Name: Vergleichende Studie zu den Polysaccharidgehalten und antioxidativen Aktivitäten von Hippophae rhamnoides subsp. sinensis und Hippophae gyantsensis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-08-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 3 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie Polysaccharide aus Hippophae rhamnoides subsp. sinensis und Hippophae gyantsensis extrahieren und deren antioxidative Aktivität mit DPPH-Tests vergleichen. Diese Methode unterstützt die Qualitätsbewertung für pharmazeutische Anwendungen.

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1. Muster und Materialien
<ol>
	<li>Sammle Sanddornproben von verschiedenen Hippophen aus dem Qinghai-Xizang-Plateau. HINWEIS: Die Proben wurden von Associate Professor Yue Liu von der Chengdu University of Traditional Chinese Medicine identifiziert. Die Belegexemplare wurden in der Fakultät für Ethnische Medizin der Chengdu Universität für Traditionelle Chinesische Medizin deponiert. Die Informationen zur Probenahme sind in Tabelle 1 aufgeführt. Die Einzelheiten zu den in dieser Studie verwendeten Reagenzien und Geräten sind in der Materialtabelle aufgeführt.</li>
	<li>Die Proben werden 72 h lang bei 40 °C im Ofen getrocknet.</li>
	<li>Von jeder Sanddornprobe 20 g zu Pulver mahlen und durch ein Sieb Nr. 3 passieren. Verarbeiten Sie jede Probe mit drei parallelen Replikaten. Die Proben, die nicht durch das Sieb gegangen sind, werden weiter zerkleinert und dann gesiebt, bis alle gesiebt sind.</li>
	<li>Lagern Sie die Proben bei -20 °C für Folgestudien.</li>
</ol>
2. Extraktion von Sanddorn-Polysacchariden
ANMERKUNG: In dieser Studie wurde die zuvor etablierte Extraktionsmethode für Sanddorn mit einigen Modifikationen übernommen, um Polysaccharide30 zu erhalten.
<ol>
	<li>Wiegen Sie 5,0 g Sanddorn-Probenpulver ab und geben Sie es in einen 250-ml-Rundkolben. Geben Sie 50 mL wasserfreies Ethanol in das Pulver und weichen Sie es 24 Stunden lang bei Raumtemperatur (RT; 25 °C) ein, um lipophile Bestandteile zu entfernen. Verarbeiten Sie jede Probe mit drei parallelen Replikaten.</li>
	<li>Filtern Sie das über Nacht eingeweichte Probenpulver mit einem Büchner-Trichter und entsorgen Sie dann das Filtrat, um den Filterrückstand zu erhalten. Waschen Sie den Filterrest dreimal mit 50 mL entionisiertem Wasser und trocknen Sie ihn bei 40 °C auf ein konstantes Gewicht.</li>
	<li>Der entfettete Filterrückstand wird in einen getrockneten 250-ml-Rundkolben überführt, 150 mL deionisiertes Wasser mit einem Fest-Flüssig-Verhältnis von 1:30 (g/ml) zugegeben und die Rückflussextraktion in einem Wasserbad bei 80 °C zweimal für jeweils 2 h durchgeführt. Trennen Sie das Filtrat, um die rohe Sanddorn-Polysaccharidlösung zu erhalten.</li>
	<li>Den Extrakt mit einem Rotationsverdampfer bei 50 °C 1,5 h lang konzentrieren. Lagern Sie die konzentrierte Lösung für die spätere Verwendung im Kühlschrank bei 4 °C.</li>
	<li>Geben Sie das Sevage-Reagenz (CHCl3:C4H9OH = 4:1, v:v) zur Rohpolysaccharidlösung in einem Sevage Reagenz: Rohpolysaccharidlösungsvolumenverhältnis von 1:4. Rühren Sie die Mischung mit einem Magnetrührer bei einer Drehzahl von 1050 U/min 20 Minuten lang um.</li>
	<li>Füllen Sie die Flüssigkeit in ein 50-ml-Zentrifugenröhrchen und zentrifugieren Sie sie 15 Minuten lang bei 4000 × g , dann sammeln Sie den Überstand. Der obige Vorgang wird dreimal wiederholt, bis an der Grenzfläche zwischen den beiden Phasen kein weißer Flockungsniederschlag mehr auftritt.</li>
