Name: Miniskop zur Aufzeichnung von Kalziumsignalen am Hippocampus von Mäusen, die durch eine Geruchsfahne navigieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-09-20T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 21 s
Description: Erfahren Sie die Miniskop-Aufzeichnung von Kalziumsignalen im dorsalen CA1 des Hippocampus bei Mäusen während der Geruchsfahrt-Navigation. Diese Methode ermöglicht die Decodierung neuronaler Aktivität im Zusammenhang mit räumlichem Verhalten und Alzheimer-Erkrankung.

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<meta charset="utf8"></head><body>Aufzeichnung der neuronalen Aktivität während der Navigation durch Geruchsfahnen mit Miniskop-Bildgebung

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<li>Xue, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-region+calcium+imaging+in+freely+behaving+mice+with+ultra-compact+head-mounted+fluorescence+microscopes%5BTitle%5D)+AND+%22Natl+Sci+Rev%22%5BJournal%5D)">Multi-region calcium imaging in freely behaving mice with ultra-compact head-mounted fluorescence microscopes.</a> Natl Sci Rev. 11 (1), nwad294(2024).</li>
<li>Tabourin, L., Bretzner, F., Galstian, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Towards+a+mini-endoscope+design+with+spatially+selective+excitation+and+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Opt+Express%22%5BJournal%5D)">Towards a mini-endoscope design with spatially selective excitation and imaging.</a> Biomed Opt Express. 15 (3), 1750-1760 (2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Arduino Micro</td><td>Arduino</td><td>Micro</td><td></td></tr><tr><td>Biokompatibles Methacrylatharz</td><td>Parkell</td><td>S380</td><td>C& B-Metabond Adhesive Luting Cement</td></tr><tr><td>Decoding Brain Signals Software</td><td>CU Anschutz</td><td></td><td>https://github.com/restrepd/drgMiniscope</td></tr><tr><td>Dental Drill</td><td>Osada</td><td>LHP-6</td><td>AZ210015</td></tr><tr><td>Dental Drill Box</td><td>Osada</td><td>XL-230</td><td>30000 Umdrehungen pro Minute</td></tr><tr><td>Digitales stereotaktisches Instrument</td><td>Stoelting</td><td>51730D</td><td>Maus Stereotaktisches Instrument, #51904 Digitaler Manipulatorarm, 3-Achsen, Add-On, LINKS&nbsp;</td></tr><tr><td>Bohrer</td><td>FST Fine Science Tools</td><td>19007-05</td><td>Spitzendurchmesser 0,5 mm</td></tr><tr><td>Schnelle Digitalkamera</td><td>Edmund Optics</td><td>BFS-U3-63S4C</td><td>FLIR Blackfly S</td></tr><tr><td>Focal Lens</td><td>Edmund Optics</td><td>C-Serie</td><td>3,5 mm</td></tr><tr><td>GRIN Objektiv</td><td>Inscopix</td><td>1050-004595</td><td>1 mm Durchmesser und 4 mm Länge</td></tr><tr><td>GRIN Objektivhalter</td><td>UCLA</td><td></td><td>http://miniscope.org/index.php/Surgery_Protocol</td></tr><tr><td>Flüssiger Gewebekleber</td><td>3M</td><td>1469C</td><td>Vetbond Gewebekleber</td></tr><tr><td>Low-Flow-Anästhesiesystem für Mäuse</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SomnoSuite</td><td>https://www.kentscientific.com/products/somnosuite/</td></tr> <tr><td>Silikonkleber mit geringer Toxizität</td><td>WPI &ndash; World Precision Instruments</td><td>Kwik-sil</td><td></td></tr><tr><td>miniPID-Regler</td><td>ASI &ndash; Aurora Scientific Inc.</td><td>Modell 200B</td><td>Miniatur-Photoionisationsdetektor</td></tr><tr><td>Miniskop V4 Halterung</td><td>UCLA</td><td>NA</td><td>https://github.com/Aharoni-Lab/Miniscope-v4/tree/master/Miniscope-v4-Holder</td></tr><tr><td>Miniskop V4</td><td>Labmaker</td><td>NA</td><td>https://www.labmaker.org/products/miniscope-v4</td></tr><tr><td>Miniskop Grundplatte V2</td><td>Labmaker</td><td>NA</td><td>https://www.labmaker.org/products/miniscope-v4-base-plates-variant-2-pack-of-10</td></tr><tr><td>Miniscope DAQ-QT Software</td><td>UCLA</td><td></td><td>https://github.com/Aharoni-Lab/Miniscope-DAQ-QT-Software/wiki</td></tr><tr><td>Motion Correction Software</td><td>CU Anschutz</td><td></td><td>https://github.com/restrepd/drgMiniscope</td></tr><tr><td>Odor Arena Hardware</td><td>Custom Made</td><td>3D Modell</td><td>https://www.dropbox.com/scl/fo/lwtpqysnpzis32mhrx3cd/ADomsxyhxu42sqDmTBl2O6k?rlkey=b3l4809eradundt5l3iz0gq74&amp; dl=0</td></tr><tr><td>Odor Arena Software</td><td>CUAnschutz</td><td></td><td>https://github.com/wryanw/odorarena</td></tr><tr><td>Odorant Isoamylacetat</td><td>Aldrich Chemical Co</td><td>06422AX</td><td>Verdünnt bei 1% in geruchlosem Mineralöl</td></tr><tr><td>RHD USB Interface Board</td><td>Intan Technologies</td><td>C3100</td><td>Produkt eingestellt. Alternativ können Sie eine andere gleichwertige Platine verwenden.</td></tr><tr><td>ROI Extraction Software</td><td>CU Anschutz</td><td></td><td>https://github.com/restrepd/drgMiniscope</td></tr><tr><td>Sutter Micromanipulator</td><td>Sutter Instrument Company</td><td>MP-285</td><td></td></tr><tr><td>Synchronisationssoftware</td><td>CU Anschutz</td><td></td><td>https://github.com/fsimoesdesouza/Synchronization</td></tr><tr><td>Thy1-GCaMP6f Mäuse</td><td>Jackson Laboratory IMSR_JAX 028281</td><td></td><td>C57BL/6J-Tg (Thy1-GCaMP6f)GP5.12Dkim/J)</td></tr></tbody></table>

