Name: Einseitige Lungenvolumenanalyse mittels Mikro-CT zur besseren Beurteilung der Lungenfibrose in präklinischen Modellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-06-20T12:55:00.000+00:00
Duration: 3 min 38 s
Description: Erfahren Sie, wie Mikro-CT die Lungenfibrose-Quantifizierung in präklinischen Modellen verbessert. Diese Methode nutzt KI-gestützte Segmentierung für präzise Volumenanalysen und transformiert die Bewertung therapeutischer Interventionen.

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Alle Tierversuche wurden vom Animal Care and Use Committee der Guangzhou Medical University genehmigt. Die Experimente wurden an 6-8 Wochen alten, 25-30 g schweren männlichen C57BL/6-Mäusen durchgeführt. Die Mäuse wurden unter einem 12-stündigen Hell-Dunkel-Zyklus (Licht: 25 Lux) mit ad libitum Zugang zu Nahrung und Wasser untergebracht und nach dem Zufallsprinzip Kontroll- und BLM-Gruppen zugeteilt.
1. Einseitige pulmonale intratracheale Instillation
<ol>
	<li>Anästhesieren Sie C57BL/6 männliche Mäuse (6-8 Wochen alt, 25-30 g) mit einer intraperitonealen Injektion von 1% Pentobarbital-Natrium (50 mg/kg).</li>
	<li>Überwachen Sie den Grad der Anästhesie, indem Sie die Atemfrequenz und den Rückzugsreflex der Gliedmaßen beobachten.</li>
	<li>Befestigen Sie die Maus in Rückenlage auf einem Kunststoffbrett, das um 70°-90° abgewinkelt ist und von den Schneidezähnen und Gliedmaßen festgehalten wird.</li>
	<li>Verwenden Sie eine sterile Zange mit stumpfen Enden, um die Zunge sanft zurückzuziehen.</li>
	<li>Führen Sie mit einem Kleintierlaryngoskop eine spezielle stumpfe 22-G-Nadel in die Luftröhre ein, um die Epiglottis- und Oropharynxstrukturen sichtbar zu machen. Drehen Sie das Brett gegen den Uhrzeigersinn um -70°, um den linken Hauptbronchus parallel zum Hauptbronchus auszurichten. Schieben Sie die Nadel vor, bis ein Widerstand zu spüren ist. HINWEIS: Messen Sie die Katheterlänge mit einer Übungsmaus ähnlicher Größe vor, um eine optimale Einführlänge zu gewährleisten.</li>
	<li>Drehen Sie die Maschine schnell in einen Winkel von 30° und infundieren Sie 40 μl Bleomycin-Lösung (0,02 mg). Entfernen Sie die Nadel.</li>
	<li>Halten Sie die Maus mindestens 30 s lang in Position, um die richtige Verteilung des Arzneimittels zu gewährleisten.</li>
	<li>Lassen Sie die Maus auf einer wärmenden Decke liegend zurückkommen.</li>
</ol>
2. Mikro-Computertomographie (Mikro-CT)
HINWEIS: Die Mäuse wurden mit dem Mikro-CT-System gemäß den Anweisungen des Herstellers gescannt.
<ol>
	<li>Führen Sie 3 Wochen nach der Bleomycin-Instillation eine Mikro-CT-Untersuchung an Mäusen durch.</li>
	<li>Geben Sie eine angemessene Menge Isofluran in den Verdampfer des Gasanästhesiegeräts für kleine Tiere, schalten Sie den Verdampfer ein, stellen Sie die Induktionskonzentration auf 3% ein und legen Sie die Mäuse in die Induktionsbox, bis sie den Flip-Flop-Reflex verlieren und eine langsame, tiefe Atmung zeigen.</li>
	<li>Nehmen Sie die Mäuse aus der Induktionsbox und legen Sie sie in Rückenlage auf den Scantisch, so dass die Mäuse ihre Gliedmaßen ausgestreckt und ihre Körper entlang der Mittellinie ausgerichtet haben.</li>
	<li>Stellen Sie die Erhaltungskonzentration von Isofluran in der Scantabelle auf 1 % ein.</li>
	<li>Stellen Sie den Micro-CT-Scanmodus ein: queres Sichtfeld 43 mm, Auflösung 2K x 2K, Pixelgröße 0,042 mm, Schichtdicke 0,042 mm.</li>
	<li>Legen Sie die Mäuse nach dem Scannen auf eine wärmende Decke, bis sie aufwachen.</li>
</ol>
3. Mikro-CT-Nachbearbeitung: Einseitige selektive Lungensegmentierung und Volumenanalyse
HINWEIS: Die Bildverarbeitung und quantitative Analyse wurden mit der kostenlosen Open-Source-Software 3D Slicer (http://www.slicer.org) gemäß den Anweisungen des Herstellers durchgeführt. Zur Normalisierung der HU-Bilder wurden klinische Bereiche der Hounsfield Unit (HU) für das Lungenfenster angewendet, wobei das Lungenparenchym in normo-belüftete Regionen ([-1000, -350] HU) segmentiert wurde, wie zuvor berichtetwurde 8,9,11. Der Ablauf der Bildverarbeitung wird wie folgt beschrieben:
<ol>
	<li>Öffnen Sie den 3D-Slicer. Die Betriebsschnittstelle ist in Abbildung 1 dargestellt.</li>
	<li>Klicken Sie auf Laden , um Bilddaten im DICOM-Format zu importieren. Axiale, koronale und sagittale Bilder werden in der Hauptschnittstelle angezeigt (Abbildung 2).</li>
