5. Mai 2026
Dieses Manuskript beschreibt das strukturierte Trainingsprogramm, das entwickelt wurde, um die Auswirkungen von Bewegung auf die Pathophysiologie der pulmonalen Hypertonie – rechtsventrikuläre Herzinsuffizienz in einem Schafmodell zu untersuchen.
Wir untersuchen die Auswirkungen von Bewegung auf die Pathophysiologie der pulmonalen Hypertonie – Rechtsventrikelversagen in einem Schafmodell. Bewegungseffekte bei pulmonaler Hypertonie Das rechte ventrikuläre Insuffizienz ist aufgrund der begrenzten Toleranz und des Risikos einer kardiopulmonalen Dekompensation schlecht charakterisiert. Dieses Protokoll ermöglicht jedoch eine kontrollierte Bewertung.
Um zu beginnen, sammeln Sie die benötigten Reagenzien und richten Sie den Arbeitsbereich für das Experiment ein. Mach drei normale Kochsalzspülungen. Entferne jeweils einen Milliliter.
Und geben Sie jeder Spritze einen Milliliter Heparinlösung mit 1.000 Einheiten zu. Bereiten Sie zwei 10-Milliliter-Spritzen vor, eine für Abfallstoffe und eine für die Blutentnahme, sowie fünf Ein-Milliliter-Spritzen für die Blutgasabnahme. Nehmen Sie mit einer Fünf-Milliliter-Spritze fünf Milliliter Heparinlösung mit 5.000 Heparineinheiten auf, um die rechte Ventrikel- oder RV-Linie zu blockieren.
Rekonstituieren Sie zwei Milligramm Alteplase mit 2,2 Millilitern sterilem Wasser, um es bei Bedarf zu verwenden. Nehmen Sie eine Ein-Milliliter-Spritze und eine Fünf-Milliliter-Spritze und füllen Sie beide mit hypertoner Kochsalzlösung mit einer 20- bis 22-Gauge-Nadel. Besorge einen Druckwandler und verbinde das weibliche Köderende des Druckrohrs mit dem männlichen Köderende des Wandlers.
Bestätigen Sie, dass das untere Köderende des Wandlers verschlossen ist. Schließen Sie das Rohr an einen Dreifach-Absperrhahn an und befestigen Sie eine 22-Gauge-Huber-Nadel. Spülen Sie die Leitung mit hypertoner Kochsalzlösung, bis die Flüssigkeit die Nadel verlässt.
Dann verstellen Sie den Hahn so, dass er zur Nadel und weg von der blauen Kappe verriegelt wird, um den Zugang zur Manschette zu schließen. Entnehmen Sie zwei Milliliter Kochsalzlösung aus einem Ein-Liter-Beutel und ersetzen Sie sie durch zwei Milliliter Heparinlösung mit 2.000 Heparineinheiten. Setzen Sie den Kochsalzbeutel in einen Druckbeutel und führen Sie ihn dann mit einem intravenösen Spike in einen Zugangsbeutel ein.
Hängen Sie den Druckbeutel etwa zwei Meter über dem Boden auf. Und drehen Sie den Dreifach-Absperrhahn am Druckbeutel so, dass der Griff senkrecht zum Rohr steht. Pumpen Sie den Beutel mit der Handpumpe auf, bis der Druckanzeiger bei etwa 250 Millimetern Quecksilber grün wird.
Drehen Sie den Dreifach-Stopphahn zum Beutel, um den Druck aufrechtzuerhalten. Verbinden Sie das männliche Ende der intravenösen Leitung mit dem weiblichen Ende des Transducers. Als Nächstes verbinden Sie das weibliche Lockende des Druckschlauchs mit dem männlichen Ende des Wandlers.
Und dann das männliche Ende des Schlauchs am weiblichen Köderende des Stopphahns befestigen. Nachdem Sie eine 22-Gauge-Huber-Nadel am männlichen Ende des Dreifach-Stopphahns befestigt haben, öffnen Sie den Heparinbeutel und spülen Sie die intravenöse Leitung, bis heparinisierte Kochsalzlösung die Hooper-Nadel verlässt. Drehen Sie den Dreifach-Absperrhahn zur Huber-Nadel, um ihn zu verriegeln.
Verwenden Sie ein Schafmodell von pulmonaler Hypertonie bei RV-Ausfall, instrumentiert mit einer PA-Manschette und einem RV-Druckport. Nach einer Woche postoperativer Erholung werden die auf dem Laufband akklimatisierten Schafe zum Trainingsraum für Tests transportiert. Legen Sie ein Halfter auf das Schaf und führen Sie damit das Tier auf das Laufband, wobei Sie es vorne positionieren, wobei die vier Beine auf einer kleinen Box ruhen.
Taste die Ports ab und reinige die Haut mit Alkoholtüchern. Benutze eine Huber-Nadel, um auf den PA-Port zuzugehen. Nachdem Sie die Startseite der Labordiagramme geöffnet haben, wählen Sie Neu, klicken Sie auf Einrichten, wählen Sie Geräte und Kanäle aus.