miniskop zur aufzeichnung von kalziumsignalen am hippocampus von mäusen, die durch eine geruchsfahne navigieren

Miniscope Recording Calcium Signals at Hippocampus of Mice Navigating an Odor Plume

Die Verwendung dieses Verfahrens ermöglicht die Visualisierung und Aufzeichnung von dCA1 GCaMP6f-Fluoreszenztransienten bei Mäusen, die sich in der Geruchsarena bewegen, um die Quelle von Geruchsstoffen zu finden (Abbildung 6A, B, Ergänzender Film 1 und Ergänzender Film 2). Die Fluoreszenzbilder werden mit NoRMCorre bewegungskorrigiert, und EXTRACT wird verwendet, um die ROIs zu extrahieren. Darüber hinaus ermöglicht die Aufzeichnung mit einer Schnittstellenkarte die Synchronisierung der δF/F0-Signale aus den ROIs mit Geruchs- und Wasserabgabeereignissen in der Geruchsarena (Abbildung 7A) sowie mit der Bewegung der Maus in der Geruchsarena (Abbildung 7B und ergänzender Film 3). Das repräsentative Ergebnis der Maus, die durch die Geruchsfahne navigiert, beinhaltet eine große Anzahl von Kalziumtransienten während der Aufgabe (Abbildung 7A,B). Darüber hinaus ist es möglich zu untersuchen, wie die Kalziumreaktionen mit dem Vorhandensein von Geruch und Wasserbelohnung übereinstimmen (Abbildung 7A). Die Visualisierung einzelner Versuche mit BENTO liefert Informationen über die Kalziumreaktionen in den verschiedenen Phasen der Studie, einschließlich des Versuchsstarts, der Entscheidung, des Navigierens, des Trinkens und der Rückkehr in den hinteren Teil der Arena (Abbildung 7B). Die Methode lieferte wertvolle Erkenntnisse über den Zusammenhang zwischen CA1-Kalziumreaktionen und dem Verhalten von Mäusen während einer geruchsorientierten Navigationsaufgabe.
Die PID-Aufzeichnungen können entscheidende Informationen über die Geruchsfahne und die Luftgeschwindigkeit der Wolke liefern. Das repräsentative Ergebnis zeigt eine Erhöhung der PID-Reaktion nach dem Öffnen des Ventils, um die Geruchsfahne im Geruchsbereich freizusetzen (Abbildung 5A). Darüber hinaus ermöglicht das Protokoll die Dekodierung der X- und Y-Positionen der Maus aus den δF/F0-Signalen der dCA1-ROIs (Abbildung 8). Diese Technik sagt die räumliche Position der Maus während der Geruchsfahnen-Navigationsaufgabe basierend auf den CA1-Antworten voraus, was für ein besseres Verständnis der Verarbeitung von Geruchs- und räumlichen Informationen durch die CA1-Neuronen relevant ist. Die Entschlüsselung der Flugbahn der Maus aus den Kalziumsignalen des neuronalen Ensembles in dCA1 ist von Bedeutung, da sie zeigt, wie Neuronen im dorsalen CA1 eine kognitive Karte von Geruchs- und Rauminformationen darstellen, um die komplexe Aufgabe der Geruchsfahnennavigation zu erfüllen. Die Methode wurde auf verschiedene ROIs erweitert, die sich ausschließlich als Ortszellen und andere Zellen verhalten, die auf den Geruchsreiz reagieren. Die erfolgreiche Dekodierung der Flugbahn der Maus aus neuronalen Ensemblesignalen kann durch die starke Korrelation zwischen der Dekodierungsvorhersage und den tatsächlichen X- und Y-Positionen der Maus bestätigt werden.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig01.jpg"> 
Abbildung 1: Studienpipeline. (A) Die stereotaktische Operation besteht aus der Implantation einer GRIN-Linse in die CA1-Schicht des Hippocampus und einer Kopfplatte am Schädel zur Kopffixierung der Maus. (B) Auf der Oberseite der GRIN-Linse befindet sich eine Grundplatte, die den optischen Zugang zur Fluoreszenz der CA1-Neuronen mit einem Miniskop ermöglicht. (C) Die Maus wird auf die Navigationsaufgabe der Geruchsfahne trainiert. (D) Frei bewegliche Aufzeichnung des Mausverhaltens und der CA1-Neuronen, die durch die Geruchsfahne navigieren. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig02.jpg"> 
