Name: Mausmodell des Übergangs von akuter zu chronischer Nierenerkrankung, induziert durch Nierenischämie/Reperfusionsverletzung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 2 s
Description: Erfahren Sie ein robustes Mausmodell für den Übergang von akuter zu chronischer Nierenerkrankung durch dorsale Nierenischämie/Reperfusionsverletzung. Dieses Protokoll ermöglicht mechanistische Studien zur CKD-Progression mit hoher Überlebensrate.

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<li>Scarfe, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measures+of+kidney+function+by+minimally+invasive+techniques+correlate+with+histological+glomerular+damage+in+SCID+mice+with+adriamycin-induced+nephropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Measures of kidney function by minimally invasive techniques correlate with histological glomerular damage in SCID mice with adriamycin-induced nephropathy.</a> Sci Rep. 5, 13601(2015).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Anästhesie-Gasfilter</td><td>A.M. Bickford&nbsp;</td><td>F-AIR</td><td></td></tr><tr><td>Anästhesie-Einleitungskammer, Erwärmung</td><td>AIMS Lab Produkte</td><td>WCS8</td><td></td></tr><tr><td>Blutabnahmeröhrchen</td><td>BD Microtainer</td><td>365967</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Decon Labs</td><td>2701</td><td></td></tr><tr><td>Ethiqa XR (Buprenorphin mit Verlängerung)</td><td>Fidelis Tiergesundheit</td><td>NDC 86084-100-30</td><td></td></tr><tr><td>Augensalbe</td><td>AKORN</td><td>NDC 17478-062-35</td><td></td></tr><tr><td>Mullpads, steril&nbsp;</td><td>Dynarex</td><td>3353</td><td></td></tr><tr><td>Haarschneider für Kleintiere</td><td>WAHL</td><td>CLP-9868</td><td></td></tr><tr><td>Wärmelampe, Infrarot</td><td>Physitemp-Instrumente</td><td>HL-1</td><td></td></tr><tr><td>Wärmepumpe für die Zirkulation von warmem Wasser</td><td>BrainTree Wissenschaftlich</td><td>HTP-1500</td><td></td></tr><tr><td>Wärme-/Anästhesiesystem für Kleintiere, Versaflex&nbsp;</td><td>BrainTree Wissenschaftlich</td><td>EZ-7150</td><td></td></tr><tr><td>Wärmespeichernde chirurgische Vorhänge</td><td>Braintree Scientific</td><td>SPDR-MPS</td><td></td></tr><tr><td>Heißkugel-Sterilisator</td><td>Simon Keller</td><td>Steri 250</td><td></td></tr><tr><td>Isofluran-Lösung</td><td>Covetrus</td><td>29405</td><td></td></tr><tr><td>Anwender des Ligationsclips</td><td>WECK</td><td>533140</td><td></td></tr><tr><td>Ligaturclips</td><td>WECK</td><td>533837</td><td></td></tr><tr><td>Mikrosonde für rektale Temperatur&nbsp;</td><td>Physitemp</td><td>RET-3</td><td></td></tr><tr><td>Mikrosondenthermometer</td><td>Physitemp</td><td>BAT-12</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop, optisch</td><td>Leica</td><td>DM2500</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop, Schiebescanner</td><td>Leica</td><td>Aperio CS2 Dia-Scanner</td><td></td></tr><tr><td>Maus (FVB/NJ)</td><td>Jackson-Labor</td><td>001800</td><td></td></tr><tr><td>Nadel (23G)</td><td>BD</td><td>305145</td><td></td></tr><tr><td>Povidonjod-Swabsticks&nbsp;</td><td>Dynarex</td><td>1201</td><td></td></tr><tr><td>Skalpellklingen</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>10020-00</td><td></td></tr><tr><td>Skalpellgriff</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>10060-13</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Pinzette, nicht gezackt</td><td>Roboz Chirurgisches Instrument</td><td>RS-5228</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Zange, gezackt</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>11051-10</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Pinzette, gezahnt</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>11019-12</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Handschuhe</td><td>CTI</td><td>SPGF750</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Gewebetrenner</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>14072-10</td><td></td></tr><tr><td>Naht, Polyglykolsäure (PGA)/absorbierbar&nbsp; (5-0)</td><td>Dynarex</td><td>9131</td><td></td></tr><tr><td>Naht, Seide (4-0)</td><td>Oase</td><td>MV-683-V</td><td></td></tr><tr><td>Spritze (3 ml)</td><td>BD</td><td>309628</td><td></td></tr><tr><td>Handtuchvorhänge, steril;</td><td>Dynarex</td><td>4410</td><td></td></tr><tr><td>Gefäßklemme mit Anlegen der Zange</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>15057-14</td><td></td></tr><tr><td>Gefäßklemme, nicht traumatisch&nbsp;</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge&nbsp;</td><td>18055-03</td><td></td></tr><tr><td>Wundklammer-Applier</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>12020-09</td><td></td></tr><tr><td>Wundklammern</td><td>Feine wissenschaftliche Werkzeuge</td><td>12022-09</td><td></td></tr></tbody></table>