	<li>Konzentrieren Sie den Sanddorn-Polysaccharid-Extrakt nach der Proteinentfernung. Für die Fällung von wasserfreiem Ethanol wird wasserfreies Ethanol in einem Volumenverhältnis von 1:3 zugegeben und das Gemisch über Nacht bei 4 °C gestellt.</li>
	<li>Entfernen Sie die obere Schicht aus wasserfreiem Ethanol, geben Sie das Gemisch in ein 50-ml-Zentrifugenröhrchen und zentrifugieren Sie es 15 Minuten lang bei 4000 × g , um den Niederschlag zu erhalten. Den Niederschlag gefriertrocknen, um Gesamtpolysaccharide zu erhalten.</li>
	<li>Berechnen Sie die Gesamtausbeute an Polysacchariden, indem Sie die folgende Gleichung (1) verwenden: 
	<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq01.jpg" style="margin: auto;"> HINWEIS: In Gleichung (1) steht m für das Gewicht (g) der Sanddorn-Polysaccharide und m für die Masse (g) der Sanddornprobe.</li>
</ol>
3. Bestimmung des Polysaccharidgehalts
<ol>
	<li>Vorbereitung der Lösung<ol>
		<li>Herstellung der Phenol-Reagenzlösung<ol>
			<li>3 g Phenol werden genau gewogen und in einen braunen Messkolben überführt. Fügen Sie 50 ml deionisiertes Wasser hinzu, um Phenol aufzulösen.</li>
			<li>Schütteln Sie die Mischung gründlich, bis sie homogen ist. Beschriften Sie den Kolben und bewahren Sie ihn für den späteren Gebrauch auf.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Herstellung von Glukose-Standardlösung<ol>
			<li>10 mg wasserfreie Glukose werden genau gewogen und in einen 10-ml-Messkolben überführt. Fügen Sie entionisiertes Wasser hinzu, um Glukose aufzulösen, und schütteln Sie die Mischung gut.</li>
			<li>Verdünnen Sie die Mischung auf das gewünschte Volumen mit entionisiertem Wasser, um eine Glukose-Standardlösung zu erhalten.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Vorbereitung der Probenlösung.<ol>
			<li>5 mg gefriergetrocknete Sanddorn-Polysaccharide (ZG1-ZG5 und JZ1-JZ5) werden genau in Messkolben (n = 10) gewogen. Deionisiertes Wasser wird in jeden Kolben bis zu einem Endvolumen von 50 ml gegeben.</li>
			<li>Beschallen Sie die Mischung 20 Minuten lang, bis sich die Polysaccharide vollständig aufgelöst haben. Verarbeiten Sie jede Probe mit drei parallelen Replikaten.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Aufbau der Normkurve HINWEIS: Bei der Phenol-Schwefelsäure-Methode reagieren Polysaccharide mit konzentrierter Schwefelsäure zu Furfuralderivaten, die dann mit Phenol zu einer orange-gelben Verbindung kondensieren. Die maximale Absorptionswellenlänge dieser Verbindung liegt bei etwa 490 nm. Daher wurde die Detektionswellenlänge für dieses Experiment auf 490 nmfestgelegt 22.<ol>
		<li>Verdünnen Sie die Standardglukoselösung mit deionisiertem Wasser auf eine Konzentration von 0,1 mg/ml. Übertragen Sie mit einer Mikropipette vorsichtig 200, 300, 400, 500, 600 und 700 μl der Glukose-Standardlösung in sechs separate saubere Reagenzgläser. Fügen Sie reines Wasser zu einem Gesamtvolumen von 1,0 ml hinzu und mischen Sie dann vorsichtig jede Lösung, um eine gleichmäßige Verdünnung zu gewährleisten.</li>