	<li>Passen Sie die Parameter für die sagittale Ansicht an, wie in Abbildung 3 gezeigt (optional). (1: Versteckte Optionen anzeigen; 2: Aktuelles Volume umbenennen; 3: Neuen Namen eingeben).</li>
	<li>Klicken Sie im Modul Segmenteditor auf Hinzufügen , um eine Segmentierung für die selektive Lungenanalyse (rechte Lunge) zu erstellen (Abbildung 4) (1: Volumen; 2: Segmenteditor; 3: Segment hinzufügen; 4: Schwellenwert festlegen; 5: Schwellenwert anpassen; 6: Zur Maskierung verwenden; 7: Kugelpinsel einstellen).</li>
	<li>Stellen Sie den Schwellenwert auf [-1000, -350] HU ein und aktivieren Sie die Option Zur Maskierung verwenden .</li>
	<li>Verwenden Sie das Malwerkzeug mit einem Kugelpinsel, um die gewünschten Lungenbereiche zu segmentieren.</li>
	<li>Wählen Sie das Inselwerkzeug aus und wählen Sie Ausgewählte Insel beibehalten. Markieren Sie die rechte Lunge und klicken Sie dann auf 3D anzeigen , um das 3D-Modell im Visualisierungsfenster anzuzeigen (Abbildung 5) (1: Bearbeiten von Inseln (verbundene Komponenten); 2: Wählen Sie "Ausgewählte Insel beibehalten"; 3: 3D-Modell anzeigen).</li>
	<li>Ändern Sie im Bedienfeld Terminologie die Farbe des 3D-Modells in Blau (optional).</li>
	<li>Wiederholen Sie die Schritte 3.4-3.6 für die linke Lunge. Verarbeiten Sie die axialen Thorax-CT-Bilder Schicht für Schicht, um das beatmete linke Lungenvolumen zu berechnen und ein 3D-Modell zu erstellen (Abbildung 6).</li>
	<li>Ändern Sie die Farbe des 3D-Modells der linken Lunge in Gelb (optional).</li>
	<li>Legen Sie die Deckkraft der Segmentierung der rechten Lunge auf 0,2 fest.</li>
	<li>Exportieren Sie das 3D-Modell nach Bedarf (Abbildung 7).</li>
	<li>Nehmen Sie Screenshots der 3D-Ansicht oder des Slic-Bildes auf und speichern Sie sie (Abbildung 8) (1: Anmerkungs-Screenshot; 2: Wählen Sie das Format des Bildes; 3: Ändern Sie den Speicherpfad).</li>
	<li>Verwenden Sie das Modul Segmentstatistik, um das Lungenvolumen (mm 3) für jedes Segment zu berechnen und eine quantitative Analyse normo-belüfteter Regionen durchzuführen (Abbildung 9).</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig01.jpg"> 
Abbildung 1: Die Benutzeroberfläche der 3D Slicer Software. Die Abbildung zeigt die Hauptbedienungsschnittstelle der 3D Slicer-Software. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig01large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig02.jpg"> 
Abbildung 2: CT-Bilder der Lungenfibrose, die durch einseitige intratracheale Instillation bei Mäusen induziert wird. Axiale, koronale und sagittale Ansichten sowie 3D-Lungenrekonstruktion nach der Bleomycin-Instillation. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig02large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig03.jpg"> 
Abbildung 3: Anpassung der Parameter der sagittalen Ansicht. Die Abbildung veranschaulicht die Anpassung von Parametern, die eine präzise Visualisierung und Analyse ermöglichen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig03large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig04.jpg"> 
Abbildung 4: Bearbeitung der Segmentierung und Parameteranpassungen. Die Abbildung zeigt den Prozess der Segmentierungsbearbeitung und die entsprechenden Parameteranpassungen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig04large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig05.jpg"> 
Abbildung 5: 3D-Segmentierung der rechten Lunge. Der Prozess umfasst drei aufeinanderfolgende Schritte: Bearbeiten verbundener Komponenten für die Lungensegmentierung (Schritt 1), Auswählen von Ausgewählte Insel beibehalten , um die rechte Lunge zu isolieren (Schritt 2), und Klicken auf 3D anzeigen , um das Modell im Visualisierungsbereich zu rendern (Schritt 3). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig05large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig06.jpg"> 
Abbildung 6: 3D-Rekonstruktion der linken Lunge auf Basis einer Mikro-CT-Analyse. Axiale Thorax-CT-Bilder wurden Schicht für Schicht verarbeitet, um belüftete Bereiche zu segmentieren, das belüftete Volumen zu quantifizieren und ein 3D-Modell zu rekonstruieren. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig06large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig07.jpg"> 