mausmodell des Übergangs von akuter zu chronischer nierenerkrankung, induziert durch nierenischämie/reperfusionsverletzung

Mouse Model of Acute to Chronic Kidney Disease Transition Induced by Renal Ischemia/Reperfusion Injury

Mausmodell des Übergangs von akuter zu chronischer Nierenerkrankung, induziert durch Nierenischämie/Reperfusionsverletzung

Surgical transient occlusion of the renal pedicle induces renal ischemia&#8211;reperfusion injury (IRI), a widely used model for studying acute kidney ...

Unsere Forschung konzentriert sich auf die Nierenischämie-Reperfusionsverletzung (IRI) und untersucht, wie sie die Entwicklung und das Fortschreiten chronischer Nierenerkrankungen antreibt. Wir verwenden ein mausischämisches CKD-Modell, das eine einseitige nierenartige IRI auslöst, gefolgt von einer verzögerten kontralateralen Nephrektomie, um den Krankheitsverlauf zu untersuchen. Zunächst sollten Sie alle chirurgischen Instrumente vor der Anwendung autoklavieren.Bei Operationen an mehreren Tieren werden Blut und Ablagerungen zwischen den Eingriffen von den Instrumenten entfernt und anschließend 10 bis 15 Sekunden mit einem Heißperlensterilisator sterilisiert. Stellen Sie ein wasserzirkulierendes Heizkissen auf dem Operationstisch auf und positionieren Sie eine Infrarotlampe über dem Operationsfeld. Übertragen Sie eine betäubte Maus auf die beheizte OP-Matte.Verabreichen Sie Buprenorphin mit 3,25 Milligramm pro Kilogramm subkutan als Analgesie. Stellen Sie die Maus in die Bauchlage und sichern Sie die Gliedmaßen mit Klebeband, um die Bewegung zu minimieren. Dann entfernen Sie das Fell von der Operationsstelle.Tragen Sie eine Augensalbe auf die Augen auf, um das Austrocknen während des Eingriffs zu verhindern. Setzen Sie eine rektale Sonde ein, sichern Sie sie mit Klebeband und verbinden Sie sie mit einem Thermometer für kontinuierliche Überwachung. Desinfizieren Sie den Operationsbereich, indem Sie dreimal abwechselnd 10 % Povidon/Jod und 70 % Ethanol dosieren.Dann decken Sie die Stelle mit einem sterilen Vorhang ab. Mache einen Schnitt in der Hautmitte von drei bis vier Zentimetern über die Nierenebene und trenne die Haut von den Unterhautschichten. Führen Sie vorsichtig einen sterilen, behandschuhten Finger zwischen die Bauchwand und den Operationstisch und schieben Sie die Bauchwand entlang, um die Niere dorsal zu drücken, bis sie durch das subkutane Gewebe sichtbar wird.Auf der Höhe, auf der die Niere sichtbar ist, etwa einen Zentimeter lateral zur Wirbelsäule auf der linken Seite, wird ein Längsmuskelschnitt von 1 bis 1,5 Zentimeter gemacht. Dann führt man die Niere vorsichtig durch den dorsalen Schnitt nach außen. Wenn eine dünne Membran den Zugang versperrt, schuzieren Sie sie stumpf.Während Sie die Niere mit einer nicht gezackten Zange stabilisieren, spartieren Sie das perihilare Fett und das Bindegewebe rund um den oberen und unteren Nierenpedikel, um einen Kanal für die Vassklemme zu schaffen. Bestätigen Sie, dass die Körperkerntemperatur zwischen 36,8 und 37,2 Grad Celsius liegt. Dann legen Sie eine nicht-traumatische Gefäßklemme als Bündel über die Nierenarterie und die Vene an.Ziehe die Haut so ab, dass die Niere bedeckt wird und sie nahe an der Körperkerntemperatur bleibt. Halten Sie die Körperkerntemperatur zwischen 36,8 und 37,2 Grad Celsius, indem Sie Wärmepumpe und Infrarotlampe nach Bedarf einstellen. Nach 30 Minuten Ischämie entfernen Sie die