		<li>Geben Sie 1,0 ml 6%ige Phenollösung und 5,0 ml Schwefelsäure in die oben genannten Reagenzgläser. Gut mischen, abkühlen lassen und dann 30 min bei RT ziehen lassen. HINWEIS: Phenol ist eine giftige chemische Verbindung, und konzentrierte Schwefelsäure ist ätzend. Bei der Herstellung von Phenol- und Schwefelsäurelösungen sollten Handschuhe getragen werden, und der Eingriff sollte in einem Abzug durchgeführt werden.</li>
		<li>Füllen Sie die oben genannten Proben in Küvetten um und verwenden Sie anstelle der Probe reines Wasser als Blindwert. Messen Sie ihre Absorption bei 490 nm mit einem UV-Vis-Spektralphotometer und drei Replikaten.</li>
		<li>Stellen Sie die Standardkurve mit den Glukosekonzentrationen als x-Achse und den Absorptionswerten als y-Achse dar. Ermitteln Sie die Regressionsgleichung und berechnen Sie den Korrelationskoeffizienten (R²). HINWEIS: Das UV-Vis-Spektralphotometer muss eine halbe Stunde im Voraus vorgeheizt werden. Bei der Messung der Extinktion in diesem Schritt muss die Extinktion zwischen 0,2 und 0,8 liegen. Daher muss die Konzentration der Probe quantifiziert werden.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Studie zur Methodik<ol>
		<li>Präzisionsprüfung:<ol>
			<li>JZ2 einnehmen und die Prüflösung nach dem in Schritt 3.1.3 beschriebenen Verfahren herstellen. Die Phenol-Schwefelsäure-Kolorimetrie ist nach der in Schritt 3.2.2 beschriebenen Methode durchzuführen.</li>
			<li>Anschließend ist die Extinktion nach dem in Schritt 3.2.3 beschriebenen Verfahren zu bestimmen. Wiederholen Sie diesen Vorgang sechsmal und berechnen Sie die relative Standardabweichung (RSD).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Stabilitätstest:<ol>
			<li>Bereiten Sie die JZ2-Probenlösung nach der in Schritt 3.1.3 beschriebenen Methode vor. 0, 2, 4, 6, 8 und 10 Stunden nach der Probenvorbereitung ist die Phenol-Schwefelsäure-Kolorimetrie nach der in Schritt 3.2.2 beschriebenen Methode durchzuführen.</li>
			<li>Bestimmen Sie anschließend die Absorption, indem Sie das in Schritt 3.2.3 beschriebene Verfahren befolgen und die RSD berechnen.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wiederholbarkeitsprüfung:<ol>
			<li>Bereiten Sie die JZ2-Probenlösung nach der in Schritt 3.1.3 beschriebenen Methode vor. Bereiten Sie sechs Replikate parallel vor. Die Phenol-Schwefelsäure-Kolorimetrie ist nach der in Schritt 3.2.2 beschriebenen Methode durchzuführen.</li>
			<li>Bestimmen Sie anschließend die Absorption, indem Sie das in Schritt 3.2.3 beschriebene Verfahren befolgen und die RSD berechnen.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Erholungstest:<ol>
			<li>JZ2 einnehmen und die Prüflösung nach dem in Schritt 3.1.3 beschriebenen Verfahren herstellen. Bereiten Sie neun Replikate parallel vor. Die Referenzlösungen, die 80 %, 100 % und 120 % des Gesamtpolysaccharidgehalts entsprechen, werden in der Probe zugegeben und drei parallele Proben vorbereitet.</li>
			<li>Die Phenol-Schwefelsäure-Kolorimetrie ist nach dem in Schritt 3.2.2 beschriebenen Verfahren durchzuführen. Bestimmen Sie anschließend die Absorption, indem Sie das in Schritt 3.2.3 beschriebene Verfahren befolgen und die Wiederfindungsrate anhand von Gleichung (2) berechnen. 
			<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq02.jpg" style="margin: auto;"> HINWEIS: In Gleichung (2) steht A für die Menge an Glukose in der Sanddorn-Probenlösung, B für die Menge der zugesetzten Glukose und C für den gemessenen Wert der glukosehaltigen Lösung und der Sanddorn-Probenlösung.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Bestimmung des Inhalts<ol>