Stellen Sie die Anzahl der Kanäle auf vier ein und benennen Sie Kanal eins auf vier um: PA-Manschettendruck, RV-Druck, RV-systolischer Druck und Herzfrequenz. Wählen Sie zyklische Messungen. Gehe zur Quelle, wähle Kanal zwei RV-Druck, messe auf Maximum und klicke OK. Wiederhole den Prozess für die Herzfrequenz auf Kanal vier, aber ändere die Messung auf die Frequenz.
Für Kanal eins und zwei wird bestätigt, dass keine Berechnung ausgewählt ist. Stellen Sie die korrekte Zugangsorientierung sicher, wobei der PA-Port näher am Kopf und der RV-Port näher am Heck angebracht ist. Positioniere die Wandler zwischen dem Schaf und dem Computer auf Herzhöhe und verbinde beide Druckmesser mit dem Schnittstellenkabel.
Sobald die Transducer auf Null gestellt und kalibriert sind, beginnt Klick, um die Druckwelle der RV- und PA-Manschetten bei 400 Hertz aufzuzeichnen. Drehen Sie den Stopphahn nach oben, um die Druckwelle der PA-Manschette zu transduzieren. Dann dreht man den Absperrhahn in Richtung des Schafs, um die Wellenform zu schließen.
Setzen Sie eine Heparinleitung bündig auf den Dreifachhahn der Wohnmobilleitung und spülen Sie die gesamte Leitung in den Wohnmobilanschluss. Ziehe vorsichtig die Spritze zurück, bis dunkles Blut zurückkehrt. Drehen Sie den Absperrhahn in Richtung des Wandlers.
Zuerst verwenden Sie eine leere 10-Milliliter-Spritze, um 10 Milliliter RV-Blut zu entnehmen. Dann nehmen Sie eine Ein-Milliliter-Spritze, um 0,2 bis 0,4 Milliliter RV-Blut als Probe zu entnehmen. Stellen Sie den Stopp in die Aufwärtsposition.
Ziehe die blaue Lasche des RV-Druckmessers, um das Ventil zu öffnen, und spüle weiter, bis die Leitung frei von Blut ist. Beginnen Sie die erste Übungsgeschwindigkeit, indem Sie den Laufbandknopf auf 30 stellen, entsprechend 0,46 Metern pro Sekunde, und halten Sie 10 Minuten lang. Öffnen Sie die PA-Manschettenlinie regelmäßig im 10-Minuten-Intervall, um den PA-Manschettendruck zu übertragen.
Gegen Ende des 10-Minuten-Intervalls entnehmen Sie Blutgas, wie bereits gezeigt. Wiederholen Sie die Blutprobennahme, das Spülen der Leitung und die Übungsschritte auf den Laufbandeinstellungen 40, 50, 30 und Null. Verwenden Sie einen Milliliter hypertonen Kochsalzlösung, um die Manschette auf 150 bis 200 Millimeter Quecksilber aufzublasen.
Transduzieren Sie den Wohnmobildruck für einige Minuten nach der Aufpumpung, um die Toleranz zu gewährleisten. Die gemischte venöse Sauerstoffsättigung blieb bei maximaler Laufbandgeschwindigkeit von Woche eins bis Woche acht relativ stabil. Der RV-systolische Druck stieg von Woche eins bis Woche acht an.
Die während des Trainings zurückgelegte Strecke stieg von Woche eins auf Woche acht, obwohl der PA-Manschettendruck bis Woche acht auf etwa 777 Millimeter Quecksilber anstieg. Bei den ausgewählten Laufbandgeschwindigkeiten nahm die Sättigung von gemischtem venösem Sauerstoff ab, und der RV-systolische Druck stieg mit zunehmender Übungsgeschwindigkeit an. Dieses Protokoll ermöglicht es uns, hämodynamische Werte während des Trainings in Echtzeit zu messen.
Eine zentrale Herausforderung in diesem Protokoll ist die Aufrechterhaltung des Portzugangs oder der Übung. Insbesondere die Aufrechterhaltung des PA-Manschettendrucks. Ein Parameter, den wir in Zukunft genauer messen wollen, ist der Sauerstoffverbrauch während Bewegung und Erholung.
Sehen Sie sich das vollständige Transkript an und erhalten Sie Zugang zu Tausenden wissenschaftlicher Videos
This study investigates the physiological adaptations to exercise in a large animal model of chronic pulmonary hypertension-induced right ventricular failure (PH-RVF). Using an ovine (sheep) model, researchers implemented a structured exercise regimen to assess the effects of increased right ventricular afterload and the potential for adaptive responses during progressive disease.
Understanding adaptive responses to exercise in pulmonary hypertension-induced right ventricular failure (PH-RVF) is critical for translational target validation and mechanistic de-risking in cardiopulmonary drug discovery. This ovine model with structured exercise regimens enables quantitative assessment of physiological adaptation under progressive right ventricular afterload, supporting predictive confidence for preclinical candidate selection. The approach informs early-stage portfolio decisions by clarifying disease-relevant compensatory mechanisms in a large animal system.
This structured exercise regimen positions the ovine PH-RVF model as a bridge from early discovery to preclinical validation, enabling hypothesis testing and functional endpoint measurement across the R&D continuum.