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Artículo de método

Fabricación de materiales de origen biológico inyectable para ingeniería de tejidos del miocardio

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DOI:

10.3791/2109

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20 de diciembre de 2010

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En este artículo

Resumen

Los métodos para preparar una matriz de gel inyectable de tejidos descelularizada e inyectarlo en ratas miocardio In vivo Se describen.

Resumen

Este protocolo proporciona los métodos para la preparación de un inyectable de la matriz extracelular (ECM) de gel para el infarto de aplicaciones de ingeniería de tejidos. En pocas palabras, el tejido descelularizada es liofilizada, se muele, se digiere enzimáticamente, y luego llevados a un pH fisiológico. La liofilización elimina todo el contenido de agua de los tejidos, dando lugar a ECM seco que puede ser molido en un polvo fino con un pequeño molino. Después de la molienda, el polvo de ECM es digerido con pepsina para formar una matriz de inyectables. Después del ajuste a un pH de 7.4, el material de la matriz líquida se puede inyectar en el miocardio. Los resultados de los ensayos de caracterización previos han mostrado que los geles matriz obtenida a partir de tejido de miocardio y pericardio descelularizada retener los componentes nativos ECM, incluyendo diversas proteínas, péptidos y glicosaminoglicanos. Dado el uso de este material para la ingeniería de tejidos, en la caracterización in vivo es especialmente útil, aquí, un método para realizar una inyección intramural en el ventrículo izquierdo (VI) de la pared libre se presenta como una forma de analizar la respuesta del huésped a la matriz de gel en un modelo de animal pequeño. El acceso a la cavidad torácica se obtiene a través del diafragma y la inyección se hace un poco por encima del vértice de la pared libre del VI. El origen biológico andamio puede ser visualizado por biotina-etiquetado antes de la inyección y luego teñir secciones de tejido con rábano picante y conjugado con peroxidasa neutravidin y visualización mediante diaminobencidina (DAB) tinción. Análisis de la región de inyección también se puede hacer con la tinción histológica e inmunohistoquímica. De esta manera, los geles de la matriz ya examinada pericardio y miocardio, se mostró a formar redes de fibra, porosa y promover la formación de vasos en la región de la inyección.

Protocolo

1. Pre-procesamiento de los tejidos de preparación

  1. Antes de utilizar este protocolo, se debe tener ya descelularizada el tejido de elección. Para este ejemplo, fresca de porcino y muestras humanas pericardio descelularizada utilizando enjuagues hipotónica e hipertónica en agua desionizada (DI) y dodecilsulfato sódico (SDS).
  2. En concreto, primero se deben lavar el pericardio porcino en agua DI durante 30 minutos, luego revolver continuamente en SDS al 1% en tampón fosfato salino (PBS) durante 24 horas, seguido de un 5 horas de agua DI enjuague. Para pericárdica humanos, primero enjuague con agua DI durante 30 minutos, luego revolver ....

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Discusión

Este método permite la generación de origen biológico, andamios inyectables para la ingeniería de tejido miocárdico. Aunque estos métodos fueron desarrollados inicialmente para la fabricación y las pruebas in vivo de una matriz de gel de miocardio y que aquí se presenta con una matriz de gel pericárdico, este protocolo puede ser adaptado para su uso con cualquier tejido, siempre que el tejido puede ser apropiada descelularizada. Descelularización se debe realizar y verificados antes de la utilización d.......

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Divulgaciones

Uso de Animales: Todos los experimentos en este estudio se realizaron de acuerdo con las directrices publicadas por el Cuidado de Animales institucional y el empleo en la Universidad de California, San Diego y la Asociación Americana para la Acreditación del Cuidado de Animales de Laboratorio.

Agradecimientos

Esta investigación fue financiada en parte por el nuevo director de los NIH Programa Premio a la Innovación, que forma parte de la hoja de ruta del NIH para la investigación médica, a través de la subvención número 1-DP2-OD004309-01. SBS-N. agradecer a la NSF para una Beca de Investigación de Tesis.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Reactivos:
PepsinaSigma-Aldrichp6887-1GLiofilizado
BiotinaThermo Fisher Scientific, Inc.21217
Neutravidina-HRPThomas Scientific21130
Equipamiento:
Wiley Mini MillThomas Scientific3383L10
Liofilizador LabconcoLabconco Corp.7670520
Suministros quirúrgicos:
BetadinePurdue Products L.P.67618-154-16
Solución de Ringer con lactatoMWI Veterinary Supply003966
KY JellyMWI Veterinary Supply28658
Lidocaína, 2%MWI Veterinary Supply17767
Clorhidrato de buprenorfinaReckitt Benckiser12496-0757-1
Pomada ocular artificialFisher ScientificNC9860843
Pomada triple antibióticaFisher Scientific19082795
IsofluranoMWI Veterinary Supply60307-120-25
Otoscopio MWI Veterinary Supply008699
Llave de pasoMWI Veterinary Supply006245
Sutura Vicryl 3-0MWI Veterinary SupplyJ327H
Sutura Proline 5-0MWI Veterinary Supplys-1173
Aguja de corte inverso (RC)Ethicon Inc.8684G
Microhemostatos Fine Science Tools13013-14
Pinzas microdentadasFine Science Tools11084-07
Bisturí número 10Fine Science Tools10110-01
Tijeras romasFine Science Tools14108-09
Tijeras curvas afiladasFine Science Tools14085-08
Pinzas grandes con dientesFine Science Tools1106-12
Tubo de succión PE160BD Biosciences427430
AfeitadorasMWI Veterinary Supply21608
Grapas quirúrgicas/ensartadorEthicon Inc.PRR35
Suministros generales:
Placas agitadoras
HCl 0,1 M
NaOH 1 M
PBS 10x
PBS 1x
Etileno al 70%
Jeringas de 0,1 mL
Jeringa de 10 mL
Hisopos
Adhesivo quirúrgico
Campos quirúrgicos
Pinzas para toallas
Aspirador pequeño portátil

Referencias

  1. Seif-Naraghi, S. B., Salvatore, M. A., Magoffin-Schup, P. J., Hu, D. P., Christman, K. L. Design and characterization of an injectable pericardial matrix gel: A potentially autologous scaffold for cardiac tissue engineering. Tissue Engineering. , (2009).
  2. Freytes, D. O., Martin, J., Velankar, S. S., Lee, A. S., Badylak, S. F.

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Reimpresiones y permisos

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