		<li>Die Probenlösung wird wie in Schritt 3.1.3 beschrieben hergestellt und die Phenol-Schwefelsäure-Kolorimetrie nach dem in Schritt 3.2.2 beschriebenen Verfahren durchgeführt.</li>
		<li>Bestimmen Sie die Absorption, indem Sie das in Schritt 3.2.3 beschriebene Verfahren befolgen und den Polysaccharidgehalt mit der Standardkurvenmethode berechnen. Führen Sie diese Vorgänge dreimal parallel für jede Probe aus.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. DPPH-Radikalfängeraktivität31,32
<ol>
	<li>Wiegen Sie 2,7 mg DPPH genau in einen leeren 50-ml-Messkolben. Löse es in 50 ml wasserfreiem Ethanol auf, um eine DPPH-Stammlösung mit einer Konzentration von 0,054 mg/ml herzustellen und die DPPH-Arbeitslösung zu erhalten. HINWEIS: Die DPPH-Lösung sollte im Dunkeln gelagert werden.</li>
	<li>Wiegen Sie 5 mg Vitamin C (Vc) genau in einen leeren 10-ml-Messkolben und lösen Sie es in 10 ml deionisiertem Wasser auf, um eine Vc-Lösung mit einer Konzentration von 0,5 mg/ml herzustellen. Verdünnen Sie es nacheinander, um Vc-Testlösungen mit Konzentrationen von 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 und 0,001953 mg/ml herzustellen.</li>
	<li>Wiegen Sie 5 mg jedes Sanddorn-Polysaccharids (ZG1-ZG5 und JZ1-JZ5) genau ab. Löse jede Probe in 10 mL deionisiertem Wasser auf, um Sanddorn-Polysaccharid-Probenlösungen mit einer Konzentration von 0,5 mg/ml herzustellen. Die oben genannten Lösungen werden nacheinander verdünnt, um Sanddorn-Polysaccharid-Testlösungen mit Konzentrationen von 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 und 0,001953 mg/ml herzustellen.</li>
	<li>Unter Verwendung der DPPH-Lösung als Substrat werden die folgenden Gruppen in einer 96-Well-Platte hergestellt: Negativkontrollgruppe A0 (150 μl Wasser und 50 μl DPPH-Lösung), ProbengruppeA 1 (150 μl Probe oder Vc-Lösung und 50 μl DPPH-Lösung) und ProbenkontrollgruppeA 2 (150 μl Probe und 50 μl wasserfreies Ethanol). Führen Sie diesen Vorgang in dreifacher Ausführung durch.</li>
	<li>Lassen Sie die Reaktion 30 Minuten lang im Dunkeln ablaufen. Messen Sie anschließend die Extinktion bei 517 nm. Wiederholen Sie das Experiment dreimal und berechnen Sie die DPPH-Abfangrate für freie Radikale anhand von Gleichung (3). HINWEIS: Die Absorption der DPPH-Lösung sollte bei 0,7 ± 0,02 gehalten werden. Zu hohe und zu niedrige Konzentrationen können zu ungenauen Absorptionswerten führen und so die endgültigen Versuchsergebnisse beeinflussen. 
	<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq03.jpg" style="margin: auto;"> In Gleichung (3) ist A0 die Absorption von entionisiertem Wasser und DPPH-Lösung, A1 ist die Absorption der Probe oder Vc- und DPPH-Lösung und A2 ist die Absorption der Probe und wasserfreiem Ethanol.</li>
	<li>Berechnung der halbhemmenden Konzentration (Ic50)<ol>
		<li>Erstellen Sie eine visuell organisierte Datentabelle, die die Korrelation zwischen den Konzentrationen der Reaktionstestverbindungen (0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 und 0,001953 mg/ml) und den entsprechenden prozentualen Reaktionswerten veranschaulicht.</li>
