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1. Las inyecciones de animales
Antes de la inyección intravenosa de vena de la cola, la piel de la cola se debe limpiar con alcohol isopropílico matorrales para fines de esterilización. Los ratones se debe inyectar con 0,2 ml/20 g de un joven de 20 mg de yodo / mL del agente de contraste yodados bloodpool (Exia 160XL; Binito Biomedical, Inc. Ottawa, ON, Canadá) a través de la vena de la cola distal utilizando el espacio muerto de baja y media CC U -100 28G ½ Jeringas de Insulina (Producto # 329461, Becton Dickinson and Company, Nueva Jersey, EE.UU.).
2. Preparación de los animales
Después de 10 minutos de la inyección, los animales deben estar preparados para microCT imágenes. En primer lugar, el animal debe ser anestesiado en una caja y un 2% de isoflurano en oxígeno al 100% a una tasa de 2,5 litros por minuto. Un ungüento lubricante ocular se deben aplicar para evitar la desecación de la córnea durante la anestesia. La temperatura del cuerpo debe mantenerse a 37 ° C por un almohadillas de calor.
3. MicroCT imágenes
Los ratones se deben analizar en una unidad de microCT capaz de realizar análisis de animales vivos. Para minimizar artefactos de movimiento y la estabilidad, los ratones pueden ser colocados en un producto comercial multi-modalidad de la cámara (Numira Biosciences, Salt Lake City, UT), con suministro de aire y de escape. Para evitar un episodio de hipotermia en los animales durante las exploraciones microCT, almohadillas de gel (corsé caliente Crioterapia, CVS Pharmacy, Woonsocket, RI), Dedo Warmer (Fábrica de calor, Vista, CA) o almohadillas Thermipaq Clay (Thermionics, Springfield, IL) puede ser utilizados. Coloque estas almohadillas térmicas debajo de la cama de espuma para mantener el ratón a 37 ° C, evitando el contacto directo con el animal. Los signos vitales de los animales, tales como la temperatura corporal, la respiración y la frecuencia cardiaca debe ser monitoreada mediante el seguimiento de pequeños animales y sistemas de apertura de puerta, como instrumentos SA (Stony Brook, NY).
El protocolo de imágenes siguientes se pueden utilizar como una guía para ayudar a determinar los parámetros de análisis apropiado para todas las unidades microCT. Los animales utilizados en este experimento fueron escaneadas a una resolución de 93 m en un matraz aforado de escáner CT GE eXplore Locus (GE Healthcare, Londres, Ontario). Este escáner volumétrico utiliza un 3500 x 1750 detector CCD para Feldkamp de haz cónico de reconstrucción. Los parámetros de plataforma independiente del tiempo de corriente, voltaje y la exposición se mantiene constante a 450 mA, kVp 80 y 100 ms, respectivamente. Los parámetros estándar del tiempo de exposición, cuadros por ver y el número de puntos de vista pueden ser variadas y puede ser de 100 ms, 5-8 y 360-720, respectivamente, con tiempo total de aproximadamente 20 minutos. Las imágenes fueron reconstruidas con el software del fabricante EVSBeam propietarios.
4. Imagen de la representación
Los datos microCT reconstruida puede ser utilizado para avanzados isosuperficie, unidimensional o bidimensional de transferencia de imágenes de representación la función utilizando el software de procesamiento de imágenes Seg3D (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ).
5. Resultados representante
Por favor vea la figura adjunta de un ratón de tipo salvaje escaneados con eXIA160XL con los ajustes mencionados en el apartado de métodos.

Figura 1. Bidimensional función de transferencia (2DTF) la imagen de representación de un ratón de tipo salvaje creados con software de procesamiento de imágenes Seg3D (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ). El animal fue inyectado con eXIA160XL y 10 minutos después microCT escaneadas a 93 micras de resolución isométrica con los ajustes mencionados en el apartado de métodos.
Video 1. Bidimensional función de transferencia (2DTF) la representación basada en la rotación de 360 ° película de un ratón de tipo salvaje creados con software de procesamiento de imágenes Imagevis3D (Imagevis3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software). El animal fue inyectado con eXIA160XL y 10 minutos después microCT escaneadas a 93 micras de resolución isométrica con los ajustes mencionados en el apartado de métodos.
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