Name: Optimierte intravenöse Injektion bei adulten Zebrafischen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-12-20T14:40:00.000+00:00
Duration: 5 min 17 s
Description: Erfahren Sie die optimierte intravenöse Injektion bei adulten Zebrafischen für verbesserte Zellengraftung und Überlebensraten. Diese Methode ermöglicht präzise Zell- oder Substanzgabe für hämatologische Forschung.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Choi, T. Y., Choi, T. I., Lee, Y. R., Choe, S. K., Kim, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+as+an+animal+model+for+biomedical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Zebrafish as an animal model for biomedical research.</a> Exp Mol Med. 53 (3), 310-317 (2021).</li>
<li>Lieschke, G. J., Currie, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+human+disease%3A+zebrafish+swim+into+view%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Genet%22%5BJournal%5D)">Animal models of human disease: zebrafish swim into view.</a> Nat Rev Genet. 8 (5), 353-367 (2007).</li>
<li>Wu, J. Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patient-derived+xenograft+in+zebrafish+embryos%3A+a+new+platform+for+translational+research+in+gastric+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Patient-derived xenograft in zebrafish embryos: a new platform for translational research in gastric cancer.</a> J Exp Clin Cancer Res. 36 (1), 160(2017).</li>
<li>Welker, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correction%3A+Standardized+orthotopic+xenografts+in+zebrafish+reveal+glioma+cell-line-specific+characteristics+and+tumor+cell+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Correction: Standardized orthotopic xenografts in zebrafish reveal glioma cell-line-specific characteristics and tumor cell heterogeneity.</a> Dis Model Mech. 9 (9), 1063-1065 (2016).</li>
<li>Stoletov, K., Montel, V., Lester, R. D., Gonias, S. L., Klemke, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+imaging+of+the+dynamic+tumor+cell+vascular+interface+in+transparent+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">High-resolution imaging of the dynamic tumor cell vascular interface in transparent zebrafish.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (44), 17406-17411 (2007).</li>
<li>Etchin, J. P. K. J., Look, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+as+a+model+for+the+study+of+human+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Zebrafish as a model for the study of human cancer.</a> Methods Cell Biol. 105, 309-337 (2011).</li>
<li>Khan, N., Mahajan, N. K., Sinha, P., Jayandharan, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+method+to+generate+xenograft+tumor+models+of+acute+myeloid+leukemia+and+hepatocellular+carcinoma+in+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Blood+Cells+Mol+Dis%22%5BJournal%5D)">An efficient method to generate xenograft tumor models of acute myeloid leukemia and hepatocellular carcinoma in adult zebrafish.</a> Blood Cells Mol Dis. 75, 48-55 (2019).</li>
<li>Corkery, D. P., Dellaire, G., Berman, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leukaemia+xenotransplantation+in+zebrafish--chemotherapy+response+assay+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Haematol%22%5BJournal%5D)">Leukaemia xenotransplantation in zebrafish--chemotherapy response assay in vivo.</a> Br J Haematol. 153 (6), 786-789 (2011).</li>
<li>He, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functions+of+flt3+in+zebrafish+hematopoiesis+and+its+relevance+to+human+acute+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Functions of flt3 in zebrafish hematopoiesis and its relevance to human acute myeloid leukemia.</a> Blood. 123 (16), 2518-2529 (2014).</li>
<li>Wang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+IDH2%28R172K%29+and+IDH2%28R140Q%29+zebrafish+models+recapitulated+features+of+human+acute+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Transgenic IDH2(R172K) and IDH2(R140Q) zebrafish models recapitulated features of human acute myeloid leukemia.</a> Oncogene. 42 (16), 1331(2023).</li>
<li>Fan, R. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+xenograft+model+for+studying+mechanism+and+treatment+of+non-small+cell+lung+cancer+brain+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Zebrafish xenograft model for studying mechanism and treatment of non-small cell lung cancer brain metastasis.</a> J Exp Clin Cancer Res. 40 (1), 371(2021).</li>
<li>LeBlanc, J., Bowman, T. V., Zon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+whole+kidney+marrow+in+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transplantation of whole kidney marrow in adult zebrafish.</a> J Vis Exp. (2), e159(2007).</li>
<li>Pugach, E. K., Li, P., White, R., Zon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retro-orbital+injection+in+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Retro-orbital injection in adult zebrafish.</a> J Vis Exp. (34), e1645(2009).</li>