		<li>Verwenden Sie die nichtlineare Kurvenanpassung (mit GraphPad-Prisma), um den IC50 - und den Standardfehler zu bestimmen.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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<li>Li, Q. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+study+on+structure-function+relationship+of+polysaccharides+obtained+from+sea+buckthorn+berries+using+different+methods%3A+antioxidant+and+bile+acid-binding+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Sci+Hum+Wellness%22%5BJournal%5D)">A comparison study on structure-function relationship of polysaccharides obtained from sea buckthorn berries using different methods: antioxidant and bile acid-binding capacity.</a> Food Sci Hum Wellness. 13 (1), 494-505 (2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Analysenwaage (mit einer Genauigkeit von 0,0001 g)</td><td>Sartorius Scientific Instruments (Beijing) Co., Ltd.</td><td>BSA224S-CW</td><td></td></tr><tr><td>Analysenwaage (mit einer Genauigkeit von 0,00001 g)</td><td>Sartorius Scientific Instruments (Beijing) Co., Ltd.</td><td>CPA225D</td><td></td></tr><tr><td>Tischzentrifuge mit niedriger Drehzahl</td><td>Shanghai Zigui Instrument Co., Ltd.</td><td>TD4K-Z</td><td></td></tr><tr><td>DPPH</td><td>Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.</td><td>CAS-Nr. 1898-66-4</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>CAS-Nr. 64-17-5</td><td></td></tr><tr><td>EP-Rohr</td><td>Hunan BKMAK Holding Co., Ltd.</td><td>BS-20-M</td><td>2 mL</td></tr><tr><td>Gefriertrockner</td><td>Labconco Corporation</td><td>LABCONCO</td><td></td></tr><tr><td>Glukose wasserfrei</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>CAS 50-99-7</td><td>Referenznorm</td></tr><tr><td>GraphPad&nbsp; Prim 9.5.0&nbsp;</td><td>GraphPad-Software</td><td>N/A</td><td>Ermitteln Sie den IC50-Wert und den P-Wert.</td></tr><tr><td>Heißluft-Umwälz-Trockenofen</td><td>Shanghai Yiheng Technology Instrument Co., Ltd.</td><td>NB-DGG-9070A</td><td></td></tr><tr><td>L-Ascorbinsäure</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>CAS 50-81-7</td><td>Positivkontroll-Medikament</td></tr><tr><td>Mikroplatten-Reader</td><td>Shanghai Shanpu Biotechnology Co., Ltd.</td><td>Lesen: Max. 1500</td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Platte</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>11512</td><td></td></tr><tr><td>OriginPro 2025</td><td>OriginLab</td><td>N/A</td><td>Erstellen eines Liniendiagramms für die Abfertigungsrate</td></tr><tr><td>PIPETTEN-TIPPS</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>BS-200-T</td><td>200 &mu; L</td></tr><tr><td>PIPETTEN-TIPPS</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>T-1000-B</td><td>1000 &mu; L</td></tr><tr><td>Phenol</td><td>Chengdu Kelong Chemical Products Co., Ltd.</td><td>CAS 108-95-2</td><td></td></tr><tr><td>Rotationsverdampfer</td><td>&nbsp; BÜCHI Laboratory Equipment Trading (Shanghai) Ltd.</td><td>Büchi R-100</td><td></td></tr><tr><td>Standard-Reagenz-Typ Reinwassersystem</td><td>Qingdao Flom Technology Co., Ltd.</td><td>FBZ2001-up-p</td><td></td></tr><tr><td>Thermostatisches Wasserbad mit Digitalanzeige</td><td>Guan'an Scientific Instruments (Zhejiang) Co., Ltd.</td><td>WB100-6F</td><td></td></tr><tr><td>UV-sichtbares Spektralphotometer</td><td>Verifizierter Lieferant - Shanghai Mapada Instruments Co., Ltd.</td><td>V-1100D</td><td></td></tr><tr><td>Ultraschall-Reiniger</td><td>Verifizierter Lieferant - Sheng Zheng ChaoJie Industrial Co., Ltd.</td><td>CJ-060SD</td><td>Ultraschallreiniger 360 W 50 Hz</td></tr></tbody></table>