Abbildung 2: Stereotaktische Chirurgie. (A) Platzieren Sie die anästhesierte Maus in den stereotaktischen Apparat. Passen Sie die Anästhesiestärke zwischen 2 und 3% entsprechend mit der Kneifpfotenreflexreaktion an (B) Rasieren Sie die Haare über dem Kopf. (C) Bohren Sie vorsichtig mit einem Bohrer eine kleine bleibende Delle, um eine dauerhafte Delle an der Oberseite der Zielstelle zu erzeugen. (D) Verwenden Sie den Zahnbohrer, um eine kreisförmige Perforation mit einem Durchmesser von 1,5 mm zu öffnen, um die Implantation einer GRIN-Linse mit einem Durchmesser von 1 mm und einer Länge von 4 mm in das Gehirn zu ermöglichen. (E) Verbinden Sie den GRIN-Objektivhalter mit dem Mikromanipulator und schalten Sie den an die Pipette angeschlossenen Aspirator ein, um die GRIN-Linse zu halten. (F) Implantieren Sie die GRIN-Linse langsam in den Kortex, bis sie eine Tiefe von -1,25 mm unter der Duramasse erreicht. (G) Illustrativer postmortaler festsitzender Kopf, der die Kopfplatte und die Basisplatte zeigt, die mit der implantierten GRIN-Linse auf den Schädel zementiert wurden. (H) Postmortale CT-Untersuchung des Kopfes, die den Kopfbalken auf der Oberseite des Schädels und die in den Schädel implantierte GRIN-Linse zeigt. (I) Gestaltung der Kopfplatte, um eine Kopffixierung der Maus zu ermöglichen. Das Tier in dieser Darstellung ist unverhüllt, um eine bessere anatomische Visualisierung zu ermöglichen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig03.jpg"> 
Abbildung 3: Platzierung der Miniskop-Grundplatte. (A) 3D-gedruckter Miniskophalter, der mit einem Mikromanipulator gekoppelt ist. (B) Miniskop an der Halterung befestigt. (C) Anbringen der Grundplatte am Miniskop. (D) Ziehen Sie die Stellschraube zur Befestigung der Grundplatte am Miniskop fest. Die Stellschraube wird gelöst, nachdem die Basisplatte mit dem Mäuseschädel verklebt wurde. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig04.jpg"> 
Abbildung 4. Bau der Geruchsarena. (A) Geruchsarena transparente Kammer. An der Oberseite befindet sich eine Digitalkamera, mit der das Verhalten der Maus aufgezeichnet werden kann. (B) Schrittmotoren, die mit Spritzen gekoppelt sind, steuern die Wasserabgabe, um die Maus zu belohnen. (C) Blick von innen auf die Geruchsarena, die zeigt, dass eine Wabenstruktur verwendet wird, um eine laminare Strömung und vier Geruchsabgabeleitungen zu erzeugen. (D) Geruchsabgabesystem, einschließlich Schläuche, Ventile und Geruchsflaschen, die von außen aus gesehen werden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig05.jpg"> 
Abbildung 5: Aufzeichnung der Geruchsfahne. (A) Aufnahme der Geruchsfahne, die mit dem Photoionisationsdetektor (PID) aufgenommen wurde. Mittelwert (fett blau)±Standardabweichung (hellblau) von fünf PID-Spuren einer Geruchsfahne, die sich mit 4,23 cm/s im Geruchsbereich ausbreitet. Eine Odormittelquelle in 2 cm Entfernung vom Boden der Odorarena. Der Sensorkopf des PID liefert ein Spannungssignal für die Gaskonzentration der Geruchsfahne. (B) Laseraufzeichnung der Geruchsfahne mit unbegrenzter Strömung bei 20 cm/s. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig06.jpg"> 
Abbildung 6: Verhaltenstraining bei Mäusen. (A) Die Maus lernt, zu einer Geruchswolke zu navigieren, die auf der rechten Spur freigesetzt wird. Die Maus lernt, einen Versuch zu starten, indem sie sich in den hinteren Teil der Geruchsarena begibt, sich für eine Seite entscheidet, um zur Geruchsfahne zu navigieren, und eine Wasserbelohnung trinkt. (B) Die Maus lernt, zu einer Geruchswolke zu navigieren, die auf der linken Spur freigesetzt wird. Die Maus wird mit Gerüchen belohnt, wenn sie auf die richtige Spur navigiert. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig06large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig07.jpg"> 
