Name: 5/6 Nephrektomie mit scharfer Bipolektomie über Midline-Laparotomie bei Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-04-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 34 s
Description: Lernen Sie die 5/6-Nephrektomie mit scharfer Bipolektomie über Midline-Laparotomie bei Ratten. Diese standardisierte Methode ermöglicht präzise Induktion von Niereninsuffizienz für nephrologische Forschung.

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Alle in diesem Dokument beschriebenen Tierverfahren wurden in akkreditierten Einrichtungen durchgeführt und vom Institutionellen Ausschuss für Tierpflege und -verwendung (IACUC) des Regierungspräsidiums Baden-Württemberg in Karlsruhe (35-9185.81/G-62/23) genehmigt. Der Umgang mit den Versuchstieren erfolgte nach institutionellen Protokollen und unter Beachtung der deutschen Tierschutzgesetze sowie unter Einhaltung der Richtlinien des Rates der Europäischen Gemeinschaft (2010/63/EU) und der ALME-Leitlinien. Männliche Sprague Dawley-Ratten mit einem Anfangsgewicht von 400 g wurden nach einer 1-wöchigen Akklimatisierungsphase eingesetzt.
1. Anästhesie und Analgesie
<ol>
	<li>Narkotisieren Sie das Rattenmodell mit den Arzneimitteln Ihrer Wahl. Um diesem Protokoll zu folgen, führen Sie eine flüchtige Induktion der Sedierung mit Isofluran durch, gefolgt von einer intraperitonealen Injektion von 100 mg/kg Ketamin mit Körpergewicht für die dissoziative Anästhesie und 4 mg/kg Xylazin mit Körpergewicht. Erreichen Sie eine Analgesie mit subkutanen Injektionen von 5 mg/kg Carprofen Körpergewicht. HINWEIS: Ein ausführliches Protokoll findet sich in der zitierten Literatur25.</li>
	<li>Stellen Sie eine angemessene Analgetiktiefe sicher, indem Sie während des Zehenquetschtests mit einer chirurgischen Zange auf Schmerzreflexe achten und die Narkosetiefe während des Eingriffs regelmäßig neu bewerten.</li>
	<li>Tragen Sie ophthalmisches Gleitmittel auf die Augen auf, um ein Austrocknen der Hornhaut zu verhindern.</li>
</ol>
2. Vorbereitung des Eingriffs
<ol>
	<li>Bereiten Sie die Operationsstelle mit allen erforderlichen Materialien und Instrumenten vor, einschließlich Polyfilament-Ligaturen, Silikongefäßschlaufen, stumpfen Überholklemmen, Feinpräparationsscheren und -zangen sowie hämostatischen Pflastern, die in 0,8 x 0,6 cm große Stücke geschnitten werden (Abbildung 1A-G). Bereiten Sie die chirurgische Expositionsvorrichtung für Nagetiere, ein Heizkissen und die chirurgischen Vorbereitungshaken vor, wie in der zitierten Literatur25 beschrieben.</li>
	<li>Rasieren Sie die Länge des gewünschten Zugangs, desinfizieren Sie die Operationsstelle durch drei abwechselnde Peelings mit 70 % Ethanol und Jod oder Chlorhexidin-basierten Peelingtupfern in kreisenden Bewegungen und erreichen Sie eine ordnungsgemäße Sauerstoffversorgung durch Inhalation von 100 % Sauerstoff mit einer Gesichtsmaske für Neugeborene (Abbildung 1H-J). Decken Sie den Rest des Körpers außerhalb des chirurgischen Ortes mit Abdecktüchern ab, um eine Kontamination zu vermeiden. HINWEIS: Das repräsentative Tier, das zur Erstellung von Figurenbildern verwendet wurde, wurde nicht drapiert, um eine bessere Visualisierung der anatomischen Orientierungspunkte zu ermöglichen.</li>
