Este video muestra el protocolo de un ensayo de angiogénesis in vitro que recapitula varias etapas de la angiogénesis. Time-lapse imágenes de germinación, la formación del lumen, ramas y anastomosis - las características clave de la angiogénesis - se muestran.
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Artículo de método
Optimizado de gel de fibrina bolas de ensayo para el Estudio de la angiogénesis
En este artículo
Resumen
Resumen
La angiogénesis es un complejo proceso de múltiples pasos, donde, en respuesta a estímulos angiogénicos, nuevos vasos son creados a partir de los vasos existentes. Estas medidas incluyen: la degradación de la membrana basal, proliferación y migración (brotes) de las células endoteliales (CE) en la matriz extracelular, la alineación de la CE en los cables, ramas, la formación del lumen, anastomosis y la formación de una nueva membrana basal. Muchos de los ensayos in vitro se han desarrollado para estudiar este proceso, pero la mayoría sólo imitar ciertas etapas de la angiogénesis, y morfológicamente los vasos en los ensayos a menudo no se parecen a los barcos en vivo. Basado en un trabajo anterior de Niels y Drenckhahn, hemos optimizado un ensayo de angiogénesis in vitro, que utiliza la vena umbilical humana CE y los fibroblastos. Este modelo recapitula todas las etapas clave al comienzo de la angiogénesis y, sobre todo, los vasos pantalla patente lúmenes intercelular rodeado de polarización CE. CE se aplica sobre microportadores cytodex y embebido en un gel de fibrina. Los fibroblastos son en capas en la parte superior del gel donde se presten los necesarios factores solubles que promueven la CE que brotan de la superficie de los granos. Después de varios días, numerosos vasos que están presentes se puede observar fácilmente en contraste de fases y microscopía lapso de tiempo. Este video muestra los pasos clave en la creación de estas culturas.
Protocolo
CÉLULAS PREPARACIÓN
- Abrir HUVEC y fibroblastos en M199/10% de SFB / Pen-estreptococo (1:100) 1-2 días antes de abalorios.
- Interruptor de medio EGM-2 (Clonetics) el día antes de abalorios para HUVEC y el día antes de la incrustación de los fibroblastos.
- Una concentración de aproximadamente 400 bolas por HUVEC es necesario.
- 20.000 fibroblastos por bien que se necesita.
RECUBRIMIENTO las cuentas con HUVEC - día -1
- Trypsinize HUVEC.
- Permitir cuentas para resolver (NO CENTRIFUGA!). Aspirar el sobrenadante y lavar las cuentas brevemente en 1 ml de agua tibia EGM-2 medio.
- Mix cuentas 2500 w / 1X10 6 HUVEC en 1,5 ml de agua tibia EGM-2 medio en un tubo de FACS. Lugar de forma vertical en la incubadora. (Esto será suficiente para unos 10 pozos. Escala hasta si es necesario)
- Se incuba durante 4 horas a 37 ° C, agitando el tubo cada 20 minutos. (Buena capa es crucial para la germinación.)
- Después de 4 horas, la transferencia de bolas recubiertas de un frasco T25 en 5 ml de EGM-2 y salir de O / N.
INTEGRACIÓN EN bolas recubiertas de gel de fibrina - DÍA 0
- Preparar el 2,0 mg / ml solución de fibrinógeno (Ver sección de recetas).
- Añadir 0,15 unidades / ml de aprotinina para la solución de fibrinógeno.
- Transferencia de bolas recubiertas de un tubo cónico de 15 ml y dejar cuentas resolver. Cuentas resuspender en 1 ml de EGM-2 y transferir a un tubo de centrífuga de 1,5 ml.
- Lavar las perlas de 3X con 1 ml de EGM-2 por pipeta hacia arriba y abajo lentamente.
- Contar con las cuentas de un cubreobjetos y se resuspenden en solución de fibrinógeno en una concentración de ~ 500 cuentas / ml.
- Añadir 0.625 unidades / ml de trombina a cada pocillo.