Abbildung 7: Vorverarbeitung der Daten. (A) Kalziumspuren synchronisiert mit den Ereignissen in der Geruchsarena für viele Versuche. Jeder einzelne Versuch beginnt mit der Geruchsabgabe in Rot, und die belohnten Versuche enden mit einem Wasserabgabeimpuls in Blau. Die δF/F0 (einheitenlosen) Calciumspuren für jeden ROI sind schwarz dargestellt. Jede Zeile gibt einen ROI an. Eine Interface-Karte dient zur Aufzeichnung der TTL-Ausgänge der Top-Kamera auf der Odorarena und der Miniscope-Kamera zur Synchronisation der Frames. NorMCorre wird zur Korrektur des Bewegungsrauschens aus den Miniskoprahmen verwendet und EXTRACT wird verwendet, um die ROIs zu finden und die δF/F0-Kalziumspuren zu extrahieren. (B) Repräsentativer Einzelversuch mit einer Maus, die durch eine Wolke navigiert. Die gleichzeitige Visualisierung des synchronisierten Verhaltens (linkes Bild) und der δF/F0-Kalziumspuren (rechtes Bild) von jedem ROI eines einzelnen Versuchs wird mit BENTO beobachtet. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig07large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67039/67039fig08.jpg"> 
Abbildung 8. Dekodierung der Position der Maus aus den CA1-Signalen. Dekodierung der X- und Y-Position der Maus aus den CA1-ROIs. Die Dekodierungsvorhersage wird in Blau und die wahre Position der Maus in Rot angezeigt. Die vorhergesagten Spuren korrelieren stark mit der Grundwahrheit. (A) Dekodierung der X-Positionen aus den ROIs (Pearson-Korrelationskoeffizient = 0,88). (B) Dekodierung der Y-Positionen aus den ROIs (Pearson-Korrelationskoeffizient = 0,88). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/67039fig08large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
Ergänzender Film 1: Repräsentatives Beispiel für synchronisierte Verhaltens- und Miniskop-Frames einer Maus, die auf eine Geruchsfahne auf der linken Spur zusteuert. (A) Verhaltensbilder einer Maus, die ein Miniskop trägt und sich in der Geruchsarena bewegt. (B) Miniskop-Frames der Maus, die die durch die GRIN-Linse aufgezeichneten Rohkalziumtransienten zeigen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/Movie1.avi" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diesen Film herunterzuladen.</a>
Ergänzender Film 2: Repräsentatives Beispiel für synchronisierte Verhaltens- und Miniskop-Frames einer Maus, die auf eine Geruchsfahne auf der rechten Spur zunavigiert. (A) Verhaltensbilder einer Maus, die ein Miniskop trägt und sich in der Geruchsarena bewegt. (B) Miniskop-Frames der Maus, die die durch die GRIN-Linse aufgezeichneten Rohkalziumtransienten zeigen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/Movie2.avi" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diesen Film herunterzuladen.</a>
Ergänzender Film 3: BENTO-Anzeige der verarbeiteten Daten des Mausverhaltens und der Gehirnsignale. Linkes Feld: Die Maus navigiert zur rechten Spur in der Arena. Die Verhaltensanmerkungen werden in verschiedenen Farben angezeigt. Rechtes Bild: δF/F0 Kalziumsignale der Maus beim Navigieren. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/Movie3.avi" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diesen Film herunterzuladen.</a>
Ergänzende Akte 1: NoseconeRender.png. Datei für den 3D-gedruckten Nasenkonus zur Durchführung einer Isofluran-Anästhesie. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/NoseconeRender.zip" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.</a>
Ergänzende Akte 2: HeadbarRender.png. Feile für die Kopfstange zur Kopffixierung der Maus. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/HeadbarRender.zip" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.</a>
Zusatzakte 3: HeadbarTechnicalDrawing.png. Feile für die Kopfstange zur Kopffixierung der Maus. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/HeadbarTechnicalDrawing.zip" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.</a>
Zusatzakte 4: ArenaFig_Draft2.tiff. Detailliertes Layout der Geruchsarena. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67039/ArenaFig_Draft2.zip" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.</a>