Gefäßklemme.Nach dem Entfernen der Klemme wird die erfolgreiche Reperfusion bestätigt und die Niere mit einem Wattestäbchen in die Bauchhöhle zurückgeführt. Schließen Sie die Muskelschicht mit 5-0 absorbierbaren Nähten und schließen Sie die Haut mit Wundklammern. Lassen Sie die Maus nach Absetzen der Anästhesie in einem sauberen Käfig erholen.Führen Sie eine kontralaterale Nephrektomie einen Tag vor der Gewebeentnahme durch, also entweder 27 oder 41 Tage nach der Ischämie-Reperfusionsverletzung. Nachdem das Tier wie zuvor demonstriert auf die Operation vorbereitet wurde, wird eine dorsale Haut und ein subkutaner Schnitt gemacht, um die rechte Niere freizulegen. Erzeugen Sie einen Längsmuskelschnitt von 1 bis 1,5 Zentimetern, etwa einen Zentimeter lateral zur Wirbelsäule auf der rechten Seite.Während Sie die Niere mit einer nicht gezackten Zange halten, spartieren Sie das perihilare Fett und das Bindegewebe stumpf, um den Nierenpedikel freizulegen. Trennen Sie vorsichtig die Nebenniere von der Niere, während die Nebenniere intakt bleibt. Dann ligaiere ich den Nierenpedikel mit einer kleinen Ligaklammer und 4-0 Seidennähten.Schneiden Sie die Gefäße auf der Nierenseite durch. Dann schneiden Sie den Harnleiter durch und entfernen Sie die Niere. Schließen Sie den Schnitt, indem Sie den Muskel nähen und die Haut abschneiden.Bilder mit niedriger Vergrößerung der trichromgefärbten Ganznierenabschnitte des Masson zeigten eine fortschreitende Nierenatrophie 28 und 42 Tage nach der Nierenischämie-Reperfusionsverletzung. Darüber hinaus zeigte Massons Trichrom-Färbung eine ausgedehnte interstitielle Fibrose im Kortex und im Medulla 28 und 42 Tage nach der Nierenischämie-Reperfusionsverletzung. Die Serum-Harnstoff-Stickstoffwerte und die Serumkreatininwerte waren 28 und 42 Tage nach der Verletzung signifikant erhöht.Die Expression der CKD-Markergene Acta 2 und Col1a1 wurde an den Tagen 28 und 42 nach der Verletzung signifikant hochreguliert. Dieses Protokoll ermöglicht es Forschern, Ergebnisse von Nierenoperationen zu bewerten, was hohe Überlebensraten und verbesserte Reproduzierbarkeit durch einen dorsalchirurgischen Ansatz nachweist. Eine große Herausforderung in der Nephrologie ist das Fehlen etablierter Therapien, die in der Lage sind, das Fortschreiten von einer akuten Nierenschädigung bis zur chronischen Nierenerkrankung zu verhindern oder zu stoppen.Zukünftige Studien können dieses ischämische CKD-Modell nutzen, um neuartige Therapeutika zu evaluieren und die Genfunktion mit gezielten Knockout-Mäusen zu untersuchen.

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Ein leistungsfähiges Modell für perioperative und Intensivmedizin akute Nierenversagen wird vorgestellt. Mit ganzen Körper Hypoperfusion durch Herzstillstand ist es möglich, fast replizieren die histologische und funktionelle Veränderungen der klinischen AKI induziert.

Normothermen Herzstillstand und Herz-Lungen: Ein Maus-Modell der Ischämie-Reperfusionsschaden

Wir beschreiben Modelle der mittelschweren und schweren Ischämie-Reperfusion-induzierte Nierenschädigung, in denen die Mäuse unterziehen einseitige renale Stiel Klemm gefolgt durch gleichzeitige oder verzögerte kontralaterale Nephrektomie sind. Diese Modelle konsequent führen zu Nierenfunktionsstörungen und posttraumatische Fibrose, aber Verletzungsschwere und Überleben sind abhängig von Maus Hintergrund, Alter und chirurgischen Einrichtungen.