<li>Benjamin, D. C., Hynes, R. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+imaging+of+metastasis+in+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cancer%22%5BJournal%5D)">Intravital imaging of metastasis in adult zebrafish.</a> BMC Cancer. 17 (1), 660(2017).</li>
<li>Hilligan, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+administration+of+BCG+protects+mice+against+lethal+SARS-CoV-2+challenge%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Intravenous administration of BCG protects mice against lethal SARS-CoV-2 challenge.</a> J Exp Med. 219 (2), e20211862(2022).</li>
<li>Moreo, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+administration+of+BCG+in+mice+promotes+natural+killer+and+T+cell-mediated+antitumor+immunity+in+the+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Intravenous administration of BCG in mice promotes natural killer and T cell-mediated antitumor immunity in the lung.</a> Nat Commun. 14 (1), 6090(2023).</li>
<li>Wang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+administration+of+IL-12+encoding+self-replicating+RNA-lipid+nanoparticle+complex+leads+to+safe+and+effective+antitumor+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Intravenous administration of IL-12 encoding self-replicating RNA-lipid nanoparticle complex leads to safe and effective antitumor responses.</a> Sci Rep. 14 (1), 7366(2024).</li>
<li>Saleem, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+best+practice+for+validating+tail+vein+injections+in+rat+with+near-infrared-labeled+agents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A new best practice for validating tail vein injections in rat with near-infrared-labeled agents.</a> J Vis Exp. (146), e59295(2019).</li>
<li>Rojas, A. M., Shiau, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain-localized+and+Intravenous+Microinjections+in+the+Larval+Zebrafish+to+Assess+Innate+Immune+Response%5BTitle%5D)+AND+%22Bio+Protoc%22%5BJournal%5D)">Brain-localized and Intravenous Microinjections in the Larval Zebrafish to Assess Innate Immune Response.</a> Bio Protoc. 11 (7), e3978(2021).</li>
<li>van Soest, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+static+immersion+and+intravenous+injection+systems+for+exposure+of+zebrafish+embryos+to+the+natural+pathogen+Edwardsiella+tarda%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Immunol%22%5BJournal%5D)">Comparison of static immersion and intravenous injection systems for exposure of zebrafish embryos to the natural pathogen Edwardsiella tarda.</a> BMC Immunol. 12, 58(2011).</li>
<li>Cianciolo Cosentino, C., Roman, B. L., Drummond, I. A., Hukriede, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+microinjections+of+zebrafish+larvae+to+study+acute+kidney+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Intravenous microinjections of zebrafish larvae to study acute kidney injury.</a> J Vis Exp. (42), e2079(2010).</li>
<li>Gerlach, G. F., Schrader, L. N., Wingert, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+the+adult+zebrafish+kidney%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissection of the adult zebrafish kidney.</a> J Vis Exp. (54), e2839(2011).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Autoklaven Dampfsterilisator</td><td>HIRAYAMA&nbsp;</td><td>HRG-140</td><td></td></tr><tr><td>Zentrifuge 5424</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Countess 3 Automatisierter Zellzähler</td><td>Thermofisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Countess II FL</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethyl-3-aminobenzoat, Methansulfonat, Salz (Tricain)</td><td>Sigma-aldrich</td><td>MKCL9483</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 40 &micro; m Cell Strainer</td><td>CORNING</td><td></td><td>Blue, steril, einzeln verpackt, 50/Karton</td></tr><tr><td>FBS, qualifiziert</td><td>Gibco</td><td>26140079</td><td></td></tr><tr><td>FITC-Dextran (MW 10000)&nbsp;</td><td>MedChemExpress</td><td>60842-46-8</td><td></td></tr><tr><td>Injektionsnadel</td><td>Hamilton&nbsp;</td><td>HAMI207434</td><td>34 G, 10 mm Länge</td></tr><tr><td>Mikrospritze</td><td>Hamilton&nbsp;</td><td>7635-01&nbsp;</td><td>10 & Mikro; L-Kapazität, Modell 701 RN</td></tr><tr><td>Nikon SMZ18</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS pH 7,4 (1x)</td><td>Gibco</td><td>10010023</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (5.000 U/ml)</td><td>Gibco&trade;</td><td>15070063</td><td>100x</td></tr><tr><td>Pipettenspitzen</td><td>Eppendorf&nbsp;</td><td>epTIPS</td><td></td></tr><tr><td>Einkanal-Pipette</td><td>Eppendorf&nbsp;</td><td>05-403-151</td><td></td></tr><tr><td>UltraPure destilliertes Wasser</td><td>Invitrogen</td><td>10977015</td><td></td></tr></tbody></table>