- Añadir 0,5 ml de la suspensión de fibrinógeno / cordón a cada pocillo de una placa de 24 pocillos.
Cambiar la punta de la pipeta para cada bien! - Mezclar la trombina y fibrinógeno por la que suben y bajan suavemente con la punta de la pipeta ~ 4 a 5 veces. Tenga cuidado de no hacer burbujas grandes.
- Dejar la placa durante 5 minutos en la capilla, luego se coloca en los 37 ° C incubadora durante 10-15 minutos para generar un coágulo.
- A la espera de que el coágulo, trypsinize fibroblastos.
- Añadir 1 ml de EGM-2 por así gota a gota.
- Fibroblastos de semillas en la parte superior del gel de fibrina en una concentración de 20.000 células por pocillo.
NOTAS:
Por lo general, cuando el gel de fibrina se forma, podrás ver pequeñas burbujas en el gel. No te preocupes, van a desaparecer en 3-4 días.
Cambiar los medios de comunicación cada dos días, es decir, el día 2, 4, 6, etc ..
El día 3 ó 4 que debe comenzar a ver brotar.
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Discusión
Existe un consenso creciente de que en tres dimensiones (3D) en los ensayos de la angiogénesis in vitro ofrecen un modelo que está mucho más cerca el entorno real en vivo que se puede lograr a partir de cultivos en 2D. Es evidente que los sistemas superiores de 3D debe ser reproducible, y ser capaz de imitar a varios de los pasos más importantes de la angiogénesis. Mientras que varios ensayos previa en 3D han sido desarrollados, muchos de estos o bien utilizar difíciles de obtener células microvasculares, o sólo recapitular algunas de las e...
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Materiales
| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios | |
|---|---|---|---|---|
| Perlas Cytodex-3 | Reactivo | Amersham | 17-0485-01 | 10 g/frasco. 1.0,5 g de perlas secas se hidratan y hinchan en 50 mL de PBS (pH = 7,4) durante al menos 3 h a temperatura ambiente. Utilice un tubo de 50 mL y colóquelo en el agitador orbital. 2. Deje asentar las perlas (~15 min). Descarte el sobrenadante y lave las perlas durante unos minutos con PBS fresco (50 mL). 3. Descarte el PBS y reemplace con PBS fresco: 25 mL -> 20 mg/mL => 60000 perlas/mL o 50 mL -> 10 mg/mL => 30.000 perlas/mL. 4. Coloque la suspensión de perlas en un frasco de vidrio silanizado (Windshield Wiper o Sigmacote). 5. Esterilice las perlas mediante autoclave durante 15 min a 115°C. 6. Almacénelas a 4°C. |
| Aprotinina | Reactivo | Sigma-Aldrich | A-1153 | 10 mg/frasco. Reconstituya la aprotinina liofilizada a 4 U/mL en agua desionizada. Filtre estérilmente. Prepare alícuotas de 1 mL cada una. Almacene a -20 °C. |
| Fibrinógeno Tipo I | Reactivo | Sigma-Aldrich | F-8630 | 1 g. Disuelva el fibrinógeno a 2 mg/mL en DPBS. Tenga en cuenta el porcentaje de proteína coagulable y ajuste en consecuencia. Caliente en un baño de agua a 37 °C para disolver el fibrinógeno. Mezcle invirtiendo el tubo. No vortex. Filtre estérilmente a través de 0,22 µm |
| Trombina | Reactivo | Sigma-Aldrich | T-3399 | 22 mg = 1.000 unidades. Reconstituya en agua estéril a 50 U/mL. Prepare alícuotas de 0,5 mL cada una. Almacene a -20 °C. |
Referencias
- Nehls, V., Drenckhahn, D. A microcarrier-based cocultivation system for the investigation of factors and cells involved in angiogenesis in three-dimensional fibrin matrices in vitro. Histochem Cell Biol. 104, 459-466 (1995).
- Nehls, V., Drenckhahn, D. A novel, microcarrier-based in vitro assay for rapid and reliable quantification of three-dimensional cell migration and angiogenesis. Microvasc Res. 50, 311-322 (1995).
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