	<li>Führen Sie eine mediane Mini-Laparotomie über einen initialen medianen Hautschnitt über die gewünschte Bauchlänge von ~3 cm und einen anschließenden etwas kleineren Schnitt der Faszie entlang der Linea alba durch (Abbildung 1K-M).</li>
	<li>Erreichen Sie eine chirurgische Freilegung der Niere mit chirurgischen Kompressen und chirurgischen Vorbereitungshaken (Abbildung 1N-O). Berühren Sie das Nierenparenchym nur mit atraumatischen Präparationsinstrumenten wie einem angefeuchteten Wattestäbchen oder einer angefeuchteten Kompresse mit einer Pinzette oder stumpfen Überholklemmen.</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67322/67322fig01.jpg"> 
Abbildung 1: Experimentelle Instrumente, Materialien und Aufbau. (A) Erforderliche chirurgische Instrumente; (B) Ligatur aus Polyfilamenten; (C) Gefäßschlaufe aus Silikon; (D) eine Schere für die feine Vorbereitung. (E-G) Hämostatisches Pflaster in 0,8 x 0,6 cm große Stücke geschnitten. (H-J) Rattenmodell rasiert und mit Gesichtsmaske mit Sauerstoff angereichert. Das repräsentative Tier, das zur Erstellung von Figurenbildern verwendet wurde, wurde nicht drapiert, um eine bessere Visualisierung der anatomischen Orientierungspunkte zu ermöglichen. (K,L) Medianer Hautschnitt über die gewünschte Bauchlänge von ~3 cm. (M) Mediane Mini-Laparotomie; (N) Freilegung der linken Niere unter Verwendung einer chirurgischen Kompresse, chirurgischer Vorbereitungshaken und eines Metallständers; (O) analoge Freilegung der rechten Niere und Resektion der Faszie der Gerota. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67322/67322fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
3. Partielle Nephrektomie
<ol>
	<li>Legen Sie die entsprechende Niere frei, greifen Sie nach dem perirenalen Fett, das an der dünnen Gerota-Faszie befestigt ist, und üben Sie etwas Spannung aus, um die Faszie lokal vom Nierenparenchym abzuheben (Abbildung 2A, B.2).</li>
	<li>Die Faszie mit dem scharfen Ende einer Scherenkante einschneiden und untergraben und mit einer Längssektion der Faszie der Gerota fortfahren (Abbildung 2B).</li>
	<li>Führen Sie eine stumpfe Enthandschuhung der Faszie der Gerota mit einer geschlossenen Schere durch, indem Sie die Faszie um das Parenchym herum allmählich untergraben und die Faszienkapsel medial falten – gegebenenfalls teilweise resezieren (Abbildung 2C).</li>
	<li>Befestigen Sie den Nierenhilum mit einer Silikongefäßschlaufe für eine verbesserte Gefäßkontrolle (Abbildung 2D).</li>
	<li>Platzieren Sie die Spitze der Pinzette in den retroperitonealen Raum, um die Niere zu stabilisieren, um ein dorsales Entweichen der Niere während des Schneidvorgangs zu vermeiden, und führen Sie die kraniale scharfe 1/3 Nierenpolektomie in einem präzisen, gezielten Schlag mit einer Schere durch (Abbildung 2E). HINWEIS: Die Präparierlinie sollte in der klinischen Untersuchung so gewählt werden, dass sie das Organ in 1/3 der Organhöhe kranial und kaudal trennt.</li>
	<li>Die Blutstillung wird durch Auftragen eines hämostatischen Pflasters, durch manuelle Kompression, durch Kompression mit stumpfen Instrumenten oder durch hiläre Spannung über die Silikongefäßschlaufe erreicht, wodurch der hiläre Blutfluss effektiv reduziert wird (Abbildung 2F-J). HINWEIS: Die Blutstillung wurde regelmäßig durch gleichzeitiges Ziehen der Gefäßschlaufe und Anlegen des hämostatischen Pflasters für 2,5-3 Minuten erreicht.</li>