vergleichende studie zu den polysaccharidgehalten und antioxidativen aktivitäten von hippophae rhamnoides subsp. sinensis und hippophae gyantsensis

Comparative Study on the Polysaccharide Contents and Antioxidant Activities of Hippophae rhamnoides subsp. sinensis and Hippophae gyantsensis

Ausbeute an rohen Polysacchariden Polysaccharide wurden durch HWE extrahiert. Der Rückfluss des Wasserbads ist in der ergänzenden Abbildung 1 dargestellt. Die Konzentration der Polysaccharid-Extraktlösung ist in der ergänzenden Abbildung 2 dargestellt. Der Zentrifugationsschichtungseffekt nach der Deproteinierung ist in der ergänzenden Abbildung 3 dargestellt. Die fünf Chargen von H. rhamnoides subsp. sinensis haben Polysaccharid-Ert...

Vergleichende Studie zu den Polysaccharidgehalten und antioxidativen Aktivitäten von Hippophae rhamnoides subsp. sinensis und Hippophae gyantsensis

This paper reports a well-designed and in-depth comparative study on the polysaccharide yields, contents, and antioxidant activities of two Hippophae ...

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Research

Forschung

JoVE Journal

Chemistry

Chemie

Wir präsentieren Ihnen ein Protokoll für die Verwendung von Ethanol als Lösungsmittel zu extrahieren und zu charakterisieren, taiwanesische grüne Propolis, das antibakteriellen Aktivität aufweist.

Extraktion und Analyse der taiwanesischen grünen Propolis

Phenolsäuren sind wichtige sekundäre Pflanzenstoffe, die in Vollkornprodukten vorhanden sind. Sie besitzen bioaktive Eigenschaften wie antioxidative Schutzfunktionen. Diese Arbeit zielte darauf ab, über eine verallgemeinerte Methode zur HPLC-Identifizierung, zur Schätzung des Gesamtphenolgehalts und zur Bestimmung der antioxidativen Kapazität von Phenolsäuren in Getreide und Hülsenfrüchten zu berichten.

Eine verallgemeinerte Methode zur Bestimmung der frei löslichen Phenolsäurezusammensetzung und der antioxidativen Kapazität von Getreide und Hülsenfrüchten

Das Ziel dieses Protokolls ist es, phenolische Metaboliten im Plasma mit einer semi-zielgerichteten Chromatographie-Massenspektrometrie-Methode nachzuweisen.

Semi-zielgerichtete Ultra-Hochleistungschromatographie gekoppelt mit massenspektrometrie Analyse von phenolischen Metaboliten im Plasma älterer Erwachsener

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Reinigungsschritte und anschließenden Studien von vier verschiedenen pilzlichen β-Glucanen als potentielle immunmodulatorische Moleküle, die die antitumoralen Eigenschaften von Mikroglia gegen Glioblastomzellen verbessern.

Isolierung und Aufreinigung von Pilz-β-Glucan als Immuntherapiestrategie beim Glioblastom

Hier stellen wir eine Stabilitätsbewertungsmethode vor, die auf der Mehrfachlichtstreuungstechnologie basiert, um die Stabilität von Extrakten aus der Traditionellen Chinesischen Medizin zu bewerten.