Abbildung 7: 3D-Lungenrekonstruktion basierend auf einer Mikro-CT-Analyse des beatmeten Lungenvolumens in einem unilateralen Lungenfibrosemodell. Rekonstruierte Modelle wurden in bestimmten Formaten in vordefinierte Verzeichnisse exportiert. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig07large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig08.jpg"> 
Abbildung 8: Anleitung zum Speichern von Bildern. Die Abbildung zeigt die sequenziellen Schritte zum Speichern von Bildern, beginnend mit dem Starten der Speicherfunktion über das Menü Annotation Screenshot über die Auswahl von Formaten bis hin zur Definition von Speicherpfaden. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig08large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
<img alt="Figure 9" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67837/67837fig09.jpg"> 
Abbildung 9: Statistische Analyse auf Basis der Mikro-CT in einem unilateralen Lungenfibrosemodell. Quantitative Daten aus normo-belüfteten Regionen wurden analysiert. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67837/67837fig09large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.</a>
4. Masson-Trichom-Färbung
<ol>
	<li>Fixieren Sie die Lungenprobe über Nacht mit 4 % Paraformaldehyd bei Raumtemperatur (RT), dehydrieren Sie sie mit einer abgestuften Ethanolreihe und betten Sie sie in Paraffin ein. Bereiten Sie Scheiben mit einer Dicke von 5 μm mit einem Rotationsmikrotom vor.</li>
	<li>Führen Sie die Trichrom-Färbung von Masson an den Abschnitten wie folgt durch.<ol>
		<li>Spülen Sie die entparaffinisierten und rehydrierten Abschnitte in destilliertem Wasser ab, gefolgt von einer Beizbehandlung in vorgewärmtem Bouin Fluid bei 56-60 °C für 1 h oder über Nacht bei RT.</li>
		<li>Nach dem Waschen die Abschnitte 10 min lang mit der eisernen Hämatoxylinlösung von Weigert färben, 10 min unter fließendem warmem Leitungswasser abspülen und 10-15 min in Biebrich-Scharlach-Fuchsin-Lösung tauchen.</li>
		<li>Erreichen Sie eine Differenzierung mit Phosphomolybdic-Phosphotungssäurelösung für 10-15 Minuten und überwachen Sie, bis kollagenreiche Regionen von rot zu klar übergegangen sind.</li>
		<li>Übertragen Sie dann die Objektträger direkt für 5-10 Minuten in Anilinblaulösung, spülen Sie sie in destilliertem Wasser ab und differenzieren Sie sie 2-5 Minuten lang in 1%iger Essigsäurelösung.</li>
		<li>Nach der Dehydrierung durch abgestuftes Ethanol (95 % bis absoluter Alkohol) und Xylol-Reinigung werden die Abschnitte mit einem harzigen Medium eingespannt.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. Massons Analyse des maschinellen Lernens von Trichrom-Färbungen
<ol>
	<li>Histopathologische Beurteilung der Kollagenzusammensetzungsanalyse in kontrollierten und mit Bleomycin behandelten Lungen unter Verwendung der Masson-Trichrom-Färbung.</li>
	<li>Um beobachterabhängige Verzerrungen zu reduzieren, erfassen Sie hochauflösende digitale Bilder von gefärbten Lungenschnitten mit einem Ganzbildscanner.</li>
	<li>Analysieren Sie dann die Kollagenbereiche quantitativ mit einer automatisierten Software-Orbit-Bildanalyse 8,9,12. Der Trainingsprozess wird im Folgenden kurz beschrieben.<ol>
		<li>Beschreiben Sie manuell mehrere repräsentative Annotationen für jede Gewebekategorie (z. B. Kollagen, normales Gewebe und fibrotisches Gewebe). Verwenden Sie die extrahierten pixelweisen Features aus annotierten Trainingsbereichen, um den Trainingssatz für die Support Vector Machine (SVM) zu erstellen.</li>
		<li>Definieren Sie für Masson-gefärbte Schnitte die Gewebeklassifizierung in drei Kategorien: Kollagen, normales Gewebe und Hintergrund. HINWEIS: Das Modell des maschinellen Lernens wird durch wiederholte Annotation und Verfeinerung iterativ auf Gesamtobjektträgerbildern (WSIs) trainiert, bis die vom Pathologen validierten Auswertungen die genaue Gewebekategorisierung bestätigen. Sobald eine zufriedenstellende Klassifizierungsgenauigkeit erreicht ist, wird der Prozess vollständig automatisiert: Merkmale werden aus jedem Pixel innerhalb gültiger Regionen von Interesse (ROIs) extrahiert, und das SVM prognostiziert anschließend die entsprechende Gewebekategorie mit hoher Präzision.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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</ol>