Miniskop zur Aufzeichnung von Kalziumsignalen am Hippocampus von Mäusen, die durch eine Geruchsfahne navigieren

Mice navigate an odor plume with a complex spatiotemporal structure in the dark to find the source of odorants. This article describes a protocol to ...

miniscope-recording-calcium-signals-at-hippocampus-mice-navigating-an

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Quelle: Lee, H. et. al., Erfolgreiche In vivo Calcium-Bildgebung mit einem miniaturisierten Head-Mount-Mikroskop in der Amygdala einer sich frei verhaltenden Maus. J. Vis. Exp. (2020)Dieses Video zeigt die In-vivo-Kalziumbildgebung bei einer Maus unter Verwendung einer GRIN-Linse (Gradient Refractive Index) und eines miniaturisierten Mikroskops. Der Aufbau kombiniert die Fixierung des Kopfes in einem reibungslosen mobilen Käfigsystem, stimuliert Neuronen und löst den Einstrom von Kalziumionen...

Mikroendoskopische Calcium-Bildgebung in Echtzeit in einer frei beweglichen Maus

Quelle: Thapa, R., et. al., Stereotaktische Virusinjektion und Gradient-Index-Linsenimplantation für das tiefe Gehirn In vivo Calcium-Bildgebung.  J. Vis. Exp. (2021)Das Video demonstriert die Echtzeit-Kalziumbildgebung mit einem Miniskop in einer transduzierten Maus, die die neuronale Aktivität mit dem Verhalten korreliert.

Echtzeit-Calcium-Bildgebung eines medialen präfrontalen Kortex der Maus mit einem Miniskop

Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Messung und Analyse von Temperaturreaktionen im Riechkolben von Xenopus laevis. Geruchsrezeptor-Neuronen und Mitralzellen werden differentiell gefärbt, woraufhin Kalziumveränderungen aufgezeichnet werden, was eine Empfindlichkeit einiger neuronaler Netzwerke im Kolben gegenüber Temperaturabfällen widerspiegelt, die an der Nase induziert werden.

