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Gen bacteriano y Análisis de Expresión El uso de microarrays

DOI:

10.3791/206

May 28th, 2007

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Protocol

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Reacción de la transcriptasa inversa

A su vez un calentador a 70-80 ° C y 42 ° C. Baños de agua también se puede utilizar en este paso. Si utiliza bloques de calentamiento, poner un poco de agua para que el calor es uniforme.

  1. Cebado reacción
    1. Tomar 3 g de ARN
    2. Ajustar el volumen a 13 ml con agua libre de RNasa
    3. Añadir 2,5 l de azar hexamer primers (2mg/ml)
  2. Mezclar bien e incubar a 70-80 ° C durante 8 minutos. Después, coloque en hielo durante 5 min.
  3. Preparar cócteles RT (14,5 l / rxn):

    Componente

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
AA-dUTPSigma-AldrichA04105-(3-aminoalilo)-2' desoxiuridina-5'-trifosfato
dNTPAmersham27-2035-01100 mM dNTP Set
PCR grade Random Hexamer cebadoresAmersham27-2166-013mg/mL
SuperScript III RTInvitrogen80800444200U/μ L
CyDye™AmershamRPN5661Paquete de colorantes reactivos posteriores al etiquetado
QIAquickQiagen28104PCR Kit de purificación
1 M K2HPO4
1 M KH2PO4
1 M TampónPara hacer un tampón de fosfato 1M (KPO4, pH 8,5-8,7) combine: 9,5 mL 1M K2HPO4 y 0,5 ml 1M KH2PO4
Tampón de lavado de fosfatoTampónpara 100 mL Tampón de lavado de fosfato (5 mM KPO4, pH 8,0, 80% EtOH) mezcla: 0,5 ml 1 M KPO4 pH 8,5 + 15,25 mL de agua MilliQ + 84,25 mL de etanol al 95%. El tampón de lavado estará ligeramente turbio.** IMPORTANTE: El tampón de lavado de fosfato debe prepararse a diario.
Tampón de elución de fosfatoTampónDiluido 1 M KPO4, pH 8,5 a 4 mM con agua estéril
Tampón(Na2CO3): 0,5M, pH 9,0. Disuelva 4,2 g de NaHCO3 en 80 mL de agua estéril y ajuste el pH a 9,0 con NaOH 10 N; Lleve el volumen hasta 100 mL con agua estéril. Para hacer una solución de 50 mM para la reacción de acoplamiento del colorante, diluya 1:10 con agua. Nota: El tampón de carbonato cambia de composición con el tiempo; Hazlo fresco cada dos semanas o un mes.
KPO4 de carbonato de sodio

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Hasseman, J. TIGR Aminoallyl Labeling of RNA for. Microarrays & TIGR Microarray Labeled Probe Hybridization. , Forthcoming.
  2. Gilbert,, et al. TIGR Microbial RNA Aminoallyl Labeling for Microarrays & Hybridization of probed labels. , Forthcoming.
  3. Hedge,, ....

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Gene Expression AnalysisMicroarray TechniqueRNA LabelingReverse TranscriptionCDNA PurificationFluorescent LabelingSlide HybridizationWashing ProtocolSlide ScanningDetection

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