optimierte intravenöse injektion bei adulten zebrafischen

Optimized Intravenous Injection in Adult Zebrafish

Um die Wirksamkeit und Präzision verschiedener Injektionsmethoden bei adulten Casper-Fischen zu bewerten, wurde eine vergleichende Analyse mit intrakardialen, RO- und IV-Techniken durchgeführt (Abbildung 2A). Es wurden unterschiedliche Mengen an WKM-Zellen aus Tg(mpo: EGFP)-Fischen injiziert, die jeweils mit FITC-Dextran-Farbstoff in Konzentrationen von 1 × 105 und 3 × 105 Zellen gemischt wurden. Der Erfolg jeder Methode wurde durch eine unmittelbare mikroskopische Beurteilung des Vorhandenseins des GFP-Signals nach der Injektion bestimmt. Die Ergebnisse zeigten signifikante Unterschiede im Liefererfolg zwischen den Methoden. Die IV-Injektionsmethode zeigte die höchste Wirksamkeit, wobei GFP-Signale bei 41 von 43 Fischen nachgewiesen wurden. Im Gegensatz dazu zeigte die RO-Methode nur einen begrenzten Erfolg, da nur bei 3 von 37 Fischen erfolgreiche Injektionen beobachtet wurden. Die intrakardiale Methode führte bei 11 von 40 Fischen zu einer erfolgreichen Verabreichung (Abbildung 2A). Auch das Überleben der umgepflanzten Fische wurde überwacht. Fische, die über die RO- und intrakardiale Methode injiziert wurden, hatten signifikant niedrigere Überlebensraten im Vergleich zu denen, die intravenös injiziert wurden (Abbildung 2B). Bemerkenswert ist, dass die Anzahl der injizierten Zellen die Überlebensraten bei den intravenös injizierten Fischen beeinflusste, wobei die Empfänger 3 × 105 Zellen erhielten, die ein besseres Überleben zeigten. Diese Ergebnisse unterstreichen die überlegene Wirksamkeit und Zuverlässigkeit der IV-Injektionsmethode bei der Abgabe von Zellen und Substanzen an erwachsene Zebrafische.
Die Transplantationseffizienz von WKM-Zellen in Empfänger-Casper-Fischen wurde durch Überwachung des GFP-Signals von den transplantierten Zellen gründlich untersucht. Bei Fischen, die intravenöse Injektionen erhielten, waren GFP-Signale bereits am dritten Tag nach der Transplantation nachweisbar (Abbildung 2C), was auf einen schnellen und effektiven Transplantationsprozess hinweist. Im Gegensatz dazu zeigten Fische, die sich einer RO- und intrakardialen Injektion unterzogen, ein verzögertes Aufkommen des GFP-Signals, was auf eine langsamere Transplantationsrate hindeutet. Am 17. Tag nach der Transplantation hatten die transplantierten Zellen das Nierenmark überwiegend wieder besiedelt, wobei die ausgeprägtesten GFP-Signale bei den intravenös injizierten Fischen beobachtet wurden (Abbildung 2C). Die durchflusszytometrische Analyse der KM der Empfänger unterstrich die Wirksamkeit der intravenösen Injektionsmethode weiter. Bei Empfängern, denen zunächst 3 × 105 Zellen intravenös injiziert wurden, waren etwa 18 % der Zellen im KM GFP-positiv, ein ähnlicher Anteil wie im Nierenmark des Spenderfisches Tg(mpo: EGFP), der keiner Transplantation unterzogen worden war (Abbildung 2D, E). Im Gegensatz dazu ergab die intrakardiale Injektion etwa 5 % GFP-positive Zellen, während die RO-Methode nur etwa 2 % GFP-positive Zellen im Nierenmark der Empfänger ergab. Darüber hinaus korrelierte die Transplantationsrate positiv mit der Anzahl der injizierten Zellen, was zeigt, dass höhere Zelldosen zu einer stärkeren Transplantation führten. Diese Ergebnisse bestätigen die Robustheit der IV-Injektionstechnik bei der Erleichterung der Zelltransplantation und der anschließenden Wiederbesiedlung des Nierenmarks.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67463/67463fig01v2.jpg"> 