	<li>Es folgt eine kaudale scharfe 1/3 Nierenpolektomie in analoger Weise (Abbildung 2K-N). Streben Sie bei beiden Scherenschlägen eine leicht abgewinkelte Dissektionsebene an, die mehr Nierenparenchym auf der hilären Seite und weniger Gewebe auf der lateralen Seite hinterlässt, um unbeabsichtigte hiläre Verletzungen zu vermeiden und Harnverlust aus dem Beckenkocalicealsystem zu reduzieren (Abbildung 2O). Wenn eine höhere Standardisierung der präzisen 5/6-Parenchym-Resektion gewünscht wird, wiegen Sie das Resektat der totalen Nephrektomie auf der weiter unten beschriebenen kontralateralen Seite, wiegen Sie die Resekate der partiellen 2/3-Nephrektomie und wiederholen Sie die Dissektion in einer "Salami-Slicing"-Technik, bis genau 2/3 des Gewichts erreicht sind.</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67322/67322fig02.jpg"> 
Abbildung 2: Partielle Nephrektomie. (A) Chirurgische Freilegung einer Niere. (B) Längsschnitt der Faszie der Gerota mit einer scharfen Schere. (C) Stumpfes Enthandschuhen der Faszie der Gerota mit einer geschlossenen Schere. (D) Schleudern des Nierenhilums mit einer Silikongefäßschlaufe. (E) Schädelscharfe 1/3-Polektomie mit Schere und Pinzette als Führung. (F) Erreichen der Blutstillung durch Auftragen eines hämostatischen Pflasters; (G) Erreichen der Blutstillung durch manuelle Kompression; (H-J) Erreichen der Blutstillung durch Kompression mit stumpfen Instrumenten und hiläre Spannung über die Silikongefäßschlinge. (K-N) Kaudalspitz 1/3 Polektomie in Analogie. (O) Schematische Darstellung der empfohlenen Präparierebenen, um unbeabsichtigte hiläre Verletzungen zu vermeiden (schwarze Linien). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67322/67322fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
4. Totale Nephrektomie
<ol>
	<li>Mobilisieren Sie die Niere in Analogie zu den oben beschriebenen Schritten und tunneln Sie den Nierenhilum mit stumpfen Overholt-Klemmen (Abbildung 3A,B).</li>
	<li>Befestigen Sie den Nierenhilum mit einer polyfilen Ligatur und platzieren Sie einen sicheren Gleitknoten auf dem Nierenhilum etwas näher an den Bauchgefäßen, um den renalen Blutfluss und den Harnleiter zu verschließen (Abbildung 3C, D).</li>
	<li>Präparieren Sie den Hilum scharf mit einer Schere und entfernen Sie die Niere (Abbildung 3E,F).</li>
	<li>Kontrolle der Blutstillung und Abschneiden der Ligaturenden (Abbildung 3G-J).</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67322/67322fig03.jpg"> 
Abbildung 3: Totale Nephrektomie. (A) Chirurgische Freilegung der kontralateralen Niere; (B) analoge Entfernung der Faszie der Gerota und Tunnelung des Nierenhilums mit stumpfen Overholt-Klemmen; (C) Schleudern des Hilums mit einer polyfilen Ligatur. (D) Platzierung einer gleitenden Knotenligatur auf dem Nierenhilum; (E,F) scharfe Dissektion des Hilums mit einer Schere und Entfernung der Niere; (G-I) Kontrolle für die Blutstillung und das Schneiden der Ligaturenden. (J) Schematische Darstellung der empfohlenen Ligaturhöhe (gestrichelte Linie) und der Präparierebene (schwarze Linie). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67322/67322fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
