit Hilfe der Transmissionselektronenmikroskopie (TEM) bestätigt, wie in Abbildung 1A dargestellt. Es wurde beobachtet, dass die erhaltenen ZnO-NPs eine runde Form haben, mit einer durchschnittlichen Partikelgröße von 35,35 nm und einer Standardabweichung von 6,81 nm. Die Ausfällung dieser Nanopartikel wurde durch eine Doppelverdrängungsreaktion durch Zugabe von NaOH-Lösung zu Zinkacetat beobachtet, wo Zn2+ -Ionen hydrolysiert wurden.
Mittels dynamischer Lichtstreuung (DLS) wurden die durchschnittliche Größe und das Zetapotenzial der synthetisierten Nanopartikel auf 130,4 nm bzw. 28,92 mV bestimmt, wie in Abbildung 1B dargestellt. Die Diskrepanz in der Größe der mit DLS gemessenen ZnO-NPs im Vergleich zu der aus dem TEM-Bild erhaltenen Größe wurde auf die Aggregation von nackten Nanopartikeln zurückgeführt. Das positive Zetapotenzial bestätigte indirekt den Erwerb von ZnO-NPs, die elektrostatisch mit bakteriellen Zelloberflächen interagieren und möglicherweise physische Schäden verursachen können. Die Größe des Zetapotentials gibt die potentielle Stabilität eines kolloidalen Systems an. Wenn alle Partikel in einer Suspension große positive oder negative Zetapotentiale haben, neigen sie dazu, sich gegenseitig abzustoßen, wodurch eine Aggregation verhindert wird. Partikel mit Zetapotentialen von mehr als +30 mV oder weniger als -30 mV gelten im Allgemeinen als stabil. Die synthetisierten ZnO-NPs wiesen ein Zetapotential von +28,92 mV auf, was auf eine relative Stabilität in Wasser20 hinweist.
Die Absorptionsspektren von ZnO-NPs wurden mit einem Mikroplatten-Reader untersucht, wobei ein spezifischer Absorptionspeak für ZnO bei 360 nm nachgewiesen wurde (Abbildung 1C). Der Vorläufer Zinkacetat hat keinen eindeutigen Peak, während ZnO-NPs dafür bekannt sind, einen einzigartigen Peak bei 360-370 nm zu haben. Die Synthese wurde durch das Vorhandensein des 360 nm einzigartigen Peaks in den synthetisierten ZnO NPs21 bestätigt. Diese spezifischen UV-Absorptionseigenschaften bestätigten die direkte Synthese von ZnO-NPs. Darüber hinaus ergab die Röntgenbeugungsanalyse (XRD) (Abbildung 1D) deutliche kristalline Peaks, die für ZnO charakteristisch sind. Beim Vergleich mit der repräsentativen Wurtzitstruktur von ZnO NPs (JCPDS Nr. 36-1415) wurde beobachtet, dass alle Ebenen (1, 0, 0), (0, 0, 2), (1, 0, 1), (1, 0, 2), (1, 1, 0), (1, 0), (1, 0), (1, 1, 2) und (2, 0, 1) in Ausrichtungwaren 22.
Die antimikrobielle Wirksamkeit der synthetisierten ZnO-NPs wurde anhand eines Mikrobouillon-Verdünnungstests anhand klinischer Proben von P. aeruginosa und MRSA bewertet, die aus dem Chung-Ang University Hospital in Seoul, Südkorea, gewonnen wurden. Für die Analyse wurden Bilder von Bakterienkulturen aufgenommen. Um die antimikrobielle Wirksamkeit der Nanopartikel bei gleichem Verdünnungsfaktor visuell zu beurteilen, wurden Spread-Platten mit unverdünnter Bakterienlösung verwendet (Abbildung 2A,B). Spread-Platten mit der Originallösung wurden verwendet, um die mögliche minimale bakterizide Konzentration zu bestimmen. Da bei beiden Stämmen bereits bei höchster Konzentration Bakterienkolonien beobachtet wurden, wurde eine vollständige bakterizide Wirkung nicht erreicht. Die Bakterienkonzentrationen in jeder Gruppe wurden unter Verwendung von zählbaren Verdünnungsfaktoren berechnet. Beim Vergleich der Überlebensraten jeder Behandlungsgruppe mit denen der negativen Kontrollgruppe