Abbildung 1: Überlebensergebnisse nach Bestrahlung und intravenöser Injektion bei adulten Zebrafischen. (A) Casperfische wurden einer Bestrahlung von bis zu 35 Gy ausgesetzt und überwachten das Überleben über 30 Tage, wobei 25 Gy als subletale Dosierung bestätigt wurden (n = 10 für alle Gruppen). (B) Schematische Diagramme, die die Injektionsstellen sowohl für Casper - als auch für TU-Zebrafische veranschaulichen, zusammen mit Beispielen von erfolgreich injizierten Fischen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67463/67463fig01largev2.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67463/67463fig02v2.jpg"> 
Abbildung 2: Vergleich von retroorbitalen, intrakardialen und intravenösen Injektionen bei adulten Zebrafischen. (A) Schematische Darstellungen und repräsentative Ergebnisse von RO-, intrakardialen und IV-Injektionsmethoden bei adulten Zebrafischen. Die Zahlen in der unteren rechten Ecke geben die Anzahl der erfolgreich injizierten oder falsch injizierten Fische im Verhältnis zur Gesamtzahl der bei jeder Methode versuchten Fische an. Das GFP-Signal wurde unmittelbar nach der Injektion unter dem Fluoreszenzmikroskop überprüft. (B) Gesamtüberleben der Empfänger nach Transplantation mit unterschiedlicher Anzahl von Spendernierenmarkzellen durch unterschiedliche Injektionsmethoden (IV-100K: n = 24; Intrakardial-100K: n = 10; RO-100K: n = 12; IV-300K: n = 20; Intrakardial-300K: n = 6; RO-300K: n = 8). (C) Beobachtung der Transplantationseffizienz bei Empfängern nach der Transplantation mittels RO-, intrakardialer und intravenöser Injektionsmethoden (D) Repräsentatives Durchflusszytometrie-Diagramm für die GFP-positiven Zellen in KM der Empfänger 17 Tage nach der Transplantation. (E) Der prozentuale Anteil an GFP+ -Zellen in der KM der Empfänger 17 Tage nach der Transplantation sowie in der KM von Spenderfischen Tg(mpo:EGFP) ohne Bestrahlung (IV-100K: n = 30; Intrakardial-100K: n = 28; RO-100K: n = 22; IV-300K: n = 22; Intrakardial-300K: n = 26; RO-300K: n = 18). Die Daten sind mittlere ± s.e.m. Für D wurde eine einfache ANOVA durchgeführt. Der Log-Rank-Test wurde für B durchgeführt. *P &lt; 0,05, **P &lt; 0,01, ****P &lt; 0,001, ****P &lt; 0,0001. Maßstabsleisten = 1 mm (A, C). Abkürzungen: RO = retroorbital; IV = intravenös; GFP = grün fluoreszierendes Protein; KM = Nierenmark; SSC-A = seitliche Streu-Peak-Fläche; FITC-A = Fluorescein-Isothiocyanat-Peak-Bereich. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67463/67463fig02largev2.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>

Optimierte intravenöse Injektion bei adulten Zebrafischen

Intravenous (IV) injection is widely recognized as the most effective and commonly utilized method for achieving systemic delivery of substances in ...

optimized-intravenous-injection-in-adult-zebrafish

Research

Forschung

JoVE Journal

Cancer Research

Krebsforschung

Hier zeigen wir, wie retro-orbitalen Injektion bei erwachsenen Zebrafisch zu tun.