<table><tbody><tr><td>0,9% Kochsalzlösung</td><td>Hopebio</td><td>HBPP008-100</td><td></td></tr><tr><td>22G stumpfe Nadel</td><td>BD</td><td>383922</td><td></td></tr><tr><td>3D-Schneidemaschine&nbsp; Bildverarbeitungsplattform</td><td>3D-Schneidemaschine&nbsp;</td><td>https://www.slicer.org/</td><td></td></tr><tr><td>Bleomycin</td><td>MCE</td><td>HY-17565</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran</td><td>RWD</td><td>Nr. R510-22</td><td></td></tr><tr><td>Masson Flecken-Set</td><td>Yeasen</td><td>Artikel-Nr.: 60532ES58</td><td></td></tr><tr><td>Mikro-CT</td><td>Pinseng</td><td>SNC-100</td><td></td></tr><tr><td>Umlaufbahn</td><td>Orbit-Bildanalyse</td><td>https://www.orbit.bio/</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital-Natrium</td><td>Sigma</td><td>Nr. P3761</td><td></td></tr><tr><td>Laryngoskop für Kleintiere</td><td>Yuyan Instrumente</td><td>CG-02M</td><td></td></tr><tr><td>SPSS</td><td>IBM</td><td>Version 19.0&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Warme Decke</td><td>Labor Anim Tech</td><td>LAT-16-0323</td><td></td></tr></tbody></table>

