December 30th, 2025
Diese Studie etablierte ein Modell des Ratten-Femoral-Halbsegmentdefekts, um die mechanische und osteogene Leistungsfähigkeit von Knochenersatzmaterialien unter lasttragenden Bedingungen ohne interne oder externe Fixation zu bewerten.
Unser Ziel ist es, ein reproduzierbares Femoraldefektmodell zu entwickeln, um die mechanische und osteogene Leistung tragender Knochenmaterialien zu bewerten. Die größte Herausforderung ist das Fehlen eines standardisierten, reproduzierbaren tragbaren Defektmodells für eine realistische mechanische In-vivo-Bewertung. Um zu beginnen, die narkosierte Ratte in eine seitliche liegende Position auf eine sterile chirurgische Bank zu legen.
Den Bereich des lateralen Oberschenkels, der mit der Oberschenkelprojektion ausgerichtet ist, abschneiden und die Haut mit 2 % Jod-Tinktur desinfizieren, gefolgt von 75 % Ethanol. Decken Sie die Operationsstelle mit einem sterilen fenestrierten Laken ab, um die Asepsis aufrechtzuerhalten. Machen Sie einen zwei bis drei Zentimeter langen Längsschnitt entlang der seitlichen Seite des Oberschenkels.
Identifizieren Sie die Musculus rectus femoris und vastus lateralis und verwenden Sie eine gerade Schere, um die Muskeln entlang der sichtbaren weißen Faszie sorgfältig zu trennen. Dann machst du mit einem sterilen Einwegskalpell einen Längsschnitt entlang der Muskelansätze, um an die Oberschenkeloberfläche zuzugreifen. Führen Sie eine stumpfe Dissektion mit einem periostealen Elevator durch, um die Muskelansätze zu lösen und die mittlere Diaphyse des Oberschenkelknochens vollständig freizulegen.
Bohren Sie vertikal nach unten an der Defektstelle mit dem Bohrer, bis ein plötzlicher Widerstandsverlust spürbar ist. Vergrößern Sie den Defekt durch kontrollierte horizontale Push-Pull-Bewegungen, die sich um den ursprünglichen Durchschlagspunkt konzentrieren. Verlängern Sie den Defekt längs der Oberschenkelachse und seitlich entlang des Oberschenkeldurchmessers, um allmählich einen halbzylindrischen Defekt zu bilden.
Anschließend wird das tragende 3D-gedruckte Polymethyl- oder PMMA-Implantat, das für mechanische Leistungstests gedacht ist, in die Defektstelle eingesetzt und so eine feste Passform gewährleistet. Dann näht man mit einem Nadelhalter die Muskelschichten mit 4-0 Monofilamentnähten, um sicherzustellen, dass keine übermäßige Spannung vorhanden ist. Schließen Sie schließlich die Haut mit unterbrochenen Nähten und desinfizieren Sie die Operationsstelle mit einer 2%iota-4-Lösung.
Vier Wochen nach der Operation zeigte die Mikrocomputertomographie, dass mit Gelatine-Methacryloyl-Hydrogel implantierte Oberschenkelknochen konkave Defektbereiche und eine umfangreiche Eileiterleiter-Ossifikation in der Medullärhöhle aufwiesen. Im Gegensatz dazu zeigten Oberschenkelknochen in der 3D-gedruckten PMMA-Gruppe eine wiederhergestellte äußere Morphologie, wobei der Defektbereich durch ausgerichteten neuen Knochen gestützt wurde und minimale ektopische Ossifikation in der Medullärhöhle getragen wurde. Hämatoxin- und Eosin-Färbungen zeigten, dass die Gelatine-Methacryloyl-Gruppe reichlich fibriöses Gewebe innerhalb des Defekts enthielt, wobei das ektopische Knochen mit dunkel gefärbter Eileiterknochen nahezu die Medullärhöhle verschloss war und keine sichtbare periostale Bildung oder Kontinuität des kortikalen Knochens vorhanden war.
In der 3D-gedruckten PMMA-Gruppe füllte neu gebildeter Knochen den mit dem kortikalen Knochen verbundenen Gerüstraum an den Defekträndern und war von kontinuierlichem Periostalknochen bedeckt, ohne signifikante ektopische Ossifikation im Mark. Die Immunfluoreszenzfärbung zeigte sehr wenige Piezo-1-positive und LepR-positive Zellen in regeneriertem Knochen in der Gelatine-Methacryloyl-Gruppe. Im Gegensatz dazu zeigte die 3D-gedruckte PMMA-Gruppe reichlich Piezo-1-positive und LepR-positive Zellen im neu gebildeten Knochen an der Defektstelle.
Quantitative Analysen bestätigten, dass sowohl Piezo-1-positive als auch LepR-positive Zellzahlen in der PMMA-Gruppe im Vergleich zur Gelatine-Methacryloyl-Gruppe signifikant höher waren. Unser Protokoll ermöglicht eine in-vivo-mechanische Bewertung von Implantaten ohne Fixierung und bietet ein einfaches und reproduzierbares Modell für tragende Defekte.
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Diese Studie etablierte ein Ratten-Oberschenkel-Halbsegment-Defektmodell, um die mechanische und osteogene Leistung von Knochenersatzmaterialien unter belastenden Bedingungen ohne die Verwendung interner oder externer Fixierung zu bewerten. Das Protokoll ermöglicht eine in vivo mechanische Bewertung von Implantaten und bietet ein reproduzierbares Modell für realistische Bewertungen.
Preclinical evaluation of bone substitute materials for orthopedic applications requires models that accurately reflect both biological integration and mechanical load-bearing demands. The half-segmental diaphyseal bone defect model in rats enables direct assessment of implant performance under physiologically relevant mechanical stress, supporting predictive confidence in material selection for long bone reconstruction. This standardized, fixation-free model addresses a critical inflection point in translational biomaterials R&D by enabling robust differentiation of candidate materials' mechanical and osteogenic properties.
This model bridges early discovery and preclinical validation by providing a standardized, load-bearing in vivo assay for bone substitute materials.