zeigten sich die antimikrobiellen Wirkungen von ZnO-NPs sowohl bei P. aeruginosa- als auch bei MRSA-Stämmen. Unter Berücksichtigung des untersuchten Zytotoxizitätsbereichs von ZnO-NPs wurden verschiedene ZnO-Konzentrationen getestet, beginnend mit der höchsten bekannten Konzentration, die Toxizität induziert, die bei 1000 μg/ml liegt, bis hinunter zum nicht-toxischen Bereich von 62,5 μg/ml, durch serielle Verdünnung23,24. Im Fall von P. aeruginosa war die antimikrobielle Aktivität von ZnO-NP konzentrationsabhängig erhöht (Abbildung 2A). Eine sichtbare Abnahme der Anzahl der P. aeruginosa-Bakterienkolonien gegenüber der unverdünnten (100) Bakterienkultur zu Beginn war jedoch nicht erkennbar.
Umgekehrt zeigten ZnO-NPs eine hohe antimikrobielle Aktivität gegen das grampositive Bakterium MRSA, mit einer deutlichen Abnahme der bakteriellen koloniebildenden Einheiten (KBE), was durch den Vergleich von Bildern verdünnter Bakterienkulturen mit denen der unverdünnten (100) Bakterienkultur bestätigt wurde. Dieses Ergebnis bestätigte, dass die synthetisierten ZnO-NPs eine antimikrobielle Aktivität gegen beide Bakterienstämme zeigten, insbesondere eine erhöhte Wirksamkeit gegen denMRSA-Stamm.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66725/66725fig01.jpg"> Abbildung 1: Charakterisierung von Zinkoxid-Nanopartikeln. (A) Transmissionselektronenmikroskopische Aufnahmen von ZnO-NPs unter verschiedenen Vergrößerungen. (B) Größen- (links) und Zetapotenzialverteilung (rechts) durch DLS-Analyse. (C) Absorptionsspektrum von ZnO-NPs unter Verwendung eines Mikroplatten-Readers. (D) XRD-Analyse von ZnO-NPs und ihren kristallinen Peaks. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66725/66725fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66725/66725fig02.jpg"> Abbildung 2: Antibakterielle Eigenschaften von ZnO-NPs, getestet an 5 x 105 KBE/ml-Bakterienstämmen. (A) Antibakterieller Test gegen den P . aeruginosa-Stamm . (B) Antibakterieller Test gegen den MRSA-Stamm . N = Negativkontrolle (DPBS), P = Positivkontrolle (A/A). Sternchen kennzeichnen die statistisch signifikante Differenz zu den Kontrollen, ****p ≤ 0,0001. Die Daten wurden als mittlere ± SD von drei unabhängigen Experimenten dargestellt, die in dreifacher Ausführung durchgeführt wurden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66725/66725fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>

Herstellung von Zinkoxid-Nanopartikeln und die Bewertung ihrer antibakteriellen Wirkung

Nosocomial bacterial infections have become increasingly challenging due to their inherent resistance to antibiotics. The emergence of multidrug-resistant ...

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Nehmen wir Röhren mit einem Medium, das einen Nanopartikel-Verbundstoff enthält, der aus einer Kombination von Übergangsmetallen und Kohlenstoff hergestellt wurde.Geben Sie antibiotikaresistente grampositive und gramnegative pathogene Bakterien als Testproben in separate Röhrchen.Beziehen Sie unbehandelte Bakterien als Negativkontrolle und antibiotikabehandelte Bakterien als positive Kontrolle ein.Inkubieren Sie die Proben mit Schütteln.Bei gramnegativen Bakterien erleichtern die poröse äußere...

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Herstellung von Zinkoxid-Nanopartikeln und die Bewertung ihrer antibakteriellen Wirkung

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