einseitige lungenvolumenanalyse mittels mikro-ct zur besseren beurteilung der lungenfibrose in präklinischen modellen

Unilateral Lung Volume Analysis Using Micro-CT for Enhanced Assessment of Pulmonary Fibrosis in Preclinical Models

Abbildung 10A-D zeigt die Ergebnisse der Lungenvolumenänderungen und der Färbeanalyse.
Um den Einfluss von Bleomycin (BLM) auf das Lungengewebe zu bewerten, führten wir eine vergleichende Analyse des Lungenvolumens zwischen mit Kochsalzlösung behandelten Gruppen (Ctrl) und BLM-behandelten Gruppen unter Verwendung von 3D-Bildgebungsverfahren durch. Das linke Lungenvolumen ist in der BLM-Gruppe im Vergleich zur Ctrl-Gruppe signifika...

Einseitige Lungenvolumenanalyse mittels Mikro-CT zur besseren Beurteilung der Lungenfibrose in präklinischen Modellen

Pulmonary fibrosis (PF) is a progressive and irreversible interstitial lung disease characterized by poor prognosis and limited treatment options. The ...

unilateral-lung-volume-analysis-using-micro-ct-for-enhanced

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Forschung

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Medizin

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur einfachen und zuverlässigen Messung der Lungendruck-Volumen-Kurve bei Mäusen und zeigen, dass es ausreichend empfindlich ist, um phänotypische parenchymale Veränderungen bei zwei häufigen Lungenpathologien, Lungenfibrose und Emphysem, zu erkennen. Diese Metrik bietet ein Mittel, um die strukturellen Veränderungen der Lunge mit der Entwicklung der Pathologie zu quantifizieren.

Die Messung der Druck-Volumen-Kurve in der Mäuselunge

Wir beschreiben eine Methode zur Detektion der Tumorknotenentwicklung in der Lunge eines Adenokarzinom-Mausmodells mittels Mikro-Computertomographie und deren Verwendung zur Überwachung von Veränderungen der Knötchengröße im Laufe der Zeit und als Reaktion auf die Behandlung. Die Genauigkeit der Beurteilung wurde durch eine histologische Endpunktquantifizierung bestätigt.

Mit Micro-Computertomographie-zur Beurteilung der Tumorentwicklung und Follow-up der Reaktion auf die Behandlung in einem Maus-Modell von Lungenkrebs

Wir beschreiben eine nichtinvasive multimodale Bildgebung Ansatz basierend auf Mikro-CT und Fluoreszenz Molekulare Computertomographie für längs-Beurteilung der Lunge Fibrose Mausmodell durch doppelte intratracheale Instillation von Bleomycin induziert.

Eine multimodale Bildgebung Ansatz basierend auf Mikro-CT und Fluoreszenz Molekulare Computertomographie für längs-Bewertung der Bleomycin-induzierten Lungenfibrose bei Mäusen

Das Ziel dieser Technik ist die ex vivo Visualisierung von pulmonalen arteriellen Netzwerken von frühpostnatalen und erwachsenen Mäusen durch Lungeninflation und Injektion einer radio-opaque polymerbasierten Verbindung über die Lungenarterie. Mögliche Anwendungen für gegossenes Gewebe werden ebenfalls diskutiert.