5. Verschluss der Bauchdecke
<ol>
	<li>Legen Sie eine Ecknaht mit einer polyfilen Naht auf die Bauchfaszie (Abbildung 4A-D).</li>
	<li>Fahren Sie mit dem Nähen der Bauchfaszie mit einer Laufnaht fort, wobei ~2 mm Gewebe bei jedem Biss und etwa 4 mm zwischen den Bissen gegriffen werden (Abbildung 4E-I).</li>
	<li>Vernähen Sie die Hautschicht mit Einzelstichen, wobei bei jedem Biss ~3 mm Gewebe und ~6 mm zwischen den Bissen gegriffen werden (Abbildung 4J-Q).</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67322/67322fig04.jpg"> 
Abbildung 4: Verschluss der Bauchdecke. (A-D) Platzierung einer Ecknaht auf der Bauchfaszie mit Hilfe einer polyfilen Naht. (E-I) Laufnaht der Bauchfaszie; (J-Q) Naht der Hautschicht mit Einzelstichen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67322/67322fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
6. Weitere Schritte
<ol>
	<li>Abhängig vom gewünschten Szenario, dem Forschungszweck und dem Grad der gewünschten Niereninsuffizienz sind Abweichungen von diesem Protokoll in Betracht zu ziehen, einschließlich einer Variation der Menge des resezierten Nierenparenchyms, z. B. einseitige totale Nephrektomie (3/6 Nephrektomie), bilaterale totale Nephrektomie (6/6 Nephrektomie), einseitige Monopolektomie (1/6 Nephrektomie), bilaterale Monopolektomie (2/6 Nephrektomie), unilaterale Bipolektomie (2/6 Nephrektomie) und bilaterale Bipolektomie (4/6 Nephrektomie).</li>
	<li>Im Allgemeinen wird entweder die Tiere durch scharfe Kardiektomie ohne vorherigen Bauchwandverschluss eingeschläfert, wenn es sich um Anwendungen handelt, die nicht überleben, oder es wird ein schrittweiser Bauchverschluss wie oben beschrieben bei geplanten Überlebensversuchen mit Nachuntersuchungen durchgeführt.</li>
	<li>Bei Überlebensanwendungen sind während der Operation stets sterile Bedingungen zu gewährleisten. Bereiten Sie die Haut vor der Operation an der Operationsstelle aseptisch vor, indem Sie sowohl ein Peeling (auf Jod- oder Chlorhexidinbasis) als auch Alkohol verwenden. Verwenden Sie für jedes Tier eine frische autoklavierte Packung Instrumente.</li>
	<li>Überwachen Sie das Tier nach der Operation, bis es bei Bewusstsein genug ist, um das Brustbein aufrecht zu erhalten, und isolieren Sie es, bis es sich vollständig erholt hat.</li>
	<li>Als postoperative Behandlung des Tieres gehören tägliche Besuche durch medizinisches Personal sowie postoperative Schmerzbehandlung mit subkutanen Injektionen von 5 mg/kg Körpergewicht Carprofen 2x täglich für 2 Tage.</li>
	<li>Verwenden Sie Scoresheets mit klar definierten Abbruchkriterien für die Dauer bis zur vollständigen postoperativen Genesung. Verwenden Sie die Rat Grimace Scale26 oder den Body Condition Score27 aus der zitierten Literatur. Beenden Sie das Experiment, wenn der Grimasse-Score nach der Anwendung von Carprofen 6 oder ein Body Condition Score = 1 ≥. Zusätzlich bei einer chirurgischen Komplikation wie einer postoperativen Wundinfektion oder einer Bauchwandverschlussinsuffizienz abbrechen.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Standardisierte 5/6-Nephrektomie bei Ratten bei Niereninsuffizienz und Malperfusion