Ischämie-Reperfusion-Modell des akuten Nierenschädigung und nach der Verletzung Fibrose bei Mäusen

Das hier beschriebene Mausmodell der renalen Ischämie-Reperfusionsverletzung besteht aus einer rechten Nephrektomie, die Kontrollgewebe bereitstellt, und einer Klemmung des linken Nierenstiels, um eine Ischämie zu induzieren, die zu einem akuten Nierenversagen führt. Dieses Modell verwendet einen Mittellinien-Laparotomie-Ansatz, bei dem alle Schritte über einen Schnitt ausgeführt werden.

Renale Ischämie Reperfusionsschaden: Ein Maus-Modell der Schädigung und Regeneration

Diese Studie präsentiert ein hochreproduzierbares Großtiermodell für renale Ischämie-Reperfusionsverletzungen bei Schweinen unter Verwendung eines vorübergehenden perkutanen bilateralen Ballonkatheterverschlusses der Nierenarterien für 60 min und einer Reperfusion für 24 h.

Ein Großtiermodell für akute Nierenverletzungen durch vorübergehenden bilateralen Nierenarterienverschluss

Nierenischämie-Reperfusionsverletzungen sind mit hoher Morbidität und Mortalität bei hospitalisierten Patienten verbunden. Hier stellen wir ein einfaches und effektives Mausmodell der einseitigen renalen Ischämie-Reperfusionsverletzung vor und geben einen sequentiellen Überblick über repräsentative pathologische Veränderungen, die in der Niere beobachtet wurden.

Ein effektives Mausmodell der einseitigen renalen Ischämie-Reperfusionsverletzung

In dieser Studie wurde ein Protokoll erstellt, das sich auf die technische Verfeinerung eines Mausmodells der bilateralen renalen Ischämie-Reperfusion für die Erforschung akuter Nierenschäden konzentriert.

Technische Verfeinerung eines bilateralen renalen Ischämie-Reperfusions-Mausmodells für die Erforschung akuter Nierenschäden

Der Grad der vaskulären Dysfunktion beitragen und physiologischen Mechanismen können bei Patienten mit chronischer Nierenerkrankung durch Messen brachialis flussabhängigen Dilatation Aortapulswellengeschwindigkeit und vaskuläre Endothelzellen-Protein-Expression zu beurteilen.

Beurteilung der Gefäßfunktion bei Patienten mit chronischer Nierenerkrankung

Hier beschreiben wir die Einzelheiten des Verfahrens der intestinalen Ischämie-Reperfusion bei Mäusen, die ohne Mortalität in reproduzierbarer Verletzungen führt die Standardisierung dieser Technik auf dem Gebiet zu fördern. Dieses Modell der intestinalen Ischämie-Reperfusions-Verletzung kann die zellulären und molekularen Mechanismen der Schädigung und Regeneration zu studieren verwendet werden.

Murine Modell der intestinalen Ischämie-Reperfusionsschaden

Dieser Artikel beschreibt ein Verfahren für die retinale Ischämie-Reperfusionsverletzung von erhöhtem Augeninnendruck bei Mäusen zu induzieren. Retinaler Ischämie-Reperfusionsschaden durch erhöhten Augeninnendruck dient menschlichen Krankheiten zu modellieren, indem kompromittiert Sauerstoff- und Nährstoffversorgung in der Retina gekennzeichnet, so dass die Forscher potentielle zelluläre Mechanismen und Therapien für menschliche Erkrankungen der retinalen Gefäß-Nerven-Einheit zu untersuchen.

Ein Maus-Modell der Netzhautischämie-Reperfusionsschaden Durch Erhöhung des intraokularen Druck

Dieses Protokoll beschreibt eine vollständige Niere Aufarbeitung, die in Mausmodellen der glomerulären Erkrankung durchgeführt werden soll. Die Methoden können für funktionelle, strukturelle und mechanistische Detailanalyse der glomerulären Funktion, die auf alle Maus-Modellen der glomerulären Erkrankung angewendet werden kann.

Beurteilung der Nierenfunktion in Mausmodellen der glomerulären Erkrankung

Erfahren Sie ein robustes Mausmodell für den Übergang von akuter zu chronischer Nierenerkrankung durch dorsale Nierenischämie/Reperfusionsverletzung. Dieses Protokoll ermöglicht mechanistische Studien zur CKD-Progression mit hoher Überlebensrate.

Mausmodell des Übergangs von akuter zu chronischer Nierenerkrankung, induziert durch Nierenischämie/Reperfusionsverletzung

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