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Ensayo de electrotaxis: un método para observar la locomoción en C. elegans

30 de abril de 2023

En este artículo

Resumen

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Fuente: Tong, J, et al. Electrotaxis basados en microfluidos para el análisis cuantitativo bajo demanda de la locomoción de Caenorhabditis elegans.J. Vis. Exp.(2013).

Los investigadores pueden desencadenar el movimiento a demanda en C. elegans mediante la aplicación de un campo eléctrico que los gusanos detectan y responden. Este video presenta el comportamiento electrotáctico y muestra un protocolo de muestra que se realiza en un dispositivo microfluídico.

Protocolo

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Este protocolo es un extracto de Tong et al, Microfluidic-based Electrotaxis for On-demand Quantitative Analysis of Caenorhabditis elegans' Locomotion, J. Vis. Exp. (2013).

1. Experimento de electrotaxis

  1. Coloque el microcanal en la platina (preferiblemente móvil XY) de un microscopio con una cámara montada conectada a un monitor (Figura 1).
  2. Conecte la fuente de alimentación o los cables de salida del amplificador a los electrodos del microcanal. Una simple fuente de alimentación de CC es suficiente si solo se desea una señal de CC, pero un amplificador conectado a un generador de funciones también permite la aplicación de señales de CC y CA pulsadas.
  3. Conecte el tubo de salida del microcanal a una jeringa desechable. Sumerja la boca del tubo de entrada en el tampón fisiológico M9 y aspire suavemente el líquido en el canal aplicando una presión negativa dentro de la jeringa (ya sea manualmente o utilizando una bomba de jeringa). Cuando los tubos de entrada y salida estén llenos de M9, desconecte la jeringa del tubo. Nivele ambos tubos a la misma altura para evitar el flujo impulsado hidrostáticamente.
  4. Aplique un voltaje de CC al canal y asegúrese de que la resistencia (R = V / I) sea de alrededor de 0,6 MΩ (para un microcanal de 50 mm de largo, 0,3 mm de ancho y ~0,1 mm de profundidad).
  5. Si está satisfecho con la integridad del canal, siga los pasos anteriores para cargar gusanos de una suspensión diluida en el canal.
  6. Desconecte la jeringa y manipule hidrostáticamente el flujo ajustando la altura relativa de los tubos. Use este método para colocar un gusano en el centro del canal y luego coloque ambos tubos planos a la misma elevación.
  7. Ajuste la fuente de alimentación al voltaje adecuado: 4-12 V/cm para animales de la etapa L3, 4-10 V/cm para L4 y 2-4 V/cm para adultos jóvenes. Activa la señal eléctrica y deja 1 minuto de preexposición para que el gusano se aclimate al campo. El gusano debe comenzar a moverse hacia el cátodo. Cuando haya pasado el minuto, use la cámara para comenzar a grabar.
  8. Para experimentos de CA y CC pulsada, el campo eléctrico de máxima respuesta se puede adoptar desde arriba y la frecuencia y el ciclo de trabajo de la señal se pueden modular como se desee.
  9. Una vez finalizado el experimento, retire todo el líquido (y los gusanos) del canal, enjuáguelo con dH20 y deje secar el dispositivo en una placa caliente a 125 °C.
  10. Extraiga datos locomotores de los vídeos grabados manualmente utilizando NIH ImageJ (http://rsbweb.nih.gov/ij/) o software de seguimiento de gusanos personalizado basado en MATLAB.

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Resultados

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Figura 1. Esquema de la plataforma de cribado microfluídico para el ensayo de electrotaxis de nematodos. 

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Etiquetas

Locomoci n de C elegansdispositivo microflu dicoaplicaci n de campo el ctricoest mulo de corriente continuainmovilizaci n por corriente alternaseguimiento del movimiento del gusanoprueba de inversi n de polaridadaclimataci n previa a la exposici ncontrol del flujo del canal

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