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</ol>

<table><tbody><tr><td>atraumatische Präparationszange</td><td>Aesculap</td><td>FB395R</td><td>DE BAKEY ATRAUMATA atraumatische Pinzette, gerade</td></tr><tr><td>stumpfe Überholklemme</td><td>Aesculap</td><td>BJ012R</td><td>BABY-MIXTER Präparations- und Ligaturklemme, gebogen, 180 mm</td></tr><tr><td>Kanüle</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>301300</td><td>BD Microlance 3 Kanüle 20 G</td></tr><tr><td>Fixierstäbe</td><td>legefirm</td><td>&lrm; 500343896</td><td>Stimmgabeln als Y-förmige Befestigungsstäbe aus Metall</td></tr><tr><td>Heizkissen</td><td>Royal Gardineer</td><td>IP67</td><td>Royal Gardineer Heizkissen Größe S, 20 Watt</td></tr><tr><td>Kunststoff-Perfusorrohr</td><td>M. Schilling GmbH</td><td>S702NC150</td><td>Verbindungsrohr COEX 150 cm</td></tr><tr><td>Polyfilament-Nahtmaterial</td><td>Covidien</td><td>CL-769</td><td>Covidien Polysorb Geflochtenes resorbierbares Nahtmaterial 2-0 75 cm</td></tr><tr><td>Präparationsschere</td><td>Aesculap</td><td>BC177R</td><td>JAMESON Präparationsschere, gebogen, feines Modell, stumpf/stumpf, 150 mm (6")</td></tr><tr><td>Abdichtung Hämostat</td><td>Pflaster Baxter</td><td>1506257</td><td>Hemopatch Versiegelung Hemopatch Baxter 45 x 90 mm</td></tr><tr><td>Silikon Gefäß Schlaufenbinder</td><td>SERAG WIESSNER</td><td>SL26</td><td>Silikon Gefäß Schlaufenbinder 2,5 mm rot</td></tr><tr><td>Spraque Dawley Ratte</td><td>Janvier Labs</td><td>RN-SD-M</td><td>Spraque Dawley Ratte</td></tr><tr><td>Stahl Platte</td><td>Maschinenbau Feld GmbH</td><td>C010206</td><td>Verzinktes Blechblech, 40 x 50 cm, Stärke 4,0 mm</td></tr><tr><td>Yasargil Clip</td><td>Aesculap</td><td>FE795K</td><td>YASARGIL Aneurysma Clip System Phynox Temporary (Standard) Clip</td></tr><tr><td>Yasargil Clip Applikator</td><td>Aesculap</td><td>FE558K</td><td>YASARGIL Aneurysma Clip Applikator Phynox (Standard)</td></tr></tbody></table>

5/6 nephrektomie mit scharfer bipolektomie über midline-laparotomie bei ratten

5/6 Nephrectomy Using Sharp Bipolectomy Via Midline Laparotomy in Rats

Dieses Protokoll wurde an 10 männlichen Ratten (Durchschnittsgewicht 398 ± 35 g) ohne Überleben durchgeführt und der Eingriff wurde von einem chirurgischen Assistenzarzt im dritten Jahr durchgeführt. Die Erfolgsrate, die durch das Überleben über 20 Minuten nach Bauchwandverschluss definiert wurde, betrug 100%. Die mittlere Dauer des Präparats vom Hautschnitt bis zum Hautverschluss betrug 18 min 34 s ± 7 min 31 s.
Leider gibt es aufgrund des Nicht-Überlebenscharakters dieses Manuskripts keine D...

5/6 Nephrektomie mit scharfer Bipolektomie über Midline-Laparotomie bei Ratten

Chronic kidney disease (CKD) affects over 10% of the global population, amounting to more than 800 million individuals worldwide. The advances in the ...

56-nephrectomy-using-sharp-bipolectomy-via-midline-laparotomy-in-rats

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Ein zweistufiges Verfahren zur chronischen Niereninsuffizienz (CNI) in der Lewis-Ratte etablieren durch chirurgisches Entfernen 5/6th der renalen Masse beschrieben. Kombination des chirurgischen Eingriffs, führt NOS-Hemmung und ein High-Salz-Diät zu einem Modell ähnlich menschlichen CKD, sodass Studie von kausalen Mechanismen und Entwicklung neuartiger therapeutischer Interventionen.

5/6th Nephrektomie in Kombination mit hohen Salz-Diät-und Stickstoffmonoxid-Synthase-Hemmung zu Chronic Kidney Disease in der Lewis-Ratte induzieren

Die Verabreichung von Medikamenten für die Wiederherstellung der Nierenfunktion erfordert die Kontrolle der Lokalisierung und Verteilung der therapeutischen Verbindung. Hier beschreiben wir im Detail eine einfache Technik für intrarenalen Abgabe von Arzneimitteln in Ratten. Dieses Verfahren kann ohne Mortalität und hoher Reproduzierbarkeit leicht durchgeführt werden.

Die intravaskuläre Lieferung von Biologics zur Rattenniere

Diese Handschrift enthält eine detaillierte zweistufigen chirurgische Prozedur zum Maus 5/6th partiellen Nephrektomie (PNx) mit Pol Ligatur durchzuführen. Vier Wochen nach der Operation im Vergleich zu Schein betrieben Mäuse, die PNx Mäuse entwickelt, eingeschränkter Nierenfunktion, Anämie, Herzhypertrophie, kardialer Fibrose und sank der systolische und der diastolische Herzfunktion.