Retro-Orbital-Injection in Adult Zebrafisch

Wir beschreiben eine Technik der Mikroinjektion der Aminoglykosid, Gentamicin, in 2 Tagen nach fetilization (dpf) Zebrafischlarven zu akutem Nierenversagen (AKI) zu induzieren. Wir beschreiben ein Verfahren zur whole mount Immunhistochemie, Kunststoff eingebettet und Schnitte mit Zebrabärblingembryonen der AKI-vermittelten Schaden zu visualisieren.

Intravenöse Mikroinjektionen mit Zebrabärblingembryonen zu Acute Kidney Injury Study

Wir zeigen, intraperitoneale Injektion in das Erwachsenenleben Zebrafisch. Wir verwenden eine 10 ul Nanofil Mikrospritze durch eine Micro4 Controller und UltraMicroPump III geregelt. Diese Demonstration umfasst den Einsatz von kaltem Wasser als Betäubungsmittel.

Intraperitoneale Injektion in Adult Zebrafisch

Dieses Video beschreibt die Technik der intramuskulären Injektion zur Abgabe von Verbindungen in die Rückenmuskulatur eines erwachsenen Zebrafisches.

Intramuskuläre (IM) Injektion: Verabreichung von Verbindungen in den Rückenmuskel eines erwachsenen Zebrafisches

Dieses Video beschreibt eine Technik der intraperitonealen Injektion, eine Methode zur Verabreichung von Lösungen in die Bauchhöhle von erwachsenen Zebrafischen.

Intraperitoneale Injektion: Eine Methode zur Verabreichung einer Lösung in die Bauchhöhle eines erwachsenen Zebrafisches

Dieses Video beschreibt die Technik zur Abgabe von Verbindungen in das Herz von erwachsenen Zebrafischen durch intrathorakale Injektion.

Intrathorakale Injektion: Abgabe von Verbindungen an das Herz eines erwachsenen Zebrafisches

Hier beschreiben wir ein Protokoll für die Impfung von der Erwachsenen Zebrabärbling (Danio Rerio) mit einem DNA-basierten Impfstoff und die Validierung einer erfolgreichen Impfung Veranstaltung zu demonstrieren. Diese Methode eignet sich für die präklinische Screening Impfstoffkandidaten in verschiedenen Infektionsmodelle.

Impfung von Erwachsenen Zebrafisch für die präklinische Screening von DNA-basierte Impfstoffe

Diese Methode basiert auf der Injektion von 0,5 − 3 μL der Lösung in den Thorax von erwachsenen Zebrafischen. Das Verfahren liefert Proteine und chemische Verbindungen effizient in die Nähe des Zebrafisch-Herzens, ohne das Organ zu beschädigen. Der Ansatz eignet sich für die Untersuchung von Wirkungen exogener Faktoren auf verschiedene Gewebe des Herzens.

Intrathorakische Injektion für die Erforschung des erwachsenen Zebrafischherz

Eine neue intraperitoneale (IP) Injektionsmethode bei adulten Zebrafischen wird beschrieben. Beim Umgang mit toxischen Verbindungen wie Doxorubicin ist dieses Verfahren wirksamer als die beiden bisher berichteten IP-Methoden. Die Technik ist so konzipiert, dass sie von Forschern mit begrenzter Erfahrung im Zebrafischmodell leicht übernommen werden kann.

Eine intraperitoneale Injektionstechnik bei erwachsenen Zebrafischen, die Körperschäden und die damit verbundene Mortalität minimiert

Dieses Manuskript beschreibt das detaillierte Verfahren der intra-iliakalen Arterie (IIA) Injektion, eine Technik, um Krebszellen spezifisch in das Gewebe der hinteren Gliedmaßen, einschließlich Knochen, zu bringen, um experimentelle Knochenmetastasen zu etablieren. Obwohl dieses Protokoll ursprünglich mit Brusttumormodellen etabliert wurde, kann es leicht auf andere Krebsarten ausgeweitet werden.

Intra-Beckenarterie Injection für effiziente und selektive Modellierung von Mikroskopische Knochenmetastasen

Erfahren Sie die optimierte intravenöse Injektion bei adulten Zebrafischen für verbesserte Zellengraftung und Überlebensraten. Diese Methode ermöglicht präzise Zell- oder Substanzgabe für hämatologische Forschung.

Optimierte intravenöse Injektion bei adulten Zebrafischen

Weitere Videos entdecken