Vaskuläres Gießen von Erwachsenen und frühpostnatalen Mauslungen für Micro-CT Imaging

Ziel dieses Protokolls ist es, eine zeiteffiziente Möglichkeit zur Segmentierung von Volumen von Interesse auf hochauflösendeCT-Scans zu bieten, um sie für weitere Radiomikanalysen zu verwenden.

Lung CT Segmentierung zur Identifizierung von Konsolidierungen und Bodenglasflächen für die quantitative Assesment von SARS-CoV Pneumonie

CT und 129Xe MRT liefern komplementäre Informationen über die Lungenstruktur und -funktion, die für die regionale Analyse mithilfe der Bildregistrierung genutzt werden können. Hier stellen wir ein Protokoll zur Verfügung, das auf der vorhandenen Literatur für die Registrierung von 129Xe MR bis CT unter Verwendung von Open-Source-Plattformen aufbaut.

Multimodale Lungenbildgebung: Verwendung komplementärer Informationen aus CT und hyperpolarisierter 129xe-MRT zur Bewertung der Lungenstruktur-Funktion

Hier beschreiben wir ein einfaches und wirtschaftliches Protokoll zur unvoreingenommenen Quantifizierung der pulmonalen mikrovaskulären Dichte für das Lungengewebe ganzer Mäuse unter Verwendung einer Einzelfärbung von Isolectin B4.

Quantifizierung der pulmonalen mikrovaskulären Dichte bei Mäusen über Läppchen hinweg

Wir stellen eine Methode zur Analyse einer benutzerdefinierten Region of Interest (ROI) in einem longitudinalen in vivo Ratten-Radialdefektmodell vor. Diese Methode ermöglicht eine vergleichende Analyse zwischen verschiedenen Gerüsten, die zuvor durch Schwankungen des Sichtfelds des Scans mit Mikrocomputertomographie (μCT), der Probenorientierung und der Basislinienpräsenz des Gerüsts begrenzt waren.

Längsschnitt-Mikro-Computertomographie-Bildanalyse für benutzerdefinierte Region of Interest bei Knochendefekten kritischer Größe

Die Lunge wird sowohl durch die systemische bronchiale Arterie und Lungenarterien perfundiert. In den meisten Lunge Pathologien, ist es umso kleiner systemische Gefäßsystem, die robust Neovaskularisierung zeigt. Einstellung der pulmonalen Blutfluss fördert regen bronchiale Angiogenese. Wir bieten chirurgische Details zu induzieren linken Lungenarterie Ischämie, die bronchiale Neovaskularisation fördert.

Angiogenese im ischämischen Rat Lung

Hypoxische Lungenvasokonstriktion (HPV) ist ein wichtiges physiologisches Phänomen, durch das bei alveolarer Hypoxie-Lungenperfusion auf die Beatmung abgestimmt wird. Das wichtigste Gefäßsegment, das zu HPV beiträgt, ist die Intra-Acinar-Arterie. Hier beschreiben wir unser Protokoll zur Analyse von HPV von murinen Lungengefäßen mit Durchmessern von 20-100 m.

Videomorphometrische Analyse der hypoxischen Lungenvasokonstriktion der intrapulmonalen Arterien mit Murine Precision Cut Lung Slices

Erfahren Sie, wie Mikro-CT die Lungenfibrose-Quantifizierung in präklinischen Modellen verbessert. Diese Methode nutzt KI-gestützte Segmentierung für präzise Volumenanalysen und transformiert die Bewertung therapeutischer Interventionen.

Einseitige Lungenvolumenanalyse mittels Mikro-CT zur besseren Beurteilung der Lungenfibrose in präklinischen Modellen

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