5/6th Nephrektomie Mausmodell, die experimentelle urämischen Kardiomyopathie induziert

Induktion schnelle Leber Hypertrophie mit Leber-Partition zuordnen und Pfortader Ligatur für eine Hepatektomie bereitgestellt wurde (ALPPS) für die Resektion von borderline entfernbaren Lebertumoren vorgeschlagen. Dieses Modell kann schnelle Hypertrophie Mechanismen aufzuklären und ermöglicht die Prüfung von Betäubungsmitteln, die fördern oder blockieren die Beschleunigung der Regeneration.

Rattenmodell der Leber Partition zuordnen und Pfortader Ligation inszenierten Hepatektomie (ALPPS) Verfahren

Dieser Artikel beschreibt die Methode für die chirurgische Platzierung bei Mäusen eine intraperitoneale Katheter befestigt an einem Zugang-Anschluss, der an der Rückseite des Tieres positioniert ist. Darüber hinaus erklärt, das Verfahren für eine 5/6 Nephrektomie urämischen Bundesstaat PD-Patienten ähneln.

Chirurgische Techniken zur Platzierung des Katheters und 5/6 Nephrektomie in murinen Modellen der Peritonealdialyse

Tissue-Engineering Nierenfunktion Konstrukte bieten eine Lösung für den Organmangel und die schädlichen Wirkungen der Dialyse. Hier beschreiben wir ein Protokoll zum Mikro murine Nieren zur Isolation von Cortico-medullären Segmente zu sezieren. Diese Segmente werden in zellulären Gerüst-freie Konstrukte bilden renale Organellen implantiert.

Mikrodissektion primäre renale Gewebe Segmente und Einbindung mit neuartigen Gerüst-freie Konstrukt-Technologie

Der Zweck dieses Manuskripts und Protokolls ist es, den chirurgischen Eingriff der orthotopischen Nierentransplantation bei Ratten im Detail zu erklären und zu demonstrieren. Diese Methode wird vereinfacht, um die korrekte Durchblutung der Spenderniere zu erreichen und die Reperfusionszeit durch die venöse und urterische Manschette Anastomose-Technik zu verkürzen.

Orthotopic Rat Nierentransplantation: Ein neuartierter und vereinfachter chirurgischer Ansatz

Diese Arbeit enthält detaillierte Anweisungen, die es den Forschern ermöglichen, eine reversible einseitige Harnleiterobstruktion bei Mäusen unter Verwendung eines standardisierten Modells durchzuführen, das eine Analyse der langfristigen strukturellen und funktionellen Ergebnisse nach der Umkehrung einer anhaltenden Harnleiterobstruktion ermöglicht.

Ein Mausmodell zur Bewertung der langfristigen strukturellen und funktionellen Ergebnisse nach der Umkehrung einer anhaltenden einseitigen Harnleiterobstruktion

Dieses Protokoll beschreibt ein Überlebensverfahren für eine sichere und gut verträgliche beidseitige neurale Lymphadenektomie der Maus.

Murine bilaterale Nierenlymphadenektomie

Einzel-Port laparoskopische Chirurgie ist die Änderung der Standard der Behandlung in der chirurgischen Versorgung wie nichts, da die laparoskopische Technik vor 20 Jahren eingeführt wurde. Wir präsentieren aus Technik der Single-Port-Spender Nephrektomie mit dem Gelpoint Gerät. Wir haben erfolgreich diese Operation in 100 Patienten durchgeführt.

Single Port Donor Nephrektomie

Lernen Sie die 5/6-Nephrektomie mit scharfer Bipolektomie über Midline-Laparotomie bei Ratten. Diese standardisierte Methode ermöglicht präzise Induktion von Niereninsuffizienz für nephrologische Forschung.

5/6 Nephrektomie mit scharfer Bipolektomie über Midline-Laparotomie bei Ratten

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