Verwendung von Mehrfachlichtstreuung zur Untersuchung der Stabilität von Phyllanthus emblica L. Extrakte, die mit verschiedenen Extraktionsmethoden gewonnen wurden

Hier beschreiben wir verschiedene Protokolle, die auf eine integrierte Aufwertung von Gracilaria gracilis abzielen: Ernte von Wildarten, Eigenzucht und Extraktion von bioaktiven Inhaltsstoffen. Die antioxidative, antimikrobielle und zytotoxische Wirkung der Extrakte wird ebenso bewertet wie die Nährwert- und Stabilitätsbewertung von Lebensmitteln, die mit ganzer Algenbiomasse und Pigmenten angereichert sind.

Aufwertung der Rotalge Gracilaria gracilis durch einen Bioraffinerieansatz

Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung eines polyolbasierten mikrowellengestützten Extraktionsverfahrens zur Extraktion von phenolischen Verbindungen und natürlichen Antioxidantien, das einen praktischen und ökologisch nachhaltigen Ansatz für die Entwicklung gebrauchsfertiger Extrakte darstellt.

Mikrowellengestützte Extraktion von phenolischen Verbindungen und Antioxidantien für kosmetische Anwendungen mit polyolbasierter Technologie

Säugetier-Hülle enthält Lösungsmittel extrahierbaren Lipide, die chemischen Zusammensetzungen der einzelnen Arten charakteristisch bieten kann. Dieser Beitrag stellt eine Routinemethode zur Trennung breiten Lipidklassen aus Integumentary Geweben isoliert mit Dünnschicht-Chromatographie und Bestimmung der Triacylglycerid Profil von Matrix-Assisted Laser Desorption / Ionisation Time-of-Flight-Massenspektrometrie.

Profilierung der Triacylglycerid Inhalt in Bat Integumentary Lipide durch präparative Dünnschicht-Chromatographie und MALDI-TOF-Massenspektrometrie

Dreidimensionale (3D) mikrostrukturierte Verbundträger werden durch die gerichteten und lokalisierten Infiltration von Nanokompositen in 3D porösen mikrofluidischen Netzwerken hergestellt. Die Flexibilität dieses Herstellungsverfahren erlaubt die Verwendung von verschiedenen wärmehärtenden Materialien und Nanofüllstoffe, um eine Vielzahl von funktionalen 3D verstärkt Nanokomposit makroskopischen Produkte zu erreichen.

Herstellung von dreidimensional Mikrostrukturierte Nanokomposite durch Mikrofluidik-Infiltration

Indoxylglykoside sind etablierte und weit verbreitete Werkzeuge für das Enzymscreening und die Überwachung der Enzymaktivität. Insbesondere für glukoseartige Strukturen erwiesen sich frühere Synthesen als schwierig und ergiebig. Unser neuartiger Ansatz verwendet Indoxylsäureester als wertvolle Zwischenprodukte, um eine beträchtliche Anzahl von Indoxylglykosiden in guten Ausbeuten zu erhalten.

Synthese von Indoxyl-Glykoside zum Nachweis von Glycosidase Aktivitäten

Erfahren Sie, wie Sie Polysaccharide aus Hippophae rhamnoides subsp. sinensis und Hippophae gyantsensis extrahieren und deren antioxidative Aktivität mit DPPH-Tests vergleichen. Diese Methode unterstützt die Qualitätsbewertung für pharmazeutische Anwendungen.

Vergleichende Studie zu den Polysaccharidgehalten und antioxidativen Aktivitäten von Hippophae rhamnoides subsp. sinensis und Hippophae gyantsensis (Video) | JoVE Journal

Vergleichende Studie zu den Polysaccharidgehalten und antioxidativen Aktivitäten von Hippophae rhamnoides subsp. sinensis und Hippophae gyantsensis

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