Aufzeichnung von Temperatur-induzierte neuronale Aktivität durch Calcium Überwachen von Änderungen in der Riechkolben von<em&gt; Xenopus laevis</em

Dieses Protokoll beschreibt die Aufzeichnung des lokalen Feldes Potentiale mit Multi-Schaft, die lineare Silicon-Sonden. Umwandlung der Signale mit Hilfe der aktuellen Quelle dichteanalyse ermöglicht die Rekonstruktion der lokalen elektrischen Aktivität im Hippocampus Maus. Mit dieser Technik können räumlich begrenzten Gehirn Schwingungen frei beweglichen Mäusen untersucht werden.

Aufzeichnung von räumlich eingeschränkt Schwingungen im Hippocampus Verhalten der Mäuse

Diese Methode beschreibt eine chronische Zubereitung, die den optischen Zugang zum Hippocampus lebender Mäuse ermöglicht. Dieses Präparat kann verwendet werden, um längsinale optische Bildgebung der neuronalen strukturellen Plastizität und aktivitätsbeschworenen zellulären Plastizität über einen Zeitraum von mehreren Wochen durchzuführen.

Längs-Zwei-Photon-Bildgebung des Dorsal Hippocampal CA1 in lebenden Mäusen

In vivo mikroendoskopische Kalzium-Bildgebung ist ein unschätzbares Werkzeug, das Echtzeit-Überwachung von neuronalen Aktivitäten bei frei verhaltenden Tieren ermöglicht. Jedoch, Anwendung dieser Technik auf die Amygdala war schwierig. Dieses Protokoll soll eine nützliche Leitlinie für die erfolgreiche Ausrichtung auf Amygdala-Zellen mit einem miniaturisierten Mikroskop bei Mäusen bieten.

Erfolgreiche In-vivo-Calcium-Bildgebung mit einem kopfmontierten Miniaturmikroskop in der Amygdala der frei verhaltenden Maus

Dieser Artikel zeigt die Vorbereitung eines maßgeschneiderten Bildgebungsfensters, ergänzt mit Infusionskanüle und deren Implantation in die CA1-Region des Hippocampus bei Mäusen.

Kraniotomie-Verfahren zur Visualisierung neuronaler Aktivitäten im Hippocampus von sich benehmenden Mäusen

Der Gyrus dentatus des Hippocampus erfüllt wesentliche und unterschiedliche Funktionen beim Lernen und Gedächtnis. Dieses Protokoll beschreibt eine Reihe robuster und effizienter Verfahren für die in vivo Calciumbildgebung von Körnerzellen im Gyrus dentatus bei frei beweglichen Mäusen.

In vivo Calcium-Bildgebung von Körnerzellen im Gyrus dentatus des Hippocampus bei Mäusen 

Dieses Protokoll beschreibt in vivo die Kalziumbildgebung von hypothalamischen Neuronen mit einem miniaturisierten Mikroskop (Miniscope) bei frei handelnden Mäusen während der Manipulation des sozialen Zustands (soziale Isolation und soziale Wiedervereinigung). Diese Methode ermöglicht die Bildgebung der hypothalamischen Aktivität, die sozialen Bedürfnisse und soziale Sättigung repräsentiert, mit einer einzelnen neuronalen Auflösung und ermöglicht mechanistische Studien der sozialen Homöostase.

In vivo Kalziumbildgebung mit einem miniaturisierten Mikroskop im Hypothalamus zum Verständnis sozialer Verhaltensweisen bei Mäusen

Wir beschreiben eine etablierte Technik zur Messung und Analyse Gerüche hervorgerufene Kalzium-Reaktionen im Antennallobus...

Calcium Imaging von geruchs-evozierte Potentiale in der Drosophila Antennallobus

Erfahren Sie die Miniskop-Aufzeichnung von Kalziumsignalen im dorsalen CA1 des Hippocampus bei Mäusen während der Geruchsfahrt-Navigation. Diese Methode ermöglicht die Decodierung neuronaler Aktivität im Zusammenhang mit räumlichem Verhalten und Alzheimer-Erkrankung.

Miniskop zur Aufzeichnung von Kalziumsignalen am Hippocampus von Mäusen, die durch eine Geruchsfahne navigieren

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